Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


МикроРНК как биомаркеры и возможности их исследования в тканях человека для диагностики височной эпилепсии

Работа №165330

Тип работы

Бакалаврская работа

Предмет

биология

Объем работы37
Год сдачи2023
Стоимость4345 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
28
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


ВВЕДЕНИЕ 5
1 МикроРНК 7
2 Биомаркеры 9
2.1 Классификации биомаркеров 9
3 МикроРНК как биомаркеры различных заболеваний 11
3.1 Злокачественные новообразования 11
3.1.1 Роль микроРНК в диагностике рака легких 12
3.1.2 Рак молочной железы 13
3.1.3 Рак предстательной железы 14
3.1.4 Колоректальный рак 15
3.1.5 Опухоли центральной нервной системы 16
3.2 Сердечно-сосудистые заболевания 17
3.3. Сахарный диабет 18
4 Эпилепсия 19
4.1 Эпилептогенез 20
4.2 Выбор модели для исследования эпилепсии 21
5 Причины использования микроРНК как биомаркера височной эпилепсии 23
6 Материалы и методы исследования 25
ВЫВОДЫ 35
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ 36
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ 37

Височная эпилепсия представляет собой гетерогенное заболевание, характеризующееся локализацией эпилептогенного очага в височных мезиальных структурах (гиппокамп, энторинальная кора, миндалина и парагиппокампальная извилина) [1]. Височная эпилепсия встречается у трети пациентов, однако у 25-30% пациентов развивается лекарственная устойчивость (фармакорезистентность). В настоящее время у двух третей пациентов единственным способом добиться избавления от эпилептических приступов является хирургический метод, но в этом случае вероятность рецидива составляет 51%. [2]
Биологические маркеры могут стать решением многих задач в современной медицине, таких как возможность прогнозировать развитие заболеваний, своевременно начать лечение, выбирать терапию с учетом индивидуальных особенностей пациентов, проводить раннюю диагностику заболевания и определять стадию заболевания.
На сегодняшний день существует большое количество биомаркеров, применимых в различных ситуациях и для диагностики различного типа патологий. Одними из многообещающих потенциальных биомаркеров являются микроРНК.
МикроРНК — это класс малых некодирующих молекул длиной 18-25 нуклеотидов, которые играют важную роль в регуляции экспрессии генов в организме. Они участвуют во многих процессах, таких как поддержание стабильности генома, регуляция иммунных реакций, дифференцировка, пролиферация, апоптоз клеток. Дисрегуляция различных путей, контролируемых микроРНК, может сигнализировать о наличии патологии либо привести к ее появлению. Исходя из этого, микроРНК могут быть использованы в качестве потенциальных биомаркеров для диагностики различных заболеваний. [3]
МикроРНК можно обнаружить не только в тканях организма, но и в плазме и сыворотке крови, слюне, моче, спинномозговой жидкости. Различные биологические жидкости организма могут отличаться пулом циркулирующих в них микроРНК. Наличие микроРНК в биологических жидкостях было обнаружено в 2008 году и в этом же году была описана и устойчивость циркулирующих микроРНК. Chim S et al пришли к выводу о возможном использовании микроРНК в качестве биомаркеров. [4].
МикроРНК устойчивы к различным условиям организма человека, а также к сменам рН, циклам разморозки и заморозки, высоким температурам. МикроРНК обладают высокой чувствительностью (при появлении патологии, у них резко меняется уровень экспрессии в организме) и специфичностью. Так же, клеточная и тканевая специфичность некоторых микроРНК дает возможность дифференцировать конкретные заболевания, а изменения уровней циркулирующих микроРНК могут коррелировать с патологическими процессами в тканях. Сбор клинических образцов, содержащих микроРНК, помимо локального взятия образцов из поврежденной ткани, может являться и малоинвазивным простым методом получения биомаркеров для диагностики и мониторинга заболеваний [5,6,7].
Целью данной работы является исследование возможности использования микроРНК как потенциального биомаркера эпилепсии.
Задачами данной работы являются:
1. Анализ научной литературы по теме ВКР.
2. Биоинформационный анализ экспрессии микроРНК на примере has- mir-106b.
3. Составление алгоритма работы по выделению РНК с помещенными в парафиновые блоки образцами биопсии.
4. Выделение микроРНК из плазмы крови человека.
5. Количественный анализ выделенной микроРНК.


