Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Микробиологический мониторинг воздушной среды учебных аудиторий СФУ для проведения практических занятий по микробиологии

Работа №26062

Тип работы

Магистерская диссертация

Предмет

биология

Объем работы76
Год сдачи2018
Стоимость4900 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
566
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


Введение
1 Методы 22
1.1 Исследования бактериальной обсемененности воздушной среды 22
2 Установление принадлежности культуры к роду Staphylococcus 26
2.1 Культуральный метод 26
2.2 Бактериоскопический метод 27
3 Определение ферментации глюкозы в анаэробных условиях 27
3.1 Видовая идентификация стафилококков 28
3.2 Идентификация S. aureus 29
3.2.1 Среда для определения лецитоветиллазы (лецитиназа) 29
3.2.2 Биохимическая дифференцировка стафилококков наборами НПО
Диагностические системы 30
3.2.3 Дифференцирование Enterobacteriaceaeспециальными диагностическими
системами - «Пластина биохимическая, дифференцирующая энтеробактерии». . 35
4 Определение действия дезифектанта на микробную клетку 39
5 Результаты 45
ВЫВОДЫ 59
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ 60
БЛАГОДАРНОСТИ 61
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ: 62
ПРИЛОЖЕНИЯ 69


Микробиологический мониторинг-это способ отслеживать циркуляцию патогенных и условно- патогенных микроорганизмов, изменения их структуры, развитие устойчивости к антимикробным препаратам, их свойства и особенности циркуляции. Обязательный компонент эпидемиологического надзора. Мониторинг, как и валидация, является неотъемлемой частью GMP микробиологического производства. Проводится данный вид мониторинга, как в чистых помещениях, так и в контролируемых зонах на производстве и в лабораториях.
Разработан мониторинг для лечебно-профилактических учреждений и производственных помещений, но данных мониторинга по учебным лабораториям отсутствует. Хотя в них наблюдается высокая антропогенная нагрузка, т.к. ведутся студентами микробиологические исследования с сапрофитными микроорганизмами. Оценкой микробиологического мониторинга служит: характеристика микробного пейзажа по исследуемым материалам; устойчивость к противомикробным средствам.
В воздухе постоянно присутствуют образующие пигмент кокки, споры бактерий, плесеней и актиномицетов. Микробная загрязненность воздуха имеет непостоянный характер и зависит от многих факторов. Так, болезнетворные микробы попадают в воздух с пылью из почвы и с выделениями больных людей и животных. Воздух помещений загрязняется во время сухой уборки, чихания и кашля. При этом капли аэрозоля, находящиеся в воздухе, служат источником аэрогенного заражения окружающих.
Исходя из всего этого становится понятной роль санитарно-микробиологических исследований внешней среды в учебных лабораториях и аудиториях.
Цель исследования
Изучить качественный и количественный состав воздушной среды учебных микробиологических аудиторий и лечебно-профилактического учреждения; провести сравнительный анализ полученных результатов и определить чувствительность микроорганизмов к дезинфектантам.
Задачи исследования
1. Применяя методы микробиологической диагностики воздушной среды, определить уровень контаминации воздуха в помещениях учебных аудиторий и провести сравнительный анализ с показателями лечебно- профилактического учреждения (ЛПУ).
2. Провести идентификацию доминирующих видов микроорганизмов среди штаммов, выделенных из учебных помещений и ЛПУ.
3. Определить чувствительность выделенной микрофлоры к дезинфектантам.
4. Дать оценку состояния воздушной среды исследуемых помещений и рекомендации по санитарно-гигиеническим мероприятиям.
Исследования проводились в учебной лаборатории базовой кафедры биотехнологии Сибирского Федерального Университета.


