Тип работы:
 Предмет:
 Язык работы:


СОМАТИЧЕСКИЙ ЭМБРИОГЕНЕЗ IN VITRO PINUS SIBIRICA И LARIX SIBIRICA ДЛЯ ПЛАНТАЦИОННОГО ЛЕСОВЫРАЩИВАНИЯ

Работа №17702

Тип работы

Магистерская диссертация

Предмет

биология

Объем работы45
Год сдачи2017
Стоимость4900 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
450
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


ВВЕДЕНИЕ 4
ГЛАВА 1. СОМАТИЧЕСКИЙ ЭМБРИОГЕНЕЗ ХВОЙНЫХ В КУЛЬТУРЕ IN VITRO 6
1.1 Общая характеристика кедра сибирского и лиственницы сибирской 6
1.2. Зиготический эмбриогенез хвойных видов на примере родов Pinus и Larix . 9
1.3 Соматический эмбриогенез в культуре in vitro 11
1.3.1 Получение соматического эмбриогенеза у представителей рода Pinus14
1.3.2 Получение соматического эмбриогенеза у представителей рода Larix 20
1.4 Роль состава и консистенции питательных сред, рН, интенсивности освещения и температуры в процессе соматического эмбриогенеза 23
1.4.1 Роль углеводов, ПЭГ и желирующих агентов 24
1.4.2 Влияние рН 25
1.4.3 Роль интенсивности освещения и температуры 25
1.4.4 Влияние абсцизовой кислоты и активированного угля 26
ГЛАВА 2. ХАРАКТЕРИСТИКА ОБЪЕКТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ, МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ 28
2.1 Объект исследования 28
2.2 Методы исследования 28
2.2.1 Стерилизация помещений и лабораторной посуды. Обработка растительного материала 28
2.2.2 Получение каллусных культур кедра сибирского и лиственницы сибирской 29
2.2.3 Индукция каллусообразования и соматического эмбриогенеза 30
2.2.4 Пролиферация каллусной массы 31
2.2.5 Предсозревание соматических зародышей 32
2.2.6 Созревание соматических зародышей 32
2.2.7 Прорастание соматических зародышей 32
2.2.8 Цитологический анализ и статистическая обработка данных 33
ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ 35
3.2 Каллусогенез и индукция соматического эмбриогенеза из зиготических
зародышей лиственницы сибирской 37
3.3 Эксперимент по прорастанию зародышей лиственницы сибирской 38
ЗАКЛЮЧЕНИЕ И ВЫВОДЫ 42
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ 44


Актуальность темы. Сосна сибирская (Pinus sibirica DuTour) и лиственница сибирская (Larix sibirica Ledeb) являются распространенными лесообразующими древесными видами на территории России. Отличительной чертой половой репродукции сосны сибирской является высокая полиэмбриональность семян (до 16 зародышей в одном мегагаметофите), требующих длительной стратификации семян (4-7мес.). Виды рода Larix обладают высокой пластичностью вегетативных и генеративных органов, что отличает их от других представителей семейства Pinaceae (Третьякова и др., 2006). Вместе с тем виды лиственницы, произрастающие в России, особенно в Сибири, характеризуются слабыми урожаями, что проявляется в низком
качестве семян, а также повреждением генеративных органов энтомовредителями, особенно часто лиственничной почковой галлицей. В насаждениях лиственницы редко (0.5%) встречаются деревья, устойчивые к лиственничной почковой галлице (Баранчиков, 1995).
Соматический эмбриогенез является одним из перспективных направлений в лесной биотехнологии микроклонального размножения в культуре in vitro. В его основе лежит явление тотипотентности - уникальной способности растительной клетки в условиях культуры in vitro реализовывать имеющуюся у нее генетическую информацию и давать начало целому организму (Бутенко, 1964). Этот эффективный метод регенерации растений является модельной системой для изучения реализации морфогенетических программ (тотипотентность, дифференцировка и компетентность), физиологических (гормональная регуляция) и молекулярно-генетических исследований (изучение состояние генома) в раннем онтогенезе, а также имеет прикладное значение в современных генетико-селекционных исследованиях, направленных на массовое тиражирование улучшенных форм хвойных.
К настоящему времени у хвойных получены соматические зародыши и растения-регенеранты у 28 видов рода Pinus, у 11 видов рода Picea, у 4 видов и 2 гибридов рода Abies, у 6 видов и гибридов рода Larix (Klimaszewska, Cyr, 2002). В качестве источника соматических клеток для индукции соматического эмбриогенеза у хвойных используются мегагаметофиты, зрелые и незрелые зародыши и их отдельные органы (семядоли и гипокотиль), хвоя молодых растений, а также сегменты вегетативных побегов зрелых деревьев (Stasolla, Yeung, 2003; Lelu-Walter, Paques, 2009).
У кедра сибирского первые результаты по индукции соматического эмбриогенеза из незрелых зиготических зародышей были опубликованы в 2009г (Третьякова, Ижболдина, 2009), однако инициация каллуса чаще происходит только у единичных эксплантов. Вместе с тем, значительные результаты по соматическому эмбриогенезу были получены у рода Larix, который считается моделью для изучения данного процесса.
Цели и задачи исследования. Цель исследования - индукция соматического эмбриогенеза в культуре in vitro у кедра сибирского и анализ данного процесса у лиственницы сибирской.
Для достижения данной цели были поставлены следующие задачи:
- индукция процесса соматического эмбриогенеза из зиготических зародышей кедра сибирского;
- изучение закономерностей образования эмбрионально-суспензорной массы из зиготических зародышей лиственницы сибирской и созревания соматических зародышей данного вида;
- изучение закономерностей прорастания соматических зародышей лиственницы сибирской, подбор питательных сред для прорастания.


