Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Технологии использования мембранных носителей для безопасной транспортировки и хранения биоматериалов

Работа №41998

Тип работы

Магистерская диссертация

Предмет

экология и природопользование

Объем работы79
Год сдачи2018
Стоимость4900 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
369
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


ВВЕДЕНИЕ 5
1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 10
Биологическая опасность и источники ее возникновения 10
Профилактика распространения биологической опасности 15
Способы хранения биологического материала 18
Мембранные материалы для хранения биологических образцов 28
Инфекционные заболевания животных, затронутые в исследовании 34
2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ 36
Исследование на сохранность антител к токсоплазмам Toxoplasma gondii в крови и сыворотке крови домашних животных (Felis silvestris catus) методом латекс-агглютинации 38
Сравнительное исследование на сохранение антител в цельной крови и сыворотке крови коз при вирусном артрите-энцефалите и токсоплазмозе методами иммуноферментного анализа и реакции латекс-агглютинации 39
Исследование на сохранность биохимических характеристик молока и сыворотки молока коз спектрофотометрическим и электрофоретическим методами 42
Статистический анализ и расчеты 44
3 РЕЗУЛЬТАТЫ 45
Использование технологии мембранных носителей для консервации сыворотки крови кошек (Felis silvestris catus) при серологических исследованиях 45
Применение мембранных носителей для консервации крови и сыворотки крови коз для иммунологических исследований 52
Консервация молока в виде сухих образцов для биохимических исследований 58
Влияние консервации на показатели концентрации молочного белка 58
Влияние консервации на показатели белкового спектра молока 61
ЗАКЛЮЧЕНИЕ 68
ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ 69
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ 70
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ


