📄Работа №133656

Тема: Чувствительность дрожжевых грибов рода Candida к гуморальным факторам гемолимфы личинки синей мясной мухи Calliphora vicina

📝
Тип работы Бакалаврская работа
📚
Предмет биология
📄
Объем: 52 листов
📅
Год: 2019
👁️
Просмотров: 56
4210 руб.
🛒 Купить работу
Не подходит эта работа?
Закажите новую по вашим требованиям
Узнать цену на написание
ℹ️ Настоящий учебно-методический информационный материал размещён в ознакомительных и исследовательских целях и представляет собой пример учебного исследования. Не является готовым научным трудом и требует самостоятельной переработки.
📋 Содержание 📖 Введение ✅ Заключение 📕 Литература 🔍 Похожие 🛒 Купить

📋 Содержание

1. Введение. 5
2. Обзор научной литературы «Пептиды иммунного ответа насекомых в лечении кандидозов». 7
2.1. Инфекции, вызываемые дрожжевыми грибами рода Candida. 7
2.2. Факторы патогенности дрожжевых грибов рода Candida. 10
2.3. Терапия инфекций, вызванных дрожжевыми грибами рода Candida. 12
2.4. Гуморальные факторы гемолимфы насекомых как источник веществ для лечения кандидозов. 16
2.4.1. Физиологические основы синтеза антимикробных пептидов насекомых. 16
2.4.2. Антимикробные свойства пептидов иммунного ответа
синей мясной мухи Calliphora vicina. 19
3. Материал и методы исследования. 25
3.1. Объекты исследования. 25
3.1.1. Насекомые. 25
3.1.2. Микроорганизмы. 25
3.2. Получение препаратов FLIP из личинки C. vicina. 26
3.2.1. Индукция синтеза пептидов иммунного ответа. 26
3.2.2. Сбор гемолимфы и выделение плазмы. 26
3.2.3. Приготовление серии препаратов FLIP. 26
3.2.4. Хроматографическое разделение препарата FLIP E. coli M17. 27
3.3. Методы изучения чувствительности дрожжевых грибов рода Candida. 27
3.3.1. Определение активности препаратов методом титрования. 27
3.3.2. Определение активности сочетания препаратов методом титрования. 28
3.3.3. Определение активности хроматографических фракций. 29
4. Результаты и их обсуждение 30
4.1. Определение чувствительности дрожжевых грибов рода Candida
к препарату FLIP E. coli M17. 30
4.2. Чувствительность C. krusei ATCC 6258 к препаратам FLIP, полученным при индукции личинок разными микроорганизмами. 31
4.3. Чувствительность C. krusei ATCC 6258 к препарату FLIP E. coli M17 в сочетании с флуконазолом и амфотерицином В. 33
4.4. Выделение активной в отношении C. krusei ATCC 6258 фракции препарата
FLIP E. coli M17 и её характеристика. 35
5. Заключение. 38
6. Выводы. 39
7. Список литературы.

📖 Введение

Дрожжевые грибы рода Candida являются представителями естественной микробиоты 75% людей и в случае снижения иммунного статуса хозяина они способны вызывать оппортунистические инфекции – кандидозы (Mulu et al., 2013).
Данные заболевания чаще всего приводят к поражению кожи и слизистых тканей. Ежегодно в мире регистрируется до 30 миллионов случаев вагинального кандидоза (Moyes, Naglik, 2011), у 50% новорожденных грибы рода Candida являются причиной кожных инфекций (Elewski, 1996). Среди ВИЧ-инфицированных, а также пациентов, длительное время пребывающих в больничных учреждениях на интенсивной терапии, регистрируется инвазивная форма (Ben-Ami, 2018). В соответствии с эпидемиологическими данными США, инвазивный кандидоз встречается относительно редко и составляет 6-10 случаев на 100 тысяч населения (Pfaller, Diekema, 2004).
На сегодняшний день в терапии кандидозов применяется большое количество синтетических препаратов, которые относятся к группам азолов и полиенов (Guidelines/Outcomes Committee et al., 1996). Среди них, самыми широко используемыми являются флуконазол и амфотерицин В, побочным эффектом применения которых являются аллергические реакции. Кроме того, у ряда представителей рода Candida была выявлена устойчивость к данным препаратам (Safavieh et al., 2016). В связи с этим, поиск новых лекарственных препаратов против кандидозов остается крайне актуален.
Наиболее перспективным направлением создания новых эффективных препаратов является выделение из живых организмов веществ, обладающих противомикробной активностью. К данным веществам относятся антимикробные пептиды (АМП) – положительно заряженные белки, синтез которых запускается при взаимодействии с факторами среды (Maróti et al., 2011).
АМП продуцируются как прокариотическими, так и эукариотическими организмами (Bondaryk et al., 2017). Среди организмов-продуцентов наиболее перспективны насекомые, продукция АМП которыми является ключевой реакцией гуморального иммунного ответа. В ходе ее реализации, в гемолимфе накапливается целый ряд АМП, обладающих противобактериальной, противовирусной и противогрибковой активностью (Yi et al., 2014).
На протяжении последних двух десятилетий в лаборатории Биофармакологии и иммунологии насекомых СПбГУ в качестве источника лекарственных веществ изучают уникальную модель - синюю мясную муху Calliphora vicina (Chernysh, Gordya, 2011). Получение гуморальных факторов гемолимфы подразумевает индукцию иммунного ответа посредством введения бактерий в полость тела живых личинок и последующее выделение синтезированных АМП рутинными биохимическими методами из биомассы насекомых. В результате получают препарат FLIP (Fly Larvae Immune Peptides), который является комплексом пептидов иммунного ответа C. vicina.
К настоящему моменту, были выявлены активные компоненты препарата - дефензины, цекропины, диптерицины и пролин-богатые белки (Chernysh, Gordya, Simonenko, 2000). Была установлена активность данного препарата в отношении грамположительных и грамотрицательных бактерий (Gordya et al., 2017). Было показано, что препарат FLIP способен предотвращать развитие резистентности у грамотрицательных бактерий (Chernysh, Gordya, Suborova, 2015). Он обладает способностью к синергическому взаимодействию с антибиотиками, применяемыми в терапии бактериальных инфекций (Chernysh et al., 2018). Однако противогрибковая активность препарата FLIP C. vicina до сих пор не изучалась.
В соответствии с вышеизложенным, целью настоящей работы было изучение чувствительности дрожжевых грибов рода Candida к комплексу пептидов иммунного ответа личинок синей мясной мухи C. vicina. Для достижения данной цели были сформулированы следующие экспериментальные задачи:
1. Оценить чувствительность тест-культур дрожжевых грибов рода Candida: C. albicans, C. krusei и C. parapsilosis к комплексу АМП синей мясной мухи C. vicina, полученному путем инфицирования личинок бактерией E. coli M17 (FLIP E. coli M17);
2. Изучить влияние микроорганизмов-индукторов (грамположительных и грамотрицательных бактерий, дрожжевых грибов) на активность препарата FLIP в отношении тест-культуры рода Candida;
3. Оценить эффективность совместного действия FLIP E. coli M17 и противогрибковых препаратов (флуконазол, амфотерицин В) на тест-культуры дрожжевых грибов рода Candida;
4. Методом хроматографии выделить из препарата FLIP E. coli M17 вещество, активное в отношении тест-культуры дрожжевых грибов рода Candida и определить его молекулярную массу.

