Заказать работу


Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


БИОФИЗИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ ФАГО- И ПИНОЦИТОЗА НА МОДЕЛИ ПЛОСКИХ ЧЕРВЕЙ ПЛАНАРИЙ

Работа №74530
Тип работыДипломные работы, ВКР
Предметбиология
Объем работы142
Год сдачи2020
Стоимость4365 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено 5
Не подходит работа?

Узнай цену на написание

Введение
1 Планария как тест-система для изучения фагоцитоза и регенерации 5
1.1.1 Филогения, биоразнообразие и анатоми планарий 5
1.1.2 Молекулярные механизмы фагоцитоза у планарий 13
1.2. Объекты и методы исследования
1.2.1 Регистрация хемилюминесценции как метод исследования
1.2.2 Цветометрия и спектофотометрия как методы исследования 35
1.2.3 Морфометрия как метод исследования 72
2 Методика исследования 77
2.1 Метод регистрации хемилюминесценции 77
2.2 Спектофотометрический метод исследования 79
2.3 Цветометрический метод исследования 80
2.4 Метод прижизненной компьютерной морфометрии 83
3. Результаты и обсуждения 85
3.1 Анализ динамики ССФЭ при регенерации и фагоцитозе 85
3.2 Анализ динамики ССФЭ при регенерации 86
3.3 Анализ динамики размерных показателей при регенерации 87
3.4 Анализ динамики морфометрических показателей при регенерации плана¬
рий под действием разных концентраций пептида FMLP 89
3.5 Микроспектрофотометрическое исследование спектральных характеристик фагоцитирующих планарий 93
3.6 Цветометрический анализ влияния температуры на фагоцитоз 95
3.7 Цветометрический анализ регенерации планарий 104
3.8 Цветометрический анализ адаптационных реакций планарий 110
Заключение 114
Список литературы

Планарии представляют собой уникальную тест-систему, поскольку обладают непревзойденными способностями к регенерации; они способны образовывать новый организм даже из небольшого фрагмента тела. Эта способность к регенерации обусловлена тем, что в их организме около четверти всех клеток являются стволовыми. Стволовые клетки планарий (необласты) запускают процесс морфогенеза.
Активный морфогенез также сопровождает процесс фагоцитоза у планарий: как показали исследования, после поступления пищи их кишечник распадается на отдельные клетки, в каждой из которых происходит процесс внутриклеточного пищеварения (фаго- и пиноцитоза) с участием комплекса Гольджи и лизосомо-ферментативной системы клетки. По истечении трех суток происходит самосборка кишечника - фагоцитоз завершается.
Таким образом, основные физиологические процессы планарий (фагоцитоз и регенерация) имеют в своей основе механизм морфогенеза. Уникальные биологические особенности планарий позволяют изучать эти процессы in vivo на организменном уровне, с применением неинвазивных методов. Неинвазивные методы являются наиболее чувствительными, они дают возможность изучать физиологическое состояние планарий в различных условиях, рассматривать быстрые и медленные реакции как организма в целом, так и локальные, протекающие в отдельных органах и тканях. Это предопределило выбор темы данного исследования.
Цель данной работы: разработка методики неинвазивного биофотонического контроля физиологических процессов у планарий на модели целого организма in situ.
Для достижения этой цели поставлены следующие задачи:
1. Разработка алгоритма анализа цветометрических и микрофотоспек- тральных характеристик организма.
Итак, объектом данного исследования является плоский червь планария G. tigrina (царство Animalia, тип Platyhelminthes, класс Rhabditophora, отряд Tricladida, подотряд Continenticola, семейство Dugesiidae, род Girardia). Предмет исследования - основные физиологические процессы планарии в различных условиях.
В работе применены следующие методы исследования
1) метод регистрации сверхслабой фотонной эмиссии (ССФЭ);
2) микрофотоспектральный метод;
3) метод цифровой биоцветометрии;
4) метод прижизненной компьютерной морфометрии.
