Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Циркулирующие опухолевые клетки, как маркеры прогноза выживаемости больных раком легкого

Работа №18712

Тип работы

Магистерская диссертация

Предмет

биофизика

Объем работы64
Год сдачи2017
Стоимость5700 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
374
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


ВВЕДЕНИЕ 4
Глава 1 Обзор литературы 7
1. Рак легкого 7
1.1 Гистологические типы рака легкого человека и морфологическая
характеристика 9
1.1.2 Биомаркеры Рака 12
1.2 Аптамеры новые перспективные биораспознающие
молекулы 15
1.3 Диагностика на основе аптамеров 16
1.4 Значение Циркулирующих опухолевых клеток в образовании
опухоли и метастазировании 18
1.5 Механизмы попадания опухолевых клеток в кровоток.
Формирование метастазов 19
1.5.1. Принципы действия эпителиальных и мезенхимальных переходов опухолевых клеток. Значение состояния покоя опухолевых клеток в
формировании метастаз 21
1.6 Факторы опасности ЦОК для больного 23
2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ 29
2.1 Объект исследования 29
2.2 Материал и оборудование 30
2.3 Определение циркулирующих опухолевых клеток и их
производных в крови больных раком легкого и их анализ с помощью
конфокальной и флуоресцентной микроскопии 30
2.4 Приготовление гистологических срезов с помощью аптамеров и их
анализ с помощью конфокальной и флуоресцентной микроскопии 33
2.5 Статистические методы исследований 36
3 РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ 35
3.1 Окрашивание и анализ гистологических срезов с помощью ДНК-
аптамеров к раку легкого 35
3.2 Выделение циркулирующих опухолевых клеток, микроэмбол и апоптотических телец из периферической крови больных с помощью
конфокальной и флуоресцентной микроскопии 40
3.3 Исследование содержания циркулирующих опухолевых элементов
в образцах периферической крови онкологических больных 47
3.4 Клинический анализ данных о содержании циркулирующих
опухолевых клеток в крови больных раком легкого 49
ЗАКЛЮЧЕНИЕ 52
Список сокращений 55
Список используемых источников 56

Рак легкого - распространенное злокачественное новообразование и составляет четвертую часть всех смертей от рака, особенно среди мужского населения. В последние годы отмечается тенденция к увеличению числа случаев заболеваемости раком легкого также и среди женщин, что обусловлено увеличением числа курящих женщин. Ежегодно в мире регистрируется 1, 2 млн. новых случаев рака, из них 58% приходится на развитые страны.
Основная масса больных выявляется в IV стадии, когда оперативное вмешательство становится невозможным или малоэффективным. По данным на сегодняшний день больные с I-II стадиями составляют 26,5%, III-IV - 66,5%. К тому же выживаемость пациентов после лечения I стадии РЛ соответствует 75%, а IV стадии - не более 5%. Высокая смертность, в основном, связана с отсутствием эффективных подходов для выявления опухоли на ранних стадиях развития. Поэтому для обеспечения эффективного лечения и увеличения выживаемости пациентов необходима ранняя и своевременная диагностика рака легкого.
В настоящее время существует множество методов диагностирования и терапии онкологии. Начиная от методов секвенирования генома первичной опухоли, выявления опухолевых маркеров в крови и многие другие, заканчивая уже классическими методами, таких как: МРТ, КТ, ПЭТ, и др. Проблема заключается в том, что первые дают ограниченные данные о постановки диагноза, в то время как вторые методы используются, когда опухоль уже в запущенном состоянии и активно метастазирует на другие области, к тому же чувствительность и специфичность большинства этих методов недостаточно высока. Известно, что большинство больных умирают не от первичных опухолей, а от раковых клеток, которые распространились на другие области с образованием метастазов. Этот процесс может затянуться на продолжительный промежуток времени, с момента постановки первичного диагноза до рецидива.
В момент образования опухоли в организме человека, в периферической крови появляются различные биомаркеры рака, такие как циркулирующие опухолевые клетки (ЦОК), циркулирующие опухолевые микроэмболы (ЦОМ), апоптотические тельца и др. Кроме того, установлено, что ЦОК могут обнаруживаться в крови больных еще за 1-4 года до выявления клинически значимого рака. Следовательно, метод по выявлению ЦОК может использоваться для раннего диагностирования болезни и выявления оптимальных форм лечения в зависимости от складывающегося мутационного профиля первичной опухоли и ее метастазов.
Отсутствие уникальных маркеров ЦОК и единой номенклатуры их определения приводит к разнообразию устанавливаемых норм, в том числе при некоторых методах выявления ЦОК возможно их обнаружение в образцах крови от здоровых людей. Соответственно, актуальность данной работы заключается в разработке метода по обнаружению прогнозируемых биомаркеров в крови больных раком легкого.
Благодаря прогрессу в области молекулярной биологии, разработан принципиально новый подход в обнаружении опухолевых биомаркеров, с помощью одноцепочечных ДНК и РНК. Это связано с разработкой технологии SELEX, позволяющей осуществлять направленный отбор олигонуклеотидов, обладающих способностью связываться с разнообразными биологическими мишенями и, таким образом, исполнять роль искусственных антител. Такие олигонуклеотиды, носят название аптамеры.
В настоящее время аптамеры уже были получены в Красноярском государственном медицинском университете им. проф. В.Ф. Войно- Ясенецкого в Лаборатории биомолекулярных и медицинских технологий.
Таким образом, применение аптамеров для выявления опухолеассоциированных биомаркеров в крови пациентов при РЛ может позволить улучшить раннюю диагностику, а так же мониторинг опухолевого
процесса.
Цель исследования: Разработка метода определения ЦОК в крови больных раком легкого с помощью ДНК-аптамеров.
Для достижения цели были поставлены следующие задачи:
1. Оценить возможность использования ДНК-аптамеров, меченных флуоресцентной меткой, для выявления ЦОК в крови больных раком легкого.
2. Определить зависимость содержания циркулирующих опухолевых клеток и крови больных раком легкого от стадии опухолевого процесса.

Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


Важной задачей медицины является разработка новых методов ранней диагностики опухолей. Основной подход в реализации этой концепции связан с использованием моноклональных антител, а также на методах регистрации морфологических, биохимических и иммунологических изменениях в тканях. Однако следует отметить, что такие традиционные методы диагностики неспособны выявить ранние формы заболеваний, поскольку специфичность и чувствительность большинства из этих методов недостаточно высока. Вместе с тем, перечень мишеней для диагностики опухолей чрезвычайно мал, что объясняется недостаточной изученностью клеточно-молекулярных механизмов канцерогенеза и сложностью идентификации молекул-компонентов клеточных сигнальных систем, модуляция активности которых может обеспечить торможение опухолевой прогрессии.
Именно поэтому для диагностики ранних стадий развития опухолей необходим новый подход, позволяющий идентифицировать минимальные изменения.
Сегодня прогресс в области молекулярной биологии способствует развитию принципиально новых подходов в диагностике и лечении
заболеваний с помощью олигонуклеотидов - аптамеров, обладающих
51
способностью связываться с разнообразными биологическими мишенями и выполняющих роль искусственных антител. Сегодня разработка новых технологий диагностики онкологических заболеваний является одним из наиболее востребованных и актуальных направлений развития современной медицины, развивающейся в направлении ее персонализации. Аптамеры, чувствительность которых очень высока, могут стать основой для разработки эффективных средств диагностики, скрининга и мониторинга терапии рака каждого конкретного пациента. Основными биологическими материалами для выявления биомаркеров рака являются ткань и кровь пациентов, содержащие большое количество продуктов метаболизма злокачественных клеток.
В работе разрабатывались методы выявления циркулирующих биомаркеров рака легкого, таких как ЦОК в крови больных РЛ. Эффективность использования аптамеров показана на реальных клинических образцах.
1. Специфичность аптамеров к циркулирующим опухолевым элементам крови больных раком легкого была доказана с помощью конфокальной микроскопии. Показано, что аптамеры могут быть использованы для выявления циркулирующих опухолевых элементов крови наряду со стандартными, широко применяемыми маркерами, такими как цитокератины. Эффективность данного метода подтверждалась с помощью исследования содержания циркулирующих опухолевых клеток в крови больных раком легкого, других онкологических заболеваний и неопухолевых заболеваниях легкого, в ходе которого проводился подсчет ЦОК в крови больных, после чего количество найденных опухолевых элементов сопоставлялось с диагнозами пациентов. Показано, что среднее количество опухолевых клеток и их производных в группе больных аденокарциномой, плоскоклеточным раком и другими типами рака легкого примерно одинаково и составляет 2-4 клетки в среднем, а с мелкоклеточным раком легкого - около 10 клеток. У больных неопухолевыми заболеваниями легкого содержание циркулирующих опухолевых клеток и их производных достоверно ниже - 1-2. Количество циркулирующих опухолевых клеток и их производных в крови больных раком легких зависит от метастазирования опухоли. При наличии отдаленных метастазов у больных раком легкого содержание циркулирующих опухолевых клеток и их производных в 3 раза выше (р<0,05), чем в крови больных без метастазирования (2,9±0,3 vs 9,5±1,2).
Кроме того, метод, разработанный на основе аптамеров, имеет преимущество среди других, выше описанных, коммерческих систем по обнаружению ЦОК. Связанно это с тем, что большинство методов разработано по принципу захвата эпителиальных клеток, с использованием антител. А, как известно, многие ЦОК теряют эпителиальные антигены, следовательно, могут быть не обнаружены, что приведет к не правильному решению в постановке диагноза.
Методы определения ЦОК могут быть использованы не только для ранней диагностики рака легкого, но и для мониторинга противоопухолевой терапии.


