ВВЕДЕНИЕ 4
1 Обзор литературы 6
1.1 P. sibiricaкак объект исследования 6
1.1.1 Общая характеристика P. sibirica 6
1.1.2 Акселерация генеративного развития сосны сибирской 8
1.2 Зиготический эмбриогенез хвойных видов 10
1.3 Соматический эмбриогенез в культуре in vitro 14
1.4 Процесс и этапы соматического эмбриогенеза 19
1.4.2 Пролиферация 21
1.4.3 Созревание 21
1.4.4 Прорастание 22
1.5 Особенности соматического эмбриогенеза хвойных на примере Pinussibirica23
1.6 Роль состава питательной среды и условий культирования в процессе
индукции соматического эмбриогенеза 25
2 Объект и материалы исследования 29
2.1 Объект исследования 29
2.2 Материалы исследования 29
2.3 Процесс подготовки и стерилизации 29
2.4 Процесс приготовления питательных сред и введение эксплантов в
культуру in vitro 33
2.5. Цитологический анализ и статистическая обработка данных 37
3 Заключение и выводы 46
Список литературы 47
Актуальность. Хвойные деревья - неотъемлемая часть жизни человека и жизненно важный компонент лесного биоразнообразия. В частности, хвойные деревья являются возобновляемыми источники продуктов питания, кормов, дров, древесины и других ценных недревесных продуктов. Мировой спрос на древесину повышается каждый год и для того чтобы снизить нагрузку на существующие леса, необходимы глобальные усилия. Лесные плантации могут стать основным источником древесных материалов в ближайшем будущем. (Gupta. 2004; Malabadi R. et al. 2007c; Malabadi R. et al. 2008).
Сосна сибирская (Pinus sibirica Du Tour) - это ценная хвойная порода, произрастающая на территории России и имеющая широкий естественный ареал. Несмотря на широкую географию распространения, кедр сибирский кедр тяжело выращивать для промышленных лесосырьевых плантаций ввиду особенностей половой репродукции данного вида: семена кедровой сосны полиэмбриональны, и в одном только мегагаметофите может располагаться до шестнадцати зародышей. Такие полиэмбриональные семена требуют продолжительной стратификации, занимающей около полугода (Третьякова, 2017). В настоящее время вид также считается уязвимым вследствие лесных пожаров, антропогенного фактора, а также климатических изменений, происходящих во внешней среде.
Достижения в биотехнологии хвойных пород открывают новые возможности в области вегетативного размножения и генной инженерии. Разработка методов микроклонального размножения имеет множество потенциальных применений. В настоящее время многими учеными соматический эмбриогенез уже признается одним из наиболее перспективных направлений в области биотехнологии лесных видов деревьев (von Arnold et al., 2002, Klimaszewska 2007, Park 2013). Соматический эмбриогенез основан на тотипотентности соматических клеток растений - способности в полной мере реализовать генетическую информацию и давать начало целому организму.
Благодаря своей эффективности в регенерации растений соматический эмбриогенез стал незаменимым инструментом для ускорения развития разновидностей деревьев и их внедрения.
На данный момент в международной науке известны случаи успешного применения соматического эмбриогенеза и получения эмбриоидов более 30 видов рода Pinus.В нашей стране первые исследования данной проблемы и применения соматического эмбриогенеза к размножению хвойных пород начали проводить в Красноярском Институте леса, Сибирском отделении РАН (Третьякова, 2009).
В данной работе исследуется процесс инициации соматического эмбриогенеза сосны сибирской кедровой и влияние гормонов растительного происхождения на получение эмбриогенных каллусов в условиях in vitro. Следует отметить, что раннее подобные сравнения влияния гормонов в различных концентрациях на инициацию соматического эмбриогенеза в условиях культуры in vitro не проводилось.
Целью данной работы являлось получение эмбриогенных каллусов и изучение влияния гормонов ауксиновой и цитокининовой природы на инициацию и пролиферацию эмбриогенных культур P. Sibirica.
Задачи исследования:
1 Изучить процесс инициации и получения эмбриогенных культур из эксплантов различных генотипов.
