1. Лёшина Е.Н., Величко Н.А. Регенерация Juniperus sibirica B. in vitro // Хвойные бореальной зоны, 2008. - Т. XXV. - № 3-4. - С. 334.
2. Александрова М.С. Хвойные растения в вашем саду. - М.: Фитон, 2000. - 224 с.
3. Анохина Н.С., Коновалов В.Ф., Ханова Э.Р. Современные технологии размножения ценных древесных видов // Лесной журнал, 2001. - Т. 4. - С. 129-132.
4. Бабикова А.В., Гафицкая И.В., Журавлёв Ю.Н. Микроклональное размножение древесных лесных растений Дальнего Востока России: перспективы развития // Размножение лесных растений в культуре in vitro как основа плантационного лесовыращивания: материалы международной научно-практической конференции (24-27 сентября 2014 г., Йошкар-Ола). - Йошкар-Ола: Поволжский государственный технологический университет,
2014. - С. 4-8.
5. Бажина Е. В. Репродуктивный потенциал пихты сибирской в горах Западного Саяна и сохранение ее генофонда в культуре in vitro // Хвойные бореал. зоны, 2012. - Т. 30, № 1/2. - С. 10-15.
6. Белоруссова, А.С. Третьякова И.Н. Особенности формирования соматических зародышей у лиственницы сибирской: эмбриологические аспекты // Онтогенез, 2008. - Т. 39. - № 2. - С. 1-10.
7. Бойко Г. Посадка и пересадка саженцев декоративных древесных пород // В мире растений, 1999. - № 3-4. - С. 44-47.
8. Ветчинникова Л.В., Титов А.Ф., Кузнецова Т.Ю. Опыт создания
коллекции ценных представителей семейства Betulaceae L., произрастающих на территории Фенноскандии, с помощью клонального микроразмножения // Размножение лесных растений в культуре in vitro как основа плантационного лесовыращивания: материалы международной научно-практической
конференции (24-27 сентября 2014 г., Йошкар-Ола). - Йошкар-Ола:
Поволжский государственный технологический университет, 2014. - С. 8-13.
9. Газизуллин А.Х. Современное состояние лесной биотехнологии в мире и в России // Вестник Казанского ГАУ, 2012. - № 4 (26). - С. 94-98.
10. Гуров А.Ф., Фокин В.Н. Основные пороки древесины осины и березы и их влияние на выход деловой древесины // Лесной вестник, 2000. - № 4. - С. 92-94.
11. Гусева О.Ю., Стародубцева Л.М., Попов В.Н. Получение морфогенных культур in vitro дуба черешчатого с использованием эксплантов из ювенильного и взрослого материала // Труды СПбНИИ лесного хозяйства, 2018. - № 2. - С. 18-29.
12. Деменко В.И., Лебедев В.Г. Адаптация растений, полученных in vitro к нестерильным условиям // Известия ТСХА, 2011. - Вып. 1. - С. 60-70.
13. Деменко В.И., Шестибаров К.А., Лебедев В.Г. Укоренение ключевой этап размножения растений in vitro // Журнал Известия ТСХА,
2010. - № 1. - С. 73-85.
14. Долголиков В.И. Селекция ели укоренением черенков // Лесное хозяйство, 1984. - № 11. - С. 32-35.
15. Жигунов А.В. Применение биотехнологий в лесном хозяйстве России // Лесной журнал, 2013. - № 2. - С. 27-35.
16. Жигунов А.В., Шабунин Д.А., Бутенко О.Ю. Лесные плантации триплоидной осины, созданные посадочным материалом in vitro // Вестник Поволжского государственного технологического университета. Серия Лес. Экология. Природопользование, 2014. - № 4(24). - С. 21-30.
17. Замолодчиков Д.Г. Оценка климатогенных изменений разнообразия древесных пород по данным учетов лесного фонда // Успехи современной биологии, 2011. - Т. 131 - № 4. - С. 382-391.
18. Зонтиков Д.Н., Зонтикова С.А., Сергеев Р.В., Новиков П.С., Шургин А.И. Оценка способа стерилизации и минерального состава питательных сред на эффективность культивирования Populus tremula L. в условиях in vitro // Научный журнал КубГАУ, 2013. - Вып. 91. - С. 89-91.
19. Калашникова Е.А., Родин А.Р. Получение посадочного материала древесных, цветочных и травянистых растений с использованием методов биотехнологии. - М.: МГУЛ, 2001 - 84 с.