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


1. Изучены и проанализированы научные публикации о роли микроРНК в различных патологиях и использовании их в качестве потенциальных биомаркеров. По результатам анализа установлено, что микроРНК участвуют во многих патологических процессах и довольно успешно показали себя в качестве биомаркеров в экспериментальных исследованиях.
2. По результатам биоинформационного анализа экспрессии и биологических функций микроРНК как потенциального биомаркера эпилепсии (на примере микроРНК 106b-5p) можно сделать вывод о том, что дисрегуляция экспрессии микроРНК-106b, может запустить каскад молекулярных изменений, сопровождающих и поддерживающих эпилептогенный процесс, потому микроРНК-106b как потенциальный биомаркер эпилепсии является валидной для исследования.
3. Составлен протокол для работы по выделению нуклеиновых кислот из биологического материала в парафиновом блоке.
4. Выделили РНК из плазмы крови человека.
5. Выполнен количественный анализ полученных кДНК. Полученные результаты говорят о том, что были получены микроРНК-106Ь из всех образцов, так же количество полученных кДНК у пациентов с височной эпилепсией и у контрольной группы отличается, что может являться причиной рассмотрения микроРНК-106Ь как малоинвазивного потенциального биомаркера височной эпилепсии.



1. International League Against Epilepsy. Официальный сайт https: //www.ilae. org/
2. Yakimov A, Timechko E et al. MicroRNAs as Biomarkers of Surgical Outcome in Mesial Temporal Lobe Epilepsy: A Systematic Review // International Journal of Molecular Sciences. - 2023. - T. 24(6). - C. 5694.
3. Lee R.C., Feinbaum R.L., Ambros V. The C. elegans heterochronic gene lin-4 encodes small RNAs with antisense complementarity to lin-14 // Cell. - 1993. - T. 75(5). - C. 843-54.
4. Chim S. et al. Detection and characterization of placental microRNAs in maternal plasma // Clinical Chemistry. - 2008. - T. 54. - C. 482-490.
5. Chen X. et al. Characterization of microRNAs in serum: a novel class of biomarkers for diagnosis of cancer and other diseases // Cell. - 2008. - T. 18 (10). - C. 997-1006.
6. Mitchell P.S. et al. Circulating microRNAs as stable blood-based markers for cancer detection // PNAS USA. - 2008. - T. 105(30). - C. 10513-10528.
7. Кубаныч А.А. и др. Циркулирующие микроРНК как потенциальные биомаркеры хронической болезни почек // Терапевтический архив. - 2019. - Т. 91(6). - С. 133-138.
8. Ha M, Kim V.N. Regulation of microRNA biogenesis // Nature Reviews Molecular Cell Biology. - 2014. - T. 15. - C. 509-524.
9. Bartel D.P. MicroRNAs: Genomics, biogenesis, mechanism, and function // Cell. - 2004. - T. 116(2). - C. 281-297.
10. Bushati N., Cohen S.M. microRNA functions // Annual Review of Cell and Developmental Biology. - 2007. - T. 23. - C. 175-205.
11. Lawrie C.H. et al. Detection of elevated levels of tumour-associated microRNAs in serum of patients with diffuse large B-cell lymphoma // British Journal of Haematology. - 2008. - T. 141. - C. 672-675.
12. Valadi H. et al. Exosomemediated transfer of mRNAs and microRNAs is a novel mechanism of genetic exchange between cells // Nature Cell Biology. -
2007. - T. 9. - C. 654-659.
13. Arroyo J.D. et al. Argonaute2 complexes carry a population of circulating microRNAs independent of vesicles in human plasma // Proceedings of the National Academy of Sciences USA. - 2011. - T. 108. - C. 5003-5008.