2 Получить маркёры эмбриогенных каллусов на морфологическом и цитологическом уровнях.
3 Установить связь между концентрацией гормонов ауксиновой и цитокининовой природы и получением эмбриогенных каллусов
Соматический эмбриогенез является современной моделью исследования процессов дифференцировки и дедифференцировки растительных клеток, а также физиологических и молекулярно-генетических внутренних процессов (von Arnold et al., 2002). В настоящее время данный метод активно используется для получения и распространения генетически ценных особей деревьев, и повышения продуктивности лесов в результате насаждения полученных клоновых сеянцев, отличающихся улучшенным качеством древесины (Park, 2002; Pullman, 2010).
В проведенном исследовании был запущен процесс соматического эмбриогенеза сосны сибирской P.sibirica.Была исследована зависимость от концентрации гормонов растительного происхождения на процесс инициации соматического эмбриогенеза. Были получены каллусные культуры из зиготических зародышей деревьев №1-6. При этом формирование каллуса и индукция эмбриогенных культур были получены у эксплантов, собранных с деревьев №3 и 4.
По результатам проведенного исследования были сделаны следующие выводы:
1. Наиболее интенсивный рост каллусных культур был отмечен на среде DCR с применением гормона растительного происхождения альфа- нафтилуксусной кислоты и 6-бензиламинопурина в соотношении 2:1 и 4:2.
2. Наибольшей каллусной активностью обладали образцы семян с зиготическим зародышем находившихся на стадии инициации семядолей (3-3,5 мм.)
3. Индукция соматического эмбриогенеза зависит от дерева-донора. Рост каллусной массы наиболее активно шел у эксплантов двух деревьев (№3 и 4 из 7).
4. Удлиненные клетки неэмбриогенного каллуса способны сохраняться в культуре 9 мес. без субкультивирования.
1. Бабикова А. В., Горпенченко Т. Ю., Журавлев Ю. И. Растение как объект биотехнологии // Комаровские чтения. - Вып. LV. - 2007. - С. 184-211.
2. Баранчиков Ю.Н. Этапы морфогенеза вегетативных почек лиственницы сибирской и его модификации насекомыми галлообразователями // Ботанические исследования в Сибири. 1995. № 4. С. 12-18.
3. Барсукова А. В. Регуляция соматического эмбриогенеза у видов лиственницы в культуре in vitro / автореферат дис. 03.01.05 - Красноярск, 2011 - с. 1-15.
4. Батыгина Т.Б., Васильева В.Е. Размножение растений: Учебник. — СПб.: Изд-во С.-Петерб. ун-та, 2002. — 232 с.
5. Белоруссова, А.С. Особенности формирования соматических зародышей у лиственницы сибирской: эмбриологические аспекты/ А.С. Белоруссова, И.Н. Третьякова // Онтогенез. - 2008. Т. 39. - №2. - C.1-10.
6. Зайнутдинова Э.М., Круглова Н.Н., Шаяхметов И.Ф. Роль АБК в соматическом эмбриогенезе растений в культуре in vitro // Физиология и биохимия культ. растений. — 2005. — 37, № 3. — С. 208—219.
7. Калинин Ф.Л., Кушнир Г.П., Сарнацкая В.В. Технология микроклонального размножения растений. — Киев: Наук. думка, 1992. — 232 с.
8. Константинова Т.Н., Аксенова Н.П., Сергеева Л.И., Чайлахян М.Х. Взаимное влияние света и гормонов на регуляцию морфогенетических процессов в культуре in vitro // Физиология растений. — 1987. — 34, № 4. — С. 795—802.
9. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1973. 343 с.
10. Минина Е.Г. Пол у сосны обыкновенной // Вопросы физиологии половой репродукции хвойных / Красноярск: ИЛиД, 1975. С. 68-89.
11. Минина Е.Г., Третьякова И.Н. Геотропизм и рост хвойных / Под. ред. Реймерса Ф.Э. Новосибирск: Наука, 1983. 200 с.
