УСТАНОВЛЕНИЕ ПРОСТРАНСТВЕННОЙ СТРУКТУРЫ ЛОВАСТАТИНА В
КОМПЛЕКСЕ С МИЦЕЛЛАМИ ДОДЕЦИЛФОСФОХОЛИНА И
ДЕЦИЛСУЛЬФАТА НАТРИЯ МЕТОДАМИ СПЕКТРОСКОПИИ ЯДЕРНОГО
МАГНИТНОГО РЕЗОНАНСА
Одной из важнейших проблем современной науки является определение структуры молекул, взаимного расположения атомов в ней. Эффективным методом для решения этой задачи является метод ядерного магнитного резонанса (ЯМР). Благодаря ЯМР высокого разрешения, по мультиплетности и положению резонансных линий в спектрах, мы можем исследовать как в молекуле располагаются атомы или их группы. Данный метод отличается от других подобных методов высокой информативностью
[1] . Это позволило сделать качественный скачок в области фармакологии, биомедицине и многих других областях науки. В настоящее время в медицине остается большим вопросом причины появления тромбов, механизмы, ответственные за их формирование и развитие. Решение этой задачи помогло бы спасти огромное количество людей, так как самый большой процент смертности в большинстве экономически развитых странах именно из-за сердечно-сосудистых заболеваний.
Поэтому разработка новых подходов ЯМР исследований новых лекарств, и поиск модельных систем, соответствующих целям и задачам исследования являются актуальными задачами. Лишь при наличии информации о химической и трехмерной структуре соединений и их поведения в растворе целесообразен синтез лекарственных препаратов.
Объектом данного исследования являлось соединение, называемое ловастатин, имеющий широкий спектр биологического действия и поэтому представляющий интерес в качестве лекарственного препарата.
Ловастатин (Lovastatin) — гиполипидемический препарат, являющийся ингибитором 3-гидрокси-3-метилглутарил-кофермента А редуктазы (ГМГ-КоА редуктазы). Он регулирует уровень холестерина, предотвращает появление атеросклероза за счет влияния на липопротеины низкой плотности (ЛПНП) [2].
Синтез ловастатина был произведен практически в одно и то же время сразу в нескольких местах, а именно в фармакологической компании Merck из грибов (Aspergillus terreus). Изначальное найденное вещество назвали мевинолин (сейчас мы знаем его под именем ловастатин). В июне 1979 г. американская компания Merck отправила запрос на получение патента. Интересным фактом является то, что структура монаколина, открытая Акира Эндо (Япония), и ловастатина, который получил Alberts, оказались одинаковыми. Получается, что было найдено уже как минимум два вида микроорганизмов, которые могли синтезировать ловастатин [3-6].
Ловастатин интересен тем, что обладает рядом плейотропных свойств. Например, его влияние на факторы воспаления, на функциональное состояние эндотелия достаточно высоки. Также за ловастатином замечен антиоксидантный эффект и антиишемическое действие [7]. Есть предположение, что в зависимости от того, где находится статин в мицелле, как взаимодействует с клеточной мембраной, от этого зависят и фармакологические свойства [8], однако пока недостаточно ясно то, как взаимодействует ловастатина с поверхностью клеточной мембраны в жидких средах, недостаточно изучен механизм.
Целью дипломной работы являлось исследование пространственной структуры ловастатина с модельными мембранами на основе мицелл додецилфосфохолина (ДФХ) и додецилсульфата натрия (ДСН) в растворе D2O на основании ЯМР спектров. Были решены следующие задачи, помогающие достичь цели:
- запись одномерных 1Н, 13C и двумерных 2D 1H- 1H COSY, 1H- 1H NOESY, 1Н-13С HSQC, 1Н-13С HMBC, DOSY ЯМР спектров ловастатина с мицеллами ДФХ и ДСН и в растворе CD3OD;
- соотнесение сигналов в полученных ЯМР спектрах;
- вычисление коэффициента диффузии для ловастатина в CD3OD и
ловастатина в растворе с мицеллами ДФХ и ДСН.
Результаты экспериментов показали, что ловастатин формирует
комплекс с модельными клеточными мембранами на основе мицелл ДФХ и
ДСН. Ловастатин проникает в пространство между углеводородными цепями
мицеллы ДФХ и ДСН (Рисунок 32). Однако ловастатин проникает более
глубоко в мицеллу ДСН, чем ДФХ. Рہасположенہие статинہов в клеточнہой
мембрہанہе является оченہь важнہым факторہом, опрہеделяющим их
фарہмакологические свойства. Следовательнہо, изученہие взаимодействия
статинہов с модельнہыми мембрہанہами будет полезнہо для дальнہейшего
рہационہальнہого прہоектирہованہия прہепарہатов [34-36], снہижающих урہовенہь
холестерہинہа ЛПНہП, и для объяснہенہия терہапевтического эффекта
используемых в нہастоящее врہемя статинہов.
