🔍 Поиск готовых работ

🔍 Поиск работ

ВЛИЯНИЕ ИШЕМИЧЕСКОГО ИНСУЛЬТА НА ДЛИНУ ТЕЛОМЕР В МОЛОДЫХ И ЗРЕЛЫХ НЕЙРОНАХ У МЫШЕЙ

Работа №197582

Тип работы

Магистерская диссертация

Предмет

биология

Объем работы70
Год сдачи2021
Стоимость4955 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
21
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ 5
ВВЕДЕНИЕ 7
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 10
1.1. Нейрогенез 10
1.1.1. История открытия нейрогенеза во взрослых организмах 10
1.1.2. Современные представления о нейрогенезе 11
1.1.3. Роль нейрогенеза в восстановлении повреждений мозга 14
1.2. Инсульт 15
1.2.1. Распространение различных видов инсульта 15
1.2.2. Ишемический инсульт 16
1.2.3. Клеточная гибель после ишемического поражения 16
1.2.4. Роль новообразованных нейронов в головном мозге 18
1.3. Теломеры 19
1.3.1. История открытия, особенности строения и укорочения у разных
видов животных 20
1.3.2. Роль теломер в канцерогенезе и старении 21
1.3.3. Теломеры в стволовых клетках 26
2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ 28
2.1. Животные 28
2.2. Моделирование инсульта 29
2.3. Определение неврологического дефицита у мышей 31
2.4. Транскардиальная перфузия и подготовка препаратов 32
2.5. Флюорисцентная in situгибридизация и иммуногистохимическое
окрашивание 33
2.6. Получение микрофотографий 35
2.7. Обработка изображений 35
2.8.. Статистическая обработка данных 36
3. РЕЗУЛЬТАТЫ 38
3.1. Неврологический дефицит 38
3.2. Локализация очага и воспаления при ишемическом поражении 38
3.3. Интенсивность нейрогенеза 39
3.4. Интенсивность свечения теломерного зонда 40
3.5. Интенсивность свечения центромерного зонда 41
4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ 42
ЗАКЛЮЧЕНИЕ 45
ВЫВОДЫ 46
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ 47


