Заказать работу


Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Амилорид-чувствительные эпителиальные натриевые каналы (ENaC): строение, функции и патология

Работа №74270
Тип работыДипломные работы, ВКР
Предметбиология
Объем работы57
Год сдачи2017
Стоимость4275 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено 3
Не подходит работа?

Узнай цену на написание

Введение.
1. Структурно-функциональная организация ENaC
1.1. Суперсемейство DEG/ENaC
1.2. Структурная организация ENaC и топология канала в мембране
1.3. Стехиометрия ENaC и модель поры.
1.4. Биофизические характеристики ENaC
2. Функция ENaC в различных тканях.
2.1. Функция ENaC в почках
2.2. Функция ENaC в кишечнике
2.2.1. ENaC в тонком кишечнике
2.2.2. ENaC в толстом кишечнике
2.3. Функция ENaC в легких
2.3.1. ENaC в легких в эмбриогенезе
2.3.2. ENaC в легких в постэмбриональном периоде
2.4. Функция ENaC в сенсорных клетках
2.5. Функция ENaC в нетипичных тканях
3. Патологии ENaC
3.1. Синдром Лиддла.
3.2. Псевдогипоальдостеронизм I типа.
3.3. Эссенциальная гипертензия.
Заключение.
Выводы
Список литературы.


Эпителиальные натриевые каналы (ENaC) являются важными участниками, наравне с Na'/K'-АТФ-азой и К+-селективными каналами, активного трансэпителиального транспорта катионов Na+. Они экспрессируются в тканях почек, легких, кишечника и многих других.
В легких ENaC участвуют в поддержании уровня Na+необходимого для предотвращения чрезмерного накопления жидкости и функционирования эндогенных антимикробных факторов, таких как дефенсины. В дистальных канальцах почек ENaC отвечают за реабсорбцию Na+, тем самым контролируя баланс Na+и воды в организме. Таким образом ENaC можно считать структурной основой такого физиологического процесса, как регуляция объема жидкости в организме. Нарушения в структурно-функциональной организации данных каналов является причиной многих тяжелых наследственных заболеваний, таких как синдром Лиддла, эссенциальная гипертензия, псевдогипоальдостеронизм I типа. Все эти заболевания в той или иной степени связаны с нарушениями реабсорбции Na+в почке и сопровождаются такими симптомами как полиурия, дегидратация, солевое истощение организма, артериальная гипертензия и некоторые другие.
Структурно-функциональная организация ENaC является актуальной темой для изучения в свете возможности борьбы с заболеваниями, вызванными ее нарушением. Знание особенностей структурно - функциональной организации ENaC может являться перспективным направлением для разработки высокоизбирательных агентов для нормализации функции мутантных каналов. Открытия новых мутаций и принципов их наследования могут помочь в прогнозировании и выявлении болезней, связанных с ними.
Целью настоящей работы является анализ данных литературы о структурно-функциональной организации амилорид-чувствительных Na'-каналов и их функции в различных тканях и органах, а также заболеваниях, связанных с нарушениями в работе каналов данного типа.
Для достижения данной цели были поставлены и решены следующие задачи:
1. Изучение и анализ данных литературы о структурной организации и биофизических характеристиках ENaC;
2. Анализ данных литературы о физиологических функциях ENaC в клетках
6 различных типов.
3. Изучение и анализ литературных данных о заболеваниях человека, связанных с нарушениями в структурно-функциональной организации ENaC.


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании студенческих
и аспирантских работ!


Важнейшая роль ENaC в транспорте Na+в осморегулирующих эпителиях в последнее время стала хорошо изучена. Известно, что мутации ENaC приводят к тяжелым наследственным заболеваниям, связанным с нарушением артериального давления и Na+-K+ гомеостаза.
Проведенное теоретическое исследование показало, что на сегодняшний момент накоплен значительный объем экспериментальных данных, позволяющий составить достаточно подробную картину структурно-функциональной организации ENaC. Детальный анализ современных представлений относительно биофизических характеристик, молекулярного строения, особенностей функционирования ENaC и их роли в поддержании функциональной активности реабсорбирующих эпителиев в норме и при патологии позволил сделать следующие выводы.



