Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Оценка влияния субстратов на стабильность ферментов светящихся бактерий при их совместной иммобилизации

Работа №165185

Тип работы

Бакалаврская работа

Предмет

физика

Объем работы30
Год сдачи2020
Стоимость4300 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
21
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


Реферат
ВВЕДЕНИЕ 4
1. Обзор литературы 6
1.1 Биологические методы тестирования окружающей среды 5
1.2 Достоинства и недостатки биотестирования 8
1.3 Перспективы использования биолюминесцентных методов в
биотестировании 10
1.4 Ферментативные реагенты для биолюминесцентного анализа 12
1.4.1 Способы стабилизации ферментов 12
1.4.1. Выбор условий иммобилизации биферментной системы ЫАВ(Р)Н:ЕМЫ-оксидоредуктаза и люцифераза 14
2. Материалы и методы 17
2.1 Материалы 17
2.2 Методы 17
3. Результаты и обсуждение 19
3.1 Определение параметров свечения и чувствительности иммобилизованной биферментной системы (R+L) при использовании в качестве субстрата алифатического альдегида с разной длиной углеродной цепи. 19
3.1. Оценка влияния субстратов тетрадеканаль и NADH на активность и стабильность биферментной системы (R+L) 22
ВЫВОДЫ 27
СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМЫХ ИСТОЧНИКОВ 28


Для решения научных и прикладных задач экологического мониторинга широко используются различные биотесты, основанные на ингибировании ферментов токсическими веществами. Перспективным является конструирование и применение интегральных биолюминесцентных методов анализа токсичности на основе биферментной системы светящихся бактерий: ЫАП(Р)Н:РМЫ-оксидоредуктаза (R) - люцифераза (L). Иммобилизация биферментной системы в полимерные гели позволяет стабилизировать активность ферментов (R+L) при хранении и использовании.
Ранее разработанные принципы и подходы конструирования высокоактивного и чувствительного интегрального ферментативного реагента, который был основал на иммобилизации в крахмальный гель ферментов и субстратов биферментной системы (L+R) светящихся бактерий, привел к оптимизации состава реагента и модификации процедуры иммобилизации в полимерные гели, однако не позволили увеличить точность результатов анализа при многократных измерениях. Возможным фактором, определяющим вариабельность реагентов, может быть влияние субстратов на стабильность ферментов при их совместной иммобилизации.
Цель исследования: оценка влияния субстратов на активность и стабильность ферментов светящихся бактерий при их совместной иммобилизации.
Задачи исследования:
1. Определение параметров свечения и чувствительности иммобилизованной биферментной системы (R+L) при использовании в качестве субстрата алифатического альдегида с разной длиной углеводородной цепи.
2. Сравнение характеристик биферментной системы (R+L) иммобилизованной в крахмальный гель без субстратов и совместно с субстратами тетрадеканалем, NADH

Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


1. Выход активности биферментной системы (R+L) иммобилизованной совместно с NADH и тетрадеканалем выше выхода активности биферментной системы (R+L) иммобилизованной совместно с NADH и деканалем в 1,5 раза при концентрациях альдегидов 10,9 и 59,1 мкмоль/л соответственно. Чувствительность реагентов к действию сульфата меди при использовании в качестве субстрата тетрадеканаля выше на порядок, чем при использовании деканаля.
2. Субстраты NADH и тетрадеканаль влияют на активность и
стабильность ферментов биферментной системы
NAD(P)H:FMN-oкcидopeдyктaзa-люцифepaзa при их совместной иммобилизации. Остаточная интенсивность свечения реагента на 7 день хранения составляет 60 %.



1. Roda, A., Pasini, P., Mirasoli, M., Michelini, E., Guardigli, M. Biotechnological applications of bioluminescence and chemiluminescence. TrendsBiotechnol. 2004;22(6), 295-303.
2. Есимбекова E.H., Лоншакова-Мукина В.И., Безруких A.E., Кратасюк В. А. Принципы конструирования многокомпонентных реагентов для энзимологического анализа. - ДАН. - 2015. - Т. 461. - №4. - С. 472-475.
3. EsimbekovaE.N., KondikA.M., KratasyukV.A.
Bioluminescentenzymaticrapidassayofwaterintegraltoxicity. -
EnvironMonitAssess. - 2013. - V. 185. - I 7. - P. 5909-5916.
4. И.И.Гительзон, В.А.Кратасюк, В.H.Лопатин, Д.А.Апонасенко,
В.С.Филимонов, З.Г.Холостова, Н.А.Гаевский, Ю.С.Григорьев,
А.А.Тихомиров. Экологическаябиофизика. Т.1. Фотобиофизикаэкосистем. Логос, Москва, 2002
5. Жмур, 1997; Loon, Hermens, 1995.
6. Sirisha, V. L. Chapter Nine - Enzyme Immobilization: An Overview
on Methods, Support Material, and Applications of Immobilized Enzymes // V.L. Sirisha, A. Jain, A. Jain. - Advances in Food and Nutrition Research. -V: 79. - 2016, P: 179-211. - URL:
https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1043452616300377
7. Flores-Maltos, A., Rodri'guez-Dura'n, L. V., Renovato, J., Contreras, J. C., Rodri'guez, R., & Aguilar, C. N. (2011). Catalytical properties of free and immobilized Aspergillus niger tannase. Enzyme Research, 2011, 768183. http://dx.doi.org/10.4061/2011/768183.
8. Matto, M., & Husain, Q. (2009). Calcium alginate-starch hybrid support for both surface immobilization and entrapment of bitter gourd (Momordica charantia) peroxidase. Journal of Molecular Catalysis B Enzymatic, 57, 164-170.
9. Malhotra, D. B., & Chaubey, A. (2003). Biosensors for clinical diagnostics industry. Sensors and Actuators. B: Chemical, 91, 117-127.
10. Hasan, F., Shah, A. A., Javed, S., & Hameed, A. (2010). Enzymes used in detergents: Lipases. African Journal of Biotechnology, 9, 4836-4844.
11. R. Boluda, J.F. Quintanilla, J.A. Bonilla, E. Sa'ez, M. Gamo'n, Chemosphere 46 (2002) 355.
12. T. Reemtsma, A. Putschew, M. Jekel, Waste Manage. 19 (1999) 181.
13. T. Reemtsma, O. Fiehn, M. Jekel, Fresenius J. Anal. Chem. 363 (1999) 771.
14. L. Guzella, Chemosphere 37 (1998) 2895.
15. B. Brohon, R. Gourdon, Soil Biol. Biochem. 32 (2000) 853.
... всего 21 источников


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