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


В результате проведения микробиологического мониторинга воздушной среды лабораторий СФУ, установили колебание численности микроорганизмов от 1911 КОЕ/ОМЧ в 1 м3 в октябре до 27 205 КОЕ/ОМЧ в 1 м3 в декабре. В помещениях ЛПУ ОМЧ составляло от 660 ОМЧ/КОЕ в 1 м3 до 2760 ОМЧ/КОЕ в 1 м3;
Таксономический состав микроорганизмов воздуха в учебных аудиториях представлен видами: Staphylococcus epidermidis, Serratia marcescens, p. Bacillus, p. Micrococcus.
Таксономический состав микроорганизмов воздуха в ЛПУ представлен видами: Staphylococcus aureus;
Проведя сравнительный анализ полученных результатов, пришла к следующему заключению. ОМЧ лечебного учреждения ниже, чем ОМЧ учебных микробиологических лабораторий, но тем не менее в ЛПУ были обнаружены санитарно- показательные микроорганизмы, что говорит о возможном бактериальном загрязнении. ОМЧ учебных лабораторий высокое, но здесь не обнаружены санитарно-показательные микроорганизмы, чем среда пребывания более благоприятна.
Исследования проведенные на выявление чувствительности, выделенных микроорганизмов к дезинфицирующим средствам, таким как: Бионса, Ника Пероксам, Монитор-Окси дали 100% результат по стабильности дезинфектантов.