1. Вачугова Д.В., Морачевская Е.А. Механочувствительность катионных каналов семейства DEG/ENaC// Цитология.-2009.-Т.51.-С.806-814.
2. Мельницкая А.В., Крутецкая З.И., Лебедев О.Е. Структурно-функциональная организация и механизмы регуляции эпителиальных Na'-каналов// Цитология.-2006.-Т. 48.-С.817-840.
3. Смит К. Биология сенсорных систем// Москва: БИНОМ. Лаборатория знаний, 2005. 583 с.
4. Adams C.M., Snyder P.M., Welsh M.J. Interactions between subunits of the human epithelial sodium channel// J. of Biol. Chem.-1997.-V.272.-P.27295-27300.
5. Anantharam A., Palmer L.G. Determination of epithelial Na+ channel subunit stoichiometry from single-channel conductances// J. Gen. Physiol.-2007.-V.130.-P.55-70.
6. Anantharam A., Tian Y., Palmer L.G. Open probability of the epithelial sodium channel is regulated by intracellular sodium// J. Physiol.-2006.-V.574.-P.333-347.
7. Arias R.L., SungM.L., Vasylyev D., ZhangM.Y., Albinson K., Kubek K., Kagan N., Beyer C., Lin Q., Dwyer J.M., Zaleska M.M., Bowlby M.R., Dunlop J., Monaghan M. Amiloride is neuroprotective in an MPTP model of Parkinson’s disease// Neurobiol. Dis.-2008.-V.31.-P.334-341.
8. Astrand A.B., Hemmerling M., Root J., Wingren C., Pesic J., Johansson E., Garland A.L., Ghosh A., Tarran R. Linking increased airway hydration, ciliary beating, and mucociliary clearance through ENaC inhibition// J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol.-2015.- V.308.-P.22-32.
9. Bachhuber T., Konig J., Voelcker T., Murle B., Schreiber R., Kunzelmann K. Cl-interference with the epithelial Na+ channel ENaC// J. Biol. Chem.-2005.-V.280.-P. 31587-31594.
10. Baer J.E., Jones C.B., Spitzer S.A., Russo H.F. The potassium-sparing and natriuretic activity of N-amidino-3,5-diamino-6-chloropyrazinecarboxamide hydrochloride dihydrate (amiloride hydrochloride)// J. Pharmacol. Exp. Ther.-1967.-V.157.-P.472-485.
11. Barker P.M., Nguyen M.S., Gatzy J.T., Grubb B., Norman H., Hummler E. et al. Role of gammaENaC subunit in lung liquid clearance and electrolyte balance in newborn mice. Insights into perinatal adaptation and pseudohypoaldosteronism// J. Clin. Invest.-1998.-V. 102-P.1634-1640.
12. Belot A., Ranchin B., Fichtner C., Pujo L., Rossier B.C., Liutkus A., Morlat C., Nicolino M., Zennaro M.C., Cochat P. Pseudohypoaldosteronisms, report on a 10-patient series// Nephrol. Dial. Transpl.-2008.-V.23.-P.1636-1641.
13. Benos D.J., Stanton B.A. Functional domains within the degenerin/epithelial sodium channel (Deg/ENaC) superfamily of ion channels// J. Physiol.-1999.-V.520.-P.631-644.
14. Benos D.J., Simon S.A., Mandel L.J., Cala P.M. Effect of amiloride and some of its analogues of cation transport in isolated frog skin and thin lipid membranes// J. Gen. Physiol.-1976.-V.68.-P.43-63.
15. Bentley P.J. Amiloride: a potent inhibitor of sodium transport across the toad bladder// J. Physiol.-1968.-V.195.-P.317-330.
16. Berthiaume Y., Matthay M.A. Alveolar edema fluid clearance and acute lung injury// Respir Physiol. Neurobiol.-2007.-V.159.-P.350-359.
17. Bize V., Horisberger J.D. Sodium self-inhibition of human epithelial sodium channel: selectivity and affinity of the extracellular sodium sensing site// J. Physiol. Renal. Physiol.-2007.-V.293.-P1137-1146.
18. Bogert P.T., LaRusso N.F. Cholangiocyte biology// Curr. Opin. Gastroenterol.-2007.- V.23.-P.299-305.
19. Bonny O., Knoers N., Monnens L., Rossier B.C. A novel mutation of the epithelial Na+ channel causes type 1 pseudohypoaldosteronism// Pediatr. Nephrol.-2002.-V.17.-P.804- 808.
