Заказать работу


Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


РОЛЬ ЖАСМОНАТ- И САЛИЦИЛАТ-РЕГУЛИРУЕМЫХ ОТВЕТОВ РАСТЕНИЙ В ДЕТЕРМИНИРОВАНИИ ТИПА ИНФЕКЦИОННОГО ПРОЦЕССА, ВЫЗЫВАЕМОГО PECTOBACTERIUMATROSEPTICUM

Работа №41605
Тип работыДипломные работы, ВКР
Предметбиология
Объем работы76
Год сдачи2018
Стоимость3700 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено 23
Не подходит работа?

Узнай цену на написание

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ 4
ВВЕДЕНИЕ 5
1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 8
1.1 Роль «защитных» фитогормонов в растительно-микробных 8
взаимодействиях
1.2 Физиологическое действие, биосинтез и передача сигнала 10 “защитных” фитогормонов
1.2.1 Жасмоновая кислота 10
1.2.2 Салициловая кислота 15
1.3 Взаимодействие сигнальных систем фитогормонов 20
1.4 Заболевания растений, вызываемые фитопатогенными 24
Pectobacterium atrosepticum
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ 29
2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ 29
2.1 Объекты исследований 29
2.2 Методы исследований 29
2.2.1 Культивирование растений и их инфицирование 29
2.2.2 Культивирование бактерий 31
2.2.3 Оценка титра культивируемых клеток P. atrosepticum SCRI1043 32
2.2.4 Анализ нуклеотидных последовательностей и конструирование праймеров
2.2.5 Выделение РНК и синтез кДНК 32
2.2.6 Полимеразная цепная реакция в реальном времени 33
2.2.7 Электрофорез нуклеиновых кислот в агарозном геле 34
2.2.8 Расчет относительного уровня экспрессии генов 34
2.2.9 Анализ контрольных и инфицированных растений с помощью 35
световой микроскопии
3 РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ 36
3.1 Отработка тест-системы для оценки содержания транскриптов маркерных ЖК- и СК-индуцируемых генов у растений табака (Nicotiana tabacum) и картофеля (Solanum tuberosum)
3.2 Анализ уровня экспрессии СК- и ЖК -индуцируемых маркерных генов у растений картофеля и табака при инфекции, вызванной фитопатогеном Pectobacterium atrosepticum
3.3 Влияние экзогенной индукции жасмонат- и салицилат-зависимых гормональных ответов на развитие симптомов заболевания, вызванного Pectobacterium atrosepticum
3.4 Сравнение стратегий колонизации растений диким типом фитопатогена Pectobacterium atrosepticum и мутантом по гену фермента биосинтеза коронафациевой кислоты ЗАКЛЮЧЕНИЕ
ВЫВОДЫ
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ

Жасмонатам и салицилатам отводят ключевые роли в регулировании ответных реакций растений на патогенные организмы. Многократно продемонстрировано, что эти регуляторные соединения определяют устойчивость растений к патогенам [Gaffney et al., 1993; Nawrath et al., 2002; Glazebrook, 2005; Nandi et al.,2005]. В то же время, известно, что индукция жасмонат- и салицилат-зависимых ответов может определять не только устойчивость, но и восприимчивость растений к определенным паразитам [Robert-Seilaniantz et al., 2007; Koornneef, Pieterse, 2008; Robert-Seilaniantz et al., 2011]. Следовательно, роль жасмонатов и салицилатов в растительно - микробных взаимодействиях дуалистична и зависит от таксономической принадлежности патогена и стратегии его взаимодействия с хозяином.
Жасмонат- и салицилат-регулируемые ответы, как правило, являются антагонистами [Thaler et al., 2002; Robert-Seilaniantz et al., 2011]; вследствие этого в растении при атаке патогенов преимущественно активируется только один из двух возможных вариантов ответа, но не оба сразу. Фитопатогенные микроорганизмы, в свою очередь, обычно чувствительны к одному из типов ответов, но устойчивы к другому. В связи с этим, с одной стороны, антагонизм салицилат- и жасмонат-индуцируемых ответов позволяет растению «выбрать» более эффективный защитный ответ против конкретного патогена. С другой стороны, такой антагонизм позволяет патогену «дезориентировать» хозяина и целенаправленно индуцировать в растении ту защитную систему, работа которой, во-первых, не препятствует развитию патогена и, во-вторых, за счет антагонизма угнетает другую защитную систему хозяина - губительную для микроорганизма [Горшков, 2017]. Таким образом, индукция как жасмонат-, так и салицилат- регулируемых ответов, может являться критерием как устойчивости, так и восприимчивости растений к паразитам.