Проблема экологической безопасности – одна из глобальных проблем человечества, на решение которой выделяются значительные ресурсы. Начиная со второй половины XX века и по сегодняшний день, обеспечение экологической безопасности является одной из основных задач мирового сообщества. Результат достижения этой цели – это такой уровень воздействия на окружающую среду, соответствующий необходимому качеству жизни для сохранения здоровья и благополучия населения, а также поддержания устойчивого развития. В Российской Федерации предусмотрена уголовная ответственность за преступления, связанные с нарушением правил экологической безопасности (статьи 247-249 УК РФ).
Тем не менее, научные исследования в области экологии, биологии, биохимии, бактериологии и других биологических наук невозможны без биологического материала, доступного в течение исследования и отвечающего всем необходимым характеристикам, следовательно, существует биологическая опасность при обращении с микробиологическими либо другими биологическими агентами или токсинами.
Вопрос биологической и экологической безопасности при отборе проб биологического материала, и во время его транспортировки и хранения затрагивает многие сферы научной и хозяйственной деятельности, такие как экология, ветеринария, медицина. При этом не существует универсальной технологии, которая бы позволила безопасно, быстро и удобно отбирать и транспортировать биологические жидкости, которые чаще всего являются объектом биологических исследований. Хранение биологического материала также должно быть обеспечено должным образом, гарантируя экологическую и биологическую безопасность, а в некоторых случаях существует необходимость в хранении образцов в течение нескольких лет, сохраняя их пригодными для исследований.
Современные методы диагностических исследований, требуют наличия определенных реагентов и дорогостоящего оборудования, недоступных большинству диагностических лабораторий. В таких ситуациях возникает необходимость замораживания, хранения и транспортировки различных биологических субстанций в научные лаборатории для проведения необходимых исследований и архивирования образцов, тем самым увеличивая риск негативного воздействия на окружающую среду.
Для решения указанных задач, в последнее время начинает применяться новый метод отбора, хранения и транспортировки проб биоматериала в виде сухих пятен на бумажных носителях. Технология сухих пятен крови (СПК, от англ. Dried Blood Spots или DBS), заключается в нанесении пятна крови на лист из целлюлозы в виде специальной карточки, ее высушивании и транспортировки в специализированную лабораторию, где производится восстановление материала с носителя и проведение соответствующего исследования. Основным назначением технологии СПК является максимально удобное и безопасное осуществление пробоподготовки крови (или других биологических жидкостей) для получения сухих образцов в виде пятен на пористой бумаге и пересылки их в диагностическую лабораторию для проведения анализа одним из стандартных методов.
Мембранные материалы, применяемые в технологии сухих пятен крови, используются для подготовки проб биологических жидкостей, посредством получения сухих образцов и их дальнейшей транспортировки и хранения до появления необходимости и возможности проведения анализа данных биологических жидкостей. Главным качеством мембранных материалов является их способность эффективно поглощать жидкости разной биологической природы и надежно сохранять их в высохшем состоянии, что позволяет существенно снизить экологический риск.
В последнее время технология сухих пятен крови, как наиболее безопасная и удобная, все шире применяется для диагностики и исследований, в частности при дистанционном отборе проб биологических жидкостей животных (крови, плазмы, мочи, молока и др.) в полевых условиях в местах массового содержания, обеспечивая биологическую безопасность и эпизоотическое благополучие.
Целью работы является определить возможности применения мембранных носителей для безопасной транспортировки и хранения биоматериалов с сохранением их биохимических свойств и диагностически значимых характеристик.
Для достижения цели были поставлены следующие задачи:
1. Провести консервацию биологического материала с применением технологии мембранных носителей;
2. Изыскать оптимальные режимы проведения исследований и восстановления образцов;
3. Определить уровень специфических антител в нативных образцах и их биохимические характеристики;
4. Определить уровень специфических антител в восстановленных с мембранных носителей образцах и их биохимические характеристики;
5. Провести сравнительный анализ результатов исследований нативных и восстановленных образцов.
Объекты исследования: мембранные носители.
Предмет исследования: сохранность антител, белков в биологических жидкостях.
Методы исследования: реакция латекс-агглютинации, иммуноферментный анализ, электрофорез, спектрофотометрический анализ.
Актуальность работы: представлен современный метод, позволяющий биологически безопасно, быстро и удобно отбирать пробы биологического материала в полевых условиях и в местах массового содержания животных, и в дальнейшем надежно хранить образцы длительное время без какого-либо дополнительного оборудования, восстанавливая их при необходимости для проведения исследований, тем самым существенно снижая риск возникновения экологической и биологической опасности.
Научная новизна: получены доказательства пригодности метода консервации биологических материалов на мембранных носителях для биохимических и серологических исследований. Отработана технология консервации и восстановления молока и сыворотки молока.
Степень достоверности результатов. Результаты исследования получены с помощью современных методов исследования, в результате достаточного количества наблюдений. Научные выводы подкреплены фактическими данными, представленными в виде таблиц. Для статистической обработки результатов использовался сайт http://vassarstats.net и Microsoft Office Excel. Для установления различий между группами применяли t- критерий для зависимых выборок, при этом использовали калькулятор «t-Test for Independent Samples» (VassarStats), доступный он-лайн (http://vassarstats.net/tu.html) .
Апробация результатов и публикации по теме ВКР
По теме ВКР опубликованы 3 статьи.
1. Лысова Е.С. Технологии использования мембранных носителей для безопасной транспортировки и хранения биоматериалов // Мониторинг, прогноз состояния окружающей среды и технологии природопользования / Сб. науч.-исслед. работ молодых ученых Института экологии и природопользования Казанского (Приволжского) федерального университета / Под ред. М.В. Кожевниковой и С.Ю. Селивановской – Казань: Издательство АН РТ, 2017. – С. 95-98.
2. Саушкин Н.Ю., Самсонова Ж.В., Осипов А.П., Кондаков С.Э., Лысова Е.С., Елизарова И.А., Хаертынов К.С., Шуралев Э.А. Использование стрипованных образцов биологических жидкостей для определения специфических антител у инфицированного мелкого рогатого скота // Вестник Московского университета. Серия 2: Химия. – 2018. – Т. 59. № 3. – С. 235-239.
3. Лысова Е.С., Валеева А.Р., Хаертынов К.С. Мембранные носители для безопасного хранения и транспортировки биоматериала на примере козьего молока // Инновационная наука. – 2018. – № 3. – С. 8-12.