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!
ДИПЛОМНЫЕ МАГИСТЕРСКИЕ ДИССЕРТАЦИИ
КУРСОВЫЕ СТАТЬИ ВКР

Соматический эмбриогенез является моделью для исследования процессов дифференцировки и дедифференцировки растительных клеток, физиологических и молекулярно-генетических процессов (von Arnold et al., 2002). В настоящее время данная биотехнология направлена на получение и распространение генетически ценных деревьев, и повышение продуктивности лесов в результате насаждения полученных клоновых элитных сеянцев, отличающихся улучшенным качеством древесины (Park, 2002; Pullman, 2010).
Ключевыми моментами для успешной реализации соматического эмбриогенеза являются отбор деревьев, экспланты которых стабильно обладают эмбриогенным потенциалов в культуре in vitro, подбор оптимальной стадии развития экспланта для ввода в культуру, а также подбор физико¬химических условий культивирования, в том числе определение оптимальных концентраций и соотношений фитогормонов в питательной среде. Данные факторы являются индивидуальными для каждого вида.
В проведенном исследовании был индуцирован соматический эмбриогенез из зиготических зародышей кедра сибирского и лиственницы сибирской. Получены эмбриогенные клеточные линии, продуктивность, способность к созреванию и прорастанию которых в дальнейшем будет исследована. Исследованы закономерности прорастания соматических зародышей трех эмбриогенных клеточных линий и зиготических зародышей на питательных средах различной обработки.
По результатам исследований сделаны следующие выводы:
1. Индукция соматического эмбриогенеза из зиготических зародышей кедра сибирского зависит от генотипа дерева-донора. Зиготические зародыши кедра сибирского способны формировать эмбриогенный каллус, однако при продолжительной пролиферации (4-5 мес.) каллус теряет эмбриогенную способность.
2. У дерева №33 неэмбриогенный каллус продолжает расти на протяжении 11 месяцев.
3. Процент формирования эмбрионально-суспензорной массы у лиственницы сибирской от эксплантов, полученных в результате контролируемого самоопыления не отличается от полученных в результате свободного опыления и соответствует полученным данным в 2012 г.
(Третьякова и др.) (7,9% и 1-18% образования ЭСМ, соответственно).
4. Динамика прорастания соматических и зиготических зародышей лиственницы сибирской на питательной среде значительно не отличается. Наиболее интенсивный рост проростков клеточных линий отмечен на питательной среде, содержащей активированный уголь, что может быть связано со способностью активированного угля адсорбировать соединения, ингибирующие рост и морфогенез.