Молекулярно-физиологические критерии устойчивости и восприимчивости растений к одним из самых вредоносных фитопатогенов - пектобактериям (род Pectobacterium) - не определены. Эти бактерии вызывают заболевания, выражающиеся развитием так называемых мягких гнилей, и приводят к потере до 70% урожая [Mansfield et al., 2012]. В то же время показано, что пектобактерии могут колонизировать растения, не вызывая симптомов заболевания [Perombelon, 2002; Czajkowski et al., 2011]. Следовательно, эти микроорганизмы способны взаимодействовать с растениями по разным сценариям, вызывая не только типичные, сопряженные с развитием гнилей, инфекции, но и латентные (бессимптомные). Владение информацией о том, что сдерживает пектобактерий в рамках латентных инфекций может послужить основой для предотвращения ущерба, вызываемого этими патогенами.
Наличие у пектобактерий генов, кодирующих ферменты биосинтеза функционального аналога жасмонатов - коронафациевой кислоты - указывает на то, что эти бактерии, вероятно, способны манипулировать жасмонат- и салицилат-зависимыми ответами растений и, по нашему предположению, степень индукции этих ответов во многом определяет сценарий взаимодействия пектобактерий с растениями.
В связи с этим, цель нашего исследования заключалась в выяснении роли жасмонат- и салицилат-регулируемых ответов растений в развитии симптомов заболевания у растений табака (Nicotiana tabacum) и картофеля (Solanum tuberosum) при взаимодействии с фитопатогенной бактерией Pectobacterium atrosepticum.
В рамках указанной цели были поставлены следующие задачи:
1. Сравнение уровней экспрессии генов-маркеров салицилат- и жасмонат-опосредованных гормональных систем у растений картофеля (S. tuberosum) и табака (N. tabacum) при развитии типичной и латентной инфекций, вызываемых P. atrosepticum.
2. Оценка влияния экзогенной индукции жасмонат - и салицилат- регулируемых ответов у растений табака на развитие симптомов заболевания, вызываемого P. atrosepticum.
3. Выяснение роли синтезируемой P. atrosepticum коронофациевой кислоты в развитии симптомов заболевания у растений табака и картофеля.


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании студенческих
и аспирантских работ!


1. Продемонстрировано, что развитие типичной инфекции, вызванной Pectobacterium atrosepticum и связанной с развитием симптомов мягких гнилей, у растений табака (Nicotiana tabacum) и картофеля (Solanum tuberosum) сопряжено с активацией экспрессии жасмонат-индуцируемых генов; при развитии латентной инфекции уровень индукции экспрессии этих генов значительно ниже, чем при развитии типичной инфекции.
2. Выяснено, что уровень активации экспрессии салицилат- индуцируемых генов при латентной инфекции, вызванной Pectobacterium atrosepticum, у растений табака и картофеля значительно выше, чем при развитии типичной инфекции.
3. Показано, что экзогенная активация жасмонат-зависимых ответов не сдерживает размножение клеток Pectobacterium atrosepticum в растениях табака и не влияет на морфологические признаки заболевания, вызываемого этим патогеном; индукция салицилат-зависимых ответов при этом предотвращает развитие симптомов заболевания.
4. Выявлено, что критерием перехода латентной инфекции, вызываемой Pectobacterium atrosepticum, в фазу острой инфекции, сопряженной с развитием мягких гнилей, является сверхиндукция жасмонат - опосредованных ответов, которая обеспечивается синтезируемой фитопатогеном коронафациевой кислотой.



1. Горленко, М.В. Бактериальные болезни растений [Текст] / М.В. Горленко, М.А. Чумаевская, Р.И. Кирюхина. - Москва : Колос, 1981. - 287 с. - ISBN 978-5-458-26750-2.
2. Горшков, В. Ю. Бактериозы растений: молекулярные основы
формирования растительно- микробных патосистем [Текст] / В. Ю. Горшков. - Казань: Изд-во Сергея Бузукина, 2017. — 296 с. - ISBN 978-5-905514-36-4.