20. Botero-Velez M., Curtis J.J., Warnock D.G. Liddle's syndrome revisited - a disorder of sodium reabsorption in the distal tubule// New Eng. J. Med.-1994.-V.330.-P.178-181.
21. Boucher R.C., Cotton C.U., Gatzy J.T., Knowles M.R., Yankaskas J.R. Evidence for reduced Cl- and increased Na+ permeability in cystic fibrosis human primary cell cultures//
J. Physiol.-1988.-V.405.-P.77-103.
22. Butterworth M.B., Edinger R.S., Frizzell R.A., Johnson J.P. Regulation of the epithelial sodium channel by membrane trafficking// J. Physiol. Renal Physiol.-2009.-V.296.- P.10 -24.
23. Butterworth M.B., Edinger R.S., Johnson J.P., Frizzell R.A. Acute ENaC stimulation by cAMP in a kidney cell line is mediated by exocytic insertion from a recycling channel pool// J. Gen. Physiol.-2005.-V.125.-P.81-101.
24. Canessa C.M., Merillat A.-M., Rossier B.C. Membrane topology of the epithelial sodium channel in intact cells// Am. J. of Physiol.-1994.-V267.-P.1682-1690.
25. Canessa C.M. Structural biology: unexpected opening// Nature.-2007.-V.449.-P.293- 294.
26. Carattino M.D., Sheng S., Kleyman T.R. Epithelial Na+ channels are activated by laminar shear stress// J. Biol. Chem.-2003.-V.279.-P.4120—4126.
27. ChalfantM., Karlson K., McCoy D., Denton J., Stanton B.A. The N-terminus of the a subunit of the epithelial sodium channel (ENaC) regulates channel function// J. of Am. Soc. of Nephrol.-1998.-V.9.-P.32.
28. Chalfant M.L., Denton J.S., Berdiev B.K., Ismailov I.I., Benos D.J., Stanton B.A. Intracellular H+ regulates the alpha-subunit of ENaC, the epithelial Na+ channel// Am. J. Physiol.-1999.-V.276.-P.477-486.
29. Chalfant M.L., Denton J.S., Langloh A.L., Karlson K.H., Loffing J., Benos D.J., Stanton B.A. The NH2 terminus of the epithelial sodium channel contains an endocytic motif// J. Biol. Chem.-1999.-V.274.-P.32889-32896.
30. Chandrashekar J., Kuhn C., Oka Y., Yarmolinsky D.A., Hummler E., Ryba N.J. Zuker C.S. The cells and peripheral representation of sodium taste in mice// Nature.-2010.-V. 464.-P.297-301.
31. Chang S.S., Grunder S., Hanukoglu A., Rosler A., Mathew P.M., Hanukoglu I., Schild L., Lu Y., Shimkets R.A., Nelson-Williams C., Rossier B.C., Lifton R.P. Mutations in subunits of the epithelial sodium channel cause salt wasting with hyperkalaemic acidosis, pseudohypoaldosteronism type 1// Nat Genet.-1996.-V.12.-P.248-253.
32. Charles R.P., GuitardM., Leyvraz C., Breiden B., HaftekM., HaftekTerreau Z. et al. Postnatal requirement of the epithelial sodium channel for maintenance of epidermal barrier function// J. Biol. Chem.- 2008.-V.283.-P.2622-2630.
33. CheekD.B., Perry J.W. A salt wasting syndrome in infancy// Arch. Dis. Child.-1958.- V.33.-P.252-256.
34. Chen J., Myerburg M.M., Passero C.J., Winarski K.L., Sheng S. External Cu2+ inhibits human epithelial Na+ channels by binding at a subunit interface of extracellular domains// J. Biol. Chem.
35. Collawn J.F., Lazrak A., Bebok Z., Matalon S. The CFTR and ENaC debate: how important is ENaC in CF lung disease?// Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol.-2012.-V. 302.-P.1141-1146.
36. Collier D.M., Snyder P.M. Extracellular chloride regulates the epithelial sodium channel// J. Biol. Chem.-2009.-V.284.-P.29320-29325.