Возникли сложности?

Нужна качественная помощь преподавателя?

👨‍🎓 Помощь в написании
🎓 Дипломные 📘 Магистерские 📙 Диссертации 📗 Курсовые 📝 Статьи 📄 ВКР

✅ Заключение

Таким образом, в настоящей работе впервые была выявлена активность комплекса пептидов иммунного ответа личинок синей мясной мухи C. vicina в отношении C. krusei ATCC 6258. При помощи методов ОФ ВЭЖХ и масс-спектрометрического анализа в препарате FLIP E. coli M17 удалось определить молекулярную массу основного активного компонента, которая составила 17462 Да.
Препарат FLIP E. coli M17 способен вступать в синергическое взаимодействие с противогрибковым терапевтическим агентом – флуконазолом, что способствует снижению значений МИК обоих препаратов для элиминации C. krusei ATCC 6258.
В соответствии с полученными результатами, разработка терапевтических агентов на основе препарата FLIP E. coli M17 является перспективной. В дальнейшем, следует провести более широкое изучение чувствительности разных видов рода Candida к полученному препарату.

Нужна своя уникальная работа?
Срочная разработка под ваши требования
Рассчитать стоимость
ИЛИ
Поиск аналога

📕 Список литературы

1. Виноградова Е. Б., Мясная муха Calliphora vicina – модельный объект физиологических и экологических исследований// Ленинград. Наука. 1984. — 272 с.
2. Виноградова Е. Б. Диапауза мух и ее регуляция// Санкт-Петербург. Наука. 1991. — 255 с.
3. Andrä J., Berninghausen O., Leippe M., Cecropins, antibacterial peptides from insects and mammals, are potently fungicidal against Candida albicans// Medical Microbiology and Immunology. 2001. V.189(3). P.169-173.
4. Andrews J. M., Determination of minimum inhibitory concentrations// Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2001. V.48(1). P.5–16.
5. Aoki W., Ueda M., Characterization of Antimicrobial Peptides toward the Development of Novel Antibiotics// Pharmaceuticals (Basel, Switzerland). 2013. V.6(8). P.1055-1081.
6. Bellmann R., Smuszkiewicz P., Pharmacokinetics of antifungal drugs: practical implications for optimized treatment of patients// Infection. 2017. V.45(6). P.737-779.
7. Ben-Ami R., Treatment of Invasive Candidiasis: A Narrative Review// Journal of fungi (Basel, Switzerland). 2018. V.4(3). A.97.
8. Bitew A., Abebaw Y., Vulvovaginal candidiasis: species distribution of Candida and their antifungal susceptibility pattern// BioMed Central Women’s Health. 2018. V.18. A.94.
9. Bondaryk M., Staniszewska M., Zielińska P., Urbańczyk-Lipkowska Z., Natural Antimicrobial Peptides as Inspiration for Design of a New Generation Antifungal Compounds// Journal of Fungi. 2017. V.3(3). A.46.
10. Bulet P., Cociancich S., Dimarcq J. L., Lambert J., Reichhart J. M., Hoffmann D., Hetru C., Hoffmann J. A., Insect immunity. Isolation from a coleopteran insect of a novel inducible antibacterial peptide and of new members of the insect defensin family// The Journal of Biological Chemistry. 1991. V.266 (36). P.24520-24525.
11. Bulet P., Stöcklin R., Insect antimicrobial peptides: structures, properties and gene regulation// Protein and Peptide Letters. 2005. V.12(1). P.3-11.
12. Cavalheiro M., Teixeira M. C., Candida Biofilms: Threats, Challenges, and Promising Strategies// Frontiers in medicine. 2018. V.5. A.28.
13. Chamilos G., Lionakis M. S., Lewis R. E., Lopez-Ribot J. L., Saville S. P., Albert N. D., Halder G., Kontoyiannis D. P., Drosophila melanogaster as a Facile Model for Large-Scale Studies of Virulence Mechanisms and Antifungal Drug Efficacy in Candida Species// The Journal of Infectious Diseases. 2006. V.193(7). P.1014–1022.
14. Charlier C., Hart E., Lefort A., Ribaud P., Dromer F., Denning D. W., Lortholary O., Fluconazole for the management of invasive candidiasis: where do we stand after 15 years// Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2006. V.57(3). P.384–410.
15. Cheng S. C., Joosten L. A., Kullberg B. J., Netea M. G., Interplay between Candida albicans and the mammalian innate host defense// Infection and immunity. 2012. V.80(4). P.1304–1313.
16. Chernysh S. I., Simonenko N. P., Braun A., Meister M., Developmental variability of the antibacterial response in larvae and pupae of Calliphora vicina (Diptera: Calliphoridae) and Drosophila melanogaster (Diptera: Drosophilidae)// European Journal of Entomology. 1995. V.92. P.203-209.
17. Chernysh S. I., Gordya N. A., Simonenko N. P., Diapause and immune response: induction of antimicrobial peptides synthesis in the blowfly, Calliphora vicina R.-D. (Diptera, Calliphoridae) // Entomological Science. 2000. V.3. P.139–144.
18. Chernysh S. I., Gordya N. A., The Immune System of Maggots of the Blow Fly (Calliphora
vicina) as a Source of Medicinal Drugs// Journal of Evolutionary Biochemistry and Physiology. 2011. V.47(6). P.524–533.
19. Chernysh S., Gordya N., Suborova T., Insect Antimicrobial Peptide Complexes
Prevent Resistance Development in Bacteria// PLoS ONE. 2015. V.10(7). A.e0130788.
20. Chernysh S., Gordya N., Tulin D., Yakovlev A., Biofilm infections between Scylla and Charybdis: interplay of host antimicrobial peptides and antibiotics// Infection and Drug Resistance, Dovepress. 2018. V.2018(11). P.501–514.
21. Christensen B., Fink J., Merrifield R. B., Mauzerall D., Channel-forming properties of cecropins and related model compounds incorporated into planar lipid membranes// PNAS. 1988. V.85(14). P.5072-5076.