1. Бабикова А. В., Горпенченко Т. Ю., Журавлев Ю. И. Растение как объект биотехнологии // Комаровские чтения. - Вып. LV. - 2007. - С. 184-211.
2. Баранчиков Ю.Н. Этапы морфогенеза вегетативных почек лиственницы сибирской и его модификации насекомыми галлообразователями // Ботанические исследования в Сибири. 1995. № 4. С. 12-18.
3. Барсукова А. В. Регуляция соматического эмбриогенеза у видов лиственницы в культуре in vitro / автореферат дис. 03.01.05 - Красноярск, 2011 - с. 1-15.
4. Батыгина Т.Б., Васильева В.Е. Размножение растений: Учебник. — СПб.: Изд-во С.-Петерб. ун-та, 2002. — 232 с.
5. Белоруссова, А.С. Особенности формирования соматических зародышей у лиственницы сибирской: эмбриологические аспекты/ А.С. Белоруссова, И.Н. Третьякова // Онтогенез. - 2008. Т. 39. - №2. - C.1-10.
6. Зайнутдинова Э.М., Круглова Н.Н., Шаяхметов И.Ф. Роль АБК в соматическом эмбриогенезе растений в культуре in vitro // Физиология и биохимия культ. растений. — 2005. — 37, № 3. — С. 208—219.
7. Калинин Ф.Л., Кушнир Г.П., Сарнацкая В.В. Технология микроклонального размножения растений. — Киев: Наук. думка, 1992. — 232 с.
8. Комаров В. Л. Larix sibirica — Лиственница сибирская // Флора СССР : в 30 т. / гл. ред. В. Л. Комаров. — М.—Л. : Изд-во АН СССР, 1934. — Т. I / ред. тома М. М. Ильин. — С. 155—156. — 302 + XVI с. — 5000 экз.
9. Константинова Т.Н., Аксенова Н.П., Сергеева Л.И., Чайлахян М.Х. Взаимное влияние света и гормонов на регуляцию морфогенетических процессов в культуре in vitro // Физиология растений. — 1987. — 34, № 4. — С. 795—802.
10. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1973. 343 с.
11. Минина Е.Г. Пол у сосны обыкновенной // Вопросы физиологии половой репродукции хвойных / Красноярск: ИЛиД, 1975. С. 68-89.
12. Минина Е.Г., Третьякова И.Н. Геотропизм и рост хвойных / Под. ред. Реймерса Ф.Э. Новосибирск: Наука, 1983. 200 с.
13. Митрофанова, И. В. Соматический эмбриогенез как система in vitro размножения культурных растений / И.В. Митрофанова // Физиология и биохимия культ. растений. - Киев, 2009. - Т. 41, №6 - С. 496-508
14. Муромцев Г. С., Бутенко Р. Г., Тихоненко Т. П., Прокофьев М. Н. «Основы сельскохозяйственной биотехнологии» М. Агропромиздат, 1990 г.
15. Некрасова Т.П. Рост и плодоношение сосны обыкновенной // Изв. СО АН СССР. Сер. биол. наук. 1972. Вып. 3. С. 45-52.
16. Паушева З.П. Практикум по цитологии растений. М.: Колос, 1980. 340 с.
17. Рокицкий П. Ф. Биологическая" статистика. — Минск : Вышэйш. школа, 1973. — 319 с.
18. Третьякова И.Н., Барсукова А.В. Соматический эмбриогенез лиственниц и кедра сибирского в Сибири // Лесоведение, 2012, № 6, с. 63-70.
19. Третьякова И.Н. Способ микроклонального размножения лиственницы сибирской в культуре in vitro через соматический эмбриогенез на среде АИ для плантационного лесовыращивания: Патент № 245344 // Федеральная служба по интелектуальной собственности. 2012. Бюл. №20. 7 с.
20. Третьякова И.Н. Сходства и различия зиготического и соматического эмбриогенеза сибирских видов хвойных // Материалы XII съезда Русского ботанического общества «Фундаментальные и прикладные проблемы ботаники в начале XXI века», Петрозаводск, 22-27 сентября 2008. Ч. 1. С. 298-300.
21. Третьякова И.Н. Эмбриология хвойных: физиологические аспекты. Новосибирск, Наука, 1990. 157 с.
22. Третьякова И.Н., Баранчиков Ю.Н., Буглова Л.В., Белоруссова А.С., Романова Л.И. Особенности формирования генеративных органов лиственницы сибирской и их морфогенетический потенциал // Успехи современной биологии. 2006. Т. 126. № 5. С. 472-480.