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь студентам в написании работ!


В ходе работы были проведены три независимых исследования, которые преследовали одну цель: определить возможности применения мембранных носителей как технологии для экологически и биологически безопасного способа транспортировки и хранения биоматериалов с сохранением их биохимических свойств и диагностически значимых характеристик.
Методом латекс-агглютинации, использованным для выявления токсоплазмоза в образцах крови и сыворотки крови кошек, установлено, что все 23 образца, которые показывали положительный результат до консервации, сохранили антитела и после консервации в течение 14 месяцев. Мембранные носители биологических образцов производства ООО «Иммуновет», Москва, сохраняют активность специфических антител к Toxoplasma gondii и могут быть рекомендованы к использованию в качестве безопасного средства и способа хранения и транспортировки образцов крови и сыворотки крови.
На примере выявления антител к антигенам возбудителей инфекционных заболеваний малого рогатого скота в образцах сыворотки и крови коз было выявлено, что сухие образцы наравне с жидкими могут быть использованы для проведения серологических исследований с сохранением достоверности получаемых результатов. Методом иммуноферментного анализа определено, что во всех нативных образцах, которые содержали антигены к вирусному артриту-энцефалиту коз, антигены сохранились и после консервации на мембранных носителях. Аналогичные результаты получены при определении антител к токсоплазмозу у коз методом латекс-агглютинации. При этом анализировать можно сухие образцы как сыворотки, так и цельной крови.
Электрофоретическим фракционированием белков показано, что консервация биологических жидкостей, таких как молоко коз и сыворотка молока коз, на мембранных носителях в полном объеме сохраняет концентрацию белка и его белковый спектр. Спектрофотометрическим методом установлено, что концентрация белка в нативных и законсервированных образцах остается близкой к начальной, вне зависимости от срока консервации образцов. Доказано, что пробы биологического материала, хранящиеся на мембранных носителях, сохраняют свои биохимические свойства и характеристики.
Таким образом, мембранные носители способны эффективно поглощать жидкости разной биологической природы и надежно сохранять их в высохшем состоянии. Технология использования мембранных носителей позволяет проводить отбор проб и пробоподготовку биологически безопасным способом, а также отвечает требованиям к хранению и транспортировке биологического материала, сохраняя образцы пригодными для использования в серологических и биохимических исследованиях. Использование сухих стрипованных образцов позволяет существенно сократить потребление электроэнергии за счет отсутствия «холодовой цепи».