3. Колупев, Ю.Е. Жасмоновая кислота у растений: синтез, сигналинг и физиологические эффекты при стрессах [Текст] / Ю.Е. Колупаев, Ю.В. Карпец // Ветник Харьковского национального аграрного университета. - 2010. - Т.1 - С.21-33.
4. Медведев, С.С. Начала биологии развития растений. Фитогормоны. [Текст] / С.С. Медведев, Е.И. Шарова. - СПб.: Изд-во С.-Петерб. ун-та, 2011. - Т.1. - 256с. - ISBN 978-5-288-05018-3.
5. Медведев, С.С. Физиология растений. - Санкт-Петербург: БХВ- Петербург, 2012. - 512с. - ISBN 978-5-9775-0716-5.
6. Acosta, I.F. Jasmonates [Text] / I.F. Acosta, E.E. Farmer // The Arabidopsis book. - 2010. - V.8. - DOI 10.1199/tab.0129.
7. Adams, E. COI1, a jasmonate receptor, is involved in ethylene-induced inhibition of Arabidopsis root growth in the light [Text] / E. Adams, J. Turner //Jourmal of experimenal botany. - 2011. - V.62. - №.15. - P.57355736.
8. Ahmad, P. Jasmonates: Multifunctional Roles in Stress Tolerance [Text] / P. Ahmad, S. Rasool, A. Gul, S. A. Sheikh, N. A. Akram, M. Ashraf, A.M. Kazi, S. Gusel // Frontiers in Plant Science. - 2016. - V.7. - DOI 10.3389/fpls.2016.00813.
9. Ali, S. Pathogenesis-related proteins and peptides as promising tools for engineering plants with multiple stress tolerance [Text] / S. Ali, B. A. Ganai,
A. N. Kamili, A. A. Bhat, Z. A. Mir, J. A. Bhat, A. Tyagi, S. T. Islam, M. Mushtaq, P. Yadav, S. Rawat, A. Grover // Microbiol Res. - 2018. - V.212- 213. - P.29-37.
10. Bell, K. Genome sequence of the enterobacterial phytopathogen Erwinia carotovora and characterization of virulence factors [Text] / K. Bell, M. Sebaihia, L. Pritchard, M. Holden, L. Hyman, M. Holeva, I. Toth // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 2004. - V.101. - №.30. - Р.Ш05-ПШ.
11. Bender, C.L. Pseudomonas syringae phytotoxins: mode of action, regulation, and biosynthesis by peptide and polyketide synthetases [Text] /
C. L. Bender, F. Alarcon-Chaidez, D.C. Gross // Microbiol Mol Biol Rev. - 1999. - V.63. - P.266-292.
12. Bezemer, T. Linking aboveground and belowground interactions via induced plant defenses [Text] / T. Bezemer, N.M. Van Dam // Trends Ecol Evol. - 2005. - V.20. - №.11. - P.617-624.
13. Bostock, R.M. Signal crosstalk and induced resistance: straddling the line between cost and benefit [Text] / R.M. Bostock // Annu Rev Phytopathol. - 2005. - V.43. - P.545-580.
14. Brodersen, P. Arabidopsis MAP kinase 4 regulates salicylic acid- and jasmonic acid/ethylene-dependent responses via EDS1 and PAD4 [Text] / P. Brodersen, M. Petersen, H. Bjorn Nielsen, S. Zhu, M.-A. Newman, K.M. Shokat, S. Rietz, J. Parker, J. Mundy // Plant J. - 2006. - V.47. - P.532-546.
15. Brooks, D. The Pseudomonas syringae phytotoxin coronatine promotes virulence by overcoming salicylic acid-dependent defences in Arabidopsis thaliana [Text] / D. Brooks, C. Bender, B. Kunkel // Mol Plant Pathol. - 2005. - V.6. - №.6. - P.629-639.
16. Charkowski, A. The Role of Secretion Systems and Small Molecules in Soft-Rot Enterobacteriaceae Pathogenicity [Text] / A. Charkowski, C. Blanco, G. Condemine, D. Expert, T. Franza, C. Hayes, N. Hugouvieux-
Cotte-Pattat, E.L. Solanilla, D. Low, L. Moleleki, M. Pirhonen, A. Pitman,
N. Perna, S. Reverchon, P. Rodriguez Palenzuela, M.S. Francisco, I. Toth,
S. Tsuyumu, J. van der Waals, J. Van der Wolf, F.V. Gijsegem, C.-H. Yang,
I. Yedidia // Annual review of phytopathology. - 2012. - V.50. - P.425-449.
17. Chen, Z. Active oxygen species in the induction of plant systemic acquired resistance by salicylic acid [Text] / Z. Chen, H. Silva, D. F. Klessig // Science-AAAS-Weekly Paper Edition-including Guide to Scientific Information. - 1993. - V.262. - P.1883-1885.