23. Тюкавин Г. Б. Основы биотехнологии моркови: Монография / ВНИИССОК. - М., 2007. - 480 с.
24. Чавчавадзе Е.С., Яценко-Хмелевский А.А. Порядок сосновые (Pinales) // Жизнь растений в шести томах. Т.4 / Под ред. Грушвицкого И.В. М.: Просвещение, 1978. С. 350-354.
25. Alvarez J.M., Bueno N., Cortizo M., Ordas R.J. Improving plantlet yield in Pinus pinaster somatic embryogenesis. Scandinavian Journal of Forest Research 28: 613-620; 2013.
26. Ammirato P.V. Patterns of development in culture // Tissue culture in forestry and agriculture / Eds. R.R. Henke, K.W. Hughes, M.J. Constantin, A. Hollaender. — New York: Plenum Press, 1985. — P. 9—29.
27. Attree S.M., Dunstan D.I., Fowke L. Initiation of embryogenic callus and suspension cultures, and improved embryo regeneration from protoplasts of white spruce (Picea glauca) // Can J Bot. 1989. V. 67. P. 1790-1795.
28. Attree, S. M.; Fowke, L. C. Embryogeny of gymnosperms: advances in synthetic seed technology of conifers. Plant Cell Tiss. Organ Cult. 35:1-35; 1993.
29. Attree, S. M.; Moore, D.; Sawhney, V. K.; Fowke, L. C. Enhanced maturation and desiccation tolerance of white spruce (Picea glauca [Moench] Voss) somatic
embryos: effects of a non- plasmolyzing water stress and abscisic acid. Ann. Bot. 68:519-525; 1991.
30. Bonga JM, Klimaszewska K, Lelu M-A, von Aderkas P. Somatic embryogenesis in Larix. In: Jain S, Gupta PK, Newton RJ (eds) Somatic embryogenesis in Woody plants. Kluwer Academic, Dordrecht, Netherland, 1995, vol.3, pp. 315-339.
31. Chalupa W. Somatic embryogenesis and plantlet regeneration from cultured immature and mature embryos of Picea abies (L.) // Karst. Com. Inst. For. Cech. 1985. V. 14. P. 57-63.
32. Chowdhary, C.R. The embryogeny of conifers: a review. // Phytomorphology,
12. 1962. Р. 313-338.
33. Corredoira E., Ballester A., Vieitez A.M. Proliferation, maturation and germination of Castanea sativa Mill. somatic embryos originated from leaf explants // Ann. Bot. — 2003. — 92. — P. 129—136.
34. Corredoira E., San-Jose M.C., Ballester A., Vieitez A.M. Cryopreservation of zygotic embryo axes and somatic embryos of European chestnut // Cryo Lett. — 2004. — 25, N 1. — P. 33—42.
35. de Vries SC, Booij H, Meyerink P, Huisman G, Wilde DH, Thomas TL & van Kammen A . Acquisition of embryogenic potential in carrot cell-suspension culture.
Planta 176: 196-204, 1988a.
36. Dodeman V.L., Ducreux G., Kreis M. Zygotic embryogenesis versus somatic embryogenesis // J. Exp. Bot. — 1997. — 48, N 313. — P. 1493—1509.
37. Dunstan D.I., Tautorus T.E., Thorpe T.A. Somatic embryogenesis in woody plants // In vitro Embryogenesis in Plants / Ed. T.A. Thorpe. — Netherlands, Dordrecht: Kluwer Acad. Publ., 1995. — P. 471—538.
38. Engelmann F. Importance of cryopreservation for the conservation of plant genetic resources. In: Engelmann F, Takagi H (eds) Cryopreservation of tropical plant germplasm - current research progress and application. JIRCAS, Tsukuba/IPGRI, Rome, 2000, pp 8-20.
39. Filonova L, Bozhkov P & von Arnold S. Developmental pathway of somatic embryogenesis in Picea abies as revealed by time-lapse tracking. J. Exp. Bot. 51:249-264, 2000a.
40. Find, J. I. Changes in endogenous ABA levels in developing somatic embryos of Norway spruce (Picea abies (L.) Karst.) in relation to maturation medium, desiccation and germination. Plant Sci. 128:75-83; 1997.
41. Finer J.J., Kriebel H.B., Becwar M.R. Initiation of embryogenic callus and suspension cultures of eastern white pine (Pinus strobus L.) // Plant Cell Rep. 1989.V. 8. P. 203-206.