14. Vickers K.C. et al. MicroRNAs are transported in plasma and delivered to recipient cells by highdensity lipoproteins // Nature Cell Biology. - 2011. - T. 13. - C. 423-433.
15. Yang W. et al. The roles of microRNAs in tumorigenesis and angiogenesis // International Journal of Physiology, Pathophysiology and Pharmacology. - 2011. - T. 3(2). - C. 140-155.
16. Creemers E.E., Tijsen A.J., Pinto Y.M.. Circulating microRNAs: Novel biomarkers and extracellular communicators in cardiovascular disease? // Circulation Research. - 2012. - T. 110(3). - C. 483-95.
17. Lu J, Clark AG. Impact of microRNA regulation on variation in human gene expression // Genome Research. - 2012. - T. 22(7). - C. 1243-1254.
18. Biomarkers Definitions Working Group. Biomarkers and surrogate endpoints: preferred definitions and conceptual framework // Clinical pharmacology and therapeutics - 2001. - Т. 69 (3). - С. 89-95.
19. Hess S., Ozoux M.L., Gerl M. Biomarker Definition and Validation During Drug Development // Drug Discovery and Evaluation: Methods in Clinical Pharmacology. - 2011. - С. 223-244.
20. Dancey J.E. et al. Guidelines for the development and incorporation of biomarker studies in early clinical trials of novel agents // Clinical cancer research: an official journal of the American Association for Cancer Research. - 2010. -Т. 16 (6). - С. 1745-1755.
21. Mayeux R. Biomarkers: potential uses and limitations // NeuroRx. - 2004. - №. 1. - С. 182-188.
22. Комарова Жанна. Биомаркеры и их ценность // Наука и инновации. - 2019. - №. 4 (194). - С. 4-8.
23. Ягудина Р.И., Чибиляев В.А. Использование конечных и
суррогатных точек в фармакоэкономических исследованиях // Фармакоэкономика. Современная фармакоэкономика и фармакоэпидемиология. - 2010. - №. 2. - С. 12-18.
24. Heinonen T.M. et al. Cardiovascular biomarkers and surrogate end points: key initiatives and clinical trial challenges // Expert review of cardiovascular therapy. - 2012. - T. 10(8). - C. 989-994.
25. Anderson D.C., Kodukula K. Biomarkers in pharmacology and drug discovery // Biochemical pharmacology. - 2014. - T. 87(1). - C. 172-188.
26. Заридзе Д.Г. и соавт. Динамика заболеваемости злокачественными новообразованиями и смертности от них в России // Вопросы онкологии. -
2018. - T. 64(5). - C. 578-591.
27. Calin G.A. et al. Frequent deletions and downregulation of micro-RNA genes miR15 and miR16 at 13q14 in chronic lymphocytic leukemia // Proceedings of the National Academy of Sciences USA. - 2002. - T. 99(24). - C. 15524¬15529.
28. Ye J, et al. miRNA-27b targets vascular endothelial growth factor C to inhibit tumor progression and angiogenesis in colorectal cancer. PLoS One. - 2013. - T. 8(4). - C. 60687.
29. Hur K. et al. MicroRNA-200c modulates epithelial-to-mesenchymal transition (EMT) in human colorectal cancer metastasis // Gut. - 2013. - T. 62. - C. 1315-1326.
30. Yu Y. et al. MicroRNA-21 induces stemness by downregulating transforming growth factor beta receptor 2 (TGF_R2) in colon cancer cells // Carcinogenesis. - 2012. - T. 33. - C. 68-76.
31. Izzotti A. et al. Extracellular MicroRNA in liquid biopsy: Applicability in cancer diagnosis and prevention // American Journal of Cancer Research. - 2016. - T. 6(7). - C. 1461- 1493.
32. Carpelan-Holmstrom M. et al. CEA, CA 19-9 and CA 72-4 improve the diagnostic accuracy in gastrointestinal cancers // Anticancer Research. - 2002. - T. 22. - C. 2311-2316.