1. Д.А. Шарапова, Г.С. Шуршалова, А.В. Аганов, В.В. Клочков. Установление структуры ловастатина в растворе с мицеллами ДФХ методами ЯМР спектроскопии. // Сборник тезисов итоговой научно-образовательной конференции студентов КФУ. -Казань: Изд-во Казанского университета, 2019.
2. Д.А. Шарапова. Исследование комплекса ловастатина с мицеллами додецилфосфохолина а также в растворе CD3OD методами ЯМР спектроскопии // Сборник тезисов докладов международного молодежного научного форума «Ломоносов-2019». -Москва. Физический факультет МГУ, 2019
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Гюнтер, Х. Введение в курс спектроскопии ЯМР [Текст] / Х. Гюнтер. - М.: Мир, 1984. - 478 с.
2. Alarcon J. Production and purification of statins from Pleurotus ostreatus (Basidiomycetes) strains. [Текст]/ Alarcon J, Aguila S, Arancibia-Avila P. et al// Z Naturforsch C 2003- 58(1-2) - 4-62
3. Endo A. The discovery and development of HMG-CoA reductase inhibitors[Текст]/ Endo A..// J Lipid Res 1992- 33 - 1569-1582.
3. Endo A., Kuroda M., Tsujita Y. ML-236A, ML-236B, and ML-236C, new inhibitors of cholesterogenesis produced by Penicillium citrinium. [Текст]/ . Endo A., Kuroda M., Tsujita Y//Tokyo 1976 - 29- 1346-1348.
5. Endo A. Competitive inhibition of 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A reductase by ML-236A and ML 236B fungal metabolites, having hypocholesterolemic activity. // Kuroda M., and Tanzawa K. /FEBS Letters 1976 - 72 - 323-326.
6. Alberts A.W. Mevinolin: a highly potent competitive inhibitor of hydroxymethylglutaryl-coenzyme A reductase and a cholesterol-lowering agent. / Alberts A.W.,Chen J., Kuron G., et al //Proc Natl.Acad Sci U.S.A 1980- 77-39573961
7. Фесенко Э.В. Плейотропные эффекты статинотерапии и их роль в
преодолении проблемы полиморбидности [электронный ресурс]./Фесенко Э.В., Прощаев К.И., Поляков В.И. // Современные проблемы науки и образования. - 2012. - № 2.; URL-http://science-
education.ru/ru/article/view?id=5773 (дата обращения: 10.01.2019
8. I.A. Latfullin, L.F. Galiullina, G.S. Musabirova, O.V. Aganova, Klochkova E.A. Статины и их взаимодействие с модельными клеточными мембранами по данным спектроскопии ядерного магнитного резонанса // Rational Pharmacotherapy in Cardiology, V. 13, 2017.-P. 244-250
9. D.Becker. High Resolution NMR/D.Becker // National Institutes of Health Bethesda Maryland 2000- 32887-6777.- P. 30-35, 83-90
10. Rob kaptein/ Fundamentals of protein nmr spectroscopy 14 Jeener, J. Investigation of exchange processes by two-dimensional NMR spectroscopy [Text] / J. Jeener, B.H. Meier, P. Bachmann, R.R. Ernst // The Journal of Chemical Physics. - 1979 - V. 71 - P.4546-4553
11. Bernhard, Bl. Essential NMR for Scientists and Engineers [Text] / Bl. Bernhard. -Springer-Verlag Berlin Heidelberg.-2005.-V. 25.-P. 5-16
12. Воловенко, Ю.М. Спектроскопия ядерного магнитного резонанса для химиков [Текст] / Ю.М. Воловенко, В.Г. Карцев, И.В. Комаров, А.В. Туров, В.П. Хиля -М.: Издано Международным благотворительным фондом «Научное партнерство», МБФНПб, 2011.-704с
13. Хауссер К.Х. ЯМР в медицине и биологии: структура молекул, томография, спектроскопия in-vivo / К.Х. Хауссер, К.Х. Кальбитцер. - Киев: Наукова думка, 1993. - 259 с.
14. Johnson C.S. Diffusion Ordered NMR Spectroscopy: Principles and Applications / C.S. Johnson // Prog. NMR Spectrosc. - 1999. - V. 34. - P. 203215.