22. Cornely O. A., Bassetti M., Calandra T., Garbino J., Kullberg B. J., Lortholary O., Meersseman W., Akova M., Arendrup M. C., Arikan-Akdagli S., Bille J., Castagnola E., Cuenca-Estrella M., Donnelly J. P. et al., ESCMID* guideline for the diagnosis and management of Candida diseases 2012: non-neutropenic adult patients// Clinical Microbiology and Infection. 2012. V.18(7). P.19-37.
23. Davies J., Davies D., Origins and evolution of antibiotic resistance// Microbiology and Molecular Biology Reviews: MMBR. 2010. V.74(3). P.417-433.
24. Das S., Dong Y., Garver L., Dimopoulos G., Specificity of the innate immune system: A closer look at the mosquito pattern-recognition receptor repertoire// Insect Infection and Immunity: Evolution, Ecology, and Mechanisms Oxford University Press. 2009.
25. De Lucca A. J., Walsh T. J., Antifungal Peptides: Novel Therapeutic Compounds against Emerging Pathogens// Antimicrobial Agents And Chemotherapy. 1999. V.43(1). P.1-11.
26. de Oliveira Santos G. C., Vasconcelos C. C., Lopes A., de Sousa Cartágenes M., Filho A., do Nascimento F., Ramos R. M., Pires E., de Andrade M. S., Rocha F., de Andrade Monteiro C., Candida Infections and Therapeutic Strategies: Mechanisms of Action for Traditional and Alternative Agents// Frontiers in microbiology. 2018. V.9. A.1351.
27. Dekkers B., Veringa A., Marriott D., Boonstra J. M., van der Elst K., Doukas F. F., McLachlan A. J., Alffenaar J. C., Invasive Candidiasis in the Elderly: Considerations for Drug Therapy// Drugs & Aging. 2018. V.35(9). P.781-789.
28. Dorrell L., Vulvovaginitis due to fluconazole resistant Candida albicans following self treatment with non-prescribed triazoles// Sexually Transmitted Infections. 2002. V.78(4). P.308–a–309
29. Dühring S., Germerodt S., Skerka C., Zipfel P. F., Dandekar T., Schuster S., Host-pathogen interactions between the human innate immune system and Candida albicans-understanding and modeling defense and evasion strategies// Frontiers in microbiology. 2015. V.6. A.625.
30. Egunsola O., Adefurin A., Fakis A., Jacqz-Aigrain E., Choonara I., Sammons H., Safety of fluconazole in paediatrics: a systematic review// European journal of clinical pharmacology. 2013. V.69(6). P.1211-1221.
31. Elewski B. E., Cutaneous mycoses in children// British Journal of Dermatology. 1996. V.134. P.7–11.
32. Enoch D. A., Ludlam H. A., Brown N. M., Invasive fungal infections: a review of epidemiology and management options// Journal of Medical Microbiology. 2006. V.55(7). P.809–818.
33. Evans J. D., Schwarz R. S., Bees brought to their knees: microbes affecting honey bee health// Trends in Microbiology. 2011. V.19(12). P.614-620.
34. Faruck M., Yusof F., Chowdhury S., An overview of antifungal peptides derived from insect// Peptides. 2016. V.80. P.80-88.
35. Food and Drug Administration Bacteriological Analytical Manual, 2005, 18th Ed., AOAC, Washington, DC.
36. Fehlbaum P., Bulet P., Michaut L., Lagueux M., Broekaert W. F., Hetru C., Hoffmann J. A., Insect immunity. Septic injury of Drosophila induces the synthesis of a potent antifungal peptide with sequence homology to plant antifungal peptides// The Journal of Biological Chemistry. 1994. V.269. P.33159-33163.
37. Ferrandon D., Imler J. L., Hetru C., Hoffmann J. A., The Drosophila systemic immune response: sensing and signalling during bacterial and fungal infections// Nature reviews. Immunology. 2007. V.7(11). P.862-874.
38. Folk A., Cotoraci C., Balta C., Suciu M., Herman H., Boldura O. M., Dinescu S., Paiusan L., Ardelean A., Hermenean, A., Evaluation of Hepatotoxicity with Treatment Doses of Flucytosine and Amphotericin B for Invasive Fungal Infections// BioMed research international. 2016. A.5398730.
39. Forastiero A., Garcia-Gil V., Rivero-Menendez O., Garcia-Rubio R., Monteiro M. C., Alastruey-Izquierdo A., Jordan R., Agorio I., Mellado E., Rapid development of Candida krusei echinocandin resistance during caspofungin therapy// Antimicrobial agents and chemotherapy. 2015. V.59(11). P.6975-6982.
40. Giacometti A., Cirioni O., Barchiesi F., Fortuna M., Scalise G., In-vitro activity of cationic peptides alone and in combination with clinically used antimicrobial agents against Pseudomonas aeruginosa// The Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 1999. V.44(5). P.641-645.
41. Glittenberg M. T., Silas S., MacCallum D. M., Gow N. A., Ligoxygakis P., Wild-type Drosophila melanogaster as an alternative model system for investigating the pathogenicity of Candida albicans// Disease models & mechanisms. 2011. V.4(4). P.504-514.
42. Gordya N., Yakovlev A., Kruglikova A., Tulin D., Potolitsina E., Suborova T., Bordo D., Rosano C., Chernysh S., Natural antimicrobial peptide complexes in the fighting of antibiotic resistant biofilms: Calliphora vicina medicinal maggots// PloS One. 2017. A.0173559.
43. Gray K. C., Palacios D. S., Dailey I., Endo M. M., Uno B. E., Wilcock B. C., Burke M. D., Amphotericin primarily kills yeast by simply binding ergosterol// Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2012. V.109(7). P.2234-2239.
44. Gudlaugsson O., Gillespie S., Lee K., Vande Berg J., Hu J., Messer S., Herwaldt L., Pfaller M., Diekema D., Attributable Mortality of Nosocomial Candidemia, Revisited// Clinical Infectious Diseases. 2003. V.37 (9). P.1172–1177.
45. Guidelines/Outcomes Committee, Drake L. A., Dinehart S. M., Farmer E. R., Goltz R. W., Graham G. F., Scher, R. K. et al., Guidelines of care for superficial mycotic infections of the skin: Mucocutaneous candidiasis// Journal of the American Academy of Dermatology. 1996. V.34(1). P.110–115.