33. Buys S.S. et al. Effect of screening on ovarian cancer mortality: The Prostate, Lung, Colorectal and Ovarian (PLCO) cancer screening randomized controlled trial // Journal of the American Medical Association. - 2011. -T. 305(22). - C. 2295-303.
34. Sturgeon C.M. et al. National academy of clinical biochemistry laboratory medicine practice guidelines for use of tumor markers in testicular, prostate, colorectal, breast, and ovarian cancers. Clinical Chemistry. - 2008. - T.
54. - C. 11-79.
35. Ferlay, J. et al. Estimating the global cancer incidence and mortality in 2018: GLOBOCAN sources and methods // International Journal Cancer. - 2019. - T. 144. - C. 1941-1953.
36. Wu K-L et al. The Roles of MicroRNA in Lung Cancer. International Journal of Molecular Sciences. - 2019. - T. 20(7). - C. 1611
37. - Bishop, J.A. et al. Accurate classification of non-small cell lung carcinoma using a novel microRNA-based approach // Clinical Cancer Research. - 2010. - T. 16. - C. 610-619.
38 Lebanony, D. et al. Diagnostic assay based on hsa-miR-205 expression distinguishes squamous from nonsquamous non-small-cell lung carcinoma // Journal of Clinical Oncology. - 2009. - T. 27. - C. 2030-2037.
39 Lujambio, A. et al. Genetic unmasking of an epigenetically silenced microRNA in human cancer cells // Cancer Research. - 2007. - T. 67. - C. 1424-1429.
40 Zhang, Y.K. et al. miRNAs expression profiling to distinguish lung squamous-cell carcinoma from adenocarcinoma subtypes // Cancer Research. - 2012. - T. 138. - C. 1641-1650.
41 Nishikawa, E. et al. miR-375 Is Activated by ASH1 and Inhibits YAP1 in a Lineage-Dependent Manner in Lung Cancer // Cancer Research. - 2011. - T. 71.
- C. 6165-6173.
42 Demes, M. et al. Differential miRNA-Expression as an Adjunctive Diagnostic Tool in Neuroendocrine Tumors of the Lung // Cancers. - 2016. - T. 8. - C. 38.
43 Gilad, S. et al. Classification of the Four Main Types of Lung Cancer Using a MicroRNA-Based Diagnostic Assay // The Journal of Molecular Diagnostics. - 2012. - T. 14. - C. 510-517.
44. Xiaoman Li et al MicroRNA-9 and breast cancer // Biomedicine & Pharmacotherapy. - 2020. - T. 122. - C. 109687.
45. Gravgaard, M.B. et al. The miRNA-200 family and miRNA-9 exhibit differential expression in primary versus corresponding metastatic tissue in breast cancer // Breast Cancer Research. - 2012. - T. 134(1). - C. 207-217
46. J. Ferlay et al. Cancer incidence and mortality patterns in Europe:estimates for 40 countries in 2012 // European Journal of Cancer. - 2013.
47. M.R. Cooperberg et al. The contemporary management of prostatecancer in the United States: lessons from the cancer of the prostate strategicurologic research endeavor (CapSURE), a national disease registry // The Journal of Urology. - 2004.
48. F.H. Schroder et al. Screening and prostate cancer mortality: results ofthe European Randomised Study of Screening for Prostate Cancer (ERSPC) at 13years of follow-up // Lancet. - 2014.
49. M. Fraser et al. Genomic, pathological, and clinical heterogeneity asdrivers of personalized medicine in prostate cancer // Urologic Oncology. - 2015.
50. U.A. Orom et al. MicroRNA-10a binds the 5’UTR of ribosomal proteinmRNAs and enhances their translation // Molecular Cell. - 2008.
51. Ozen M et al. Widespread deregulation of microRNA expression in human prostate cancer // Oncogene. - 2008. - T. 27. - C. 1788-93.