Актуальность и новизна данного исследования подтверждается тем, что фагоцитоз является основой внутриклеточного питания и иммунного ответа живого организма, а изучение регенерации важно для развития регенеративной медицины. При этом неинвазивные исследования физиологических процессов на уровне являются более. Однако на уровне целого организма динамика фагоцитоза и регенерации не исследовалась. В данной работе впервые для исследования фагоцитоза и регенерации планарий Girardia tigrina на организменном уровне применены чувствительные неинвазивные биофотонические методы: микро- спектрофотометрический и цветометрический.
Работа выполнена на 142 страницах, содержит 10 таблиц, 76 рисунков, 252 источника литературы.


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании студенческих
и аспирантских работ!


Целью данной работы была разработка методики неинвазивного биофотонического контроля физиологических процессов у планарий G. tigrina на модели целого организма in situ.
Для достижения этой цели были поставлены следующие задачи:
3. Разработка алгоритма анализа цветометрических и микрофотоспек- тральных характеристик организма.
4. Изучение фагоцитоза и регенерации планарий в различных условиях через анализ динамики размерных и биофотонических показателей (сверхслабая фотонная эмиссия (ССФЭ), характеристики цвета).
В ходе работы был проведен комплекс экспериментов по проверке чувствительности метода регистрации сверхслабого свечения, а также спектрометрического, цветометрического и морфометрического методов изучения физиологических процессов планарий на модели целого организма in situ.
В частности, методом регистрации сверхслабого свечения были исследованы фагоцитоз и регенерация планарий. Так как эти процессы у планарий основаны на активности стволовых клеток, а сверхслабое свечение объясняется образованием ими АФК, то результаты проведенных экспериментов позволяют сделать вывод, что, во-первых, при фагоцитозе задействовано больше необластов, чем при регенерации, во-вторых, число активных необластов при регенерации прямо пропорционально количеству раневых поверхностей.
Методом регистрации ССФЭ была активность необластов планарий во время регенерации под воздействием хемотактического пептида fMLP (N-фор- милметионил-лейцил-фенилаланин) в концентрации 10-9 М/л и апоцинина в концентрации 10-4 М/л, ингибитора альфа NADH-оксидазы (АФК-системы). Эксперименты показали, что пептид fMLP, будучи стимулятором образования АФК, усиливает сверхслабое свечение примерно в 3 раза. Ингибирующее воздействие апоцинина проявилось в уменьшении пика ССФЭ и отдалении его во времени примерно на 5 часов.
Спектрофотометрический метод был применен к рассмотрению процесса фагоцитоза у планарий. Основная пища планарий - гемолимфа мотыля (личинки двукрылых), содержащая белки группы гемоглобинов. На графиках, характеризующих спектры поглощения голодных и фагоцитирующих планарий, отчетливо видны пики, совпадающие с длинами волн поглощения белков группы гемоглобинов. Таким образом, чувствительность спектрометрического метода подтверждена экспериментально.
Процесс регенерации планарий сопровождается изменением ее размерных показателей. Их измерение позволяет судить об интенсивности процесса регенерации, а значит, об активности необластов под воздействием различных факторов. Морфометрическим методом было рассмотрено воздействие на процесс регенерации планарий люминола, Метод динамической морфометрии позволил подтвердить, что люминол по отношению к процессу регенерации является ингибитором.
Также морфометрическим методом были исследована активность стволовых клеток планарий через размерные характеристики животных, регенерирующих под воздействием пептида fMLP в концентрациях 10-9, 10-11, 10-13 моль/л. Эксперимент показал, что регенерация планарий под воздействием пептида в концентрации 10-13 М/л идет активнее, чем при 10-11 М/л и в контрольной группе.
Цветометрический метод был применен к изучению интенсивности фагоцитоза планарий в разных температурных режимах. Также предпринята попытка исследовать цветометрическим методом адаптационные процессы планарий в ответ на холодовое воздействие. Выяснено, что характеристики цвета планарий (теплота, тон, яркость и насыщенность, а также абсолютные и относительные показатели цвета) чутко реагируют на изменение физиологического состояния животных. В дальнейшем планируется выяснить зависимости между динамикой отдельных показателей цвета и изменениями состояния организма планарии.