18. Chung, H.S. Alternative splicing expands the repertoire of dominant JAZ repressors of jasmonate signaling [Text] / H.S. Chung, T.F. Cooke, C.L. Depew, L.C. Patel, N. Ogawa, Y. Kobayashi, G.A. Howe // The Plant Journal. - 2010. - V.63. - №.4. - P.613-622.
19. Conrath, U. Two inducers of plant defense responses, 2, 6-
dichloroisonicotinec acid and salicylic acid, inhibit catalase activity in tobacco [Text] / U. Conrath, Z. Chen, J. R. Ricigliano, D. F. Klessig // Proceedings of the National Academy of Sciences. - 1995. - V.92. - №.16.
- P.7143-7147.
20. Creelman, R.A. Biosynthesis and action of jasmonates in plants [Text] /
R.A. Creelman, J.E. Mullet // Plant Physiology and Plant Molecular Biology. - 1997. - V.48. - P.355-381.
21. Czajkowski, R. Control of blackleg and tuber soft rot of potato caused by Pectobacterium and Dickeya species: a review / R. Czajkowski, M.C.M. Perombelon, J.A. van Veen, J.M. van der Wolf // Plant Pathology. - 2011.
- V.60. - P.999-1013.
22. Datta, S. K. Pathogenesis-related proteins in plants [Text] / S. K. Datta, S. Muthukrishnan // CRC Press. - 1999. - 309p.
23. Dong, X. NPR1, all things considered [Text] / X. Dong // Curr Opin Plant Biol. - 2004. - V.7. - №.5. - P.547-552.
24. El-Esawi, M. Salicylic Acid-Regulated Antioxidant Mechanisms and Gene
Expression Enhance Rosemary Performance under Saline Conditions [Text] / M. A. El-Esawi, H. O. Elansary, N. A. El-Shanhorey, A. M. E. Abdel- Hamid, H. M. Ali, M. S. Elshikh // Front Physiol. - 2017. - V.8. - P.716.
25. Elizabeth, S. The phytotoxin coronatine from Pseudomonas syringae pv. tomato DC3000 functions as a virulence factor and influences defence pathways in edible brassicas [Text] / S. Elizabeth, C. L. Bender // Mol Plant Pathol. - 2007. - V.8. - №.1. - P.83-92.
26. Ellis, C. The Arabidopsis Mutant cev1 Has Constitutively Active Jasmonate and Ethylene Signal Pathways and Enhanced Resistance to Pathogens [Text] / C. Ellis, J.G. Turner // The Plant Cell. - 2001. - V.13. - P.1025-1033.
27. Fu, Z.Q. NPR3 and NPR4 are receptors for the immune signal salicylic acid in plants [Text] / Z.Q. Fu, S. Yan, A. Saleh, W. Wang, J. Ruble, N. Oka, R. Mohan, S.H. Spoel, Y. Tada, N. Zheng, X. Dong // Nature. - 2012. - V.486.
- №.7402. - P. 228-232.
28. Gaffney, T. Requirement of salicylic acid for the induction of systemic acquired resistance [Text] / T. Gaffney, L. Friedrich, B. Vernooij, D. Negrotto, G. Nye, S. Uknes, E. Ward, H. Kessmann, Ryals, J. // Science. -
1993. - V.261. - P.754-754.
29. Gao, Q.M. Signal regulators of systemic acquired resistance [Text] / Q.M. Gao, S. Zhu, P. Kachroo/ Frontiers in Plant Science - 2015. - V.6 - DOI 10.3389/fpls.2015.00228.
30. Gimenez-Ibanez, S. JAZ2 controls stomata dynamics during bacterial invasion [Text] / S. Gimenez-Ibanez, M. Boter, A. Ortigosa, G. Garcia- Casado, A. Chini, M.G. Lewsey, J.R. Ecker, V. Ntoukakis, R. Solano // The New phytologist. - 2017. - V. 213. - №.3. - P.1378-1392.