52. Tong AW et al. MicroRNA profile analysis of human prostate cancers // Cancer Gene Therapy. - 2009. - T. 16. - C. 206-16.
53. Schaefer A et al. Diagnostic, prognostic and therapeutic implications of microRNAs in urologic tumors // Nature Reviews Urology. - 2010. - T. 7. - C. 286-97.
54. Ali Mohammadi, Behzad Mansoori, Behzad Baradaran. The role of microRNAs in colorectal cancer // Biomedicine & Pharmacotherapy. -2016. - T. 84. - C. 705-713.
55. S. Zorofchian et al. Circulating tumour DNA, microRNA and metabolites in cerebrospinal fluid as biomarkers for central nervous system malignancies // Journal of Clinical Pathology. - 2019. - T. 72(4). - C. 271-280.
56. Teplyuk N.M. et al. MicroRNAs in cerebrospinal fluid identify glioblastoma and metastatic brain cancers and reflect disease activity // Neuro-Oncology. - 2012. - T. 14. - C. 689-700.
57. Wang G.K. et al. Circulating microRNA: A novel potential biomarker for early diagnosis of acute myocardial infarction in humans // European Heart Journal. - 2010. - T. 31. - C. 659-666.
58. Wu AH, Feng YJ. Biochemical differences between cTnT and cTnI and their significance for diagnosis of acute coronary syndromes // European Heart Journal. - 1998. - T. 19. - C. 25-29.
59. Rooij VE, Marshall WS, Olson EN. Towards microRNA-based therapeutics for heart disease: The sense in antisense // Circulation Research. -
2008. - T. 103. - C. 919-928.
60. Carella A.M. et al. Circulating micro-RNAs in diabetic patients: Wath meaning? Short Review // Diabetes and Obesity International Journal. - 2018. - T. 3(1). - C. 000171.
61. Calderari S. et al. Biological roles of microRNAs in the control of insulin secretion and action // Physiological Genomics. - 2017. - T. 49(1). - C. 1¬10.
62. Zhang T. et al. Circulating miR-126 is a potential biomarker to predict the onset of type 2 diabetes mellitus in susceptible individuals // Biochemical and Biophysical Research Communications. - 2015. - T. 463(1-2). - C. 60-63.
63. Liu Y. et al. The role of circulating microRNA-126 (miR-126): a novel biomarker for screening prediabetes and newly diagnosed type 2 diabetes mellitus // International Journal of Molecular Sciences. - 2014. - T. 15. - C. 10567-10577.
64. Al-Kafaji G. et al. Circulating endothelium-enriched microRNA-126 as a potential biomarker for coronary artery disease in type 2 diabetes mellitus patients // Biomarkers. - 2017. - T. 22(3-4). - C. 268-278.
65. Официальный сайт Всемирной организации здравоохранения. https://www.who.int/ru/news-room/fact-sheets/detail/epilepsy
66. Pitkanen A, Lukasiuk K. Mechanisms of epileptogenesis and potential treatment targets. // Neurology - 2011. - T. 10. - C. 173- 86.
67. Engel J, Bragin A, Staba R. Nonictal EEG biomarkers for diagnosis and treatment. // Epilepsia - 2018. - T. 3. - C. 120-126.
68. Frauscher B, et al. High-frequency oscillations: The state of clinical research. // Epilepsia. - 2017. - T. 58. - C. 1316- 1329.
69. Pitkanen A, et al. Epilepsy after traumatic brain injury. // Animal Models of Seizures and Eplilepsy. - 2016. - T. 14.
70. Ping X, Jin X. Chronic posttraumatic epilepsy following neocortical undercut lesion in mice. // PLoS One. - 2016. - T. 11. - C. 1- 12.
71. Kendirli MT, Rose DT, Bertram EH. A model of posttraumatic epilepsy after penetrating brain injuries: effect of lesion size and metal fragments. // Epilepsia. - 2014. - T. 55. - C. 1969-77.