Таким образом, проведенные эксперименты подтверждают чувствительность используемых методов для изучения активности стволовых клеток на примере физилогических процессов планарии.



1. Agata, K., Saito, Y. and Nakajima, E. (2007). Unifying principles of regener¬ation I: epimorphosis versus morphallaxis. Dev. Growth Differ. 49, 73-78.
doi: 10.1111/j. 1440-169X.2007.00919.x
2. Baguna, J. (1976b). Mitosis in the intact and regenerating planarian Dugesia mediterranea n.sp. I. J. Exp. Zool. 195, 53-64. doi:10.1002/jez.1401950106
3. Baguna, J. (2012). The planarian neoblast: the rambling history of its origin and some current black boxes. Int. J. Dev. Biol. 56, 19-37. doi:10.1387/ijdb.113463jb
4. Baguna, J. and Romero, R. (1981). Quantitative analysis of cell types during growth, degrowth and regeneration in the planarians Dugesia mediterranea and Dugesia tigrina. Hydrobiologia 84, 184-191. doi:10.1007/BF00026179
5. Blassberg, R. A., Felix, D. A., Tejada Romero, B. and Aboobaker, A. A. (2013). PBX/extradenticle is required to re-establish axial structures and polarity dur-ing planarian regeneration. Development 140, 730-739. doi:10.1242/dev.082982
6. Brondsted, H. V. (1969). Planarian Regeneration. Oxford, New York: Per- gamon Press.
7. Cebria, F. (2007). Regenerating the central nervous system: how easy for pla- narians! Dev. Genes Evol. 217, 733-748. doi:10.1007/s00427-007-0188-6
8. Chen, C.-C. G.,Wang, I. E. and Reddien, P.W. (2013). PBX is required for pole and eye regeneration in planarians. Development 140, 719-729. doi:10.1242/dev. 083741
9. Colour changes during deep fat frying / M.K. Krokida [at al] // J. Food Engg. - 2001. - Vol.48, N 3. - P. 219-225.
10. Eisenhoffer, G. T., Kang, H. and Sanchez Alvarado, A. (2008). Molecular analysis of stem cells and their descendants during cell turnover and regeneration in the planarian Schmidtea mediterranea. Cell Stem Cell 3, 327-339. doi:10.1016/j. stem.2008.07.002
11. Fields, C., Levin, M., (2018), Are planaria individuals? What regenerative biology is telling us about the nature of multicellularity, Evolutionary Biology, 45(3): 237-247.
12. Forsthoefel, D. J., Park, A. E. and Newmark, P. A. (2011). Stem cell-based growth,regeneration, and remodeling of the planarian intestine. Dev. Biol. 356, 445-459. doi: 10.1016/j.ydbio.2011.05.669
13. Gavino, M. A. and Reddien, P. W. (2011). A Bmp/Admp regulatory circuit controls maintenance and regeneration of dorsal-ventral polarity in planarians. Curr. Biol. 21, 294-299. doi:10.1016/j.cub.2011.01.017
14. Gurley, K. A., Elliott, S. A., Simakov, O., Schmidt, H. A., Holstein, T. W. and Sanchez Alvarado, A. (2010). Expression of secreted Wnt pathway components reveals unexpected complexity of the planarian amputation response. Dev. Biol. 347, 24-39. doi:10.1016/j.ydbio.2010.08.007
15. Gurley, K. A., Rink, J. C. and Sanchez Alvarado, A. (2008). 0-catenin de-fines head versus tail identity during planarian regeneration and homeostasis. Science 319, 323-327. doi:10.1126/science.1150029
16. Hayashi, T., Shibata, N., Okumura, R., Kudome, T., Nishimura, O., Tarui, H. and Agata, K. (2010). Single-cell gene profiling of planarian stemcells using fluo-rescent activated cell sorting and its “index sorting” function for stem cell research. Dev. Growth Differ. 52, 131-144. doi:10.1111/j.1440-169X.2009.01157.x
17. Iglesias, M., Almuedo-Castillo, M., Aboobaker, A. A. and Salo, E. (2011). Early planarian brain regeneration is independent of blastema polarity mediated by the Wnt/p-catenin pathway. Dev. Biol. 358, 68-78. doi:10.1016/j.ydbio.2011.07.013
18. Image segmentation and maturity recognition algorithm based on color fea-tures of lingwu long jujube / Wang Yutan [at al] // Advance journal of food science and technology. - 2013 .-vol.5, n 12 .-p. 1623-1631.
