Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Биотестирование цитокинов и индикация антител к микробактериальным антигенам при оценке иммунного статуса населения

Работа №41556

Тип работы

Магистерская диссертация

Предмет

экология и природопользование

Объем работы76
Год сдачи2018
Стоимость4900 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
562
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


ПЕРЕЧЕНЬ СОКРАЩЕНИЙ, УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ. СИМВОЛОВ И ТЕРМИНОВ
ВВЕДЕНИЕ
ОСНОВНАЯ ЧАСТЬ
1. Обзор литературы
Влияние экологических факторов на иммунный статус
Методы оценки иммунного статуса
Иммунный статус при микобактериозах
2. Материалы и методы исследования
3. Результаты и их обсуждение
Оценка специфического клеточного иммунитета методом биотестирования гамма-интерферона (IFN-γ) и интерлейкина-2 (IL-2), синтезируемых сенсибилизированными лимфоцитами в ответ на провоцирующее воздействие микобактериальных антигенов
Выявление специфических антител к возбудителю микобактериозов в группах с разным иммунным статусом иммунохроматографическим анализом
Выявление специфических антител к возбудителю микобактериозов в группах с разным иммунным статусом иммуноферментным анализом
Оценка уровня белка в сыворотке и плазме крови в группах с разным иммунным статусом
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ


На сегодняшний день актуальна, такая медико-социальная проблема, как инфекционное заболевание - микобактериоз (Михайлова Л.А., Скачкова Е.И., Сон И.М., 2011).
Микобактериозы вызываются большим числом условно-патогенных микобактерий, широко распространенных в окружающей среде. (Зимина В.Н.1, Дегтярева С.Ю., Белобородова Е.Н., Кулабухова Е.И., Русакова Л.И., Фесенко О.В., 2017).
Повсеместное увеличение заболеваемости микобактериозами во всем мире требует тщательного их изучения для разработки алгоритмов диагностики, лечения и наблюдения за такими больными (Гунтупова Л.Д., Борисов С.Е., Макарова М.В., Хачатурьянц Е.Н., 2012.; Iseman M.D., Marras T.K., 2008).
Значительную роль в увеличении заболеваемости микобактериозами играет совершенствование методов лабораторной диагностики (Литвинов В.И., Макарова М.В., Краснова М.А.,2008).
Диагностика микобактериозов значительно затруднена из-за отсутствия характерного клинического симптомокомплекса (Griffith D.E., Aksamit T., Brown-Elliott B.A., Catanzaro A., Daley C., Gordin F., Holland S.M., Horsburgh R., Huitt G., Iademarco M.F., Iseman M., Olivier K., Ruoss S., von Reyn C.F., Wallace R.J. Jr., Winthrop K,2007; Шмелев Е.И., Ковалевская М.Н., Эргешов А.Э., Черноусова Л.Н., Ларионова Е.Е., 2016).
Хотя и эпидемическая ситуация в какой-то мере улучшилась, но Российская Федерация все также входит в группу стран с высоким бременем микобактериоза (Яблонский П.К., 2013). Микобактерия является возбудителем микобактериоза. Данную микобактерию относят к самым сложным в инфекционной патологии.
Рост числа случаев микобактериоза при других иммуносупрессивных состояниях, повышение доли больных микобактериозом, а так же высокий риск внутрибольничного перекрестного инфицирования, способствуют неблагоприятной динамике показателей распространенности микобактериозов с широкой (ШЛУ) и множественной (МЛУ) лекарственной устойчивостью микобактерий (Покровский В.В., Ладная Н.Н., Соколова Е.В., 2014; Фролова, О.П., 2002; Фролова О.П., Шинкарева И.Г., Новоселова О.А., 2013; Михайловский А.М., Чепасов В.И., 2015).
Для того чтобы предотвратить возникновение и распространение микобактериоза, необходимо применять своевременную комплексную диагностику этого заболевания. Для обнаружения микобактериозной инфекции имеется огромное количество методов. Такие методы, как иммуноферметный анализ (ИФА), полимерназная цепная реакция (ПЦР) и микробиологические исследования, занимают особое место.