37. Collier D.M., Snyder P.M.Identification of epithelial Na+ channel (ENaC) intersubunit Cl- inhibitory residues suggests a trimeric ayP channel architecture// J. Biol. Chem. 286: 6027-6032, 2010
38. Collier D.M., Snyder P.M. Identification of epithelial Na+ channel (ENaC) intersubunit Cl- inhibitory residues suggests a trimeric ayP channel architecture// J. Biol. Chem. 286: 6027-6032, 2010.
39. Couloigner V., Fay M., Djelidi S., Farman N., Escoubet B., Runembert I., Sterkers O., Friedlander G., Ferrary E. Location and function of the epithelial Na channel in the cochlea// Am. J. Physiol. Renal Physiol.-2001.-V.280.-P.214-222.
40. Debonneville C., Flores S.Y., Kamynina E., Plant P.J., Tauxe C., Thomas M.A., Munster C., Chraibi A., Pratt J.H., Horisberger J.D., Pearce D., Loffing J., Staub O. Phosphorylation of Nedd4 -2 by Sgk1 regulates epithelial Na channel cell surface expression// EMBO J.-2001.-V.20.-P.7052-7059.
41. Di Paolo G., De Camilli P. Phosphoinositides in cell regulation and membrane dynamics//Nature.-2006.-V.443.-P.651-657.
42. Diakov A., Korbmacher C. A novel pathway of epithelial sodium channel activation involves a serum- and glucocorticoid-inducible kinase consensus motif in the C terminus of the channel's alpha-subunit// J. Biol. Chem.-2004.-V.279.-P.38134-38142.
43. Dijkink L., Hartog A., van Os C.H., Bindels R.J. The epithelial sodium channel (ENaC) is intracellularly located as a tetramer//Pflugers Arch.-2002.-V.444.-P.549-555.
44. Donald B. Cheek and John W. Perry. A Salt Wasting Syndrome in Infancy// Arch Dis. Child.-1958.-V.33(169).-P.252-256.
45. Doyle D.A., Cabral J.M., Pfuetzner R.A., Kuo A.L., Gulbis J.M., Cohen S.L., Chait B.T., MacKinnon R. The structure of the potassium channelmolecular basis of K+ conduction and selectivity// Science.-1998.-V.280.-P.69-77.
46. Drummond H.A., Welsch M.J., Abboud F.M. ENaC subunits are molecular components of the arterial baroreceptor complex// Sci.-2001.-V.234.-P.42—47.
47. DrummondH.A., AbboudF.M., Welsh M.J. Localization of beta and gamma subunits of ENaC in sensory nerve endings in the rat foot pad// Brain Res.-2000.-V.884.-P.1-12.
48. Drummond H.A., Price M.P., Welsh M.J., Abboud F.M. A molecular component of the arterial baroreceptor mechanotransducer// Neuron.-1998.-V.21.-P.1435-1441.
49. Duc C., Farman N., Canessa C.M., Bonvalet J.P., Rossier B.C. Cell-specific expression of epithelial sodium channel a, P, and у subunits in aldosterone-responsive epithelia from the rat: localization by in situ hybridization and immunocytochemistry// J. Cell Biol.-1994.-V.127.-P.1907-1921.
50. Edelheit O., Hanukoglu I., Gizewska M., Kandemir N., Tenenbaum-Rakover Y., Yurdakok M., Zajaczek S., Hanukoglu A. Novel mutations in epithelial sodium channel (ENaC) subunit genes and phenotypic expression of multisystem pseudohypoaldosteronism//
Clin. Endocrinol. (Oxf).-2005.-V.62.-P.547-553.
51. Edelheit O., Hanukoglu I., Shriki Y., Tfilin M., Dascal N., Gillis D., Hanukoglu A. Truncated beta epithelial sodium channel (ENaC) subunits responsible for multi-system pseudohypoaldosteronism support partial activity of ENaC// J. Steroid. Biochem. Mol. Biol.-2010.-V.119.-P.84-88.
52. Eskandari S., Snyder P.M., Kreman M., Zampighi G.A., Welsh M.J., Wright E.M. Number of subunits comprising the epithelial sodium channel// J. Biol. Chem.-1999.-V.274.- P.27281-27286.
53. Firsov D., Gautschi I., Merillat A.M., Rossier B.C., Schild L. The heterotetrameric architecture of the epithelial sodium channel (ENaC)// EMBO J.-1998.-V.17.-P.344-352.