1. Акимкин, В. Г. Внутрибольничные инфекции: значение, определение, причины возникновения, структура, основные противоэпидемические мероприятия / В.Г. Акимкин, В. М. Клюжев // Эпидемиолог.ру.
2. Бадмашина, Г.Г. Проблемы организации микробиологического мониторинга воздушной среды в медицинских организациях. / Г. Г. Бадмашина // Пермский медицинский журнал. 2016.- Т.33, №6,- С.72-77.
3. Верещагин, А.И. МУК 4.2.2942-11/ А.И. Верещагин // Государственное санитарно -эпидемиологическое нормирование Российской Федерации. 2011. - С.12.
4. Возрастающая угроза развития антимикробной резистентности. Возможные меры: Всемирная организация здравоохранения, 2013. - 130 с.
5. Волков, А. Г. Микробный пейзаж абдоминальных хирургических инфекций у больных многопрофильного стационара / А.Г. Волков // Пермский медицинский журнал. 2014. -Т. 31, № 1. - С. 53-57.
6. Галынкин, В. А. Фармацевтическая микробиология/ В.А. Галынкин,
В.И. Кочеровец, А.Э. Габидова// М.: Арнебия. 2 издание, дополненное и переработанное. 2015. — 240 с.
7. Доршакова, Е. В. Микромицеты в естественной среде обитания и в помещениях их потенциальная опасность для здоровья людей / Е.В. Доршакова // Проблемы медицинской микологии. 2012.- Т. 14, № 3. - С. 53-58.
8. Еремин, Д. И. Формирование почвенной микрофлоры в антропогенно - преобразованных почвах / Д.И. Еремин // Вестник Государственного аграрного университета Северного Зауралья. 2015.-Т. 4, № 31. -С.7-12.
9. Зиатдинов, В. Б. Характеристика микологической обсемененности воздуха в медицинских организациях / В.Б. Зиатдинов // Пермский медицинский журнал. 2016-Т. 3, № 4. - С. 107-112.
10. Зайцева, Т. А., Оценка влияния выбросов автотранспорта на микрофлору экосистемы почвы/ Т.А. Зайцева, Л.В. Рудакова // Фундаментальные исследования. 2014. - Т. 5, №1. -С. 23-28.
11. Кобзев, Е. Н. Формирование устойчивости микроорганизмов к дезинфицирующим средствам и пути решения проблемы/ Е.Н. Кобзев, В.А. Чугунов, В.Б. Родин, Е.В. Детушева, П. В. Слукин, Л.С. Фёдорова, В.Г. Акимкин // Эпидемиология и инфекционные болезни. - 2014. - Т. 19, № 6.
12. Козлов, Л. Б. Роль микробных ассоциаций в инфекционной патологии человека. / Л. Б. Крамарь, С. П. Сахаров, Е. В. Диц // Фундаментальные исследования. 2013. - Т.9, №3. - С. 366-370.
13. Кондакова, Г. В. Санитарная микробиология: текст лекций / Г. В. Кондакова// Ярославский Государственный Университет - Ярославль: ЯрГУ, 2005. - 84 с.
14. Крамарь, Л. В. Фенотипические характеристики популяций S. aureus, выделенных от различных категорий носителей/ Л. В. Крамарь, Ю. В. Жадченко, Ю. О. Хлынина // Фундаментальные исследования. 2012. - Т.4, №2. - С.295-298.
15. Кузнецова, М. В. Характеристика биологических свойств нозокоминальных штаммов Pseudomonas aeruginosa / М.В. Кузнецова // Пермский Медицинский Журнал. 2014. -Т. 8, № 342. - С. 59-64.
16. Максимова, Е. Н. Оценка экологического состояния почв по качественному составу автотрофной микрофлоры / Е. Н. Максимова // Иркутский вестник. 2015. Т. 68. - С. 56- 63.
17. Методические рекомендации по ускоренному определению
устойчивости бактерий к дезинфекционным средствам. (Утверждены руководителем департамента госсанэпиднадзора Минздрава России А.А. Монисовым 10.01.2000 г. за №1100-26-0-117).
18. Методы лабораторных исследований и испытаний дезинфекционных средств для оценки их эффективности и безопасности, Р 4.2.2643-10. -Утверждены Руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации, Г.Г. Онищенко - 1июня 2010 г.
19. Мониторинг устойчивости бактерий к Дезинфицирующим
средствам в медицинских организациях. - Федеральные клинические рекомендации- Сентябрь 2013 г.
20. Николенко, В. В. Клинические особенности течения генерализованной бактериемии, вызванной Streptococcus pneumoniae и Staphylococcus aureus / В. В. Николенко // Пермский медицинский журнал.
2014. - Т. 31, № 2. - С. 19.
21. Поздеев, O.K. Медицинская микробиология: учебное пособие / под ред. В.И. Покровского, — 4-е изд. испр. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2005. — 768 с.