12. Митрофанова, И. В. Соматический эмбриогенез как система in vitro размножения культурных растений / И.В. Митрофанова // Физиология и биохимия культ. растений. - Киев, 2009. - Т. 41, №6 - С. 496-508
13. Паушева З.П. Практикум по цитологии растений. М.: Колос, 1980. 340 с.
14. Рокицкий П. Ф. Биологическая" статистика. — Минск : Вышэйш. школа, 1973. — 319 с.
15. Третьякова И.Н., Барсукова А.В. Соматический эмбриогенез лиственниц и кедра сибирского в Сибири // Лесоведение, 2012, № 6, с. 63-70.
16. Третьякова И.Н. Способ микроклонального размножения лиственницы сибирской в культуре in vitro через соматический эмбриогенез на среде АИ для плантационного лесовыращивания: Патент № 245344 // Федеральная служба по интелектуальной собственности. 2012. Бюл. №20. 7 с.
17. Третьякова И.Н. Сходства и различия зиготического и соматического эмбриогенеза сибирских видов хвойных // Материалы XII съезда Русского ботанического общества «Фундаментальные и прикладные проблемы ботаники в начале XXI века», Петрозаводск, 22-27 сентября 2008. Ч. 1. С. 298-300.
18. Третьякова И.Н. Эмбриология хвойных: физиологические аспекты. Новосибирск, Наука, 1990. 157 с.
19. Третьякова И.Н., Баранчиков Ю.Н., Буглова Л.В., Белоруссова А.С., Романова Л.И. Особенности формирования генеративных органов лиственницы сибирской и их морфогенетический потенциал // Успехи современной биологии. 2006. Т. 126. № 5. С. 472-480.
20. Чавчавадзе Е.С., Яценко-Хмелевский А.А. Порядок сосновые (Pinales) // Жизнь растений в шести томах. Т.4 / Под ред. Грушвицкого И.В. М.: Просвещение, 1978. С. 350-354.
21. Alvarez J.M., Bueno N., Cortizo M., Ordas R.J. Improving plantlet yield in Pinus pinaster somatic embryogenesis. Scandinavian Journal of Forest Research 28: 613-620; 2013.
22. Ammirato P.V. Patterns of development in culture // Tissue culture in forestry and agriculture / Eds. R.R. Henke, K.W. Hughes, M.J. Constantin, A. Hollaender. — New York: Plenum Press, 1985. — P. 9—29.
23. Attree S.M., Dunstan D.I., Fowke L. Initiation of embryogenic callus and suspension cultures, and improved embryo regeneration from protoplasts of white spruce (Picea glauca) // Can J Bot. 1989. V. 67. P. 1790-1795.
24. Attree, S. M.; Fowke, L. C. Embryogeny of gymnosperms: advances in synthetic seed technology of conifers. Plant Cell Tiss. Organ Cult. 35:1-35; 1993.
25. Chalupa W. Somatic embryogenesis and plantlet regeneration from cultured immature and mature embryos of Picea abies (L.) // Karst. Com. Inst. For. Cech. 1985. V. 14. P. 57-63.
26. Chowdhary, C.R. The embryogeny of conifers: a review. // Phytomorphology, 12. 1962. P. 313-338. 33. Corredoira E., Ballester A., Vieitez A.M. Proliferation, maturation and germination of Castanea sativa Mill. somatic embryos originated from leaf explants // Ann. Bot. — 2003. — 92. — P. 129—136.
27. Corredoira E., San-Jose M.C., Ballester A., Vieitez A.M. Cryopreservation of zygotic embryo axes and somatic embryos of European chestnut // Cryo Lett. — 2004. — 25, N 1. — P. 33—42.
28. de Vries SC, Booij H, Meyerink P, Huisman G, Wilde DH, Thomas TL & van Kammen A . Acquisition of embryogenic potential in carrot cell-suspension culture. Planta 176: 196-204, 1988a.
29. Dodeman V.L., Ducreux G., Kreis M. Zygotic embryogenesis versus somatic embryogenesis // J. Exp. Bot. — 1997. — 48, N 313. — P. 1493—1509. 37. Dunstan D.I., Tautorus T.E., Thorpe T.A. Somatic embryogenesis in woody plants // In vitro Embryogenesis in Plants / Ed. T.A. Thorpe. — Netherlands, Dordrecht: Kluwer Acad. Publ., 1995. — P. 471—538.