20. Кильчевский А.В., Хотылева Л.В. Генетические основы селекции растений. Биотехнология в селекции растений. Клеточная инженерия. - Минск: Беларус. наука, 2012. - 489 с.
21. Кодун-Иванова М.А. Изменения анатомических характеристик листьев микроклональных растений осины (Populus tremula) в процессе адаптации ex vitro: материалы Международной молодежной научно-практической конференции. - Минск, 2012. - С. 255-258.
22. Коломиец Т.М., Самарина Л.С. Методика длительного сохранения in vitro промышленных видов и перспективных сортов рода Citrus // Субтропическое и декоративное садоводство: сборник научных трудов. - Сочи: ВНИИЦиСК, 2016. - Т. 56. - С. 169-184.
23. Концевая И.И. Генетика и биотехнология XXI века: фундаментальные и прикладные аспекты. - Минск: Изд. центр БГУ, 2008. -
С. 36-40.
24. Красинская Т.А. Ризогенез ex vitro растений рода Cerasus Mill. // Актуальш проблеми боташки, екологи та бютехнологи: матер1али м1жнар. конф. молодих учених-боташшв. - Ки!в, 2006. - С. 148-149.
25. Кудряшова О.А., Чалей А.В., Буй А.В., Луконина Ю.Д., Водчист Н.В., Борисевич Т.А., Волотович А.А. Сравнительный анализ асептического введения и стабилизации in vitro разных типов эксплантов ясеня обыкновенного // Вестник Полесского государственного университета. Серия природоведческих наук, 2017. - Т. 2. - С. 14-21.
26. Кулагин Д.В., Константинов А.В., Падутов В.Е. Использование культур in vitro для сохранения генетического разнообразия при создании насаждений дуба черешчатого в Беларуси // Клеточная биология и
биотехнология растений: тезисы докладов II Международной научно-практической конференции. - Минск: Белорусский государственный университет, 2018. - С. 130-145.
27. Кунах В.А. Бютехнолоыя лхкарських рослин. Генетичн та фхзюлогобюххмхчш основи. - К.: Логос, 2005. - 730 с.
28. Лебедев В.Г., Азарова А.Б., Шестибратов К.А., Деменко В.И. Проявление сомаклональной изменчивости микроразмноженных и трансгенных растений // Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии, 2012. - Вып. 1 - С. 153-163.
29. Лебедев В.Г., Шестибратов К.А. Эффективный способ получения посадочного материала ясеня обыкновенного in vitro // Лесной вестник, 2010. - № 3. - С. 112-113.
30. Маляровская В.И., Гвасалия М.В., Самарина Л.С., Соколов Р.Н.
Микроразмножение in vitro субтропических, декоративных культур и эндемиков Западного Кавказа: оригинальные и оптимизированные
протоколы // Сельскохозяйственная биология, 2014. - № 3. - С. 49-58.
31. Маляровская В.И., Самарина Л.С. Введение в культуру in vitro Hydrangea macrophylla Ser. и изучение её регенерационного потенциала // Труды ботанического института, 2017. - Вып. V. - С. 88-97.
32. Машкина О.С., Исаков Ю.Н. Микроклональное размножение хозяйственно ценных генотипов осины // Сохранение, изучение и воспроизводство генетических ресурсов лесных древесных растений: сборник научных трудов. - Воронеж, 2007. - С. 47-58.
33. Машкина О.С., Шабанова Е.А., Вариводина И.Н., Гродецкая Т.А. Полевые испытания размноженных in vitro клонов осины (Populus tremula L.): рост, продуктивность, качество древесины, генетическая стабильность // Лесной журнал, 2019. - № 6. - С. 25-38.
34. Митрофанова И.В. Соматический эмбриогенез и органогенез как
основа получения и сохранения многолетних садовых культур. - К.:
Аграрная наука, 2011. - 344 с.
35. Новоселова Н.В. Особенности роста и развития семян сосны сибирской (Pinus Sibirica Du Tour) in vivo и в культуре in vitro. - Красноярск: государственный аграрный университет, 2008. - 115 с.
36. Орехова Т.П., Баркалова О.К., Михеева А.В. Способ клонального микроразмножения тополя корейского (Populus koreana Render). - ФНЦ Биоразнообразия ДВО РАН, 2019. - 3 с.
37. Плынская Ж.А., Аёшина Е.Н., Величко Н.А. Культивирование хвойных в условиях in vitro // Хвойные бореальной зоны, 2008. - Т. 25. - №
12. С. 68-70.