1. Безсмертный В.Е. Определение подходов к обеспечению биологической безопасности населения крупного города на примере Москвы / В.Е. Безсмертный, С.М. Иванова, Н.Н. Филатов и др. // Проблемы особо опасных инфекций. - 2006. - №2 (92) - С. 35-38.
2. Березов Т. Т. Биологическая химия: Учебник. / Т. Т. Березов, Б. Ф. Коровкин – 3-еизд., перераб. и доп.– М.: Медицина, 1998.– 704 с.
3. Валиев, А.Г. Пути повышения антиокислительной активности сухого кобыльего молока / А. Г. Валиев // Медицинский вестник Башкортостана.
- 2012. – Т.7, №3. - С. 56-60
4. Вишневский Б.Н. Анатомические коллекции кунсткамеры / Б.Н. Вишневский, Е.В. Жиров. - Л. - 1934. 190 с.
5. Гребиножко Э.И. Простой метод обнаружения белков в полиакриламидном геле с помощью импрегнации их серебром / Э.И. Гребиножко, А.И. Николаенко, Ф.П. Иванов // Укр. биохим. журнал. — 1986. - Т.58,№5. - С. 62-65.
6. Громашевский Л.В. Механизм передачи инфекции / Л.В. Громашевский. - Киев: Госмедиздат УССР. - 1962. - 446 с.;
7. Еропкин М.Ю. Биобанки и их роль в системах биобезопасности, здравоохранения, биотехнологии, экологии и «экономике знаний» / М.Ю. Еропкин. - ФГБУ «НИИ гриппа» Минздрава России. - 2015. — 25 c;
8. Костюк В.В. Бальзамирование биологических тканей методом листовой пластинации / В.В. Костюк [и др.] // Ученые записки учреждения образования «Витебская ордена «Знак Почета» государственная академия ветеринарной медицины. – 2011. – Т.47, №1. - С. 255-259.
9. Кузнецов Л. Е. Бальзамирование и реставрация трупов: Руководство / Л.Е. Кузнецов [и др.] – М.: Медицина. – 1999. - 496 с.
10. Миннахметова Л.Т. Биологические чрезвычайные ситуации: Учебное пособие / Л.Т. Миннахметова [и др.] - Казань: Вестфалика. – 2013. - 123 с.
11. МУ 4.2.2039-05 Техника сбора и транспортирования биоматериалов в микробиологические лаборатории: Методические указания. — М.: Федеральный центр гигиены Роспотребнадзора. - 2006. — 126 с.
12. Неницеску К. Общая химия: Учебное пособие / К. Неницеску — Перевод с румынского. — М.: Мир. - 1968. — 816 с.
13. Зайцева О.О. Новый способ консервации биоматериала / О.О.Зайцева [и др.] // Современные проблемы природопользования, охотоведения и звероводства. - 2007. - №1. – С. 161
14. Основы государственной политики в области обеспечения химической и биологической безопасности Российской Федерации на период до 2025 года и дальнейшую перспективу / (утв. Президентом РФ 01.11.2013 N Пр- 2573). – 2013.
15. Правила взятия патологического материала, крови, кормов и пересылки их для лабораторного исследования / утв. Главным управлением, ветеринарии Министерства сельского хозяйства СССР 24 июня 1971 г. взамен Правил, утвержденных 4 июля 1958 г.). – 1971.
16. Костюк С.А. Новые аспекты клинического применения полимеразной цепной реакции / С.А. Костюк, О.К. Кулага, Д.Ф. Хворик // Медицинские новости. – 2006. - №5. - c. 14-19
17. Сергевнин В.И. Типизация эпидемического процесса при зоонозах и сапронозах по условиям заражения и экологической специфике источника возбудителя инфекции / В.И. Сергеевнин // Медицинский Алфавит. - 2017. - №30. - С. 34-36
18. Старовойтова Т.А. Латексная агглютинация с видеоцифровой регистрацией: повышение диагностической значимости традиционного метода / Т.А. Старовойтова [и др.] // Клиническая лабораторная диагностика. - 2012. - №2. – С. 7-13
19. Уголовный кодекс Российской Федерации. - М.: Проспект, 2016. - 256 c.