31. Glazebrook, J. Contrasting mechanisms of defense against biotrophic and necrotrophic pathogen [Text] / J. Glazebrook // Phytopathol. - 2005. - V.43. - P.205-227.
32. Gorshkov, V. Dissociation of a population of Pectobacterium atrosepticum
SCRI1043 in tobacco plants: formation of bacterial emboli and dormant cells [Text] / V. Gorshkov, A. Daminova, M. Ageeva, O. Petrova, N. Gogoleva, N. Tarasova, Y. Gogolev // Protoplasma. - 2014. - V.251. - №.3.
- P.499-510.
33. Gorshkov, V. Pathogen-induced conditioning of the primary xylem vessels
- a prerequisite for the formation of bacterial emboli by Pectobacterium atrosepticum [Text] / V. Gorshkov, A. Daminova, P. Mikshina, O. Petrova, M. Ageeva, V. Salnikov, T. Gorshkova, Y. Gogolev // Plant Biol (Stuttg). -
2016. - V.18. - №.4. - P.609-617.
34. Gorshkov, V. Global Gene Expression Analysis of Cross-Protected Phenotype of Pectobacterium atrosepticum [Text] / V. Gorshkov, S. Kwenda, O. Petrova, E. Osipova, Y. Gogolev, L. N. Moleleki // PLoS One.
- 2017. - V.12. - №.1. - DOI 10.1371/journal.pone.0169536.
35. Gorshkov, V. Pectobacterium atrosepticum exopolysaccharides: identification, molecular structure, formationunder stress and in planta conditions [Text] / V. Gorshkov, B. Islamov, P. Mikshina, O. Petrova, G. Burygin , E. Sigida, A. Shashkov, A. Daminova, M. Ageeva, B. Idiyatullin,
V. Salnikov, Y. Zuev, T. Gorshkova, Y. Gogolev // Glycobiology. - 2017. -
V. 27. - №.11. - P.1016-1026.
36. Gorshkov, V. Transcriptome profiling helps to identify potential and true molecular switches of stealth to brute force behavior in Pectobacterium atrosepticum during systemic colonization of tobacco plants [Text] / V. Gorshkov, R. Gubaev, O. Petrova, A. Daminova, N. Gogoleva, M. Ageeva,
O. Parfirova, M. Prokchorchik, Y. Nikolaichik, Y. Gogolev // European Journal of Plant Pathology. - 2018. - P.1-20.
37. Govrin, E.M. The hypersensitive response facilitates plant infection by the necrotrophic pathogen Botrytis cinerea [Text] / E.M. Govrin, A. Levine // Current Biology. - 2000. - V.10. -№.3. - P.751-757.
38. Grant, M. Systemic immunity [Text] / M. Grant, C. Lamb // Curr Opin
Plant Biol. - 2006. - V.9. - №.4. - P.414-420.
39. Gutjahr, C. Weights in the balance: jasmonic acid and salicylic acid signaling in root-biotroph interactions [Text] / C. Gutjahr, U. Paszkowski // Molecular Plant-Microbe Interactions. - 2009. - V.22. - P.763-772.
40. Hayat, S. Salicylic acid: biosynthesis, metabolism and physiological role in plants [Text] / S. Hayat, A. Ahmad // Salicylic acid: A plant hormone. - Springer, Dordrecht. - 2007. - P.1-14.
41. Hu, T. Overexpression of the Tomato 13-Lipoxygenase Gene TomloxD Increases Generation of Endogenous Jasmonic Acid and Resistance to Cladosporium fulvum and High Temperature [Text] / T. Hu, H. Zeng, Z. Hu,
X. Qv, G. Chen // Plant Molecular Biology Reporter. - 2013. - V.31. -
P.1141-1149.
42. Jones, J. D. The plant immune system [Text] / J. D. Jones, J. L. Dangl // Nature. - 2006. - V.444. - P.323-329.
43. Kachroo, P. A fatty acid desaturase modulates the activation of defense signaling pathways in plants [Text] / P. Kachroo, J. Shanklin, J. Shah, E.J. Whittle, D.F. Klessig // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 2001. - V. 98. - №.16. - P.9448-9453.