46. Gulshan K., Moye-Rowley W. S., Multidrug resistance in fungi// Eukaryotic cell. 2007. V.6(11). P.1933-1942.
47. Güzel A. B., Aydın M., Meral M., Kalkancı A., Ilkit M., Clinical characteristics of Turkish women with Candida krusei vaginitis and antifungal susceptibility of the C. krusei isolates// Infectious diseases in obstetrics and gynecology. 2013. V.2013. A.698736.
48. Hancock R. E., Chapple D. S., Peptide Antibiotics// Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 1999. V.43(6). P.1317–1323.
49. Hay R. J., The management of superficial candidiasis// Journal of the American Academy of Dermatology. 1999. V.40(6). P.S35–S42.
50. Hillyer J. F., Insect immunology and hematopoiesis// Developmental and Comparative Immunology. 2016. V.58. P.102-118.
51. Hoffmann J. A., Innate immunity of insects// Current Opinion in Immunology. 1995. V.7(1). P.4-10.
52. Hoffmann J. A., Reichhart J. M., Hetru C., Innate immunity in higher insects// Current Opinion in Immunology. 1996. V.8. P.8-13.
53. Hoyer L. L., Cota E., Candida albicans Agglutinin-Like Sequence (Als) Family Vignettes: A Review of Als Protein Structure and Function// Frontiers in microbiology. 2016. V.7. A.280.
54. Hsu J. F., Lai M. Y., Lee C. W., Chu S. M., Wu I. H., Huang H. R., Lee I. T., Chiang M. C., Fu R. H., Tsai M. H., Comparison of the incidence, clinical features and outcomes of invasive candidiasis in children and neonates// BMC infectious diseases. 2018. V.18(1). A.194.
55. Huang G., Yi S., Sahni N., Daniels K. J., Srikantha T., Soll D. R., N-acetylglucosamine induces white to opaque switching, a mating prerequisite in Candida albicans// PLoS pathogens. 2010. V.6(3). A.e1000806.
56. Iijima R., Kurata S., Natori S., Purification, characterization, and cDNA cloning of an antifungal protein from the hemolymph of Sarcophaga peregrina (flesh fly) larvae// The Journal of Biological Chemistry. 1993. V.268(16). P.12055-12061.
57. Imler J. L., Bulet P., Antimicrobial peptides in Drosophila: structures, activities and gene regulation// Chemical Immunology and Allergy. 2005. V.86. P.1-21.
58. Jung S. I., Finkel J. S., Solis N. V., Chaili S., Mitchell A. P., Yeaman M. R., Filler S. G., Bcr1 functions downstream of Ssd1 to mediate antimicrobial peptide resistance in Candida albicans// Eukaryotic cell. 2013. V.12(3). P.411-419.
59. Kardos T., Kovács R., Kardos G., Varga I., Bozó A., Tóth Z., Nagy F., Majoros L., Poor in vivo efficacy of caspofungin, micafungin and amphotericin B against wild-type Candida krusei clinical isolates does not correlate with in vitro susceptibility results// Jounal of Chemotherapy. 2018. V.30(4). P.233-239.
60. Karkowska-Kuleta J., Rapala-Kozik M., Kozik A., Fungi pathogenic to humans: molecular bases of virulence of Candida albicans, Cryptococcus neoformans and Aspergillus fumigatus// Acta Biochimica Polonica. 2009. V.56. P.211-224.
61. Katragkou A., Chatzimoschou A., Simitsopoulou M., Dalakiouridou M., Diza-Mataftsi E., Tsantali C., Roilides E., Differential activities of newer antifungal agents against Candida albicans and Candida parapsilosis biofilms// Antimicrobial Agents And Chemotherapy. 2007. V.52(1). P.357-60.
62. Kawsud P., Puripattanavong J., Teanpaisan R., Screening for Anticandidal and Antibiofilm Activity of Some Herbs in Thailand// Tropical Journal of Pharmaceutical Research. 2014. V.13(9).
63. Kendrick B., Fungi: Ecological Importance and Impact on Humans// eLS. John Wiley & Sons, Ltd: Chichester. 2011. Р.1-5.
64. Kolar S. S., Baidouri H., Hanlon S., McDermott A. M., Protective role of murine β-defensins 3 and 4 and cathelin-related antimicrobial peptide in Fusarium solani keratitis// Infection and immunity. 2013. V.81(8). P.2669-2677.
65. Kumamoto C. A., Molecular mechanisms of mechanosensing and their roles in fungal contact sensing// Nature Reviews Microbiology. 2008. V.6(9). P.667–673.
66. Lambert R. J.W., Pearson J., Susceptibility testing: accurate and reproducible minimum inhibitory concentration (MIC) and non‐inhibitory concentration (NIC) values// Journal of Applied Microbiology. 2000. V.88(5). P.784-790.
67. Laniado-Laborín R., Cabrales-Vargas M. N., Amphotericin B: side effects and toxicity// Revista iberoamericana de micologia. 2009. V.26(4). P.223-227.
68. Lauth X., Nesin A., Briand J.-P., Roussel J.-P., Hetru C., Isolation, characterization and chemical synthesis of a new insect defensin from Chironomus plumosus (Diptera)// Insect Biochemistry and Molecular Biology. 1998. V.28(12). P.1059–1066.
69. Le C. F., Fang C. M., Sekaran S. D., Intracellular Targeting Mechanisms by Antimicrobial Peptides// Antimicrobial agents and chemotherapy. 2017. V.61(4). A.e02340-16.
70. Leite M. C., Bezerra A. P., de Sousa J. P., Guerra F. Q., Lima E., Evaluation of Antifungal Activity and Mechanism of Action of Citral against Candida albicans// Evidence-based complementary and alternative medicine. 2014. V. 2014. A.378280.
71. Leite M. C., de Brito Bezerra A. P., de Sousa J. P., de Oliveira Lima E., Investigating the antifungal activity and mechanism(s) of geraniol against Candida albicans strains// Medical Mycology. 2015. V.53(3). P.275-284.
72. Li D.-D., Deng L., Hu G.-H., Zhao L.-X., Hu D.-D., Jiang Y.-Y., Wang Y., Using Galleria mellonella–Candida albicans Infection Model to Evaluate Antifungal Agents// Biological and Pharmaceutical Bulletin. 2013. V.36(9). P.1482–1487.