15. Stejskal E.O. Restricted Self-Diffusion of Protons in Colloidal Systems by the Pulsed-Gradient, Spin-Echo Method / E.O. Stejskal, J.E. Tanner. // J. Chem Phys. - 1965. - V. 42. - P. 288-292.
16. V asquez-Bochm LX, Vel azquez-Paniagua M, Castro-V azquez SS et al./ Transcriptome-basedidentification of lovastatin as a breast cancer stem celltargeting drug,PharmacologicalReports(2019),
17. Todd M. HR-MAS NMR Spectroscopy in Material Science, Advanced Aspects of Spectroscopy / M. Todd, A.E. Jenkins, J.E. Jenkins., M.A. Farrukh (ed.). - Croatia: InTech, 2012. - 536 p
18. Henwood, J. M. and Heel, R. C. (1988) Drugs36, 429-454
19. Hofsab C. Molecular dynamics simulations of phospholipid bilayer with cholesterol / C. Hofsab, E. Lindahl, O. Edholm // Biophys. J. - 2003. - V. 84. - P. 2192-2206
20. Serajuddin, A. T. M., Ranadive, S. A. and Mahoney, E. M. (1991) J. Pharmaceut. Sci.80, 830-834
21. Guillot, F., Misslin, P. and Lemaire, M. Hydrophilicity/ lipophilicity: relevance for the pharmacology and clinical effects of HMGCoA reductase inhibitors //Lehninger Principles of Biochemistry,W.H. Freeman And Company- New York, 2008 -1993-339-346
23. E. Strandberg, A. S. Ulrich. Concepts Magn. Reson. A 2004, 23, 89-120.
24. P. Damberg, J. Jarvet, A. Graslund. Methods Enzymol. 2001, 339, 271-285
25. A. M. Seddon, P. Curnow, P. J. Booth. Biochim. Biophys. Acta 2004,1666, 105-117
26. L. Maler, A. Graslund. Methods Mol. Biol. 2009, 480, 129-139.
27. E. Strandberg, A. S. Ulrich. Concepts Magn. Reson. A 2004, 23, 89-120
28. Characterization of sodium dodecylsulphate and dodecylphosphocholine mixed micelles through NMR and dynamic light scattering Giorgia Manzo
29. I.A. Latfullin, L.F. Galiullina, G.S. Musabirova, O.V. Aganova, Z.F. Kim, A.V. Aganov, V.V. Klochkov. Статины и их взаимодействие с модельными клеточными мембранами по данным спектроскопии ядерного магнитного резонанса // RatiomlPharmacotherapyinCardiology, V. 13, 2017.-P. 244-250.
30. Rakhmatullin.Z., Galiullina L.F., Klochkova E.A., Structural studies of pravastatin and simvastatin and their complexes with SDS micelles by NMR spectroscopy/ Journal of Molecular Structure. 2016; 1105:25-9
31. L.F. Galiullina, O.V. Aganova, I.A. Latfullin, G.S. Musabirova, A.V. Aganov, V.V. Klochkov/ Interaction of different statins with model membranes by NMR data // Biochimica et Biophysica Acta 1859 (2017) 295-300, L. F. Galiullina, O. V. Aganova, I. A. Latfullin, G. S. Musabirova, A. V. Aganov, V. V. Klochkov/ NMR Study of Conformational Structure of Fluvastatin and ItsComplex with Dodecylphosphocholine Micelles// BioNanoSci. (2016) 6:352-354
32. L.F. Galiullina, G.S. Musabirova, I.A. Latfullin, A.V. Aganov, V.V. Klochkov / Spatial structure of atorvastatin and its complex with modelmembrane in solution studied by NMR and theoretical calculations//Journal of Molecular Structure 1167(2018) 69-77
33. Galiullina L.F. Interaction of statins with phospholipid bilayers studied by solid-state NMR spectroscopy/ H.A. Scheidt, D. Huster, A.V. Aganov, V.V. Klochkov // BBA - Biomembranes.2019.-V. S0005-2736(18).-P. 30363-831
34. Mason R.P, Walter MLE, Day Ch.A., Jacob R.F Intermolecular differences of 3-hydroxy-3-methyiglutaryl coenzyme a reductase inhibitors contribute to distinct pharmacologic and pleiotropic actions / The American Journal of Cardiology. 2005; 96:1 1-23.
35. Thompson PD, Panza ., Zaleski A, Taylor B, Statin Associated Side Effects / Journal of the American College of Cardiology. 2016;67(20):2395-410.
36. Mason R.P. Molecular Basis of Differences Among Statins and a Comparison with Antioxidant Vitamins / The American Journal of Cardiology. 2006;98:34P-