1. Аксель Е.М. - Новое в терапии рака легкого. - М., 2003, с. 8-15.
2. Артамонова Е.В.. Основные достижения в биологии, скрининге, диагностике и лечении немелкоклеточного рака легкого (НМРЛ) // Практическая онкология. - 2011. -Т. 12, №1. - С. 26-35.
3. Акопов А. Современные подходы к классификации рака легкого// Врач. - 2011. - Т. 12. - С.7-12.
4. Давыдов, М.И. Статистика злокачественных новообразований в России и странах СНГ в 2009 г. / М.И. Давыдов, Е.М. Аксель // Вестник РОНЦ им. Н. Н. Блохина РАМН. -2011. -Т. 22(85), прил. 1.
5. Заридзе, И. / И. Заридзе, Ю.С. Плешко, Т.В. Сидоренко, Д.Г. Шелякина // Эпидемиологические исследования рака легкого в странах — членах СЭВ. -1990.
6. Зубцов Д.А., Зубцова Ж.И., Лавров А.В. и др. Циркулирующие опухолевые клетки при раке молочной железы (ЦОК): прогностическая значимость и методы выделения. Труды МФТИ. 2012;
7. Исмаилова Г., Laget S, Paterlini-Brechot P. Диагностика циркулирующих опухолевых клеток с помощью технологии ISET и их молекулярная характеристика для жидкостной биопсии. Клин. медицина Казахстана. 2015; 1 (35): 15-20.
8. Ковалев, А.А. Гетерогенность циркулирующих опухолевых клеток / А.А. Ковалев, Т.В. Грудинская, Т.П. Кузнецова, К.А. Ковалев // Онкология. -2012. -Т.14(2). -С. 126-129.
9. Кузьмин И.В. Онкология легких.- М.:Медицина, 2005.-186с.
10. Кульбачинский А. В. Успехи биологической химии. -2006. - с. 193-224.
11. Кульбачинский А. В. Методы отбора к белковым мишеням/ А.В. Кульбачинский // Успехи биологической химии. - 2006. - №46. - С. 193-224
12. Левченко, Е.В. Скрининг рака легкого /Е.В. Левченко // Практическая онкология. - 2010. - Т.11. - №2. - С.88-95
13. Лядов В.К., Скрыпникова М.А., Попова О.П. Выделение циркулирующих в крови опухолевых клеток методом «изоляции по размеру (ISET)» (обзор). Вопр. онкологии. 2014; 60 (5): 548-52
14. Моисеенко, Ф.Б. Новое в лекарственном лечении опухолей / В.Ф. Моисеенко // Практическая онкология. - 2012.- Т.13.- №1.- С.32-38
15. Нидюлин, В.А. Об эпидемиологии рака легких / В.А. Нидюлин, Б.В. Эрдниева // Медицинский вестник Башкортостана. -2009. -Т.4(1). - Т.66-71
16. Полякова, Н.В.. Флуоресцентная диагностика предопухолевых изменений в культе резецированного бронха у больных раком легкого после комбинированного лечения / Н.В. Полякова, В.А, Евтушенко, Н.Н. Булгакова. О.В. Черемисина // Сибирский онкологический журнал.-2010.- №2.-С.39-40
17. Трахтенберг. А.Х, Рак легкого / А.Х Трахтенберг, К.И Колбанов // Атмосфера. Пульмонология и аллергология.-2008.-№4.-С.3-9
18. Чиссов, В.И. / В.И. Чиссов, В.В. Старинский // Состояние онкологической помощи населению в 2000 г. Москва. -2002. -188с.
19. Чиссов, В.И. / В.И. Чиссов, В.В. Старинский // Состояние онкологической помощи населению в 2003 г. -Москва. -2003. -С.2.
20. Чиссов. В.И. Состояние онкологической помощи населению России в 2009 году / В.И. Чиссов, В.В. Старинский, Г.В. Петрова.-Москва: ФГУ «МНИОИ им. П.А.Герцена Росмедтехнологии», 2010.-196 с.
21. Чиссов В.И., Старинский В.В., Петрова Г.В. Состояние онкологической помощи населению России в 2004 году.- М., 2005.-184 с.
22. Чиссов В.И.,Дарьялова С.Л., Онкология.-Москва «ГЭОТАР- Медиа»,2007.- 310с.
23. Щербина. О.В. Позитронная эмиссионная томография: роль в онкологии / О.В. Щербина, А.И. Москалец // Украинский медицинский альманах.-2009.-Т.12.- С. 203-206