42. Fujimura T., Komamine A. Involvement of endogenous auxin in somatic embryogenesis in a carrot cell suspension culture // Ztschr. Pflanzenphysiol., 1979,
95, № 1, p. 13-19.
43. Gower ST, Richards JH. Larches: deciduous conifers in an evergreen world. Biosciences 40:818-826; 1990.
44. Gray D.J. Nonzygotic embryogenesis // Plant Tissue Culture Concepts and Laboratory Exercises / Eds. R.H. Trigiano, D.J. Gray. — Tokyo: CRC Press, 1996.
— P. 133—147.
45. Gray D.J., Purohit A. Somatic embryogenesis and development of synthetic seed technology // Crit. Rev. Plant Sci. — 1991. — 10. — P. 33—61.
46. Gupta P.K., Grob J.A. Somatic embryogenesis in conifers // In: Jain S., Gupta P., Newton R. (eds) Somatic embryogenesis in woody plants / Kluwer Academic Publishers. Dordrecht, 1995. V. 1. P. 81-98.
47. Gupta P.K., Timmis R., Timmis K. et al. Increase in forest productivity through biotechnology // Crop Productivity and Sustainability-Shaping the Future / Eds. V.L. Chopra, R.B. Singh, A. Verma. — New Delhi: Oxford&IBH Publishing Co. Pvt. Ltd., 1999. — P. 745—752.
48. Gupta PK, Holmstrom DG, Larson B, Zucati J. Development and stratification of pine somatic embryos using a liquid system. US Patent 20050026281, 2005.
49. Gupta, P.K. and D.J. Durzan. Shoot multiplication from mature trees of Douglas-fir (Pseudofsuga menziesii) and sugar pine (Pinus lambertiana). Plant Cell Rep. 4:177-179; 1985.
50. Gutmann M, von Aderkas P, Label P, Lelu M-A. Effects of abscisic acid on somatic embryo maturation of hybrid larch. J Exp Bot 47: 1905-1917; 1996.
51. Hay EI, Charest PJ. Somatic embryo germination and desiccation tolerance in conifers. In: Mohan JS, Gupta PK, Newton RJ (eds) Somatic embryogenesis in woody plants, vol 4. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, pp 61-69, 1999.
52. Joy IV, R. W.; Kumar, P. P.; Thorpe, T. A. Long-term storage of somatic embryogenic white spruce tissue at ambient temperature. Plant Cell Tiss. Organ Cult. 25:53-60; 1991a.
53. Kartha, K. K.; Fowke, L. C.; Leung, N. L.; Caswell, K. L.; Hakman, I. Induction of somatic embryos and plantlets from cryopreserved cell cultures of white spruce (Picea glauca ). J. Plant Physiol. 132:529-539; 1988.
54. Kim YW, Moon HK. Enhancement of somatic embryogenesis and plant regeneration in Japanese larch (Larix leptolepis). Plant Cell Tissue Organ Cult 88:241-245; 2007.
55. Klimaszewska K, Hargreaves C, Lelu-Walter M-A, Trontin J-F. Advances in conifer somatic embryogenesis since year 2000. In: Germana MA, Lambardi M (eds)
In Vitro Plant Embryogenesis in Higher Plants. Methods in Molecular Biology, Chap 7. Springer Humana Press (in press); 2015.
56. Klimaszewska K. Plantlet development from immature zygotic embryos of hybrid larch through somatic embryogenesis. Plant Sci 63:95-103; 1989a.
57. Klimaszewska K., Bonga J.M., Park Y.S., Lelu-Walter M.-A., Harvengt L.,
Trontin J.F., MacEacheron I. Initiation of somatic embryogenesis in Pinus banksiana, P. strobus, P. pinaster, and P. sylvestris at three laboratories in Canada and France //
Plant Cell Tiss. Organ Cult. 2006. V. 86. P. 87-101.
58. Klimaszewska K., Cyr D.R. Conifer somatic embryogenesis: I. Development
// Dendrobiology. 2002. V. 48. P. 31-39.
59. Klimaszewska K., Park Y.-S., Overton C., McEacheron I., Bonga J.M. Optimized somatic embryogenesis in Pinus strobus L. // In Vitro Cell Dev. Biol.Plant. 2001. V. 37. P. 392-399.