54. Firsov D., Robert-Nicoud M., Gruender S., Schild L., Rossier B.C. Mutational analysis of cysteine-rice domains of the epithelium sodium channel (ENaC)// J. of Biol. Chem.-1999.-V.274.-P.2743-2749.
55. Friese M.A., Craner M.J., Etzensperger R., Vergo S., Wemmie J.A., Welsh M.J., Vincent A., Fugger L. Acid-sensing ion channel-1 contributes to axonal degeneration in autoimmune inflammation of the central nervous system// Nat. Med.-2007.-V.13.-P.1483- 1489.
56. Frindt G., Silver R.B., Windhager E.E., Palmer L.G. Feedback regulation of Na channels in rat CCT. II. Effects of inhibition of Na entry// Am. J. Physiol.- 1993.-V.264.-P. 565-574.
57. Frindt G., Silver R.B., Windhager E.E., and Palmer L.G. Feedback regulation of Na channels in rat CCT. III. Response to cAMP// Am. J. Physiol.-1995.-V.268.-P.480-489.
58. Furukawa Y., Miyawaki Y., Abe G. Molecular cloning and functional characterization of the Aplysia FMRFamide-gated Na+ channel// Eur. j. of physiol.-2006.-V.451.-P.646-656.
59. Garty H., Palmer L.G. Epithelial sodium channels—function, structure, and regulation// Physiol. Rev.-1997.-V.77.-P.359-396.
60. Geller D.S., Rodriguez-Soriano J,. Vallo Boado A., Schifter S., Bayer M., Chang S.S., Lifton R.P. Mutations in the mineralocorticoid receptor gene cause autosomal dominant pseudohypoaldosteronism type I// Nat. Genet.-1998.-V.19.-P.279-281.
61. Golestaneh N., Nicolas C., Picaud S., Ferrari P., Mirshahi M. The epithelial sodium channel (ENaC) in rodent retina, ontogeny and molecular identity// Curr. Eye. Res.-2000.-V.21.-P. 703-709.
62. Grunder S., Firsov D., Chang S.S., Jaeger N.F., Gautschi I., Schild L., Lifton R.P., Rossier B.C. A mutation causing pseudohypoaldosteronism type 1 identifies a conserved glycine that is involved in the gating of the epithelial sodium channel// EMBO J.-1997.-V
16. -P. 899-907.
63. Tamura H.,SchildL.,Enomoto N., Matsui N., Marumo F, Rossier B.C. Liddle disease caused by a missense mutation of beta subunit of the epithelial sodium channel gene// J. Clin. Invest.-1996.-V.97(7).-P.1780-1784.
64. Hansson J.H., Schild L., Lu Y., Wilson T.A., Gautschi I., Shimkets R., Nelson-Williams C., Rossier B.C., Lifton R.P. A de novo missense mutation of the beta subunit of the epithelial sodium channel causes hypertension and Liddle syndrome, identifying a proline-rich segment critical for regulation of channel activity// Proc. Natl. Acad. Sci. USA.-1995.-V 92.-P. 11495-11499.
65. Hanukoglu A., Bistritzer T., Rakover Y., Mandelberg A. Pseudohypoaldosteronism with increased sweat and saliva electrolyte values and frequent lower respiratory tract
infections mimicking cystic fibrosis// J. Pediatr.-1994.-V.125.-P.752-755.
66. Hanukoglu A., Edelheit O., Shriki Y., Gizewska M., Dascal N., Hanukoglu I. Renin- aldosterone response, urinary Na/K ratio and growth in pseudohypoaldosteronism patients with mutations in epithelial sodium channel (ENaC) subunit genes.// J. Ster. Biochem. Mol. Biol.-2008.-V.111.-P.268-274.
67. Hanukoglu I., Hanukoglu A., Epithelial sodium channel (ENaC) family: Phylogeny, structure-function, tissue distribution, and associated inherited diseases// Gene.-2016.-V. 579.-P.95-132.
68. Hiltunen T.P., Hannila-Handelberg T., Petajaniemi N., Kantola I., Tikkanen I., Virtamo J., Gautschi I., SchildL., Kontula K. Liddle’s syndrome associated with a point mutation in the extracellular domain of the epithelial sodium channel gamma subunit// J. Hypertens.-2002.- V.20.-P.2383-2390.