38. Поляков А.В. Получение регенерантов овощных культур и их размножение in vitro. - М.: ГНУ ВНИИО Россельхозакадемии, 2005. - 36 с.
39. Саляев Р.К., Рекославская Н.И. Получение каллусной культуры клеток кедра сибирского // Лесоведение, 2009 - Т. 5. - С. 57-62.
40. Самусь В.А., Семенас С.Э., Кухарчик Н.В., Змушко А.А.
Плодоводство // Методическое; обеспечение устойчивого развития современного- плодоводства: материалы международной научной
конференции. - Самохваловичи, 2006. - Т. 18. - Ч. 2. - С. 146-156.
41. Сиволапов А.И., Табацская Т.М., Сиволапов В.А. Плантационные культуры березы, созданные регенерантами in vitro в учебно-опытном лесхозе ВГЛТА // Лесной вестник, 2007. - № 5. - С. 113-115.
42. Столярова Н.А. Выращивание посадочного материала триплоидной осины, полученного по технологии in vitro и закладка плантаций // Известия Санкт-Петербургской лесотехнической академии, 2010. - Вып. 193. - С. 62-71.
43. Султонова М.С., Нимаджанова К., Анварова М. Подбор наиболее оптимальных сред для стерилизации черенков хвойных пород для выращивания в условиях in vitro // Теоретический и научно-практический журнал, 2014. - № 4(64). - С. 69-71.
44. Тимофеева О.А., Румянцева Н.И. Культура клеток и тканей растений: учебное пособие. - Казань: Казанский университет, 2012. - 91 с.
45. Третьякова А.В., Демина Е.А., Рекославская Н.И., Саляев Р.К., Столбиков А.С. Особенности получения каллусной культуры пихты сибирской Abies sibirica Ledeb // Биология. Экология, 2014. - Т. 10. - С. 11-23.
46. Третьякова И.Н., Барсукова А.В. Сохранение генофонда хвойных видов Сибири при помощи соматического эмбриогенеза in vitro - современного метода биотехнологии // Хвойные бореальной зоны, 2010. - Т. XXVII. - № 1. - С. 203-206.
47. Третьякова И.Н., Белоруссова А.С., Носкова Н.Е., Савельев С.С., Лукина А.В., Барсукова А.В., Ижболдина М.В., Череповский Ю.А. Перспективы применения методов биотехнологии для размножения генетически ценных форм лесных древесных видов // Хвойные бореальной зоны, 2007. - Т. 24. - № 2-3. - С. 309-318.
48. Третьякова И.Н., Ворошилова Е.В., Шуваев Д.Н. Каллусогенез и индукция соматического эмбриогенеза у гибридных семян Pinus sibirica // Физиология растений, 2014. - Т. 61. - № 2. - С. 297-303.
49. Третьякова И.Н., Ворошилова Е.В., Шуваев Д.Н., Лукина А.С. Образование каллуса и индукция соматических зародышей в культуре in vitro у Pinus sibirica Du Tour. // Journal of Siberian Federal University. Biology, 2013. - № 1. - С. 44-60.
50. Филиппова И.П. Адвентивное почкообразование у сибирских видов хвойных на средах с цитокининами // Вестник КрасГАУ, 2010. - № 12.
С. 69-74.
51. Филиппова И.П. Особенности появления и развития проводящих
тканей у эксплантов ели сибирской при адвентивном почкообразовании в культуре in vitro // Гомеостаз лесных экосистем: материалы X
международного симпозиума «Концепция гомеостаза: теоретические,
экспериментальные и прикладные аспекты» (Красноярск, 13-19 декабря 2001 г.). - Новосибирск: Наука, 2002. - С. 158-161.
52. Царев А.П., Погиба С.П., Лаур Н.В. Селекция лесных и декоративных древесных растений. - М.: МГУЛ, 2014. - 552 с.
53. Шестибратов К.А., Лебедев В.Г., Мирошников А.И. Биотехнология: методы, технологии, перспективы // Биотехнология, 2008. - Т. 5. - С. 3-22.
54. Шестибратов К.А., Лебедев В.Г., Мирошников А.И. Лесная биотехнология: методы, технологии, перспективы // Биотехнология, 2008. - № 5. - С. 3-22.
55. Ширнин В.К. Проблемы восстановления дубрав Центрального Черноземья желудями улучшенной селекционной категории // Современная лесная наука: проблемы и перспективы: материалы Всероссийской научно-практической конференции. - Воронеж: Истоки, 2017. - С. 138-142.