60. Klimaszewska, K.; Bernier-Cardou, M.; Cyr, D. R.; Sutton, B. C. S. Influence of gelling agents on culture medium gel strength, water availability, tissue water potential, and maturation response in embryogenic cultures of Pinus strobus L. In
Vitro Cell. Dev. Biol. Plant 36:279-286; 2000.
61. Klimaszewska, K.; Smith, D. R. Maturation of somatic embryos of Pinus strobus is promoted by a high concentration of gellan gum. Physiol. Plant. 100:949-957; 1997.
62. Kong, L.; Yeung, E. C. Effects of silver nitrate and polyethylene glycol on white spruce (Picea glauca ) somatic embryo development: enhancing cotyledonary embryo formation and endogenous ABA content. Physiol. Plant. 93:298-304; 1995.
63. Label P, Lelu M-A. Exogenous abscisic acid fate during maturation of hybrid larch (Larix x leptoeuropaea) somatic embryo. Physiol Plant 109: 456-462; 2000.
64. Label P, Lelu M-A. Influence of exogenous abscisic acid on germination and plantlet frequencies of hybrid larch somatic embryos (Larix x leptoeuropaea). Relation with in planta abscisic acid and abscisic acid glucose ester levels. Plant Growth Regul 15:175-182; 1994.
65. Lambardi M, De Carlo A. Application of tissue culture to the germplasm conservation of temperate broad-leaf trees. In: Jain SM, Ishii K (eds) Micropropagation of woody trees and fruits. Kluwer Academic, Dordrecht, 2003, pp 815-840.
66. Lelu M.-A., Bastien C., Drugeault A., Gouez M.L, Klimaszewska K. Somatic embryogenesis and plantlet development in Pinus sylvestris and Pinus pinaster on medium with and without plant growth regulators // Physiol. Plant. 1999. V. 105. P. 719-728.
67. Lelu M.A., Klimaszewska K., Charest P.J. Somatic embryogenesis from immature and mature zygotic embryos and from cotyledons and needles of somatic plantlets of Larix // Can. J. For. Res. 1994. V. 24. № 1. P. 100-106.
68. Lelu-Walter M-.A., Bernier-Cardou M., Klimaszewska K. Clonal Plant Production from self- and cross-pollinated seed families of Pinus sylvestris (L.) through somatic embryogenesis // Plant Cell Tiss. Organ Cult. 2008. V. 92. P. 31-45.
69. Lelu-Walter M-A, Bernier-Cardou M., Klimaszewska K. Simplified and improved somatic embryogenesis for clonal propagation of Pinus pinaster (Ait) // Plant Cell Rep. 2006. V. 25. P. 767-776.
70. Lelu-Walter M-A, Thompson D, Harvengt L, Sanchez L, Toribio M, Paques LE. Somatic embryogenesis in forestry with a focus on Europe: state-ofthe- art, benefits, challenges and future direction. Tree Genet Genomes 9: 883-899; 2013.
71. Lelu-Walter M-A., Bernier-Cardou M., Klimaszewska K. Clonal plant production from self- and crosspollinated seed families of Pinus sylvestris (L.) through somatic embryogenesis // Plant Cell Tiss. Organ Cult. 2008. V. 92. P. 31-45.
72. Lelu-Walter M-A., Paques L.E. Simplified and improved somatic embryogenesis of hybrid larches (Larix x eurolepis and Larix x marschlinsii). Perspectives for breeding // Ann. For. Sci. 2009. V. 66. P. 104.
73. Li, X. Y.; Huang, F. H.; Grur, E. E. Polyethylene glycol-promoted development of somatic embryos in loblolly pine (Pinus taeda L.). In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant 33:184-189; 1997.
74. Litvay, J. D.; Verma, D. C.; Johnson, M. A. Influence of a loblolly pine (Pinus taeda L.) culture medium and its components on growth and somatic embryogenesis of the wild carrot (Daucus carota L.). Plant Cell Rep. 1985. 4:325-328; 1985.