73. Li Y., Xiang Q., Zhang Q., Huang Y., Su Z., Overview on the recent study of antimicrobial peptides: Origins, functions, relative mechanisms and application// Peptides. 2012. V.37(2). P.207–215.
74. Liu W., Tan J., Sun J., Xu Z., Li M., Yang Q., Shao H., Zhang L., Liu W., Wan Z., Cui W., Zang B., Jiang D., Fang Q. et al., Invasive candidiasis in intensive care units in China: in vitro antifungal susceptibility in the China-SCAN study// Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2014. V.69(1). P.162–167.
75. Maertens J. A., History of the development of azole derivatives// Clinical microbiology and infection. 2004. V.10(1). P.1-10.
76. Maiolo E. M., Tafin U. F., Borens O., Trampuz A., Activities of Fluconazole, Caspofungin, Anidulafungin, and Amphotericin B on Planktonic and Biofilm Candida Species Determined by Microcalorimetry// Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2014. V.58 (5). P. 2709 –2717.
77. Maiolo E. M., Oliva A., Tafin U. F., Perrotet N., Borens O., Trampuz A., Antifungal activity against planktonic and biofilm Candida albicans in an experimental model of foreign-body infection// Journal of Infection. 2015. V.10. P.1-7.
78. Mandras N., Nostro A., Roana J., Scalas D., Banche G., Ghisetti V., Del Re S., Fucale G., Cuffini A. M., Tullio V., Liquid and vapour-phase antifungal activities of essential oils against Candida albicans and non-albicans Candida// BMC complementary and alternative medicine. 2016. V.16(1). A.330.
79. Maróti G., Kereszt A., Kondorosi É., Mergaert P., Natural roles of antimicrobial peptides in microbes, plants and animals// Research in Microbiology. 2011. V.162(4). P.363–374.
80. Martins M., Henriques M., Lopez-Ribot J. L., Oliveira R., Addition of DNase improves the in vitro activity of antifungal drugs against Candida albicans biofilms// Mycoses. 2011. V.55(1). P.80-85.
81. Matejuk A., Leng Q., Begum M. D., Woodle M. C., Scaria P., Chou S.-T., Mixson A. J., Peptide-based antifungal therapies against emerging infections// Drugs of the Future. 2010. V.35(3). A.197
82. Moudgal V., Sobel J., Antifungals to treat Candida albicans// Expert opinion on pharmacotherapy. 2010. V.11(12). P.2037-2048.
83. Moyes D. L., Naglik J. R., Mucosal Immunity and Candida albicans Infection// Clinical and Developmental Immunology. 2011. V.2011. A.346307.
84. Moyes D. L., Wilson D., Richardson J. P., Mogavero S., Tang S. X., Wernecke J., Höfs S., Gratacap R. L., Robbins J., Runglall M., Murciano C., Blagojevic M., Thavaraj S., Förster T. M. et al., Candidalysin is a fungal peptide toxin critical for mucosal infection// Nature. 2016. V.532(7597). P.64-68.
85. Mulu A., Kassu A., Anagaw B., Moges B., Gelaw A., Alemayehu M., Belyhun Y., Biadglegne F., Hurissa Z., Moges F., Isogai E., Frequent detection of 'azole' resistant Candida species among late presenting AIDS patients in northwest Ethiopia// BMC Infectious Diseases. 2013. V.13. A.82.
86. National Committee for Clinical Laboratory Standards, Reference Method for Broth Dilution Antifungal Susceptibility Testing of Yeasts. Approved standard// NCCLS. M27‐A. Wayne, PA: NCCLS 1997.
87. Nesin A. P., Simonenko N. P., Numata H., Chernysh S.I., Effects of photoperiod and parental age on the maternal induction of larval diapause in the blowfly, Calliphora vicina// Applied Entomology and Zoology. 1995. V.30. P.351-356.
88. Nett J. E., Sanchez H., Cain M. T., Andes D. R., Genetic basis of Candida biofilm resistance due to drug-sequestering matrix glucan// The Journal of infectious diseases. 2010. V.202(1). P.171-175.
89. Nett J. E., Sanchez H., Cain M. T., Ross K. M., Andes, D. R., Interface of Candida albicans biofilm matrix-associated drug resistance and cell wall integrity regulation// Eukaryotic cell. 2011. V.10(12). P.1660-1669.
90. Nobile C. J., Johnson A. D., Candida albicans Biofilms and Human Disease// Annual review of microbiology. 2015. V.69. P.71-92.
91. Odds F. C., Synergy, antagonism, and what the chequerboard puts between them// The Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2003. V.52(1). P.1.
92. Otvos L. Jr., Antibacterial peptides isolated from insects// Journal of Peptide Science: an official publication of the European Peptide Society. 2000. V.6(10). P.497-511.
93. Palese E., Nudo M., Zino G., Devirgiliis V., Carbotti M., Cinelli E., Rodio D. M., Bressan A., Prezioso C., Ambrosi C., Scribano D., Pietropaolo V., Fioriti D., Panasiti V., Cutaneous candidiasis caused by Candida albicans in a young non-immunosuppressed patient: an unusual presentation// International Journal of Immunopathology and Pharmacology. 2018. V.32. A.2058738418781368.
94. Palmer W. J., Jiggins F. M., Comparative Genomics Reveals the Origins and Diversity of Arthropod Immune Systems// Molecular Biology and Evolution. 2015. V.32(8). P.2111-2129.
95. Pappas P. G., Kauffman C. A., Andes D. R., Clancy C. J., Marr K. A., Ostrosky-Zeichner L., Reboli A.C., Schuster M. G., Vazquez J. A., Walsh T. J., Zaoutis T. E., Sobel J. D., Clinical Practice Guideline for the Management of Candidiasis: 2016 Update by the Infectious Diseases Society of America// Clinical Infectious Diseases. 2016. V.62(4). P.409–417.
96. Pechal J. L., Benbow M. E., Microbial ecology of the salmon necrobiome: evidence salmon carrion decomposition influences aquatic and terrestrial insect microbiomes// Environmental Microbiology. 2016. V.18(5). P.1511–1522.