Инсульт является серьёзным цереброваскулярным заболеванием и второй ведущей причиной инвалидности и смерти как в развивающихся, так и в развитых странах [217] с прогнозируемым увеличением на 24,9% (с 2010 г.) к 2030 г. [185]. В развитых странах уровень заболеваемости составляет примерно 0,25-4%, а уровень смертности составляет около 30% [76]. Всемирная организация здравоохранения определяет инсульт как сосудистое заболевание, характеризующееся быстрым очаговым или глобальным нарушением мозговых функций, продолжающимся более 24 часов или ведущим к смерти [218]. Ишемический инсульт возникает из-за закупорки церебральной артерии эмболом или тромбом и в итоге приводит к гибели клеток [223]. Ишемия головного мозга является преобладающей во всем мире составляя почти в 85% всех подтипов инсультов.
Восстановление после ишемического инсульта происходит за счёт роста новых аксонов и образования новых межклеточных контактов [133], образования новых нервных клеток, которые могут генерироваться в нейрогенных областях после ишемического инсульта. Это может быть связано с функциональным улучшением, которое наблюдаются у пациентов в течение первых месяцев после образования поражения[208]. Поэтому в мире активно ведется поиск новых терапевтических стратегий, которые будут способствовать регенерации мертвой ткани, восполнения пула погибших нейронов, либо с помощью терапии стволовыми клетками[189, 222], либо путем увеличения эндогенного нейрогенеза [217].
Нервные стволовые клетки (NSCs), которые находятся в субвентрикулярной зоне вблизи боковых желудочков (SVZ), дают начало нейробластам, которые обычно мигрируют в обонятельную луковицу, становясь гранулярными и перигломерулярными интернейронами [127, 202]. В условиях ишемии продукция нейробластов в SVZ увеличивается, и некоторые из нейробластов, происходящих из SVZ, изменяют свой нормальный маршрут миграции и следуют в поврежденные области мозга, например, полосатое тело [106, 219, 221], кору головного мозга [109, 210] или гиппокамп [100, 155]. В поврежденной области новые нейроны интегрируются в локальные нейрональные сети, так происходит регенерация [85, 113, 203]. Однако многие нейробласты погибают в неблагоприятных условиях поврежденной ткани мозга, а выживших новых нейронов недостаточно для полной регенерации [11, 164, 206]. По этой причине исследователи ищут механизмы, которые помогли бы увеличить производство нейробластов в поврежденном мозге.
Теломеры — это специфические структуры на концах эукариотических хромосом, которые защищают концы хромосом от деградации и от слияния. Теломерная ДНК (дизоксирибонуклеиновая кислота) укорачивается с каждым делением соматической клетки из-за «проблемы репликации концов» [20, 21, 25, 66, 71, 122, 187]. Кроме того, окислительный стресс приводит к укорочению теломер либо напрямую, то есть за счет окисления остова ДНК, либо косвенно, то есть за счет включения окисленного GTP (гуанин трифосфат), который препятствует работе теломеразы, фермента, удлиняющего теломеры [14]. Когда теломеры становятся критически короткими, деление клеток прекращается. Начинается процесс клеточного старения [34, 64, 81, 137]. Таким образом, укорочение теломер ограничивает способность клетки к пролиферации.
Как упоминалось выше, инсульт приводит к усиленной пролиферации предшественников нейронов в SVZ [92, 144, 155, 219]. Более того, окислительный стресс также увеличивается в ишемическом мозге [4]. Наша гипотеза состояла в том, что усиленная пролиферация нервных клеток в SVZ после ишемии может приводить к укорочению теломер в этих клетках и таким образом ограничивать регенеративный потенциал мозга. Этот вопрос до настоящего времени не был исследован, судя по доступным литературным данным.
Цель работы: исследовать влияние локального ишемического поражения головного мозга на длину теломер в клетках нейрогенной зоны у лабораторных мышей.
Задачи:
1. Оценить неврологический дефицит и патологические изменения нервной ткани, включая гибель нейронов и воспаление, через 10 суток после моделирования локальной ишемии у мышей.
2. Исследовать влияние локальной ишемии на продукцию молодых нейронов в субвентрикулярной нейрогенной зоне 10 суток после моделирования локальной ишемии у мышей
3. Изучить влияние локальной ишемии на длину теломер в молодых нейронах субвентрикулярной зоны и взрослых нейронах вблизи нее, используя центромерный зонд в качестве контроля

Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


По результатам работы у животных после MCAO обнаружен односторонний ишемический очаг, в котором происходит практически полная гибель взрослых нейронов и существенно увеличивается присутствие активированной микроглии и макрофагов. Для этих же животных получено типичное повышение в плотности DCX- положительных клеток в субвентрикулярной зоне вблизи боковых желудочков головного мозга после моделирования локальной ишемии, свидетельствующее об усиленной пролиферации клеток в этой зоне. Усиление пролиферации нейробластов сопряжено с уменьшением интенсивности свечения теломерного зонда в DCX-положительных молодых нейронах этой области, и, следовательно, укорочением их теломер. В то же время длина теломер во взрослых нейронах не изменяется после моделирования инсульта, что может свидетельствовать об устойчивости этих клеток к повреждению теломер в условиях ишемии.