75. Malabadi R. B., Teixeira da Silva J. A., Mulgund G. S. Induction of somatic embryogenesis in Pinus caribaea. Tree and Forestry Science and Biotechnology, 5(1), 27-32, 2011b.
76. Malabadi R.B., Choudhury H., Tandon P. Plant regeneration via somatic embryogenesis in Pinus kesiya (Royle ex. Grod.) // Appl Biol Res. 2002. V. 4. P. 1¬10.
77. Malabadi R.B., Van Staden J. Somatic embryogenesis from vegetative shoot apices of mature trees of Pinus patula // Tree Physiology. 2005. V. 25. P. 11-16.
78. Merkle S.A., Dean J.E. Forest tree biotechnology // Curr. Opin. Biotechnol. —
2000. — 11, N 3. — P. 298—302.
79. Merkle S.A., Parrott W.A., Flinn B.S. Morphogenic aspects of somatic embryogenesis // In vitro embryogenesis in plants / Ed. T.A. Thorpe. — Netherlands: Dordrecht: Kluwer Acad. Publ., 1995. — P. 155—203.
80. Merkle SA, Montello PM, Xia X, Upchurch BL, Smith DR. Light quality treatments enhance somatic seedling production in three southern pine species. Tree Physiol 26:187-194, 2006.
81. Misra S. Conifer zygotic embryogenesis, somatic embryogenesis, and seed germination: Biochemical and molecular advances // Seed Science Research / Volume 4 / Issue 04. 1994. Р. 357 - 384
82. Murashige T. Clonal clops through tissue culture: Plant Tissue Cult. and Its Bio-technol. Appl., B. etc.: Spring. - Verl., 1977, p. 392-403.
83. Murashige Т., Skoog F.A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant. - 1962. - V.15. - №4. - P.473-497.
84. Nagmani, R.; Becwar, M. R.; Wann, S. R. Single cell origin and development of somatic embryos of Picea abies (L.) Karst. (Norway spruce) and P. glauca (Moench) Voss (white spruce). Plant Cell Rep. 6:157-159; 1987.
85. Nomura K., Komamine A.I. Identification and isolation of single cells that produce somatic embryos at a high frequency in a carrot suspension culture. Plant Physiol. 79: 988-991; 1985.
86. Nomura K., Komamine A.I. Physiological and biochemical aspects of somatic embryogenesis // In vitro Embryogenesis in Plants. Current Plant Science and Biotechnology in Agriculture / Ed. T.A. Thorpe. — Vol. 20. — Dordrecht; Boston; London: Kluwer Acad. Publ., 1995. — P. 417—470.
87. Park Y.-S. Implementation of conifer somatic embryogenesis in clonal forestry: technical requirements and deployment considerations // Ann. For. Sci.2002. V. 59. P. 651-656.
88. Persy R.E., Klimaszewska K., Cyr D.R. Evaluation of somatic embryogenesis for clonal propagation of western white pine // Can J. For Res. 2000. V. 30. P. 1867-1876.
89. Pullman G.S., Bucalo K. Pine somatic embryogenesis using zygotic embryos as explants // Plant Embryo Cultures: Methods in Molecular Biology / Trevor A. Thorpe, Edward C. Yeung. 2011. V. 710. P. 267-291.
90. Pullman, G.S., Gupta, P.K., Timmis, R., Carpenter, C., Kreitinger, M., Welty, E. Improved Norway spruce somatic embryo development through the use of abscisic acid combined with activated carbon // Plant cell reports, 2005, v.24 no.5 pp. 271¬
279.
91. Raghavan V. Applied aspects embryo culture // Applied and fundamental aspects of plant cell, tissue and organ culture / Eds. I. Reinert, Y.P.S. Bajaj. — Berlin, New York: Springer-Verlag, 1977. — P. 375—398.
92. Roberts D.R., Flinn B.S., Webb D.T. et al. Abscisic acid and indole-3butric acid regulation of maturation and accumulation of storage proteins in somatic embryos of interior spruce // Physiol. Plant. — 1990. — 78. — P. 355—360.
93. Sharp W.R., Sondahl M.R., Caldas L.S., Marraffa S.B. The physiology of in vitro asexual embryogenesis // Hort. Rev. — 1980. — 2. — P. 268—310.