69. Hogg R.J., Marks J.F., Marver D., Frolich J.C. Long term observations in a patient with pseudohypoaldosteronism// Pediatr. Nephrol.-1991.-V.5.-P.205-210.
70. Hong H., Park S., Jimenez R.H.F., Rinehart D,. Tamm L.K. Role of aromatic side chains in the folding and thermodynamic stability of integral membrane proteins// J. Am. Chem. Soc.-2007.-V 129.-P.8320-8327.
71. Horisberger J.D., Chraibi A. Epithelial sodium channel: a ligand-gated channel?// Nephron, Physiol.-2004.-V.96.-P.37-41.
72. Abriel H., Loffing J., Rebhun J.F., Pratt J.H., Schild L., Horisberger J.-D., Rotin D., Staub O. Defective regulation of the epithelial Na+ channel by Nedd4 in Liddle's syndrome// J. Clin. Invest.-1999.-V.103.-P.667-673.
73. Hummler E., Barker P., Gatzy J., Beermann F, Verdumo C., Schmidt A. et al. Early death due to defective neonatal lung liquid clearance in alpha-ENaC-deficient mice// Nat Genet.-1996-V 12.-P.325-328.
74. Jeggle P., Callies C., Tarjus A., Fassot C., Fels J., Oberleithner H. et al. Epithelial sodium channel stiffens the vascular endothelium in vitro and in Liddle mice// Hypertension.-2013.- V.61.-P.1053-1059.
75. Jeziorski M.C., Green K.A., Sommerville J., Cottrell G.A. Cloningand expression of a FMRFamide-gated Na(+) channel from Helisoma trivolvis and comparison with the native neuronal channel// J. Physiol.-2000.-V.526.-P.13-25
76. Ji H.L., Chalfant M.L., Jovov B., Lockhart J.P., Parker S.B., Fuller C.M., Stanton B.A., Benos D.J. The cytosolic termini of the beta- and gamma-ENaC subunits are involved in the functional interactions between cystic fibrosis transmembrane conductance regulator and epithelial sodium channel// J. Biol. Chem.-2000.-V.275.-P.27947-27956.
77. Kashlan O.B., Sheng S., Kleyman TR. On the interaction between amiloride and its putative a-subunit epithelial Na+ channel binding site// J Biol Chem.-2005.-V.280.-P.26206-26215.
78. Kashlan O.B., Maarouf A.B., Kussius C., Denshaw R.M., Blumenthal K.M., Kleyman T.R. Distinct structural elements in the first membrane-spanning segment of the epithelial sodium channel// J. Biol. Chem.-2006.-V.281.-P.30455-30462.
79. Kellenberger S., Auberson M., Gautschi I., Schneeberger E., Schild L. Permeability properties of ENaC selectivity filter mutants// J. Gen. Physiol.-2001.-V.118.-P.679-692.
80. Kellenberger S., Gautschi I., Rossier B.C., Schild L. Mutations causing Liddle syndrome reduce sodium-dependent downregulation of the epithelial sodium channel in the Xenopus oocyte expression system// J. Clin. Invest.-1998.-V.101.-P.2741-2750.
81. Kellenberger S., Gautschi I., Schild L. A single point mutation in the pore region of the epithelial Na+ channel changes ion selectivity by modifying molecular sieving// Proc Natl Acad Sci U S A.-1999.-V.96.-P.4170-4175.
82. Kellenberger S., Hoffmann-Pochon N., Gautschi I., Schneeberger E., Schild L. On the molecular basis of ion permeation in the epithelial Na+ channel// J. Gen. Physiol.-1999.-V. 114.-P 13-30.
83. Kellenberger S., Gautschi I., Rossier B.C., Schild L. Mutations causing Liddle syndrome reduce sodium-dependent downregulation of the epithelial sodium channel in the Xenopus oocyte expression system// J. Clin. Invest.-1998.-V.101(12).-P.2741-2750.
84. Kellenberger S, Schild L. Structure, function, and pharmacology of acid-sensing ion channels and the epithelial Na+ channel// Pharmacol. Rev.-2015.-V.67.-P.1-35
85. Kellenberger S., Boscardin E., Alijevic O., Hummler E., Frateschi S. The function and regulation of acid-sensing ion channels (ASICs) and the epithelial Na+ channel (ENaC): IUPHAR Review 19// Br. J. Pharmacol.-2016.