1. Abrous A. D., Koehl M., Moal M. le Adult Neurogenesis: From Precursors to Network and Physiology 2005.
2. Adam N., Beattie T. L., Riabowol K. Fluorescence microscopy methods for examining telomeres during cell aging // Ageing Research Reviews. 2021. Т. 68. C. 101320.
3. Al-Hajj M., Clarke M. F. Self-renewal and solid tumor stem cells // Oncogene. 2004. (23). C. 7274-7282.
4. Allen C. L., Bayraktutan U. Oxidative stress and its role in the pathogenesis of ischaemic stroke // International Journal of Stroke. 2009. Т. 4. № 6. C. 461-470.
5. Allsopp R. Take a Ride on the Telomere-Aging Train // The Journals of Gerontology: Series A. 2021. № 1 (76). C. 1-2.
6. Allsopp R. C. et al. Telomere length predicts replicative capacity of human fibroblasts // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 1992. № 21 (89). C. 10114-10118.
7. Altman J. Are New Neurons Formed in the Brains of Adult Mammals? // Science. 1962. № 3509 (135). C. 1128-1128.
8. Alvarez-Buylla A., Manuel Garcia-Verdugo J. Neurogenesis in Adult Subventricular Zone. 2002.
9. Anacker C. et al. Hippocampal neurogenesis confers stress resilience by inhibiting the ventral dentate gyrus // Nature. 2018. № 7712 (559). C. 98-102.
10. Anacker C., Hen R. Adult hippocampal neurogenesis and cognitive flexibility-linking memory and mood // Nature Reviews Neuroscience. 2017. Т. 18. № 6. C. 335-346.
11. Arvidsson A. et al. Neuronal replacement from endogenous precursors in the adult brain after stroke // Nature Medicine. 2002. № 9 (8). C. 963-970.
12. Arvidsson A. et al. Neuronal replacement from endogenous precursors in the adult brain after stroke // Nature Medicine. 2002. № 9 (8). C. 963-970.
13. Barnes R. P., Fouquerel E., Opresko P. L. The impact of oxidative DNA damage and stress on telomere homeostasis // Mechanisms of Ageing and Development. 2019. № 2010 (177). C. 37-45.
14. Barnes R. P., Fouquerel E., Opresko P. L. The impact of oxidative DNA damage and stress on telomere homeostasis // Mechanisms of Ageing and Development. 2019. Т. 177. C. 37-45.
15. Bauch C. et al. Sex-specific telomere length and dynamics in relation to age and reproductive success in Cory’s shearwaters // Molecular Ecology. 2020. № 7 (29). C. 1344-1357.
16. Bederson J. B. et al. Rat middle cerebral artery occlusion: Evaluation of the model and development of a neurologic examination // Stroke. 1986. № 3 (17). C. 472-476.
17. Bhardwaj R. D. et al. Neocortical neurogenesis in humans is restricted to development. 2006.
18. Bhattacharya P. et al. Aquaporin-4 Inhibition Mediates Piroxicam- Induced Neuroprotection against Focal Cerebral Ischemia/Reperfusion Injury in Rodents // PLoS ONE. 2013. Т. 8. № 9. C. e73481.
19. Blackburn E. H. Structure and function of telomeres. 1991.
20. Blackburn E. H. The end of the (DNA) line // Nature Structural Biology. 2000. Т. 7. № 10. C. 847-850.
21. Blasco M. A. Telomeres and human disease: Ageing, cancer and beyond // Nature Reviews Genetics. 2005. Т. 6. № 8. C. 611-622.
22. Blasco M. A. Telomeres and human disease: Ageing, cancer and beyond // Nature Reviews Genetics. 2005. Т. 6. № 8. C. 611-622.
23. Blasco M. A. Telomere length, stem cells and aging // Nature Chemical Biology. 2007. № 10 (3). C. 640-649.
24. Boldrini M. et al. Human Hippocampal Neurogenesis Persists throughout Aging // Cell Stem Cell. 2018. № 4 (22). C. 589-599.e5.
25. Brazvan B. et al. Telomerase activity and telomere on stem progeny senescence // Biomedicine and Pharmacotherapy. 2018. Т. 102. C. 9-17.