94. Singh H. Embryology of Gymnosperms. Berlin: Gebruder Borntraeger. 1978. 302 p.
95. Skolmen R.G. Acacia (Acacia koa Gray) // Biotechnology in Agriculture and Forestry. Trees 1 / Ed. Y.P.S. Bajaj. — Vol. 1. — Berlin: Springer Verlag, 1986. — P. 375—384.
96. Stasolla C., Kong L., Yeung E.C., Thorpe T.A. Maturation of somatic embryos in conifers: morphogenesis, physiology, biochemistry and molecular biology // In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 2002 V. 38. P. 93-105.
97. Stasolla C., Yeung E. C. Recent advances in conifer somatic embryogenesis: improving somatic embryo quality // Plant Cell Tiss. Organ Cult. 2003. V. 74. P. 15¬
35.
98. Steward F.C. Growth and development of cultivated cells. III. Interpretations of the growth from free cell to carrot plant // Amer. J. Bot. — 1958. — 45. — P. 709—713.
99. Szczygiel K, Hazubska-Przybyl T, Bojarczuk K. Somatic embryogenesis of selected coniferous tree species of the genra Picea, Abies and Larix.) Acta Soc. Bot. Poloniae, 76:7-15; 2007.
100. Tang W., Guo Z., Ouyang F. Plant regeneration from embryogenic cultures initiated from mature loblolly pine zygotic embryos // In Vitro Cell Dev. Biol. Plant.
2001. V. 37. P. 558-563
101. Thompson RG, von Aderkas P. Somatic embryogenesis and plant regeneration from immature embryos of western larch. Plant Cell Rep 11: 379-385; 1992.
102. Timmis R. Bioprocessing for tree production in the forest industry: conifer somatic embryogenesis // Biotechnol. Prog. V. 14. P. 156-166, 1998.
103. Toering, A., Pullman, G.S. Modeling available 2,4-dichlorophenoxyacetic acid in a tissue culture medium containing activated carbon // Plant cell, tissue, and organ culture, 2005, v.82 no.2 pp. 179-188.
104. Tretiakova I, Voroshilova E, Ivanitskya A, Shuvaev D, Park M. The embryogenic lines and somatic embryogenesis of coniferous species in Siberia. In: Park YS, Bonga, JM (eds). Proceedings of the IUFRO Working Party 2.09.02 conference on Integrating vegetative propagation, biotechnologies and genetic improvement for tree production and sustainable forest management, pp71-79; 2012.
105. Trontin J-F, Klimaszewska K, Morel A, Hargreaves C, Lelu-Walter M-A. Molecular aspects of conifer zygotic and somatic embryo development: a review of genome-wide approaches and recent insights. In: Germana MA, Lambardi M (eds) In vitro embryogenesis in higher plants, Methods in Molecular Biology, Chapter 8,
2016, vol. 1359, pp 167-207.
106. Von Aderkas P, Teyssier C, Charpentier JP, Gutmann M, Paques L, Le Mette C, Ader K, Label P, Kong L, Lelu-Walter M-A. Effect of light conditions on anatomical and biochemical aspects of somatic and zygotic embryos of hybrid larch (Larix x marschlinsii). Ann Bot 115:605-615; 2015.
107. Von Aderkas P., Bonga J., Klimaszewska K., Owens J. Comparison of larch embryogeny in vivo and in vitro // Woody plant biotechnology / New York: Plenum press. 1991. P. 139-155.
108. Von Aderkas, P., Rohr, R., Sundberg, B., Gutmann, M., Dumont-BeBoux, N., and Lelu, M.A. Abscisic acid and its influence on development of the embryonal root cap, storage product and secondary metabolite accumulation in hybrid larch somatic embryos. Plant Cell Tiss Org Cult 69, 111-120; 2002.
109. Von Arnold S, Sabala I., Bozhkov P. et al. Developmental pathways of somatic embryogenesis // Plant Cell Tissue Organ Cult. 2002. V. 69. P. 233-249.

Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.



Подобные работы


©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ
.