Целью работы является повышение эффективности методологии оценки иммунного статуса населения при эколого-эпидемиологических исследованиях.
Для достижения цели были поставлены следующие задачи:
1. Определить чувствительность и специфичность биотестирования цитокинов методом ELISPOT при оценке специфического клеточного иммунитета;
2. Изучить эффективность иммунохроматографического экспресс-анализа (ИХА) при оценке специфического гуморального иммунитета;
3. Провести сравнительный анализ результатов ИХА и иммуноферментного анализа для оценки иммунного статуса;
4. Изучить влияние антикоагулянтов и активатора свертывания крови на показатели иммунного статуса.
Научная новизна. В ходе исследования впервые проведен сравнительный анализ методов (ELISPOT, иммуннохроматографический экспресс-метод) оценки иммунного статуса населения при микобактериозах.
Теоретическая и практическая значимость работы. В работе предлагается комплексный подход, который позволяет определить уровень микобактериальной нагрузки в изучаемой популяции, что в свою очередь позволит разработать эффективный мониторинг состояния здоровья населения и усовершенствовать комплекс мероприятий по повышению иммунного статуса.
Методы исследования. В работе использовали: сыворотку и плазму периферической крови людей с разным иммунным статусом. В ходе исследования определяли уровень сенсибилизированных к микобактериям Т- клеток (клеточный иммунитет) и специфических антимикобактериальных антител (гуморальный иммунитет). При этом использовали следующие методы:
• метод иммуноферментных пятен ELISPOT;
• иммунохроматография (ИХА);
• иммуноферментный анализ (ИФА);
• метод количественного определения белков (метод Бредфорда).
Положения, выносимые на защиту. Проведенным сравнительным анализом методологии оценки иммунного статуса населения при микобактериозах определена эффективность комплексного подхода определения показателей клеточного и гуморального иммунитета.
Степень достоверности результатов. Результаты исследования получены с помощью современных методов исследования, в результате достаточного количества наблюдений. Научные выводы подкреплены фактическими данными, представленными в виде таблиц и протоколов исследований. Подготовка и интерпретация данных осуществлялась с помощью пакета прикладных программ Microsoft Excel. Применяли t-критерий для независимых выборок, при этом использовали калькулятор «t-Test for Independent Samples» (VassarStats), доступный онлайн (http://vassarstats.net/tu.html).
Апробация результатов и публикации по теме магистерской диссертации. Часть диссертационной работы представлена в публикации "Биотестирование цитокинов при оценке клеточного иммунного ответа на микобактериальные антигены методом ELISPOT" (Юдина А.С. и др., 2018).


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь студентам в написании работ!


Проведенным сравнительным анализом методологии оценки иммунного статуса населения при микобактериозах определена эффективность комплексного подхода определения показателей клеточного и гуморального иммунитета. С этой целью предлагается наряду со стандартными методами оценки иммунного статуса (определение лейкоцитарной формулы, уровня общего белка, количества Т- и В-лимфоцитов, их характеристики и тд.), оценивать дополнительные показатели:
- уровень сенсибилизированных к микобактериям Т-клеток (клеточный иммунитет);
- уровень специфических антимикобактериальных антител (гуморальный иммунитет).
Для оценки показателя специфического клеточного иммунитета при микобактериозах, рекомендуется использовать метод ELISPOT, основанный на количественном определении сенсибилизированных Т-лимфоцитов периферической крови к микобактериальным антигенам.
Для оценки показателя специфического гуморального иммунитета при микобактериозах, предлагается использовать иммуннохроматографический экспресс-метод, основанный на выявлении специфических антител в периферической крови к микобактериальным антигенам.
Преимущество предлагаемого комплексного подхода заключается в том, что он позволяет определить уровень микобактериальной нагрузки в изучаемой популяции, что в свою очередь позволит разработать эффективный мониторинг состояния здоровья населения и усовершенствовать комплекс мероприятий по повышению иммунного статуса.