26. Breton-Provencher V. et al. Interneurons produced in adulthood are required for the normal functioning of the olfactory bulb network and for the execution of selected olfactory behaviors // Journal of Neuroscience. 2009. № 48 (29). C. 15245-15257.
27. Briones B. A., Gould E. Adult neurogenesis and stress Elsevier, 2019.C. 79-92.
28. Brosh R. M. et al. Werner syndrome protein interacts with human flap endonuclease 1 and stimulates its cleavage activity // EMBO Journal. 2001. № 20 (20). C. 5791-5801.
29. Brown J. P. et al. Transient Expression of Doublecortin during Adult Neurogenesis // Journal of Comparative Neurology. 2003. № 1 (467). C. 1-10.
30. Bulte J. W. M. et al. Relaxometry and Magnetometry of the MR Contrast Agent MION-46L // Magnetic Resonance in medicine. 1999. (42). C. 379-384.
31. Bursch W. et al. Active cell death induced by the anti-estrogens tamoxifen and ICI 164 384 in human mammary carcinoma cells (MCF-7) in culture: The role of autophagy // Carcinogenesis. 1996. № 8 (17). C. 1595-1607.
32. Cameron H. A., Hazel T. G., Mckay R. D. G. Regulation of Neurogenesis by Growth Factors and Neurotransmitters // Neurobiol. 1998. (36). C. 287-306.
33. Campisi J. Senescent cells, tumor suppression, and organismal aging: Good citizens, bad neighbors // Cell. 2005. № 4 (120). C. 513-522.
34. Campisi J. Senescent cells, tumor suppression, and organismal aging: Good citizens, bad neighbors // Cell. 2005. Т. 120. № 4. C. 513-522.
35. Caporaso G. L. et al. Telomerase activity in the subventricular zone of adult mice // Molecular and Cellular Neuroscience. 2003. № 4 (23). C. 693-702.
36. Chang Y.-C. et al. Regenerative Therapy for Stroke // Cell Transplantation. 2007. (16). C. 171-181.
37. Cheng A. et al. Telomere protection mechanisms change during neurogenesis and neuronal maturation: Newly generated neurons are hypersensitive to telomere and DNA damage // Journal of Neuroscience. 2007. № 14 (27). C. 3722-3733.
38. Chung K., Deisseroth K. CLARITY for mapping the nervous system // Nature Methods. 2013. № 6 (10). C. 508-513.
39. Clarke M. F., Fuller M. Stem Cells and Cancer: Two Faces of Eve // Cell. 2006. Т. 124. № 6. C. 1111-1115.
40. Clarke P. G. H. Developmental cell death: morphological diversity and multiple mechanisms // Anatomy and Embryology. 1990. Т. 181. № 3. C. 195-213.
41. Collins K., Mitchell J. R. Telomerase in the human organism.
42. Crabbe L. et al. Defective telomere lagging strand synthesis in cells lacking WRN helicase activity // Science. 2004. № 5703 (306). C. 1951-1953.
43. Crabbe L. et al. Telomere dysfunction as a cause of genomic instability in Werner syndrome // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2007. № 7 (104). C. 2205-2210.
44. Cruickshank A. et al. Revised national guidelines for analysis of cerebrospinal fluid for bilirubin in suspected subarachnoid haemorrhage // Annals of Clinical Biochemistry. 2008. Т. 45. № 3. C. 238-244.
45. Cui J. et al. Oxidative DNA damage precedes DNA fragmentation after experimental stroke in rat brain // The FASEB Journal. 2000. № 7 (14). C. 955-967.
46. Deb P., Sharma S., Hassan K. M. Pathophysiologic mechanisms of acute ischemic stroke: An overview with emphasis on therapeutic significance beyond thrombolysis // Pathophysiology. 2010. Т. 17. № 3. C. 197-218.
47. Decker M. L. et al. Telomere length in Hutchinson-Gilford Progeria Syndrome // Mechanisms of Ageing and Development. 2009. № 6 (130). C. 377-383.
48. Djordjevic J. et al. Olfaction in patients with mild cognitive impairment and Alzheimer’s disease // Neurobiology of Aging. 2008. № 5 (29). C. 693-706.
49. Doetsch F. et al. Subventricular Zone Astrocytes Are Neural Stem Cells in the Adult Mammalian Brain. 1999.