44. Kachroo, P. Role of salicylic acid and fatty acid desaturation pathways in ssi2-mediated signaling [Text] / P. Kachroo, S.C. Venugopal, D.A. Navarre,
L. Lapchyk, A. Kachroo // Plant Physiology. - 2005. - V.139. - Р.1717- 1735.
45. Kariola, T. Erwinia carotovora subsp. carotovora and Erwinia-derived elicitors HrpN and PehA trigger distinct but interacting defense responses and cell death in Arabidopsis [Text] / T. Kariola, T.A. Palomaki, G. Brader, E.T. Palva // Phytopathological society. - 2003. - V.16. - P.179-187.
46. Koornneef, A. Cross Talk in Defense Signaling [Text] /
A. Koornneef, C.M.J.Pieterse // Plant Physiology. - 2008. - V.146. - P.839844.
47. Li, J. The WRKY70 transcription factor: a node of convergence for jasmonate-mediated and salicylate-mediated signals in plant defense [Text] /
J. Li, G. Brader, E.T. Palva // Plant Cell. - 2004. - V.16. - P.319-331.
48. Litholdo, C. G. Differential expression of jasmonate biosynthesis genes in cacao genotypes contrasting for resistance against Moniliophthora perniciosa [Text] / C. G. Litholdo, G. A. Leal, P. S. Albuquerque, A. Figueira // Plant Cell Rep. - 2015. - V.34. - P.1747-1759.
49. Mansfield, J. Top 10 plant pathogenic bacteria in molecular plant pathology / J. Mansfield, S. Genin, S. Magori, V. Citovsky, M. Sriariyanum, P. Ronald,
M. Dow, V. Verdier, S.V. Beer, M.A. Machado, I. Toth, G. Salmond, G.D. Foster // Molecular Plant Pathology. - 2012. - V.13. - №.6. - P.614- 629.
50. Mei, C. Inducible Overexpression of a Rice Allene Oxide Synthase Gene Increases the Endogenous Jasmonic Acid Level, PR Gene Expression, and Host Resistance to Fungal Infection [Text] / C. Mei, M. Qi, G. Sheng, Y. Yang // Molecular plant-microbe interaction. - 2006. - V.19. - №.10. - P.1127-1137.
51. Melotto, M. Plant stomata function in innate immunity against bacterial invasion [Text] / M. Melotto, W. Underwood, J. Koczan, K. Nomura, S.Y. He // Cell. - 2006. - V.126. - P.969-980.
52. Memelink, J. Regulation of gene expression by jasmonate hormones [Text] / J. Memelink // Phytochemistry. - 2009. - V.70. - №.13-14. - P.1560-1570.
53. Misra, R. C. A thaumatin-like protein of Ocimum basilicum confers tolerance to fungal pathogen and abiotic stress in transgenic Arabidopsis [Text] / R. C. Misra, Sandeep, M. Kamthan, S. Kumar, S. Ghosha // Sci Rep. - 2016. - V.6. - №.25340.
54. Murashige, T. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures [Text] / T. Murashige, F. Skoog // Physiologia Plantarum. - 1962. - V.15. - P.473-497.
55. Nandi, A. Arabidopsis ssi2-Conferred Susceptibility to Botrytis cinerea Is
Dependent on EDS5 and PAD4 [Text] / A. Nandi, W. Moeder, P. Kachroo,
D. F. Klessig, J. Shah // Molecular plant-microbe interaction. - 2005. - V.18.
- №.4. - P.363-370.
56. Nawrath, C. EDS5, an essential component of salicylic acid-dependent signaling for disease resistance in Arabidopsis, is a member of the MATE transporter family [Text] / C. Nawrath, S. Heck, N. Parinthawong, J. P. Metraux // The Plant Cell. - 2002. - V.14. - №.1. - P.275-286.
57. Panda, P. Pectobacterium atrosepticum and Pectobacterium carotovorum Harbor Distinct, IndependentlyAcquired Integrative and Conjugative Elements Encoding Coronafacic Acid that EnhanceVirulence on Potato Stems [Text] / P. Panda, B. R. Vanga, A. Lu, M. Fiers, P. C. Fineran, R. Butler, K. Armstrong, C. W. Ronson, A. R. Pitman // Front Microbiol. -
2016. - V.7. - DOI 10.3389/fmicb.2016.00397.
58. Perombelon, M.C.M. Potato diseases caused by soft rot erwinias: an overview of Pathogenesis [Text] / M.C.M. Perombelon // Plant Pathology. - 2002. - V.51. - P.1-12.