20. Уокер Д.Ф. Формальдегид / Д.Ф. Уокер. – М.: ГСНТИ. - 1957. - 608 с.
21. Федоров Д. Е. Подбор рациональных режимов при сублимационной сушке плазмы крови / Д. Е. Федоров, В.А. Ермолаев // Известия ВУЗов. Пищевая технология. - 2012. - №5-6. - С. 81-83
22. Шангина O.P. Влияние радиационной стерилизации на структуру и свойства биоматериалов / О.Р. Шангина, Р.Т. Нигматуллин // Морфология. – 2006. – №3. - С. 44-47
23. Шляхов Э.Н. Практическая эпидемиология / Э.Н. Шляхов. Кишинев: Штиинца. - 1986. - 132 С.
24. Adam S. Long Beach's dual-stage NF beats single-stage SWRO / S. Adam [et al.] // Desalination Water Reuse. - 2003. – Vol. 13. – P. 18–21.
25. Cassol S. Stability of dried blood spot specimens for detection of human immunodeficiency virus DNA by polymerase chain reaction / S. Cassol, T. Salas, M.J. Gill et al. // Microbiol. – 1992. – Vol. 30(12). – P. 3039–42.
26. Cheryan M. Ultrafiltration and Microfiltration Handbook / Lancaster, PA.: Echonomic Publishing Co., Inc. – 1998.
27. De Jesus V.R. Development and evaluation of quality control dried blood spot materials in newborn screening for lysosomal storage disorders / V.R. De Jesus [et al.] // ClinChem. – 2009. – Vol. 55. – P. 158–164.
28. Fernstrom A. Aerobiology and its role in the transmission of infectious diseases / A. Fernstrom, M.J. Goldblatt // Journal of Pathogens. – 2013. – Vol. 1. – P. 1-13.
29. Fickel J. Semen cryopreservation and the conservation of endangered species /
J. Fickel, A. Wagner, A. Ludwig // European Journal of Wildlife Research. - 2007. - Vol.53. P.81—89.
30. Ganz N. Development and validation of a fully automated online human dried blood spot analysis of bosentan and its metabolites using the Sample Card And
Prep DBS System / N. Ganz [et al.] // Journal of Chromatography B. – 2012. - 885-886: 50–60
31. Guidelines for the Shipment of Dried Blood Spot Specimens / Centers for Disease Control and Prevention: Office of Health and Safety: Biosafety Branch. - 1995.
32. Hill D, Dubey JP // Toxoplasma gondii: transmission, diagnosis and prevention / D. Hill, J.P. Dubey // Clinical Microbiology and Infection. - 2002.
– Vol. 10 (8). – P. 634–640.
33. Holland N.T. Biological sample collection and processing for molecular epidemiological studies / N.T. Holland [et al.] // Mutation Research/Reviews in Mutation Research. – 2003. – Vol. 543. – P. 217-234
34. Hunter C. A., Sibley L. D. Modulation of innate immunity by Toxoplasma gondii virulence effectors / C. A. Hunter, L.D. Sibley // Nature reviews. Microbiology. — 2012. — Vol. 10 (11). — P. 766—778.
35. Hill J. Analyte Stability from Dried Blood Collected on HemaSpot™ HF Devices Spot On Sciences / J. Hill [et al.] // Austin, TX and ARQ Genetics. – 2013.
36. Jones J.L. Neglected parasitic infections in the United States: toxoplasmosis /
J.L. Jones, M.E. Parise, A.E. Fiore // American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. – 2014. – Vol. 90 (5). – P. 794–9.
37. Kanková S, Sulc J, Nouzová K et al. Women infected with parasite Toxoplasma have more sons / S. Kanková, J. Sulc, K. Nouzová [et al.] // Die Naturwissenschaften. - 2007. – Vol. 94 (2). P. 122–127.
38. Kyla-Siurola A. L. Bronopol as a preservative in milk samples / A.L. Kyla- Siurola // Int. Dairy Congr. Moscow. Brief communications. – 1982. - Vol. 1. - P. 176.
39. Last J. A Dictionary of Epidemiology / J.Last // New York: Oxford University Press. - 2001. - p. 185