50. Doetsch F., Alvarez-Buylla A. Network of tangential pathways for neuronal migration in adult mammalian brain // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 1996. № 25 (93). C. 14895-14900.
51. Donega V., Raineteau O. Postnatal Neural Stem Cells: Probing Their Competence for Cortical Repair // Neuroscientist. 2017. Т. 23. № 6. C. 605-615.
52. Donnan G. A. et al. Stroke // The Lancet. 2008. Т. 371. № 9624. C. 1612-1623.
53. Donnan G. A. et al. Stroke // The Lancet. 2008. Т. 371. № 9624. C. 1612-1623.
54. Encinas J. M. et al. Division-coupled astrocytic differentiation and age- related depletion of neural stem cells in the adult hippocampus // Cell Stem Cell.
2011. № 5 (8). C. 566-579.
55. Enwere E. et al. Aging results in reduced epidermal growth factor receptor signaling, diminished olfactory neurogenesis, and deficits in fine olfactory discrimination // Journal of Neuroscience. 2004. № 38 (24). C. 8354-8365.
56. Eriksson P. S. et al. Neurogenesis in the adult human hippocampus. // Nature Medicine. 1998. № 11 (4). C. 1313-1317.
57. Farooq J. et al. Stem cells as drug-like biologics for mitochondrial repair in stroke // Pharmaceutics. 2020. Т. 12. № 7. C. 1-18.
58. Farzanehfar P. Comparative review of adult midbrain and striatum neurogenesis with classical neurogenesis // Neuroscience Research. 2018. Т. 134. C. 1-9.
59. Feierstein C. E. et al. Disruption of adult neurogenesis in the olfactory bulb affects social interaction but not maternal behavior // Frontiers in Behavioral Neuroscience. 2010. № DEC (4).
60. Ferron S. R. et al. Telomere shortening in neural stem cells disrupts neuronal differentiation and neuritogenesis // Journal of Neuroscience. 2009. № 46 (29). C. 14394-14407.
61. Flores I. et al. The longest telomeres: A general signature of adult stem cell compartments // Genes and Development. 2008. № 5 (22). C. 654-667.
62. Flores I., Benetti R., Blasco M. A. Telomerase regulation and stem cell behaviour // Current Opinion in Cell Biology. 2006. Т. 18. № 3. C. 254-260.
63. Flores I., Cayuela M. L., Blasco M. A. Molecular biology: Effects of telomerase and telomere length on epidermal stem cell behavior // Science. 2005. № 5738 (309). C. 1253-1256.
64. Flores I., Cayuela M. L., Blasco M. A. Molecular biology: Effects of telomerase and telomere length on epidermal stem cell behavior // Science. 2005. № 5738 (309). C. 1253-1256.
65. Gage F. H. Mammalian neural stem cells // Science. 2000. Т. 287. № 5457. C. 1433-1438.
66. Galati A., Micheli E., Cacchione S. Chromatin structure in telomere dynamics // Frontiers in Oncology. 2013. Т. 3 MAR.
67. Gandelman R. et al. Olfactory bulb removal eliminates maternal behavior in the mouse // Science. 1971. № 3967 (171). C. 210-211.
68. Garcia-Cao I. et al. Increased p53 activity does not accelerate telomere- driven ageing // EMBO Reports. 2006. № 5 (7). C. 546-552.
69. Gauthier L. v. et al. Remodeling the brain: plastic structural brain changes produced by different motor therapies after stroke. // Stroke; a journal of cerebral circulation. 2008. № 5 (39). C. 1520-1525.
70. Godlewski M., Kobylinska A. Programmed cell death - strategy for maintenance cellular organisms homeostasis // Postepy higieny i medycyny doswiadczalnej (Online). 2016. Т. 70. C. 1229-1244.
71. Gomez D. E. et al. Telomere structure and telomerase in health and disease (Review) // International Journal of Oncology. 2012. Т. 41. № 5. C. 1561— 1569.
72. Grade S. et al. Brain-Derived Neurotrophic Factor Promotes Vasculature-Associated Migration of Neuronal Precursors toward the Ischemic Striatum // PLoS ONE. 2013. № 1 (8).