19. Kozirok W. Cyfrowa analiza obrazu - zastosowanie w ocenie jakosci jec- zmienia browarnego / W. Kozirok, L. Fornal, A. Jaloza // Przem. ferment. owoc.-warz.. - 2002. - T.46, N 12. - S. 24-27
20. Lapan, S. W. and Reddien, P. W. (2011). Dlx and Sp6-9 control optic cup regeneration in a prototypic eye. PLoS Genet. 7, e1002226. doi:10.1371/journal. pgen.1002226
21. Liu SY, Selck C, Friedrich B, Lutz R, Vila-Farre M, Dahl A, Brandl H, Lakshmanaperumal N, Henry I, Rink JC. Reactivating head regrowth in a regeneration¬deficient planarian species. Nature. 2013; 500:81-84. [PubMed: 23883932]
22. LoCascio, S. A., Lapan, S. W. and Reddien, P. W. (2017). Eye absence does not regulate planarian stem cells during eye regeneration. Dev. Cell 40, 381- 391.e3. doi:10.1016/j.devcel.2017.02.002
23. Mario Ivankovic, Radmila Haneckova, Albert Thommen, Markus A. Grohme, Miquel Vila-Farre, Steffen Werner, Jochen C. Rink Model systems for regen-eration: planarians. Development (2019) 146, dev167684. doi:10.1242/dev.167684 https://dev.biologists.org/content/146/17/dev167684.article-info
24. Methodological techniques for identifying plant communities based on earth remote sensing data and field research / T.A. Adamovich [at al] // Теоретическаяи прикладная экология. - 2019. - № 2. - С. 39-43.
25. Modelling of the kinetics of colour change in hazelnutz during air roasting / A.D. Demir [at al] // J. Food Engg. - 2002. - Vol. 55, N 4. - P. 283-292.
26. Molina, M. D., Neto, A., Maeso, I., Gomez-Skarmeta, J. L., Salo, E. and Cebria, F. (2011). Noggin and noggin-like genes control dorsoventral axis regeneration in planarians. Curr. Biol. 21, 300-305. doi:10.1016/j.cub.2011.01.016
27. Molinaro, A. M. and Pearson, B. J. (2016). In silico lineage tracing through single cell transcriptomics identifies a neural stem cell population in planarians. Ge¬nome Biol. 17, 87. doi:10.1186/s13059-016-0937-9
28. Montgomery JR, Coward SJ. On the minimal size of a planarian capable of regeneration. Trans Amer Micros Soc. 1974; 93:386-391.
29. Morgan, T. (1898). Experimental studies of the regeneration of Planaria maculata. Arch. Entw. Mech. Org. 7, 364-397. doi:10.1007/BF02161491
30. Munsell book of color: glossy finish collection: removable samples in two binders. - Baltimore: Munsell color, Macbeth. - 1976. - 75 p.