56. Широков А.И., Крюков Л.А. Основы биотехнологии растений. - Нижний Новгород: Нижегородский госуниверситет, 2012. - 49 с.
57. Aramini M., Bernardini C., Rugini E. In vitro propagation of traditional Italian hazelnut cultivars as a tool for the valorization and conservation of local genetic resources // Horticultural Science, 2008. - Vol. 43. - P. 562-566.
58. Bonga J.M., Klimaszewska K.K., von Aderkas P. Recalcitrance in clonal propagation, in particular of conifers // Plant. Cell Tiss. Organ. Cult, 2010. - Vol. 100. - P. 241-254.
59. Ebrahimi C., Solouki M., Omidi M., Forootan M. High-frequency development of leaf-derived pre-embryos in hazel // Trakia J. of Sci., 2014. - Vol. 2. - P. 162-168.
60. Elbasheer Y.H., Osman E.E. Effective and economical explants surface sterilization protocol for microbial contamination of field grown explants in vitro cultures of some forest trees; Acacia senegal as a model // Basic Research J. of Microbiology, 2017. - Vol. 4 (2). - P. 12-17.
61. Ferreira de Santana J.R., Paiva R., Aloufac M.A.I., Pinto de Lemos E.E. Efficiency of ampicillin and benomyl at controlling contamination of Annonaceae leaf segments cultured in vitro // Fruits, 2003. - Vol. 58. - P. 357-361.
62. Gomez-Garay A., Manzanera J.A., Pintos-Lopez B. Embryogenesis in oak species // For. Syst., 2014. - Vol. 23. - P. 191-198.
63. Hasnain S., Cheliah W.Tissue culture in forestry: economic and genetic potential // Forestry Chronicle., 1986. - Vol. 62. - № 4. - P. 219-225.
64. Hermayani N., Retnoningsih A., Rahayu E.S. Optimising sterilization techniques and callus induction of nodes Durio zibethinus Murr. in vitro method with various media // IOP Journal of Physics: Conference Series., 2017. - Vol. 824(1). - P. 1-6.
65. Klimaszewska K., Hargreaves C., Lelu-Walter M.A., Trontin J.-F. Chapter 7: Advances in conifer somatic embryogenesis since year 2000 // In Vitro Embryogen. High. Plant. Meth. Mol. Biol., 2016. - Vol. 1359. - P. 131-166.
66. Lelu-Walter M-A. Clonal plant production from self- and cross-pollinated seed families of Pinus sylvestris (L.) through somatic embryogenesis // Plant Cell Tiss Organ Cult., 2008. - Vol. 92. - Р. 31-45.
67. Noe N., Bonini L. Leaf anatomy of highbush blueberry grown in vitro and during acclimatization to ex vitro conditions // Biologia Plantarum., 1996. - Vol. 38. - No. 1. - P. 19-25.
68. Park Y-S. Implementation in conifers somatic embryogenesis in clonal forestry: technical requirement and development considerations // Ann. For. Sci., 2002. - Vol. 59. - P. 651-656.
69. Pullman G.S., Bucalo K. Pine somatic embryogenesis: analyses of seed tissue and medium to improve protocol development // New F-or., 2014. - Vol. 45. P. 353-377.
70. Shibata M. Importance of genetic transformation in ornamental plant breeding // Plant Biotechnology, 2008. - No. 25. - P. 3-8.
71. Singh M., Sonkusale S., Niratker Ch., Shukla M. Micropropagation of Shorea robusta: an economically important woody plant // J. of Forest Sci., 2014. - Vol. 60(2). - P. 70-74.
72. Sutter E. Stomatal and cuticular water loss from apple, cherry, and sweetgum plants after removal from in vitro culture // Journal Amer. Soc. hort. sci., 1998. - Vol. 113. - P. 234-238.
73. Tang W. The effect of different plant growth regulation on adventitious shoot formation from Pinus virginiata zygotic embryo // Plant Cell Tiss. Organ Cult., 2004. -Vol. 78. - P. 237-240.
74. Vieitez A.M., Corredoira E., Martinez M.T., San-Jose M.C., Sanchez C., Valladares S., Vidal N., Ballester A. Application of biotechnological tools to Quercus improvement Eur. // J. Forest Res., 2012. - No. 131. - P. 519-539.
75. Vieitez A.M., Corredoira E., Ballester A., Munoz F., Duran J., Ibarra M. In vitro regeneration of the important North American oak species Quercus alba, Quercus bicolor and Quercus rubra // Plant Cell Tissue Organ. Cult., 2009. - P. 135-145.

Купить