22. Пономаренко, С. В., Антушева Т. И., Калиниченко С. В. Изучение чувствительности госпитальных штаммов S. aureus к действию дезинфектантов/
С. В. Пономаренко, Т.П. Антушева, С.В. Калиниченко, Т.А. Рыжкова, А.А. Ковалева// «Живые и биокосные системы». - 2015. - № 13.
23. Попова, А.Ю., Надзор за соблюдением санитарно - эпидемиологического законодательства при оказании медицинской помощи в целях обеспечения ее качества и безопасности. /А. Ю. Попова, Е. Б. Ежлова, Е. П. Игонина // Вестник росздравнадзора. 2016.- №1. С.74-79.
24. "Предельно допустимые концентрации (ПДК) микроорганизмов- продуцентов, бактериальных препаратов и их компонентов в атмосферном воздухе населенных мест. Дополнение N 2 к ГН 2.1.6.711-98. Гигиенические нормативы. ГН 2.1.6.1041-01" (утв. Минздравом РФ 28.04.2001).
25. Приказ Минздрава СССР от 22.04.1985 N 535 "Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования,применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений" (вместе с "Методическими указаниями по применению унифицированных микробиологических (бактериологических) методов исследования в клинико-диагностических лабораториях".
26. Санитарно-эпидемиологические правила и нормативы СанПиН 2.1.3.1375—03.
27. Сиволодский, Е.П. Систематика и идентификация энтеробактерий (Издание третье, переработанное и дополненное) /Е.П. Сиволодский // ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера, отдел новых технологий. С-Петербург. 2011.- С.17-19.
28. Фельдблюм, И. В. Микромицеты в естественной среде обитания и в помещениях, их потенциальная опасность для здоровья людей/ И. В. Фельдблюм // Проблемы медицинской микологии. 2012.- Т. 14, № 3. - С. 64-66.
29. Хараева, 3. Ф. Особенности внутрибольничных штаммов Staphylococcus aureus / 3. Ф. Хараева // Фундаментальные исследования. 2014. - Т.11, № 6-С.1316-1318.
30. Чарушина, И. П. Сравнительная оценка интенсивности контаминации объектов внешней среды инфекционного стационара различными микромицетами / И. П. Чарушиина, И. В. Фельдблюм, Г. А. Александрова // Успехи медицинской микологии.2014. -Т.12. - С.31-34.
31. Шкарин, В. В., Благонравова А. С., Ковалишена О.В. Способ определения чувствительности микроорганизмов к дезинфицирующим средствам/ В. В. Шкарин, А.С. Благонравова, О.В. Ковалишена, Т.А. Рыжкова, А. А. Ковалева // Клиническая лабораторная диагностика. - 2012. -№ 6.
32. Babeluk, R. Hand hygiene - Evaluation of three disinfectant hand sanitizers in a community setting/ R. Babeluk // PLoS One. 2014.- Vol. 9, № 11. -P. 1-7.
33. Boonsarngsuk, V. Airway obstruction caused by penicilliosis: a case report and review of the literature. / V. Boonsarngsuk // Arch. Bronconeumol. 2015.- Vol. 51, № 5. - P. 25-28.
34. Guilherme Campos, В Isolation, molecular characteristics and disinfection of methicillin-resistant Staphylococcus aureus from ICU units in Brazil /B. Campos Guilherme, G. Simone, M. Marques Lucas // New microbiologica. -2012. - Vol. 35, P.183-190.
35. Furuhata, K. Bacterial contamination in cold water samples obtained from water dispensers/ K. Furuhata, N. Ishizaki, M. Fukuyama// Biocontrol Sci.
2015. - Vol. 20, № 2, - P. 51-147.
36. He, Q. Staphylococcus aureus infections: transmission within households and the community/Q. He // Trends Microbiol. 2015.- Vol. 33, № 4. -P. 395-401.
37. Hinenoya, A. Chlorine Dioxide is a Better Disinfectant than Sodium Hypochlorite against Multi-Drug Resistant Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa, and Acinetobacter baumannii/ A. Hinenoya, S.P. Awasthi, N. Yasuda, A. Shima, H. Morino, T. Koizumi, T. Fukuda, T. Miura, Shibata T., Yamasaki S.Jpn // J Infect Dis.- 2015. - Vol. 68, № 4, P. 9-276.
38. Campos Guilherme, B. Isolation, molecular characteristics and disinfection of methicillin-resistant Staphylococcus aureus from ICU units in Brazil/ Campos Guilherme B., G. Simone, Lucas M. Marques // New microbiologica. -2012. - Vol. 35, P.183-190.
39. Knox, J. Environmental contamination as a risk factor for intrahousehold Staphylococcus aureus transmission. /J. Knox, Anne-Catrin Uhlemann, M. Miller, C. Hafer, G. Vasquez, P. Vavagiaki, Q. Shi, F. D. Lowy// PLOS ONE. 2012. - Vol. 7, Issue11, P.49900.