Анализ результатов проведенных исследований позволил сделать следующие выводы:
1. Биотестирование цитокинов методом ELISPOT с использованием комбинации микобактериальных антигенов, провоцирующих синтез IFN-γ и IL-2 сенсибилизированными лимфоцитами, обладает высокой чувствительностью и специфичностью при оценке специфического клеточного иммунитета;
2. При исследовании групп с подтвержденным статусом микобактериоз в 30-40 % случаев выявлялись специфические антитела методом иммунохроматографического экспресс-анализа, что подтверждает его эффективность при оценке специфического гуморального иммунитета;
3. Установлена корреляция результатов более чувствительного иммуноферментного анализа с иммуннохроматографическим экспресс- методом, но при этом последний проще и быстрее в проведении оценки иммунного статуса;
4. При анализе влияния антикоагулянтов и активатора свертывания крови на концентрацию общего белка статистически значимых различий между разными типами проб выявлено не было. При этом для серологических исследований (ИХА, ИФА) рекомендуется использовать пробирки с активатором свертывания (кремнезем) или антикоагулянтом ЭДТА.



1. Абдиров Ч. А., Курбанов А. Б., Константинова Л. Г. Медико– экологическая ситуация в Республике Каракалпакстан и прогноз заболеваемости населения: – Нукус: Каракалпакстан, 1996.
2. Авдеенко Н. В., Ефимова A. A., Балаболкин И. И. и др. Влияние загрязнения окружающей среды на распространенность и течение аллергических болезней у детей//Педиатрия, 1990.– № 5.
3. Адо А. Д. Экология и аллергология//Клиническая медицина, 1990.– 68.–№ 9.
4. Анцилевич Л. М., Ягудина Л. А. Практическое применение иммуноферментного анализа в диагностике заболеваний. 3 (79) июль 2014 / Практическая медицина. с. 28-34.
5. Афиногенова Г.Н., Пустошилова Н.М., Смолина М.П., Рябченко А.В. Методы обнаружения бактериальных эндотоксинов в препаратах рекомбинантных белков. №5 (127), 2007 / Сибирский научный медицинский журнал. С 73-77.
6. Ахмаджонова М.С. Состояние окружающей среды и её влияние на здоровье человека. Инновационная экономика: перспективы развития и совершенствования. 2015. № 2 (7). С. 29-31.
7. Ахметова Н.Ш., Тебенова К.С., Туганбекова К.М., Рахметова А.М. Особенности иммунограммы у лиц, проживающих в экологически неблагополучных районах. Успехи современного естествознания. 2013. № 2. С. 9-12.
8. Балаболкин И. И., Гребенюк В. Н. Атопический дерматит у детей. М.: Медицина, 1999.
9. Бекетова Т.В., Фролова Н.Ф., Столяревич Е.С., Волков М.Ю., Котенко О.Н., Александрова Е.Н. Проблемы диагностики и лечения АНЦА- ассоциированных системных васкулитов: в фокусе АНЦА-негативный pauci- иммунный гломерулонефрит. 2016 (54) 5:543-552 / Научно-практическая ревматология.
10. Бжадуг О. Б., Гривцова Л. Ю., Тупицъш Н. Н., Тюляндин С. А. Циркулирующие опухолевые клетки в крови больных местнораспространенным идиссеминированным раком молочной железы. Т.18,
№3, 2007 / Вестник РОНЦ им. Н. Н. Блохина РАМН.
11. Боброва Т. С., Чуев Ю. В. Экспрессия опухоле-ассоциированных белков в тканях и в сыворотке крови у больных раком почки. 2008 / Медицинская иммунология. с 209-214.
12. Богданович Р.Н., Чикаловец И.В., Черников О.В., Лукьянов П.А. Трофобластический бета 1 -гликопротеин маркер эмбриои канцерогенеза.
№(42), 2005 / Acta Biomedica Scientifica. с 5-9.
13. Богун А.Г., Кисличкина А.А., Майская Н.В., Кадникова А., Русанова Д.В., Благодатских С.А. Использование методов молекулярной биологии в деятельности коллекций патогенных микроорганизмов. 2014 / Инфекция и иммунитет. с 55-56.