30. Engelmann F. Importance of cryopreservation for the conservation of plant genetic resources. In: Engelmann F, Takagi H (eds) Cryopreservation of tropical plant germplasm - current research progress and application. JIRCAS, Tsukuba/IPGRI, Rome, 2000, pp 8-20.
31. Filonova L, Bozhkov P & von Arnold S. Developmental pathway of somatic embryogenesis in Picea abies as revealed by time-lapse tracking. J. Exp. Bot. 51: 249-264, 2000a.
32. Find, J. I. Changes in endogenous ABA levels in developing somatic embryos of Norway spruce (Picea abies (L.) Karst.) in relation to maturation medium, desiccation and germination. Plant Sci. 128:75-83; 1997.
33. Finer J.J., Kriebel H.B., Becwar M.R. Initiation of embryogenic callus and suspension cultures of eastern white pine (Pinus strobus L.) // Plant Cell Rep. 1989. V. 8. P. 203-206. 46
34. Fujimura T., Komamine A. Involvement of endogenous auxin in somatic embryogenesis in a carrot cell suspension culture // Ztschr. Pflanzenphysiol., 1979, 95, № 1, p. 13-19.
35. Gao, Fang, et al. "Selection of culture conditions for callus induction and proliferation by somatic embryogenesis of Pinus koraiensis."Journal of Forestry Research 32 (2021): 483-491.
36. Gower ST, Richards JH. Larches: deciduous conifers in an evergreen world. Biosciences 40:818-826; 1990.
37. Gray D.J. Nonzygotic embryogenesis // Plant Tissue Culture Concepts and Laboratory Exercises / Eds. R.H. Trigiano, D.J. Gray. — Tokyo: CRC Press, 1996. — P. 133—147.
38. Gray D.J., Purohit A. Somatic embryogenesis and development of synthetic seed technology // Crit. Rev. Plant Sci. — 1991. — 10. — P. 33—61.
39. Gupta P.K., Grob J.A. Somatic embryogenesis in conifers // In: Jain S., Gupta P., Newton R. (eds) Somatic embryogenesis in woody plants / Kluwer Academic Publishers. Dordrecht, 1995. V. 1. P. 81-98.
40. Gupta P.K., Timmis R., Timmis K. et al. Increase in forest productivity through biotechnology // Crop Productivity and Sustainability-Shaping the Future / Eds. V.L. Chopra, R.B. Singh, A. Verma. — New Delhi: Oxford&IBH Publishing Co. Pvt. Ltd., 1999. — P. 745—752.
41. Gupta PK, Holmstrom DG, Larson B, Zucati J. Development and stratification of pine somatic embryos using a liquid system. US Patent 20050026281, 2005.
42. Gupta, P.K. and D.J. Durzan. Shoot multiplication from mature trees of Douglas-fir (Pseudofsuga menziesii) and sugar pine (Pinus lambertiana). Plant Cell Rep. 4:177-179; 1985.
43. Gutmann M, von Aderkas P, Label P, Lelu M-A. Effects of abscisic acid on somatic embryo maturation of hybrid larch. J Exp Bot 47: 1905-1917; 1996.
44. Hay EI, Charest PJ. Somatic embryo germination and desiccation tolerance in conifers. In: Mohan JS, Gupta PK, Newton RJ (eds) Somatic embryogenesis in woody plants, vol 4. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, pp 61-69, 1999.
45. Joy IV, R. W.; Kumar, P. P.; Thorpe, T. A. Long-term storage of somatic embryogenic white spruce tissue at ambient temperature. Plant Cell Tiss. Organ Cult. 25:53-60; 1991a.
46. Kartha, K. K.; Fowke, L. C.; Leung, N. L.; Caswell, K. L.; Hakman, I. Induction of somatic embryos and plantlets from cryopreserved cell cultures of white spruce (Picea glauca ). J. Plant Physiol. 132:529-539; 1988.