40. Kwong, S.M. Replication of Staphylococcal Resistance Plasmids/ S.M. Kwong, J.P. Ramsay, S.O. Jensen, N. Firth// Frontiers in Microbiology. -2017.- Vol. 8, P. 2279.
41. Kwong, Stephen M. Replication of Staphylococcal Resistance Plasmids/ Stephen M. Kwong, Joshua P. Ramsay, Slade O. Jensen, Neville Firth// Front Microbiol. - 2017.- Vol. 8, P. 2279.
42. Naidoo, R. Epidemiology of Staphylococcus aureus Bacteraemia at a Tertiary Children's Hospital in Cape Town, South Africa / R. Naidoo // PLoS One. 2013. -Vol. 8, № 10. - P. 1-9.
43. Pasquale, T.R. Emergence of methicillin-resistant Staphylococcus aureus USA300 genotype as a major cause of late-onset nosocomial pneumonia in intensive care patients in the USA/ T.R. Pasquale // Int. J. Infect. Dis. Elsevier, 2013.- Vol.17, №6. - P.398-403.
44. Pollet, R.M. Processing of nonconjugative resistance plasmids by conjugation nicking enzyme of staphylococci/ R.M. Pollet, J.D. Ingle, J.P. Hymes, T.C. Eakes, K.Y. Eto, S.M. Kwong, J.P. Ramsay, N. Firth, M.R. Redinbo // Journal of Bacteriology. 2016.- Vol. 198, P. 888-897.
45. Rhouati, A. Aptamers: A promosing tool for ochratoxin a detection in food analysis/ A. Rhouati // Toxins (Basel), 2013. - Vol. 5, № 11. - P. 1988-2008.
46. Rogawansamy, S. An Evaluation of Antifungal Agents for the Treatment of Fungal Contamination in Indoor Air Environments / S. Rogawansamy // Int. J. Environ. Res. Public Health. 2015. -Vol. 12, № 6. -P. 6319-6332.
47. Schlett, C.D. Prevalence of chlorhexidine-resistant methicillin-resistant Staphylococcus aureus following prolonged exposure / C.D. Schlett // Antimicrob. Agents Chemother. 2014. -Vol. 58, № 8. - P. 4404-4410.
48. Senok A. Diversity of methicillin-resistant Staphylococcus aureus CC22-MRSA-IV from Saudi Arabia and the Gulf region / A. Senok, A. Somily, A. Raji // International Journal of infectious Diseases. 2016. - Vol.51 - P. 31-35.
49. Smith, K. Efficacy of common hospital biocides with biofilms of multidrug resistant clinical isolates/ Karen Smith, Iain S. Hunter// Journal of Medical Microbiology. 2008.- Vol.57- P. 966-973.
50. Tavares, A High prevalence of hospital-associated methicillin-resistant Staphylococcus aureus in the community in Portugal: evidence for the blurring of community-hospital boundaries / A. Tavares, M. Miragaia, J. Rolo, C. Coelho, H. de Lencastre // European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 2013- Vol. 32, № 10, P. 1269-1283.
51. Taylor, M. Airborne fungal profiles in office buildings in metropolitan Adelaide, South Australia: Background levels, diversity and seasonal variation. / M. Taylor, S. Gaskin, R. Bentham, D. Pisaniello// Indoor Built Environ. 2013.- Vol. 23, P.1002-1011.
52. Wang, Q, Inhibition of various gram-positive and gram-negative bacteria growth on selenium nanoparticle coated paper towels/ Q. Wang, P. Larese- Casanova, TJ Webster// Int J Nanomedicine. - 2015.- Vol. 13, № 10, P. 94.
53. Wassenaar Trudy, M. The qacC Gene Has Recently Spread between Rolling Circle Plasmids of Staphylococcus, Indicative of a Novel Gene Transfer Mechanism/ Trudy M. Wassenaar, David W. Ussery, Hanne Ingmer// Front. Microbiol. - 2016. - Vol.7, P.1528.
54. Yuen, J.W.M. Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus (MRSA) contamination in bedside surfaces of a hospital ward and the potential effectiveness of enhanced disinfection with an antimicrobial polymer surfactant/ J.W.M. Yuen, T.W.K. Chung, A.Y. Loke // Int. J. Environ. Res. Public Health. 2015. -Vol. 12, № 3. - P. 3026-3041.
55. Zhang, M. Prevalence of antisepticresistance genes in Staphylococcus aureus and coagulase-negative staphylococci colonizing nurses and the general population in Hong Kong. / M. Zhang, M. M. O'Donoghue, T. Ito, K. Hiramatsu, M.
V. Boost // Hospital infection. 2011. - Vol. 78, P.113-117.


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.



Подобные работы


©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