24. Aceto N, Bardia A, Miyamoto DT, Donaldson MC, Wittner BS, Spencer JA et al.Circulating tumor cell clusters are oligoclonal precursors of breast cancer metastasis. Cell 2014; 158: 1110-1122.
25. Aguirre-Ghiso J. A., Ossowski L., and Rosenbaum S. K., “Green fluorescent protein tagging of extracellular signal-regulated kinase and p38
pathways reveals novel dynamics of pathway activation during primary and metastatic growth,” Cancer Research, vol. 64, no. 20, pp. 7336-7345, 2004.
26. Aktas B., Tewes M., Fehm T., Hauch S., Kimmig R., Kasimir-Bauer S. Stem cell and epithelialmesenchymal transition markers are frequently
overexpressed in circulating tumor cells of
27. Alix-Panabieres C. EPISPOT assay: detection of viable DTCs/CTCs in solid tumor patients. Recent Results Cancer Res 2012; 195: 69-76.
28. Bindels S., Mestdagt M., Vandewalle C., Jacobs N., Volders L., Noel A., van Roy F., Berx G., Foidart J.M., Gilles C. // Oncogene. 2006. V. 25. № 36. P. 4975-4985.
29. Bragado P., Y. Estrada, F. Parikh et al., “TGF-^2 dictates disseminated tumour cell fate in target organs through TGF-/2- RIII and р38а/Д signalling,” Nature Cell Biology, vol. 15, no. 11, pp. 1351-1361, 2013.
30. Braun S., Vogl F., Naume B., Janni W., Osborne M., Coombes R., Schlimok G. A pooled analysis of bone marrow micrometastasis in breast cancer // New England journal of medicine. — 2005. — V. 353, N 8. — P. 793-802.
31. Cheng G., Tse J., Jain R. K., Munn L. L., and Blagosklonny M. V., “Micro-environmental mechanical stress controls tumor spheroid size andmorphology by suppressing proliferation and inducing apoptosis in cancer cells,” PLoS ONE, vol. 4, no. 2, Article ID e4632, 2009.
32. Cristofanilli M. The biological information obtainable from circulating tumor cells // Breast (Edinburgh, Scotland). — 2009. — V. 18, N 3. — P. 38-40.
33. Fiorentino, F.P. CTCF and BORIS Regulate Rb2/p130 Gene Transcription: A Novel Mechanism and a New Paradigm for Understanding the Biology of Lung Cancer / F.P. Fiorentino, M. Macaluso, F. Miranda, M. Montanari, A. Russo, L. Bagella, A. Giordano // Molecular cancer research. - 2011.-№9.-P.225-233
34. Gay L. J. and Felding-Habermann B., “Contribution of platelets to tumour metastasis,” Nature Reviews Cancer, vol. 11, no. 2, pp. 123-134, 2011.
35. Ghajar C.M., Peinado H., Mori H.et al., “Theperivascularniche regulates breast tumour dormancy,” Nature Cell Biology, vol. 15, no. 7, pp. 807¬817, 2013.
36. Hayashi N., Yamauchi H. Role of circulating tumor cells and disseminated tumor cells in primary breast cancer // Breast cancer (Tokyo, Japan). — 2011. — P. 1-5.
37. Hazan R. B., Qiao R., Keren R., Badano I., and Suyama K.,
“Cadherin switch in tumor progression,” Annals of the New York Academy of
Sciences, vol. 1014, pp. 155-163, 2004.
38. Hill L., Browne G., and Tulchinsky E., “ZEB/miR-200 feedback loop: at the crossroads of signal transduction in cancer,” International Journal ofCancer, vol. 132, no.4,pp. 745-754, 2012.
39. Hofman, V. Detection of circulation tumor cells as a prognostic factor in patients undergoing radical surgery for non-small-cell lung carcinoma: comparison of the efficacy of the CellSearch AssayTM and the isolation by size of epithelial tumor cell method / V. Hofman, M.I. Ilie, E. Long, E. Selva, C. Bonnetaud, T. Molina, N. Venissac, J. Mouroux, P. Vielh, P. Hofman // Int J Cancer. -2011. -V.129(7). -P.1651-6160.