14. Бондарева О.С., Савченко С.С., Ткаченко Г.А., Абуева А.И., Муратова Ю.О., Антонов В.А. Современные подходы к генотипированию возбудителей особо опасных инфекций. №1, 2014 / Эпидемиология и инфекционные болезни. с 34-44.
15. Васильева Е.В., Вербов В.Н., Беклемишев А.Б., Мамаев А.Л., Цырульников А.О., Степаненко Т.А., Ивановский В.Б., Лапин С.В., Арег А. Тотолян. Поиск оптимальной комбинации антигенов для серодиагностики туберкулеза. 2013, Т.3, №3, с.235-242./ Инфекция и иммунитет.
16. Вершинин И. В., Меркушев Ю. А., Соколов В. Д. Возможности иммуногистохимического метода в прогнозировании течения рака молочной железы. 2006. №3 (19). с 81./ Сибирский онкологический журнал.
17. Волкова М.В., Кундер Е.В., Генералов И.И., Роггенбук Д. Антифосфолипидные антитела: современные представления о патогенетическом действии и лабораторной диагностике. 2015, Том 14, №3 / Вестник Витебского государственного медицинского университета. с.6-15.
18. Воробьев А. В., Коровкин В.И, Падалкин В. П. Общие подходы к определению экологической опасности антропогенных факторов окружающей среды//Гиг. и санит. 1991.– № 9.
19. Григорук О.Г., Бычкова Е.Ю., Сигитова Е.С., Москвина Т.А., Базулина Л.М., Степанова А.С., Максименко Т.А., Самсонова О.А., Зоркина Ю.Н. Диагностика аденокистозного рака: цитологический, гистологический и иммуногистохимический методы. 2013 / Российский онкологический журнал. с 37-38.
20. Горшкова Е.А., Недоспасов С.А., Шилов Е.С. Эффекты генетического бэкграунда на фенотипические проявления мутации k72w цитохрома с in vivo. 2017 / Медицинская иммунология. с 24.
21. Гурьев А.С., Кузнецова О.Ю., Пясецкая М.Ф., Смирнова И.А., Беляева Н.А., Вербов В.Н., Волков А.Ю. Быстрый скрининг мочи на бактериурию у детей с использованием микробиологического анализатора, совмещающего в себе методы фотометрии и когерентной флуктуационной нефелометрии. 2016, Т.6, №4, с 395-398. / Инфекция и иммунитет.
22. Дацюк Л.А., Старанко У.В., Сибирная Н.А., Ефимова Н.В., Шибкова Д.З. Компенсаторно-приспособительные реакции, реализуемые в эритроидном ростке кроветворения при хроническом радиационном воздействии. 2013 / Вестник Челябинского государственного педагогического университета. с 193- 204.
23. Деев Р.В. Профессор Александр Александрович максимов: эволюция идей, 2014 / Гены и клетки. Том IX, №2, с 6-14.
24. Дереза Т.Л., Скрылева И.А., Кутюрова О.Г., Берковский А.Л. Выделение плазменного фактора свертывания крови IX высокой степени очистки. 2014 / Гематология и трансфузиология. т.59, №2, с 25-29.
25. Дюсембаева Н.К., Шпаков А.Е., Салимбаева Б.М., Дробченко Е.А. Анализ заболеваемости населения и определение ее взаимосвязи с факторами окружающей среды. Научный альманах. 2015. № 3 (5). С. 132-138.
26. Земсков А.М., Земсков М.А., Земскова В.А., Мамчик Н.П., Золоедов В.И., Журихина И.И., Коруняк Д.И. Иммуно-эпидемиологическое обследование населения как оценочный критерий экологического риска. Вестник Воронежского государственного университета. Серия: География. Геоэкология. 2015. № 1. С. 51-54.
27. Зотова А., Лопатухина Е., Мазуров Д. Редактирование генома в лимфоидных клетках человека: возможности и ограничения. 2017 / Медицинская иммунология. с 32.
28. Калагина Л.С. Клиническое значение определения показателей трипсина в сыворотке крови (обзор). 2010. №4 (13) ноябрь / Медицинский альманах. с.281-282.
29. Ковальчук Л. В. и др., 2010 (Иммунология: практикум: учеб. пособие.