97. Pfaller M. A., Diekema D. J., Twelve years of fluconazole in clinical practice: global trends in species distribution and fluconazole susceptibility of bloodstream isolates of Candida// Clinical Microbiology and Infection. 2004. V.10. S.1. P.11–23.
98. Pfaller M. A., Diekema D. J., Progress in antifungal susceptibility testing of Candida spp. by use of Clinical and Laboratory Standards Institute broth microdilution methods, 2010 to 2012// Journal of Clinical Microbiology. 2012. V.50(9). P.2846-2856.
99. Pfaller M.A., Jones R.N., Castanheira M., Regional data analysis of Candida non-albicans strains collected in United States medical sites over a 6-year period, 2006-2011// Mycoses. 2014. V.57(10). P.602-611.
100. Pöppel A. K., Vogel H., Wiesner J., Vilcinskas A., Antimicrobial peptides expressed in medicinal maggots of the blow fly Lucilia sericata show combinatorial activity against bacteria// Antimicrobial agents and chemotherapy. 2015. V.59(5). P.2508-2514.
101. Ratcliffe N. A., Mello C. B., Garcia E. S. et al., Insect natural products and processes: New treatments for human disease// Insect Biochemistry and Molecular Biology. 2011. V.41. P.747-769.
102. Safavieh M., Coarsey C., Esiobu N., Memic A., Vyas J. M., Shafiee H., Asghar W., Advances in Candida detection platforms for clinical and point-of-care applications// Critical reviews in biotechnology. 2016. V.37(4). P.441–458.
103. Saville S. P., Lazzell A. L., Monteagudo C., Lopez-Ribot J. L., Engineered control of cell morphology in vivo reveals distinct roles for yeast and filamentous forms of Candida albicans during infection// Eukaryotic cell. 2003. V.2(5). P.1053-60.
104. Segal E., Frenkel M., Experimental in Vivo Models of Candidiasis// Journal of fungi (Basel, Switzerland). 2018. V.4(1). A.21.
105. Shen W., Chen Y., Yao H., Du C., Luan N., Yan X., A novel defensin-like antimicrobial peptide from the skin secretions of the tree frog, Theloderma kwangsiensis// Gene. 2016. V. 576(1,1). P.136-140.
106. Sherman R. A., Mechanisms of Maggot-Induced Wound Healing: What Do We Know, and Where Do We Go from Here?// Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine. 2014.
107. Shi W., Chen Z., Chen X., Cao L., Liu P., Sun S., The combination of minocycline and fluconazole causes synergistic growth inhibition against Candida albicans: an in vitro interaction of antifungal and antibacterial agents// FEMS Yeast Research. 2010. V.10. P.885-893.
108. Sucher A. J., Chahine E. B., Balcer H. E., Echinocandins: The Newest Class of Antifungals// The Annals of Pharmacotherapy. 2009. V.43(10). P.1647–1657.
109. Taff H. T., Mitchell K. F., Edward J. A., Andes D. R., Mechanisms of Candida biofilm drug resistance// Future microbiology. 2013. V.8(10). P.1325-1337.
110. Theuretzbacher U., Pharmacokinetics/pharmacodynamics of echinocandins// European Journal of Clinical Microbiology and Infectious Diseases. 2004. V.23(11). P.805-812.
111. Tincu J. A., Taylor S. W., Antimicrobial peptides from marine invertebrates// Antimicrobial agents and chemotherapy. 2004. V.48(10). P.3645-3654.
112. Trofa D., Gácser A., Nosanchuk J. D., Candida parapsilosis, an emerging fungal pathogen// Clinical microbiology reviews. 2008. V.21(4). P.606-25.
113. Ullmann A. J., Akova M., Herbrecht R., Viscoli C., Arendrup M. C., Arikan-Akdagli S., Bassetti M., Bille J., Calandra T., Castagnola E., Cornely O. A., Donnelly J. P., Garbino J., Groll A. H. et al., ESCMID* guideline for the diagnosis and management of Candida diseases 2012: adults with haematological malignancies and after haematopoietic stem cell transplantation (HCT)// Clinical Microbiology and Infection. 2012. V.18(7). P.53-67.
114. Utz J. P., Treger A., McCullough N. B., Emmons C. W., Amphotericin B: intravenous use in 21 patients with systemic fungal diseases// Antibiotic annual. 1958-1959. V.6. P.628-634.
115. Vilcinskas A., Evolutionary plasticity of insect immunity// Journal of Insect Physiology. 2013. V.59(2). P.123-129.
116. Wang G., Li X., Wang Z., APD3: the antimicrobial peptide database as a tool for research and education// Nucleic Acids Research. 2016. V.44(D1). P.D1087–D1093.
117. Whaley S. G., Berkow E. L., Rybak J. M., Nishimoto A. T., Barker K. S., Rogers P. D., Azole Antifungal Resistance in Candida albicans and Emerging Non-albicans Candida Species// Frontiers in microbiology. 2017. V.7 A.2173. P.1-12.
118. White T. C., Marr K. A., Bowden R. A., Clinical, Cellular, and Molecular Factors That Contribute to Antifungal Drug Resistance// Clinical Microbiology Reviews. 1998. V.11(2). P.382-402.
119. Whiteway M., Oberholzer U., Candida morphogenesis and host–pathogen interactions// Current Opinion in Microbiology. 2004. V.7(4). P.350–357.
120. Yakovlev A. Y., Nesin A. P., Simonenko N. P., Gordya N. A., Tulin D. V., Kruglikova A. A., Chernysh S. I., Fat body and hemocyte contribution to the antimicrobial peptide synthesis in Calliphora vicina R.-D. (Diptera: Calliphoridae) larvae// In Vitro Cellular and Developmental Biology – Animal. 2017. V.53(1). P.33-42.
121. Yang S. L., Zeng G., Chan F. Y., Wang Y. M., Yang D., Wang Y., Sac7 and Rho1 regulate the white-to-opaque switching in Candida albicans// Scientific reports. 2018. V.8(1). A.875.
122. Yi H. Y., Chowdhury M., Huang Y. D., Yu X. Q., Insect antimicrobial peptides and their applications// Applied microbiology and biotechnology. 2014. V.98(13). P.5807–5822.