40. Marx P. A. AIDS as a zoonosis? Confusion over the origin of the virus and the origin of the epidemics / P.A. Marx. C. Apetrei, E. Drucker // Journal of medical primatology. – 2004. - Vol.33. – P.5–6.
41. McDade T. What a drop can do: Dried blood spots as a minimally invasive method for integrating biomarkers into population-based research / T. McDade, S. Williams, J. Snodgrass // Demography. – 2007. – Vol. 44. – P. 899–925.
42. Meesters R.J. State-of-the-art dried blood spot analysis: an overview of recent advances and future trends / R.J. Meesters, G.P. Hooff // Bioanalysis. – 2013.
- Vol. 5. - P. 2187-2208.
43. Mei J.V. Use of filter paper for the collection and analysis of human whole blood specimens / J.V. Mei [et al.] // Journal of Nutrition. – 2001. – Vol. 131. – P.1631-6.
44. Membranes on Polyolefins Plants Vent Recovery. - Improvement Economics Program by Intratec. – 2012.
45. Metelkin А. Membrane materials for storing biological samples intended for comparative nanotoxicological testing / A. Metelkin [et al.] // IOP Conf. Series: Materials Science and Engineering. – 2015. – Vol. 98. – P. 1-3
46. Monardes H.G. Preservation and Storage Mechanisms for Raw Milk Samples for Use in Milk-Recording Schemes / H.G. Monardes [et al.] // Journal of Food Protection. – 1996. - Vol. (59). – P. 151-154
47. Montoya J.G. Laboratory diagnosis of Toxoplasma gondii infection and toxoplasmosis / J.G. Montoya // The Journal of Infectious Diseases. - 2002. – Vol. 185(1). - P. 73–82.
48. Mulder M. Basic principles of membrane technology / M.Mulder // Kluwer Academic: Springer. – 1996.
49. Osada, Y. Membrane Science and Technology / Y. Osada, T. Nakagawa // New York: Marcel Dekker, Inc. - 1992.
50. Parker S.P. The use of the dried blood spot sample in epidemiological studies /
S.P. Parker, W.D. Cubitt // Journal of Clinical Pathology. - 1999. – Vol. 52 (9).
– P. 633–639
51. Pinnau, I., Membrane Formation and Modification / I. Pinnau, B.D. Freeman
// ACS. - 1999.
52. Polge C. Revival of spermatozoa after vitrification and dehydration / C. Polge,
A. Smith, A. Parkes // London:Nature. - 1949.
53. Richmond J.Y. The 1, 2, 3's of Biosafety Levels / J.Y. Richmond. - 2016.
54. Rottinghaus E.K. Dried blood spot specimens are a suitable alternative sample type for HIV-1 viral load measurement and drug resistance genotyping in patients receiving first-line antiretroviral therapy / E.K. Rottinghaus, R. Ugbena, K. Diallo [et al.] // International Journal of Molecular Epidemiology and Genetics. – 2012. – Vol. 3(1). – P. 56-65
55. Rowe J.D. Risk factors for transmission and methods of control of caprine arthritis-encephalitis virus infection / J.D. Rowe, N.E. // East Food Animal Practice. - 1997. - Vol.13(1). - P. 35–53..
56. Saragusty J. Current progress in oocyte and embryo cryopreservation by slow freezing and vitrification / J. Saragusty, A. Arav // Reproduction. - 2011. - Vol.141. - P.1—19.
57. Biosafety in Microbiological and Biomedical Laboratories / 5th.U.S. Department of Health and Human Services. - 2009. - P. 30–59.
58. Solomon S. Dried blood spots (DBS): a valuable tool for HIV surveillance in developing/tropical countries / S. Solomon [et al.] // International Journal of STD & AIDS. – 2002. – Vol.13. – P. 25-8.
59. Flow Through Desorption (FTD) / Spark Holland // Netherlands. - 2015.
60. Tchobanoglous G. Small and Decentralized Wastewater Management Systems
/ G. Tchobanoglous, R. Crites // New York: McGraw-Hill Book Company. – 1998.
61. Warsinger D. M. Energy efficiency of batch and semi-batch (CCRO) reverse osmosis desalination / D.M. Warsinger [et al.] // WaterResearch. – 2016. – Vol. 106. - P. 272–328


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2024 Cервис помощи студентам в выполнении работ