30. Ковтун И.С., Ефимова М.В. Особенности подбора праймеров конститутивного гена для проведения полимеразной цепной реакции после обратной транскрипции. 2013. №2 (22). С. 160-171. / Вестник Томского государственного университета. Биология.
31. Король О.И., Лозовская М.Э., Пак Ф.П. Фтизиатрия. Справочник.
32. Кузнецова М.В., Максимова А. В., Карпунина Т. И. Опыт использования Rep- и rapd-полимеразной цепной реакции для эпидемиологической характеристики нозокомиальных изолятов Pseudomonas aeruginosa. 2015 / Клиническая лабораторная диагностика. с 44-50.
33. Лебедев К.А., Понякина И.Д. Иммунограмма в клинической практике. – М.: Наука, 1990. – 224 с.
34. Лещенко О.Я., Сутурина Л.В., Попова Н. В. Особенности диагностики туберкулеза женских половых органов у пациенток с бесплодием (объективные и субъективные трудности). 2012, №2 (84), Чфсть 2. с 141-147. / Acta Biomedica Scientifica.
35. Маерле А.В., Сергеев И.В., Алексеев Л.П. Метод иммуно-ПЦР: перспективы использования. №1, 2014 / Иммунология. С 44-48.
36. Мартынов В.В., Малашенко А.М., Каркищенко В.Н., Бескова Т.Б. Использование ДНК-маркеров для генотипирования инбредных линий лабораторных мышей. №6, 2007 / Биомедицина. С 149-152.
37. Матвеичев А.В., Талаева М.В., Талаев В.Ю., Неумоина Н.В., Перфилова К.М., Лапаев Д.Г., Мохонова Е.В., Цыганова М.И., Коптелова В.Н., Никитина З.И., Лапин В.А., Мелентьев Д.А. Влияние Helicobacter pylori на дифференцировку Т-регуляторных клеток. 2017 / Анализ риска здоровью. с 21- 28.
38. Мелешина А.В., Черкасова Е.И., Ширманова М.В., Храпичев А.А., Дуденкова В.В., Загайнова Е.В. Современные методы визуализаци стволовых клеток in vivo (обзор), 2015 / Современные технологии в медицине. Том 7, №4, с 174-188.
39. Михайлова Л.А., Скачкова Е.И., Сон И.М. Мониторинг реализации мероприятий, направленных на совершенствование оказания медицинской помощи больным туберкулезом, на основе Приказа Минздравсоцразвития России №61 от 05.06.2010 г. // Туберкулез в Российской Федерации, 2010 г. Аналитический обзор статистических показателей, используемых в Российской Федерации. М.: ООО «Издательство «Триада». – 2011. – C. 184–190.
40. Мустафин Т.Р., Иванов А. В., Мустафина Э. Н., Садыков Н.С. Разработка полиспецифического эритроцитарного ботулинического антигенного диагностикума для реакции непрямой. 2013. Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана.
41. Намазова Л. C. Введение//МБА. Аллергические заболевания в практике педиатра, аллерголога, JIOP– специалиста, дерматолога. – М.,2005.– № 3.
42. Новиков Д.К., Новикова В.И. Оценка иммунного статуса. - М. Витебский мединститут, 1996. - 282 с.
43. Овдиенко Н.П. Туберкулез как международная и национальная медико- ветеринарная проблема в современных условиях. / Н.П.Овдиенко, А.Х., Найманов, Н.Г. Тостенко, В.Н. Хруленко и др. // Ветеринарный врач, 2009. – № 2. – С. 14-17.
44. Перельман М.И. Национальное руководство / М.И. Перельман // Фтизиатрия. — М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. — С. 75-91.
45. Покровский В.В., Ладная Н.Н., Соколова Е.В. ВИЧ-инфекция и туберкулез в России: «Оба хуже» // Туберкулез и болезни легких. – 2014. – №6.– С. 3–8
46. Потапов Ю.Н., Фоменков А.Л., Устинова Е.Ю. Оценка пролиферации клеток злокачественного новообразования и состояния местного иммунитета у больных раком молочной железы. 2004 / Российский биотерапевтический журнал. с. 74.