🛒 Оформить заказ

⚡ Работу высылаем в течении 5 минут после оплаты.

🔍 ПОХОЖИЕ РАБОТЫ ПО ТЕМЕ

Проявление адаптационного потенциала Candida albicans в смешанных биопленках с лактобактериями на фоне изменения температуры и рН Дипломные работы, ВКР медицина 2023 г. 4395 руб. Проявление адаптационного потенциала Candida albicans в смешанных биопленках с лактобактериями на фоне изменения температуры и рН Дипломные работы, ВКР лечебное дело 2023 г. 4700 руб. ИЗУЧЕНИЕ ПАРАЗИТАРНЫХ ГРИБОВ ЧЕЛОВЕКА, ОБУЧАЮЩИМИСЯ 8 КЛАССА Дипломные работы, ВКР педагогика 2023 г. 4255 руб. ВЛИЯНИЕ НАНОКАПСУЛИРОВАННЫХ ЭКСТРАКТОВ ЛЕКАРСТВЕННЫХ РАСТЕНИЙ НА РОСТ CANDIDA ALBICANS В КУЛЬТУРЕ Магистерская диссертация биология 2018 г. 5550 руб. Анализ маркерных последовательностей представителей рода Armillaria Бакалаврская работа биология 2018 г. 5900 руб. КОРРЕКТИРУЮЩЕЕ ДЕЙСТВИЕ ПРОБИОТИКОВ ПРИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОМ ДИСБАКТЕРИОЗЕ Диссертации (РГБ) биология 2003 г. 500 руб. Изучение особенностей возбудителя бурого цитоспорозного некроза тополя микромицета Cytospora chrysosperma Pers. Fr. в урбанистической среде (на примере г. Красноярска) Главы к дипломным работам биология 2018 г. 7300 руб. БИОМАССА И ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ МИКОБИОТЫ ПОЧВ АНТАРКТИДЫ Магистерская диссертация биология 2018 г. 4970 руб. ИССЛЕДОВАНИЕ МИКРОФЛОРЫ ВНУТРЕННЕЙ СРЕДЫ ЧЕЛОВЕКА, КАК МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ ПЛОКАЗАТЕЛЬ ИММУНИТЕТА Магистерская диссертация биология 2017 г. 4955 руб. Выявление различных видов бактерий рода Bacillusметодом анализа ПДРФ гена 16S рРНК с использованием рестриктаз Tru9 I и Rsa I Главы к дипломным работам биология 2018 г. 7300 руб.