59. Petersen, M. Arabidopsis map kinase 4 negatively regulates systemic acquired resistance [Text] / M. Petersen, P. Brodersen, H. Naested, E. Andreasson, U. Lindhart, B. Johansen, H.B. Nielsen, M. Lacy, M.J. Austin,
J.E. Parker // Cell. - 2000. - V.103. - P.1111-1120.
60. Pieterse, C.M. Plant interactions with microbes and insects: from molecular mechanisms to ecology [Text] / C.M. Pieterse, M. Dicke // Trends Plant Sci.
- 2007. - V.12. - №.12. - P.564-569.
61. Pieterse, C.M.J. Hormonal Modulation of Plant Immunity [Text] / C.M.J. Pieterse, D. Van der Does, C. Zamioudis, A. Leon-Reyes, S.C.M. Van Wees // Annual review of cell and developmental biology. - 2012. - V.28. - P.489-521.
62. Rate, D. N. The Arabidopsis aberrant growth and death2 mutant shows resistance to Pseudomonas syringae and reveals a role for NPR1 in suppressing hypersensitive cell death [Text] / D. N. Rate, J. T. Greenberg // The Plant Journal. - 2001. - V.27. - №.3. - P.203-211.
63. Robert-Seilaniantz, A. Pathological hormone imbalances [Text] / A. Robert-Seilaniantz, L. Navarro, R. Bari, J. D. Jones // Current opinion in plant biology. - 2007. - V.10. - №.4. - P.372-379.
64. Robert-Seilaniantz, A. Hormone crosstalk in plant disease and defense: more than just jasmonate-salicylate antagonism [Text] / A. Robert- Seilaniantz, M. Grant, J. D. Jones // Annual review of phytopathology. - 2011. - V.49. - P.317-343.
65.Saito, N. Nitric oxide functions in both methyl jasmonate signaling and abscisic acid signaling in Arabidopsis guard cells [Text] / N. Saito, N. Yoshimasa, I.C. Mori, Y. Murata // Plant Signaling & Behavior. - 2009 -
V. 4. - P.119-120.
66.Sambrook, J. Molecular cloning [Text] / Sambrook J. - New York: Cold spring harbor laboratory press. - 1989. - V.2. - P.479.
67.Shah, J. A recessive mutation in the Arabidopsis SSI2 gene confers SA- and NPR1-independent expression of PR genes and resistance against bacterial and oomycete pathogens [Text] / J. Shah, P. Kachroo, A. Nandi, D.F. Klessig // The Plant Journal. - 2001. - V.25. - №.5. - P.563-574.
68.Spoel, S.H. NPR1 modulates cross-talk between salicylate- and jasmonate- dependent defense pathways through a novel function in the cytosol [Text] /
S.H. Spoel, A. Koornneef, S.M.C. Claessens, J.P. Korzelius, J.A. Van Pelt, M.J. Mueller, A.J. Buchala, J.P. Metraux, R. Brown, K. Kazan // Plant Cell. - 2003. - V.15. - P.760-770.
69.Spoel, S.H. Regulation of tradeoffs between plant defenses against pathogens with different lifestyles [Text] / S.H. Spoel, J.S. Johnson, X. Dong // Proc Natl Acad Sci USA. - 2007. - V.104. - P.18842-18847.
70.Staswick, P. E. JAZing up jasmonate signaling [Text] / P. E. Staswick // Trends Plant Sci. - 2008. - V.13. - №.2. - P.66-71.
71. Stout, M.J. Plant-mediated interactions between pathogenic microorganisms and herbivorous arthropods [Text] / M.J. Stout, J.S. Thaler,
B. P. Thomma // Annu Rev Entomol. - 2006. - V. 51. - P.663-689.
72. Taber, D.F. Synthesis of (+)-Coronafacic Acid [Text] / D.F. Taber, R. B. Sheth, W. Tian // J Org Chem. - 2009. - V.74. - №.6. - P.2433-2437.
73. Terta, M. Occurrence of Pectobacterium carotovorum strains isolated from potato soft rot in Morocco [Text] / M. Terta, A. Karkouri, E. Achbani // Cellular and molecular biology. - 2009. - V.56. - P.24-33.