47. Раев М.Б., Бочкова М.С., Храмцов П.В., Тюленев А.В. Наноразмерные частицы углерода с функционализированной поверхностью в аналитических системах. Вып.1. 2011 / Вестник Пермского университета. Серия: Биология. с 84-88.
48. Ракитянская И.А., Рябов С.И., Ал-Барбари К.Р., Рябова Т.С., Азанчевская С.В., Гурков А.С. Влияние экспрессии провоспалительного цитокина TNF-α в почечной ткани на клинико-лабораторные показатели и морфологические изменения ткани у больных с диабетической нефропатией. 2013 / Вестник Санкт-Петербургского университета. Серия 11. Вып.1. Медицина. С 60-69.
49. Ревич Б. А. Загрязнение окружающей среды и здоровье населения
//Введение в экологическую эпидемиологию. – М., 2001.
50. Романенко В.Ф. Адаптивная изменчивость M.tuberculosis и M.аvium / В.Ф. Романенко, В.С. Козлов, А.М. Дъяченко // Ветеринария, 1995. – № 12. – С. 24–26.
51. Романова С.В., Видманова Т.А., Жукова Е.А., Маянская И.В., Толкачева Н.И., Ермолина Е.В., Тимченко И.А., Роль генетического полиморфизма tlr3 при хронических вирусных гепатитах в и с у детей. 2013 / Иммунология. №6. с 330-335.
52. Савилов Е.Д., Синьков В.В., Огарков О.Б. Реконструкция истории распространения «Пекинского» генотипа в России и на постсоветском
пространстве методами молекулярной биологии. 2011, №2 (78) / Acta Biomedica Scientifica. с 172-175.
53. Сарсенбаева А.С. Южно-Уральский государственный медицинский университет. К 70-летию со дня образования. 2014 / Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. с 4-7.
54. Скворцов Т. А., Игнатов Д. В., Майоров К. Б., Апт А. С., Ажикина Т. Л. Транскриптом Mycobacterium tuberculosis при заражении мышей с разной генетической чувствительностью к инфекции. Том 5 №2(17), 2013 / Acta Naturae (русскоязычная версия). с 64-71.
55. Старкова Д.А., Mycobacterium avium — актуальный возбудитель микобактериоза человека. Инфекция и иммунитет, 2013. Т.3, №1, с. 7-14.
56. Сучков С., Ризинг К., Роуз Н., Ноткинс Э., Фон Г.М., Криден Д. Трансляционная медицина — миф или реальность? 2013 / Ремедиум. Журнал о российском рынке лекарств и медицинской технике. С 8-15.
57. Тарских М.М., Климацкая Л.Г., Шумбасов М.А. Канцерогенность акрилонитрила: критерии и меры медико-социальной реабилитации лиц, профессионально подверженных длительному воздействию яда. 2016 / Безопасность здоровья человека. №2, с. 42-53.
58. Тис А.А., Мороз В.Л., Горецкая М.В., Шейбак В.М. Оценка иммунного статуса в норме и патологии. Журнал Гродненского государственного медицинского университета. 2003. С. 71-74.
59. Троценко А. А., Журавлева Н. Г. Экологические факторы и их влияние на неспецифический иммунитет жителей Карелии и Мурманской области. т. 11,
№1(5). / Известия Самарского научного центра Российской академии наук, 2009. С 1047-1052.
60. Уткин Д.В., Осина Н.А., Спицын А.Н., Киреев М.Н., Громова О.В., Захарова Т.Л., Найденова Е.В., Куклев В.Е. Разработка биочипа для выявления противохолерных антител в сыворотке крови человека. Клиническая лабораторная диагностика. 2015. Т. 60. № 2. С. 50-53.
61. Фролова, О.П. Туберкулез у больных ВИЧ-инфекцией: клинико- морфологические и эпидемиологические аспекты //Проблемы туберкулеза. – 2002. – №6. – С. 30–33.
62. Фролова О.П., Шинкарева И.Г., Новоселова О.А. ВИЧ-инфекция в Российской Федерации – фактор замедляющий снижение заболеваемости туберкулезом // Медицинский альянс. – 2013. – №1. – С. 50–55.