31. Newmark, P. A. and Sanchez Alvarado, A. (2000). Bromodeoxyuridine specifically labels the regenerative stem cells of planarians. Dev. Biol. 220, 142-153. doi:10. 1006/dbio.2000.9645
32. Newmark, P. A. and Sanchez Alvarado, A. (2002). Not your father’s pla-narian: a classic model enters the era of functional genomics. Nat. Rev. Genet. 3, 210-219. doi:10.1038/nrg759
33. Newmark, P. A., Wang, Y. and Chong, T. (2008). Germ cell specification and regeneration in planarians. Cold Spring Harb. Symp. Quant. Biol. 73, 573-581. doi:10.1101/sqb.2008.73.022
34. Oderberg, I. M., Li, D. J., Scimone, M. L., Gavino, M. A. and Reddien, P. W. (2017). Landmarks in existing tissue at wounds are utilized to generate pattern in regenerating tissue. Curr. Biol. 27, 733-742. doi:10.1016/j.cub.2017.01.024
35. Petersen, C. P. and Reddien, P. W. (2008). Smed-betacatenin-1 is required for anteroposterior blastema polarity in planarian regeneration. Science 319, 327-330. doi: 10.1126/science.1149943
36. Petersen, C. P. and Reddien, P. W. (2011). Polarized notum activation at wounds inhibits Wnt function to promote planarian head regeneration. Science 332, 852-855. doi: 10.1126/science. 1202143
37. Pongratz, N., Storhas, M., Carranza, S. and Michiels, N. K. (2003). Phylo- geography of competing sexual and parthenogenetic forms of a freshwater flatworm: patterns and explanations. BMC Evol. Biol. 3, 23. doi:10. 1186/1471-2148-3-23
38. Randolph, H. (1897). Observations and experiments on regeneration in pla¬narians. Arch. Entw. Mech. Org. 5, 352-372. doi:10.1007/BF02162271
39. Reddien, P. W. and Sanchez Alvarado, A. (2004). Fundamentals of planar-ian regeneration. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 20, 725-757. doi:10.1146/annurev. cell- bio.20.010403.095114
40. Reddien, P.W. (2018). The cellular and molecular basis for planarian re-generation. Cell 175, 327-345. doi:10.1016/j.cell.2018.09.021
41. Reddien, P.W., Bermange, A. L., Kicza, A. M. and Sanchez Alvarado, A. (2007). BMP signaling regulates the dorsal planarian midline and is needed for asym-metric regeneration. Development 134, 4043-4051. doi:10.1242/dev. 007138
42. Rink, J. C. (2018). Stem cells, patterning and regeneration in planarians: selforganization at the organismal scale. Methods Mol. Biol. 1774, 57-172. doi:10. 1007/978-1-4939-7802-1_2
43. Ross, K. G., Omuro, K. C., Taylor, M. R., Munday, R. K., Hubert, A., King, R. S. and Zayas, R. M. (2015). Novel monoclonal antibodies to study tissue regenera¬tion in planarians. BMC Dev. Biol. 15, 2. doi:10.1186/s12861-014-0050-9
44. Salo, E. and Agata, K. (2012). Planarian regeneration: a classic topic claim-ing new attention. Int. J. Dev. Biol. 56, 3-4. doi:10.1387/ijdb.123495es
45. Scimone, M. L., Cote, L. E. and Reddien, P. W. (2017). Orthogonal muscle fibres have different instructive roles in planarian regeneration. Nature 551, 623-628. doi: 10.1038/nature24660
46. Shahin M.A., Hatcher D.W., Symons S.J. Use of imaging methods for as-sessment of Asian noodle color // Cereal Foods World; St. Paul.-2006.-Vol.51,N 4.-P. 172-175.-Англ.-Bibliogr.: p.175.
47. Sikes JM, Newmark PA. Restoration of anterior regeneration in a planarian with limited regenerative ability. Nature. 2013; 500:77-80. [PubMed: 23883929]
48. Sluys, R. and Riutort, M. (2018). Planarian diversity and phylogeny. Meth-ods Mol. Biol. 1774, 1-56. doi:10.1007/978-1-4939-7802-1_1