73. Greenberg P. et al. International scoring system for evaluating prognosis in myelodysplastic syndromes // Blood. 1997. № 6 (89). C. 2079-2088.
74. Greider C. W. Telomeres // Current Opinion in Cell Biology . 1991. № 3 (3). C. 444-451.
75. Guercini F. et al. Cryptogenic stroke: Time to determine aetiology // Journal of Thrombosis and Haemostasis. 2008. Т. 6. № 4. C. 549-554.
76. Guo D. et al. Down-Regulation of Lncrna MALAT1 Attenuates Neuronal Cell Death Through Supprssing Beclin1-Dependent Autophagy by Regulating Mir-30a in Cerebral Ischemic Stroke // Cellular Physiology and Biochemistry. 2017. № 1 (43). C. 182-194.
77. Haik S. et al. Fibroblast growth factor 2 up regulates telomerase activity in neural precursor cells // Oncogene. 2000. № 26 (19). C. 2957-2966.
78. Haughey N. J. et al. Disruption of neurogenesis in the subventricular zone of adult mice, and in human cortical neuronal precursor cells in culture, by amyloid 0-peptide: Implications for the pathogenesis of Alzheimer’s disease // NeuroMolecular Medicine. 2002. № 2 (1). C. 125-135.
79. Hayflick L. The limited in vitro lifetime of human diploid cell strains // Experimental Cell Research. 1965. № 3 (37). C. 614-636.
80. Herbig U. et al. Telomere shortening triggers senescence of human cells through a pathway involving ATM, p53, and p21CIP1, but not p16INK4a // Molecular Cell. 2004. № 4 (14). C. 501-513.
81. Herbig U. et al. Telomere shortening triggers senescence of human cells through a pathway involving ATM, p53, and p21CIP1, but not p16INK4a //
Molecular Cell. 2004. № 4 (14). C. 501-513.
82. Herbig U. et al. Cellular senescence in aging primates // Science. 2006. № 5765 (311). C. 1257.
83. Hiyama E., Hiyama K. Telomere and telomerase in stem cells // British Journal of Cancer. 2007. № 7 (96). C. 1020-1024.
84. Hoehn B. D., Palmer T. D., Steinberg G. K. Neurogenesis in rats after focal cerebral ischemia is enhanced by indomethacin // Stroke. 2005. № 12 (36). C.2718-2724.
85. Hou S. W. et al. Functional integration of newly generated neurons into striatum after cerebral ischemia in the adult rat brain // Stroke. 2008. № 10 (39). C. 2837-2844.
86. Hyslop L. et al. Downregulation of NANOG Induces Differentiation of Human Embryonic Stem Cells to Extraembryonic Lineages // STEM CELLS. 2005. № 8 (23). C. 1035-1043.
87. Ikonomidou C., Kaindl A. M. Neuronal death and oxidative stress in the developing brain // Antioxidants and Redox Signaling. 2011. Т. 14. № 8. C. 1535-1550.
88. Institute of Neurological Disorders N. Stroke: Hope Through Research / N. Institute of Neurological Disorders, 2020.
89. Inta D. et al. Neurogenesis and widespread forebrain migration of distinct GABAergic neurons from the postnatal subventricular zone. 2008.
90. lordanova B., Ahrens E. T. In vivo magnetic resonance imaging of ferritin-based reporter visualizes native neuroblast migration // NeuroImage.
2012. № 2 (59). C. 1004-1012.
91. Jalland C. M. O. et al. Neil3 induced neurogenesis protects against prion disease during the clinical phase // Scientific Reports. 2016. (6).
92. Jin K. et al. Directed migration of neuronal precursors into the ischemic cerebral cortex and striatum // Molecular and Cellular Neuroscience. 2003. № 1 (24). C. 171-189.
93. Jin K. et al. Neurogenesis and aging: FGF-2 and HB-EGF restore neurogenesis in hippocampus and subventricular zone of aged mice. // Aging cell. 2003. № 3 (2). C. 175-183.
94. Jin K. et al. Ischemia-induced neurogenesis is preserved but reduced in the aged rodent brain // Aging Cell. 2004. № 6 (3). C. 373-377.


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