74. Thaler, J. S. Antagonism between jasmonate-and salicylate-mediated induced plant resistance: effects of concentration and timing of elicitation on defense-related proteins, herbivore, and pathogen performance in tomato [Text] / J. S. Thaler, A. L. Fidantsef, R. M. Bostock // Journal of chemical ecologyю - 2002. - V.28. - №.6. - P.1131-1159.
75. Thatcher, L.F. Fusarium oxysporum hijacks COI1-mediated jasmonate signaling to promote disease development in Arabidopsis [Text] / L.F. Thatcher, J.M. Manners, K. Kazan // Plant. - 2009. - V.58. - P.927-939.
76. Uppalapati, S. The phytotoxin coronatine and methyl jasmonate impact multiple phytohormone pathways in tomato [Text] / S. R. Uppalapati, P. Ayoubi, H. Weng, D. A. Palmer, R. E. Mitchell, W. Jones, C. L. Bender // Plant J. - 2005. - V.42. - №.2. - P.201-217.
77. Uppalapati, S. R. The Phytotoxin coronatine contributes to pathogen fitness and is required for suppression of salicylic acid accumulation in tomato inoculated with Pseudomonas syringae pv. tomato DC3000 [Text] / S. R. Uppalapati, Y. Ishiga, T. Wangdi, B. N. Kunkel, A. Anand, K. S. Mysore, C.
L. Bender1 // Mol Plant Microbe Interact. - 2007. - V.20. - №.8. - P.955965.
78. Van der Does, D. Salicylic acid suppresses jasmonic acid signaling downstream of SCFCOI1-JAZ by targeting GCC promoter motifs via transcription factor ORA59 [Text] / D. Van der Does, A. Leon-Reyes, A.
Koornneef, M. C. Van Verk, N. Rodenburg, L. Pauwels, A. Goossens, A. P. Korbes, J. Memelink, T. Ritsema, S. C. Van Wees, C. M. Pieterse // Plant Cell. - 2013. - V.25. - P.744-761.
79. Van Loon, L.C. Ethylene as a modulator of disease resistance in plants [Text] / L. C. Van Loon, H. J. M. Geraats, B. P. J. Linthorst // Trends Plant Sci. - 2006. - V.11. - P.184-191.
80. Vlot, A.C. Salicylic acid, a multifaceted hormone to combat disease [Text] /
A. C. Vlot, D. M. A. Dempsey, D. F. Klessig // Annual review of phytopathology. - 2009. - V.47 - P.177-206.
81. Von Dahl, C. Deciphering the role of ethylene in plant-herbivore interactions [Text] / C. Von Dahl, I. Baldwin // Journal of Plant Growth Regulation. - 2007. - V.26. - №.2. - P.201-209.
82. Wasternack, C. Jasmonates - biosynthesis and role in stress responses and developmental processes [Text] / C. Wasternack // Plant cell processes. - 2004. - P.143-155.
83. Wildermuth, M.C. Isochorismate synthase is required to synthesize salicylic acid for plant defence [Text] / M.C. Wildermuth, J. Dewdney, G. Wu, F.M. Ausubel // Nature. - 2001. - V. 414. - P.562-571.
84. Zang, Y. Leaf and root glucosinolate profiles of Chinese cabbage (Brassica rapa ssp. pekinensis) as a systemic response to methyl jasmonate and salicylic acid elicitation [Text] / Y. Zang, J.-l. Ge, L.-H. Huang, F. Gao, X.-
L. Lv, W.-W. Zheng, S.-B. Hong, Z.-J. Zhu // J Zhejiang Univ Sci. - 2015. -
V. 16. - P.696-708.
85. Zheng, X. Y. Coronatine promotes Pseudomonas syringae virulence in plants by activating a signaling cascade that inhibits salicylic acid accumulation [Text] / X. Y. Zheng, N. W. Spivey, W. Zeng, P. P. Liu, Z. Q. Fu, D. Klessig, X. Dong // Cell host & microbe. - 2012. - V.11. - P.587596.
86. Zhu, Z. Friends or foes: new insights in jasmonate and ethylene co-actions [Text] / Z. Zhu, B. Lee // Plant and cell physiology. - 2015. - V.56. - №.3. - P.414-420.


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.

Пожалуйста, укажите откуда вы узнали о сайте!



© 2008-2020 Cервис продажи образцов готовых курсовых работ, дипломных проектов, рефератов, контрольных и прочих студенческих работ.
.