49. Stjernholm, R.L., Allen, R.C., Steele, R.H., Waring, W.W., Harris, J.A. (1973) Infect. Immun., 7, 313-4.
50. Tanaka, E. M. and Reddien, P. W. (2011). The cellular basis for animal regeneration. Dev. Cell 21, 172-185. doi:10.1016/j.devcel.2011.06.016
51. Thi-Kim Vu, H., Rink, J. C., McKinney, S. A., McClain, M., Lakshmana- perumal, N., Alexander, R. and Sanchez Alvarado, A. (2015). Stem cells and fluid flow drive cyst formation in an invertebrate excretory organ. eLife 4, e07405. doi:10. 7554/eLife.07405
52. Thommen, A., Werner, S., Frank, O., Philipp, J., Knittelfelder, O., Quek, Y., Fahmy, K., Shevchenko, A., Friedrich, B. M., Ju licher, F. et al. (2019). Body size-dependent energy storage causes Kleiber’s law scaling of the metabolic rate in planar-ians. eLife 8, 420. doi:10.7554/eLife.38187
53. Umesono Y, Tasaki J, Nishimura Y, Hrouda M, Kawaguchi E, Yazawa S,
Nishimura O, Hosoda K, Inoue T, Agata K. The molecular logic for planarian regen-eration along the anterior-posterior axis. Nature. 2013; 500:73-76. [PubMed:
23883928]
54. Umesono, Y. and Agata, K. (2009). Evolution and regeneration of the pla-narian central nervous system. Dev. Growth Differ. 51, 185-195. doi:10.1111/j.1440- 169X.2009.01099.x
55. Vila-Farre, M. and Rink, J. C. (2018). The ecology of freshwater planari-ans. Methods Mol. Biol. 1774, 173-205. doi:10.1007/978-1-4939-7802-1_3
56. Wagner, D. E., Wang, I. E. and Reddien, P. W. (2011). Clonogenic ne-oblasts are pluripotent adult stem cells that underlie planarian regeneration. Science 332, 811-816. doi:10.1126/science.1203983
57. Wenemoser, D. and Reddien, P. W. (2010). Planarian regeneration involves distinct stem cell responses to wounds and tissue absence. Dev. Biol. 344, 979-991. doi:10.1016/j.ydbio.2010.06.017
58. Witchley, J. N., Mayer, M.,Wagner, D. E., Owen, J. H. and Reddien, P.W. (2013). Muscle cells provide instructions for planarian regeneration. Cell Rep. 4, 633-641. doi:10.1016/j.celrep.2013.07.022
59. Автоматизация обработки микрофотографий молочных продуктов с использованием IMAGEJ и STATISTICA / В.К. Битюков [и др.] //Вестник Воронежского государственного университета инженерных технологий. 2014. № 4(62). С. 58-63.
60. Автоматизированный анализ изображений полипов кишечника / И.В. Ярема [и др.] // Сеченовский вестник. - 2015. - № 4 (22). - С. 12-16.
61. Активированная люцигенином хемилюминесценция тканей животных / Н.С. Матвеева [и др.] // Биофизика. - 2007. - Т. 52. - № 6. - С. 1120-1127.
62. Аникина Н.С. Методы оценки цвета вин. обзор / Н.С. Аникина, С.Н. Червяк, Н.В. Гниломедова // Аналитика и контроль. 2019.- Т.23. -№2. - С.158-167.
63. Афанасьева О.Б. Экзоскелет позвоночных: геометрические закономерности формирования рельефа панциря у ранних бесчелюстных (AGNATHA, VERTEBRATA) // Доклады Академии наук. - 2019. - Т. 489.- № 1. - С. 99-102
64. Ахмедханов А.М. Взаимосвязь особенностей восприятия цвета с пси-хофизиологическими характеристиками личности // Вестник научных конференций. - 2015. - № 1-3. - С. 16-17.
65. Байдала Д.А. Идентификация фарфоровых изделий по виду материала методами спектроколометрии // Зеленый коридор. - 2017 - № 2. - С. 15-17.
66. Барышова Е.О. Анализ цвета листовых пластин / Е.О. Барышова, А.И. Довганюк // Вестник ландшафтной архитектуры. - 2016. - № 7. - С. 10-14.
67. Бацевич В.А. Изучение секулярных изменений цвета глаз у населения Архангельской области / В.А. Бацевич, Ю.В. Лоскутова, М.А. Негашева // Вестник Московского университета. Серия 23: Антропология.- 2013.-№ 1.-С. 104-110.