63. Хаертынов Халит Саубанович, Семёнова Дина Рашидовна, Сушников Константин Владимирович. Клинико-эпидемиологические особенности кишечных инфекций, протекающих с синдромом гемоколита, у детей. 2013«Медицина и здравоохранение».
64. Хаитов Р.М., Пинегин Б.В. Оценка иммунного статуса человека в норме и при патологии // Иммунология. – 2001. -№4 – С.4-6.
65. Хисматуллина Н.А., Хаертынов К.С., Шуралев Э.А. и др. Сравнительное изучение активности субъединичных антигенов в полном лизате M.tuberculosis H37Rv и M.bovinus-8 в иммуноферментном анализе // Биотехнология: реальность и перспективы. Сб. трудов междунар. науч.-практ. конф. Саратов, 2014. С. 215-217.
66. Юдина А.С., Валеева А.Р., Шуралев Э.А. Биотестирование цитокинов при оценке клеточного иммунного ответа на микобактериальные антигены методом ELISPOT // Международный научный журнал «Инновационная наука». – 2018.– № 3. – С. 14-21.
67. Яблонский, П.К. Российская фтизиатрия сегодня – выбор пути развития // Медицинский альянс. – 2013. – №3. – С. 5–24.
68. A.B. Serwin Tumour necrosis factor alpha (TNF-a) converting enzyme and soluble TNF-a receptor type 1 in psoriasis patients in relation to the chronic alcohol consumption // Journal European Academy of Dermatology and Venereology. – 2008. – Vol. 22. – P. 712-717.
69. A. Mastroianni Cytokine profiles during infliximab monotherapy in psoriatic arthritis // British Journal of Dermatology. - 2005. - Vol. 153. – P. 531-536.
70. A.M. Tobin, B. Kirby TNFa inhibitors in the treatment of psoriasis and psoriatic arthritis // Biodrugs. – 2005. – Vol. 19. - № 1. – P. 47-57.
71. Auguste P., Tsertsvadze A., Pink J. et al. Comparing interferon-gamma release assays with tuberculin skin test for identifying latent tuberculosis infection that progresses to active tuberculosis: systematic review and meta-analysis // BMC Infect Dis. 2017. V.17(1): 200
72. Bradford, M.M., 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal. Biochem. 72, с 248-254).
73. Euzeby J.P. List of Prokaryotic Names with Standing in Nomenclature. — Shinnick T.M., Good R.C. Mycobacterial taxonomy / J.P. Euzeby // Europ. J. Clin. Mycrobiol., 1994. — Vol. 13, N 11. — P. 884–901.
74. G. Fiorino Review article: anti TNF-a induced psoriasis in patients with inflammatory bowel disease // Aliment Pharmacol Ther. – 2009. – Vol. 29. – P. 921- 927.
75. Kovacevic S., Nikolic S. Risk factors associated with wheezing illness in young children//Abs/10 Congress ERS, 2000.
76. Lawn S.D., Zumla A.I. Tuberculosis // Lancet. 2011. V.378(9785). P.57
77. L. Borska Immunologic changes in TNF-alpha, sE-selectin, sP-selectin, sICAM-1, and IL-8 in pediatric patients treated for psoriasis with the goeckerman regimen // Pediatric Dermatology. – 2007. - Vol. 24. - № 6. – P. 607-612.
78. Lee H.W., Lee Y.J., Kim S.J. et al. Comparing tuberculin skin test and interferon γ release assay (T-SPOT.TB) to diagnose latent tuberculosis infection in household contacts // Korean J Intern Med. 2017. V.32(3). P.486-496.
79. Levy-Frebault V.V. Proposed minimal standards for the genus Mycobacterium and for description of new slowly growing Mycobacterium species / V.V. Levy- Frebault, F. Portaels // Int. J. Syst. Bacteriol. — 1992. — Vol. 42. — P. 315–323.
80. M. O'Kane Increased expression of the orphan nuclear receptor NURR1 in psoriasis and modulation following TNF-a inhibition // Journal of Investigative Dermatology. – 2008. – Vol. 128. – P. 300-310.