72. Aronica E. et al. Characterization of pathology. // Animal Models of Seizures and Epilepsy. -2017. - C. 139-160.
73. Kelly KM. Poststroke epilepsy. // Animal Models of Seizures and Epilepsy. -2017. - C. 727-742.
74. Davis PE, et al. Increased electroencephalography connectivity precedes epileptic spasm onset in infants with tuberous sclerosis complex. // Epilepsia. -
2019. - T. 12.
75. Jeoang A, Wong M. Tuberous sclerosis and other mTORopathies. // Animal Modles of Seizures and Epilepsy. - 2017. - C. 797-812.
76. Reschke, C.R.,. Henshall DC. microRNA and epilepsy // Advances in Experimental Medicine and Biology. - 2015. - T. 888. - C. 41-70.
77. Song, Y.J. et al. Temporal lobe epilepsy induces differential expression of hippocampal miRNAs inclue and miR-23 a/b // Brain Research. - 2011. - T. 1387. - C. 134-140.
78. Hu K. et al. MicroRNA expression profile of the hippocampus in a rat model of temporal lobe epilepsy and miR-34 a-targeted neuroprotection against hippocampal neurone cell apoptosis post-status epilepticus // BMC Neuroscience.
- 2012. - T. 13. - C. 115.
79. Kan, A.A. et al. Genome-wide microRNA profiling of human temporal lobe epilepsy identifies modulators of the immune response // Cellular and Molecular Life Sciences. - 2012. - T. 69. - C. 3127-3145.
80. Bot, A.M., Debski, K.J., Lukasiuk, K. Alterations in miRNA levels in the dentate gyrus in epileptic rats // PLoS One. - 2013. - T. 8. - C. 76051.
81. Gorter, J.A. et al. Hippocampal subregion-specific microRNA expression during epileptogenesis in experimental temporal lobe epilepsy // Neurobiology of Disease. - 2014. - T. 62. - C. 508-520.
82. Wang, J. et al. Circulating microRNAs are promising novel biomarkers for drug-resistant epilepsy // Scientific Reports. - 2015. - T. 5. - C. 10201.
83. Wang, J. et al. Genome-wide circulating microRNA expression profiling indicates biomarkers for epilepsy // Scientific Reports. - 2015. - T. 5. - C. 9522-9531.
84. База данных TissueAtlas. Ludwig, Nicole, et al.Distribution of miRNAexpression across human tissues// Nucleic acids research. - 2016. - T. 44.8. - C. 3865-3877.
85. База данных MirTarBase.
https://mirtarbase.cuhk. edu. cn/~miRTarBase/miRTarBase 2022/php/index.php .
Ссылка на научную публикациюmiRTarBase update 2022: an informativeresource for experimentally validated miRNA-target interactions.
86. База данных ShinyGo 0.77http://bioinformatics.sdstate.edu/go/
87. База данных STRING https://string-
db.org/cgi/input?sessionId=b4t1dabHs1F6&input page show search=on
Ссылка на научную публикацию. Szklarczyk D. et al. The STRING database in 2023: protein-protein association networks and functional enrichment analyses for any sequenced genome of interest // Nucleic Acids Research. - 2023.
- T. 51. - C. 638-646.
88. Alapirtti T. et al. The production of IL-6 in acute epileptic seizure: A video-EEG study // Journal of Neuroimmunology. - 2018. - T. 316. - C. 50-55.
89. Rana, A., & Musto, A. E. The role of inflammation in the development of epilepsy // Journal of Neuroinflammation. - 2018. - T. 15(1).
90. Henshall, D. C., & Simon, R. P. Epilepsy and Apoptosis Pathways // Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. - 2005. T. 25(12). - C. 1557¬1572.
91. Marchi N et al. Blood-brain barrier dysfunction and epilepsy: Pathophysiologic role and therapeutic approaches // Epilepsia. - 2012. - T. 53(11). - C. 1877-1886.


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