68. Бекетов С.В. Связь между окраской волосяного покрова и репродуктивностью самок соболей клеточного содержания / С.В. Бекетов, Т.И. Казакова // Кролиководство и звероводство. - 2012. - № 2. - С. 16-19.
69. Болат-Оол Ч.К. Характеристика шерсти верблюдов Республики Тыва / Ч.К. Болат-Оол, С.Д. Монгуш, В.Г. Двалишвили // Овцы, козы, шерстяное дело. - 2016. - № 1. - С. 45-46.
70. Борисов Р.Р. Влияние интенсивности освещения на окраску личинок камчатского (PARALITHODES CAMTSCHATICUS (TILESIUS)) и синего (PARALITHODES PLATYPUS (BRANDT)) крабов (DECAPODA, LITHODIDAE) / Р.Р. Борисов, Д.С. Печёнкин // Зоологический журнал. - 2018. - Т. 97. - № 10. - С. 1231-1237.
71. Боровиков В.П., Популярное введение в современный анализ данных в системе STATISTICA. Учебное пособие для вузов / В.П. Боровиков // М.: Горячая линия - Телеком, 2013. - 288 с.
73. Булыгин С.Ю. Оценка гумусированности почв путем обработки их цифровых фотоизображений / С.Ю. Булыгин, Д.И. Бидолах, Ф.Н. Лисецкий // Научные ведомости Белгородского государственного университета. Серия: Естественные науки. - 2011. - № 15 (110). - С. 154-159.
74. Буянова Д.В. Оценка сезонных изменений цветовой среды на экологических тропах г. Москвы / Д.В. Буянова, А.И. Довганюк // Вестник ландшафтной архитектуры. - 2018. - № 15. - С. 16-21.
75. Вавилова О.И. Анализ изменения цвета (потемнения) и активности полифенолоксидазы при холодном хранении в модифицированной газовой среде свеженарезанных, готовых к употреблению яблок сорта Золотое Превосходное. (Испания. Израиль) // Пищевая и перерабатывающая промышленность. Реферативный журнал. - 2004. - № 4. - С. 1372.
76. Валеева А.А. Оценка цвета лесостепных почв с помощью цифровой фотосъемки в лабораторных условиях / А.А. Валеева, А.Б. Александрова, Г.Ф. Копосов // Почвоведение. - 2016. - № 9. - С. 1101-1106.
77. Ван Лиероп Р. Значение цвета и узора для электрических инсектицидных ловушек // Пест-Менеджмент. - 2013. - № 2 (86). - С. 32-34.
78. Визуальные и цветометрические экспресс-способы суммарного определения дубильных веществ в растительном сырье/С.П. Калинкина [и др.] // Вестник Воронежского государственного университета инженерных технологий. - 2016. - № 2 (68). - С. 223-229
79. Витер В.И. О возможности количественной характеристики цветакровоподтека при определении давности его образования / В.И. Витер, А.В. Литвинов, С.В. Чирков // Фундаментальные исследования.- 2014.- №10-5.-С.869-872.
80. Владимирова Е.В. Использование шкалы RAL в качестве индикатора для определения цвета языка / Е.В. Владимирова, Н.А. Валитова, А.Н. Плакуев // Современная медицина: актуальные вопросы. - 2015. - № 42-43. - С. 67-72.
81. Влияние ингибиторов NO-синтазы, содержащих тиоамидиновый фрагмент, на люминолзависимую хемилюминесценцию нейтрофилов человека / С.Я. Проскуряков. [и др.] // Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. - 2006. - № 2. - С. 31-33.
82. Влияние параметров обработки ревеня и крыжовника на формирование цвета //A. Dubinina [at al] // Восточно-Европейский журнал передовых технологий. - 2017. - Т. 6. - № 11 (90). - С. 66-71.
83. Внутривидовая дифференциация окраски зимнего меха PTEROMYS VOLANS (SCIURIDAE, MAMMALIA) в пределах ареала / С.Н. Гашев [и др.] // Nature Conservation Research. - Заповедная наука. - 2019. - Т. 4. - № 4. - С. 65-72.