81. Movahedi B., Mokarram P., Hemmati M. et al. IFN-γ and IL-2 responses to recombinant AlaDH against ESAT-6/CFP-10 fusion antigens in the diagnosis of latent versus active tuberculosis infection // Iran J Med Sci. 2017. V.42(3). P.275- 283.
82. O. Arican Serum levels of TNF-a, IFN-y, IL-6, IL-8, IL-12, IL-17, and IL-18 in patients with active psoriasis and correlation with disease severity // Mediators of Inflammation. – 2005. – Vol. 5. – P. 273-279.
83. Ongena K., Das C., Smith J.L. et al. Determining cell number during cell culture using the Scepter cell counter. // J. Vis. Exp. 2010. V.45. pii: 2204.
84. Santin M., Morandeira-Rego F., Alcaide F., Rabuñal R. et al. Detection of interleukin-2 is not useful for distinguishing between latent and active tuberculosis in clinical practice: a prospective cohort study // Clin Microbiol Infect. 2016. V.22(12). P.1007.e1-1007.e5.
85. Shinnick T.M., Good R.C. Mycobacterial taxonomy // Europ. J. Clin. Mycrobiol., 1994. — Vol. 13, N 11. — P. 884–901.
86. Timpe A.Р. Therelationshipof «atypical» acid-fastbacteriatohumandeseas / A.Р. Timpe, E.N. Runyon // J. Lab. Clin. Med., 1954. — N 44. — P. 202–209.
87. Tsukamura M. Characteristics of x-ray feature of lung disease caused by Mycobacterium avium – Mycobacterium intracellulare complex. Kekkaku 1981; 56(1): 23–31.
88. Y.T. Chang Cytokine gene polymorphisms in Chinese patients with psoriasis // British Journal of Dermatology. – 2007. - Vol. 156. – P. 899—905.
89. W. Baran IL-6 and IL-10 promoteir gene polymorphiisms in psoriasis vulgaris
// Acta Derm Venereol. – 2008. – Vol. 88. – P. 113-116.
90. Орадова А.Ш., Садуакасова К.З., Лесова С.Д. Лабораторная диагностика цитокинов (обзорная статья). 2017 / Вестник Казахского Национального медицинского университета).
91. Ковальчук Л.В. и др. /2010. Иммунология : практикум : учеб. пособие .
92. Ковальчук Л.В. и др. /2010. Иммунология : практикум : учеб. пособие (часть 2).
93. Микобактериозы: современное состояние проблемы Зимина В.Н.1, Дегтярева С.Ю.1, Белобородова Е.Н.1, Кулабухова Е.И.2, Русакова Л.И.3, Фесенко О.В.Том 19, №4, 2017).
94. Гунтупова Л.Д., Борисов С.Е., Макарова М.В., Хачатурьянц Е.Н. Микобактериозы органов дыхания: эпидемиология, микробиологические и клинические аспекты диагностики. Эпидемиология и инфекционные болезни 2012; 2: 8–14.
95. Iseman M.D., Marras T.K. The importance of nontuberculous mycobacterial lung disease. Am J Respir Crit Care Med 2008; 178(10): 999–1000.
96. Литвинов В.И., Макарова М.В., Краснова М.А. Нетуберкулезные микобактерии. М.: МНПЦБТ 2008; 95c.
97. Griffith D.E., Aksamit T., Brown-Elliott B.A., Catanzaro A., Daley C., Gordin F., Holland S.M., Horsburgh R., Huitt G., Iademarco M.F., Iseman M., Olivier K., Ruoss S., von Reyn C.F., Wallace R.J. Jr., Winthrop K.; ATS Mycobacterial Diseases Subcommittee; American Thoracic Society; Infectious Disease Society of America. An official ATS/IDSA statement: diagnosis, treatment, and prevention of nontuberculous mycobacterial diseases. Am J Respir Crit Care Med 2007; 175(4): 367–416.
98. Шмелев Е.И., Ковалевская М.Н., Эргешов А.Э., Черноусова Л.Н.,
пульмонолога: состояние проблемы , 2016 / Практическая пульмонология.


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2024 Cервис помощи студентам в выполнении работ