40. Holdenrieder S., von Pawel J., Dankelmann E., et al. 2008. Nucleosomes, ProGRP, NSE, CYFRA21_1, and CEA in monitoring first_line chemotherapy of small cell lung cancer. Clin. Cancer Res. 14, 7813-7821.
41. Hou JM, Krebs MG, Lancashire L, Sloane R, Backen A, Swain RK et al. Clinical significance and molecular characteristics of circulating tumor cells and circulating tumor microemboli in patients with small-cell lung cancer. J Clin Oncol 2012; 30: 525-532.
42. Ilie, M. “Sentinel” Circulating Tumor Cells Allow Early Diagnosis of Lung Cancer in Patients with Chronic Obstructive Pulmonary Disease / M. Ilie, V. Hofman, E. Long-Mira, E. Selva, J-M. Vignaud, B. Padovani // PLoS ONE. -V. 9. -№10. -P.1-7.
43. Klein C. A., “Framework models of tumor dormancy from patient- derived observations,” Current Opinion in Genetics and Development, vol. 21, no. 1, pp. 42-49, 2011.
44. Kobayashi A., Okuda H., Xing F. et al., “Bone morphogenetic protein 7 in dormancy and metastasis of prostate cancer stemlike cells in bone,” Journal of Experimental Medicine, vol. 208, no. 13, pp. 2641-2655, 2011.
45. Korpal. M., E. S. Lee, G. Hu, and Y. Kang, “The miR-200 family inhibits epithelial-mesenchymal transition and cancer cell migration by direct targeting of E-cadherin transcriptional repressors ZEB1 and ZEB2,” Journal of Biological Chemistry, vol. 283, no. 22, pp. 14910-14914, 2008.
46. Krebs MG, Metcalf RL, Carter L, Brady G, Blackhall FH, Dive C. Molecular analysisof circulating tumour cells-biology and biomarkers. Nat Rev Clin Oncol 2014; 11:129-144.
47. Kurrey N.K., Jalgaonkar S. P., Joglekar A.V. et al., “Snail and slug mediate radioresistance and chemoresistance by antagonizing p53-mediated apoptosis and acquiring a stem-like phenotype in ovarian cancer cells,” StemCells, vol. 27, no. 9, pp. 2059-2068, 2009.
48. Lustberg M. B, Balasubramanian P., Miller B.et al., “Heterogeneous atypical cell populations are present in blood of metastatic breast cancer patients,” Breast Cancer Research, vol. 16, no. 2, article R23, 2014.
49. Malanchi I., A. Santamaria-Martrrnez, E. Susanto et al., “Interactions between cancer stem cells and their niche govern metastatic colonization,” Nature, vol. 481, no. 7379, pp. 85-91, 2012.
50. Martin, K.J. A need for basic research on fluid-based early detection biomarkers / K.J. Martin, M.V. Fournier, G.P. Reddy, A.B. Pardee // Cancer Res. - 2010. -V.70(13). -P.5203-5206.
51. MЁuller-Hermelink N., H. BraumЁuller, B. Pichler et al., “TNFR1 signaling and IFN-gamma signaling determine whether T cells induce tumor dormancy or promotemultistage carcinogenesis,” Cancer Cell, vol. 13, no. 6, pp. 507-518, 2008.
52. Molina R., Auge J.M., Filella X.,Vinolas N., Alicarte J., Domingo
J.M., Ballesta A.M. 2005. Pro_gastrin_releas_ ing peptide (ProGRP) in patients with benign and malig_nant diseases: comparison with CEA, SCC, CYFRA 21_ 1 and NSE in patients with lung cancer. Anticancer Res. 25, 1773-1778.
53. Moro N.,. Mauch C, and Zigrino. P, “Metalloproteinases in melanoma,”European Journal of Cell Biology, vol. 93, no. 1-2, pp. 23-29, 2014.
54. Nezos A., Pissimisis N., Lembessis P., Sourla A., Dimopoulos P., Dimopoulos T., Tzelepis K. Detection of circulating tumor cells in bladder cancer patients // Cancer treatment reviews. — 2009. — V. 35, N 3. — P. 272-279.