84. Водяницкий Ю.Н. Использование системы CIE-L*A*B* для характеристики цвета почв / Ю.Н. Водяницкий, Н.П. Кириллова // Почвоведение. - 2016.
-№ 11. - С. 1337-1346.
85. Водяницкий Ю.Н. Перевод цветовых показателей почвы из системы Манселла в систему CIE-L*A*B*: таблицы и примеры расчета / Ю.Н. Водяниц-кий, Н.П. Кириллова // Вестник Московского университета. Серия 17: Почвоведение. - 2016. - № 4. - С. 3-11.
86. Воловар О.С. Клиническая характеристика состояния соединительной ткани организма при заболеваниях височно-нижнечелюстного сустава методом иридодиагностики, с учетом состояния склер, патологии органа зрения / О.С. Воловар, В.А. Маланчук, О.А. Крыжановская // Вестник стоматологии. 2010. - № 4(73). - С. 54-59.
87. Воробьева Н.Н. Методы оценки цвета кетчупа (Чехия) // Пищевая иперерабатывающая промышленность. Реферативный журнал.-2000. - №3. -С.962.
88. Галанин С.И. Выбор конструкционных металлов и сплавов для ювелирных изделий на основе анализа их цветовых характеристик / С.И. Галанин, К.Н. Колупаев // Труды Академии технической эстетики и дизайна. 2014. - № 1.-С. 31-35.
89. Галанин С.И. Методика оценки колористических характеристик ювелирных изделий и бижутерии / С.И. Галанин, А.С. Ляпина // Труды Академии технической эстетики и дизайна. - 2018. - № 1. - С. 19-23.
90. Герасимов А.В. Численные характеристики окраски плодов паприки (CAPSICUM ANNUUM) в режиме RGB / А.В. Герасимов, Я.С. Бурыгина // Химия растительного сырья. - 2002. - № 2. - С. 75-78.
91. Горожанкина Е.О. Знаковая информация цвета в текстильном производстве / Е.О. Горожанкина, Т.В. Козлова // Интеграция науки и производства. - 2013. - № 5. - С. 44-46.
92. Губинская Т.В. Колорометрическая идентификация апельсиновой соковой продукции // Зеленый коридор. - 2017. - № 2. - С. 31-33.
93. Гурвич А.А. Проблема митогенетического излучения как аспект молекулярной биологии / А.Г. Гурвич // Ленинград. - Медицина. - 1968.
94. Гурова Т.А. Использование виртуального прибора "Листомер" для определения площади поражения листьев / Т.А. Гурова, О.С. Луговская, Е.А. // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. - 2016. - № 6 (263). - С. 82-89.
95. Дао Ти Ван. Хемилюминесценция культивируемых грибов Вьетнама / Дао Ти Ван, Н.С. Мануковский, И.И. Гительзон // Доклады Академии наук. - 2013. - т. 448. - № 3. - с. 349.
96. Двухканальная модель ахроматического зрения лягушки / Ч.А. Измайлов [и др.] // Сенсорные системы. - 2006. - т. 20. - № 1. - с. 21-31.
97. Денисенко Т.Н. Оценка качества кофе / Т.Н. Денисенко, С.В. Гаценко // Научный взгляд в будущее. - 2016. - Т. 2. - № 1. - С. 256-260.
98. Джапова В.В. Влияние фона стенок контейнеров на пигментацию личинок XENOPUS LAEVIS / В.В. Джапова, С.М. Стародубов, В.А. Голиченков // Вестник Московского университета. Серия 16: Биология. - 2012. - № 2.- С. 19-22.
99. Диагностика почвенных горизонтов по цвету (на примере почв Подмосковья) / Кириллова Н.П. [и др.] // Почвоведение.- 2018. - № 11. - С. 1363-1371.


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.

Пожалуйста, укажите откуда вы узнали о сайте!



© 2008-2021 Cервис помощи студентам в выполнении работ
.