86. Kellenberger S., Schild L. Epithelial sodium channel/degenerin family of ion channels: a variety of functions for a shared structure// Physiol. Rev.-2002.-V.82.-P.735-767.
87. Kerem E., Bistritzer T., Hanukoglu A., Hofmann T., Zhou Z., Bennett W, MacLaughlin E., Barker P., Nash M., Quittell L., Boucher R., Knowles M.R. Pulmonary epithelial sodium- channel dysfunction and excess airway liquid in pseudohypoaldosteronism// N. Engl. J. Med.-1999.-V.341.-P 156-162.
88.O'Shaughnessy K.M. The genetics of essential hypertension// Br. J. Clin. Pharmacol.-2001.- V.51(1).-P.5-11.
89. Kieber-Emmons T., Lin C., Prammer K.V., Villalobos A., Kosari F, Kleyman TR Defining topological similarities among ion transport proteins with anti-amiloride antibodies// Kidn. Internat.-1995.-V.48.-P.956-964.
90. Kosari F, Sheng S., Li J., Mak D.O., Foskett J.K., Kleyman T.R. Subunit stoichiometry of the epithelial sodium channel// J. Biol. Chem.-1998.-V.273.-P.13469-13474.
91. Kretz O., Barbry P., Bock R., Lindemann B. Differential expression of RNA and protein of the three pore-forming subunits of the amiloride-sensitive epithelial sodium channel in taste buds of the rat// J. Histochem. Cytochem.-1999.-V.47.-P.51-64.
92. Krueger B., Schlotzer-Schrehardt U., Haerteis S., Zenkel M., Chankiewitz V.E., Amann K.U. et al. Four subunits (aPyA) of the epithelial sodium channel (ENaC) are expressed in the human eye in various locations// Invest. Ophthalmol. Vis. Sci.-2012.-V.53.-P.596-604.
93. Lewis S.A., Eaton D.C., Diamond J.M. The mechanism of Na+ transport by rabbit urinary bladder// J. Membr. Biol.-1976.-V.28.-P.41-70.
94. Li X.J., Xu R.H., Guggino W.B., Snyder S.H. Alternatively spliced forms of the alpha subunit of the epithelial sodium channel: distinct sites for amiloride binding and channel pore// Mol. Pharm.-1995.-V.47.-P.1133-1140.
95. Liddle G.W., Bledsoe T., Coppage W.S. Jr. A familial renal disorder simulating primary aldosteronism but with negligible aldosterone secretion// Trans. Assoc. Am. Phys.-1963.-V. 76.-P.199-213.
96. Lingueglia E., Champigny G., Lazdunski M., Barbry P. Cloning of the amiloride-sensitive FMRFamide peptide-gated sodium channel// Nature.-1995.-V.378.-P.730-733.
97. Livraghi A., Randell S.H. Cystic fibrosis and other respiratory diseases of impaired mucus clearance// Toxicol. Pathol.-2007.-V.35.-P.116-129.
98. Loffing J., Loffing-Cueni D., Macher A., Hebert S.C., Olson B., Knepper M.A., Rossier B.C., and Kaissling B. Localization of epithelial sodium channel and aquaporin-2 in rabbit kidney
cortex// Am. J. Physiol. Renal. Physiol.-2000.-V.278.-P.530-P539.
99. Loffing J., Zecevic M., Feraille E., Kaissling B., Asher C., Rossier B.C., Firestone G.L., Pearce D., Verrey F. (2001) Aldosterone induces rapid apical translocation of ENaC in early portion of renal collecting system: possible role of SGK// Am. J. Physiol. Renal. Physiol.-2001.-V.280.-P.675-682.
100. Mall M., Grubb B.R., Harkema J.R., O’Neal W.K., Boucher R.C. Increased airway epithelial Na+ absorption produces cystic fibrosislikelung disease in mice// Nat. Med.-2004.-V.10.-P. 487-493.


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.

Пожалуйста, укажите откуда вы узнали о сайте!



© 2008-2021 Cервис помощи студентам в выполнении работ
.