55. Nisman B., Biran H., Ramu N., Heching N., Barak V., Peretz T. 2009. The diagnostic and prognostic value of ProGRP in lung cancer. Anticancer Res. 29, 4827-4832.
56. Pardee A. D., McCurry D., Alber S., Hu P., Epstein A. L., and W. J. Storkus, “A therapeutic OX40 agonist dynamically alters dendritic, endothelial, and T cell subsets within the established tumor microenvironment,” Cancer Research, vol. 70, no. 22, pp. 9041-9052, 2010.
57. Rao C. Chianese D G.,., Doyle G. V. et al., “Expression of epithelial cell adhesion molecule in carcinoma cells present in blood and primary and metastatic tumors,” International Journal of Oncology, vol. 27, no. 1, pp. 49-57, 2005.
58. Reya. T, Morrison S. J., Clarke M. F., and Weissman I. L., “Stem cells, cancer, and cancer stem cells,” Nature, vol. 414, no. 6859, pp. 105-111,
2001.
59. Rusch, V. Surgery for bronchioloalveolar carcinoma and “very erly” adenocarcinoma: an evolving standard of care? / V. Rusch, R. Tsuchiya, M.Tsuboi, H. Pass, D. Grunenwald, P.Goldstraw // Journal of Thoracic Oncology.- 2006.- V.1-№9.-P.27-31
60. Samatov T.R., Tonevitsky A.G., Schumacher U. // Mol. Cancer. 2013. V. 12. № 1. P. 107.
61. Shepherd.F.A. The International Association for the Study of Lung Cancer lung cancer staging project: proposals regarding the clinical staging of small cell lung cancer in the forthcoming edition of the tumor, node, metastasis classification for lung cancer / F.A. Shepherd, J. Crowley, P. Van Houtte, P.E. Postmus, D. Carney, K. Chansky, Z. Shaikh, Goldstraw // Journal of Thoracic Oncology.-2007.-№2.-P.1067-1077
62. Speicher MR, Pantel K. Tumor signatures in the blood. Nat Biotechnol 2014; 32:441-443.
63. Sun Y.-F., Yang X.-R., Zhou J., Qiu S.-J., Fan J., Xu Y. Circulating tumor cells: advances in detection methods, biological issues, and clinical relevance // Journal of cancer research and clinical oncology. — 2011. — P. 1151¬1173.
64. Taddei M.L., Giannoni E., Morandi A., Ippolito L., RamazzottiM., Callari M., Gandellini P., Chiarugi P. // Cell Commun. Signal. 2014. V. 12. P. 24.
65. Thiery J. P. and Sleeman J. P., “Complex networks orchestrate epithelial-mesenchymal transitions,” Nature Reviews Molecular Cell Biology, vol. 7, no. 2, pp. 131-142, 2006.
66. Tsai J.H., Donaher J.L., Murphy D.A., Chau S., Yang J. // Cancer Cell. 2012. V. 22. № 6. P. 725-736.
67. Vandewalle C., Van Roy F., Berx G. // Cell Mol. Life Sci. 2009. V. 66. № 5. P. 773-787.
68. Vanharanta S, Massague J. Origins of metastatic traits. Cancer Cell 2013; 24:410-421.
69. Warzecha C. C., S. Shen, Y. Xing, and R. P. Carstens, “The epithelial splicing factors ESRP1 and ESRP2 positively and negatively regulate diverse types of alternative splicing events,”RNA biology, vol. 6, no. 5, pp. 546-562, 2009.
70. Wellner U., Schubert J., Burk U. C. et al., “The EMT-activator ZEB1 promotes tumorigenicity by repressing stemnessinhibiting microRNAs,” Nature Cell Biology, vol. 11, no. 12, pp. 1487-1495, 2009.
71. Wittekind, C. Cancer invasion and metastasis / C. Wittekind, M. Neid // Oncology. -2005. -V.69. -P.14-16.
72. Yang, J. Exploring a new twist on tumor metastasis / J. Yang, S.A. Mani, R.A. Weinberg // Cancer Res. -2006. -V.66. -C.4549-4552.


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