📎 БАКАЛАВРСКАЯ РАБОТА ПО ПРЕДМЕТУ «БИОЛОГИЯ»

Найдено работ: 569

МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ОСОБЕННОСТИ ЭРИТРОЦИТАРНОЙ И ЛЕЙКОЦИТАРНОЙ ПОПУЛЯЦИИ ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ БОЛЬНЫХ ЭКЗЕМОЙ Бакалаврская работа биология 2019 г. 4670 руб. КАРИОТИП МАЛЯРИЙНЫХ КОМАРОВ ANOPHELES BEKLEMISHEVI STEGNII ЕТ KABANOVA, ANOPHELES ARTEMIEV1 GORDEEV ET AL., ANOPHELES MESSEAE FALL. (DIPTERA CULICIDAE) Бакалаврская работа биология 2020 г. 4360 руб. ИССЛЕДОВАНИЕ АКТИВНОСТИ СИСТЕМЫ ЗЕРКАЛЬНЫХ НЕЙРОНОВ У ЮНОШЕЙ ПРИ НАБЛЮДЕНИИ И ОТМЕРИВАНИИ ИНТЕРВАЛОВ ВРЕМЕНИ. ПРИ НАБЛЮДЕНИИ И РЕПРОДУКЦИИ РИТМА Бакалаврская работа биология 2019 г. 4480 руб. Демографическая структура и морфо-фенетическая характеристика населения соболя {Martes zibellina) Приморья Бакалаврская работа биология 2017 г. 4650 руб. ВЛИЯНИЕ ИПМИ И ИПВЧ НА НОРМАЛЬНЫЕ И ОПУХОЛЕВЫЕ КЛЕТКИ Бакалаврская работа биология 2019 г. 4390 руб. МЕЗОФАУНА УНИВЕРСИТЕТСКОЙ РОЩИ Г. ТОМСКА Бакалаврская работа биология 2016 г. 4480 руб. ФЕНОТИПИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ БОЛЕВОЙ И ОБОНЯТЕЛЬНОЙ ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ У ЛИЦ С ЗАВИСИМОСТЬЮ ОТ ПСИХОАКТИВНЫХ ВЕЩЕСТВ Бакалаврская работа биология 2018 г. 4400 руб. ОСОБЕННОСТИ ПЛОДОВИТОСТИ пыжьяновидных СИГОВ ИЗ ОЗ. КУТАРАМАКАН Бакалаврская работа биология 2017 г. 4380 руб. ФЕНОТИПИЧЕСКИЙ СОСТАВ, ТРАНСКРИПЦИОННЫЙ ПРОФИЛЬ И ПРОГНОСТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ ОПУХОЛЕВЫХ ГИБРИДНЫХ КЛЕТОК ПРИ НЕМЕЛКОЛЕТОЧНОМ РАКЕ ЛЕГКОГО Бакалаврская работа биология 2025 г. 4640 руб. ФИЗИЧЕСКИЙ СТАТУС ВИРУСА. ПАПИЛЛОМЫ ЧЕЛОВЕКА В ПРОГНОЗЕ РЕЦИДИВИРОВАНИЯ ЦЕРВИКАЛЬНЫХ ИНТРАЭПИТЕЛИАЛЬНЫХ НЕОПЛАЗИЙ. РАЗЛИЧНОЙ СТЕПЕНИ ТЯЖЕСТИ И РАКА ШЕЙКИ МАТКИ IN SITU Бакалаврская работа биология 2020 г. 4500 руб. СИНТАКСОНОМИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАСТИТЕЛЬНОСТИ ПОЙМЫ СРЕДНЕЙ ОБИ В РАЙОНЕ ДЕРЕВНИ КАЙБАСОВО (Томская область) Бакалаврская работа биология 2017 г. 4440 руб. ПОЛУЧЕНИЕ ЧИСТОЙ КУЛЬТУРЫ И ИЗУЧЕНИЕ ФИЗИОЛОГИИ МИКРООРГАНИЗМОВ ПОДЗЕМНОЙ БИОСФЕРЫ Бакалаврская работа биология 2019 г. 4370 руб. РАСПРОСТРАНЕНИЕ МИКРОСПОРИДИЙ р. Nosema НА ПАСЕКАХ РАЗНОЙ ГЕОГРАФИЧЕСКОЙ ЛОКАЛИЗАЦИИ Бакалаврская работа биология 2018 г. 4500 руб. ИССЛЕДОВАНИЕ ЗАРАЖЕННОСТИ МЕДОНОСНЫХ ПЧЕЛ (APIS MELLIFERA L.) МИКРОСПОРИДИЯМИ РОДА NOSEMA В РЕСПУБЛИКЕ БЕЛАРУСЬ Бакалаврская работа биология 2022 г. 4610 руб. ЦИТОЛОГИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ И ОПРЕДЕЛЕНИЕ УРОВНЕЙ ЭКСПРЕССИИ ГЕНОВ-МАРКЕРОВ Ml / М2 ФЕНОТИПОВ МИКРОГЛИИ В ПЕРВИЧНОЙ КУЛЬТУРЕ КЛЕТОК МОЗГА МЫШИ Бакалаврская работа биология 2023 г. 4375 руб.
📋 Содержание 📖 Введение ✅ Заключение 📕 Литература 🔍 Похожие 🛒 Купить ⬆️

Оценка стоимости

Это краткая форма заказа. После ее заполнения вы перейдете на полную форму заказа работы

Каталог работ (209234)

Поиск работ


©2026 Cервис помощи студентам в выполнении работ
.