47. Klimaszewska K, Hargreaves C, Lelu-Walter M-A, Trontin J-F. Advances in conifer somatic embryogenesis since year 2000. In: Germana MA, Lambardi M (eds)
48. Klimaszewska K. Plantlet development from immature zygotic embryos of hybrid larch through somatic embryogenesis. Plant Sci 63:95-103; 1989a.
49. Klimaszewska K., Bonga J.M., Park Y.S., Lelu-Walter M.-A., Harvengt L., Trontin J.F., MacEacheron I. Initiation of somatic embryogenesis in Pinus banksiana, P. strobus, P. pinaster, and P. sylvestris at three laboratories in Canada and France // Plant Cell Tiss. Organ Cult. 2006. V. 86. P. 87-101.
50. Klimaszewska K., Cyr D.R. Conifer somatic embryogenesis: I. Development // Dendrobiology. 2007. V. 48. P. 31-39.
51. Klimaszewska K., Park Y.-S., Overton C., McEacheron I., Bonga J.M. Optimized somatic embryogenesis in Pinus strobus L. // In Vitro Cell Dev. Biol.Plant.
2001. V. 37. P. 392-399.
52. Klimaszewska, K.; Bernier-Cardou, M.; Cyr, D. R.; Sutton, B. C. S. Influence of gelling agents on culture medium gel strength, water availability, tissue water potential, and maturation response in embryogenic cultures of Pinus strobus L. In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant 36:279-286; 2000.
53. Klimaszewska, K.; Smith, D. R. Maturation of somatic embryos of Pinus strobus is promoted by a high concentration of gellan gum. Physiol. Plant. 100:949¬957; 1997.
54. Kong, L.; Yeung, E. C. Effects of silver nitrate and polyethylene glycol on white spruce (Picea glauca ) somatic embryo development: enhancing cotyledonary embryo formation and endogenous ABA content. Physiol. Plant. 93:298-304; 1995.
55. Lambardi M, De Carlo A. Application of tissue culture to the germplasm conservation of temperate broad-leaf trees. In: Jain SM, Ishii K (eds) Micropropagation of woody trees and fruits. Kluwer Academic, Dordrecht, 2003, pp 815-840.
56. Lelu M.-A., Bastien C., Drugeault A., Gouez M.L, Klimaszewska K. Somatic embryogenesis and plantlet development in Pinus sylvestris and Pinus pinaster on medium with and without plant growth regulators // Physiol. Plant. 1999. V. 105. P. 719-728. 48
57. Lelu M.A., Klimaszewska K., Charest P.J. Somatic embryogenesis from immature and mature zygotic embryos and from cotyledons and needles of somatic plantlets of Larix // Can. J. For. Res. 1994. V. 24. № 1. P. 100-106.
58. Lelu-Walter M-.A., Bernier-Cardou M., Klimaszewska K. Clonal Plant Production from self- and cross-pollinated seed families of Pinus sylvestris (L.) through somatic embryogenesis // Plant Cell Tiss. Organ Cult. 2008. V. 92. P. 31-45.
59. Lelu-Walter M-A, Bernier-Cardou M., Klimaszewska K. Simplified and improved somatic embryogenesis for clonal propagation of Pinus pinaster (Ait) // Plant Cell Rep. 2006. V. 25. P. 767-776.
60. Lelu-Walter M-A, Thompson D, Harvengt L, Sanchez L, Toribio M, Paques LE. Somatic embryogenesis in forestry with a focus on Europe: state-ofthe- art, benefits, challenges and future direction. Tree Genet Genomes 9: 883-899; 2013.
61. Lelu-Walter M-A., Bernier-Cardou M., Klimaszewska K. Clonal plant production from self- and crosspollinated seed families of Pinus sylvestris (L.) through somatic embryogenesis // Plant Cell Tiss. Organ Cult. 2008. V. 92. P. 31-45.
62. Lelu-Walter M-A., Paques L.E. Simplified and improved somatic embryogenesis of hybrid larches (Larix x eurolepis and Larix x marschlinsii). Perspectives for breeding // Ann. For. Sci. 2009. V. 66. P. 104.
63. Li, X. Y.; Huang, F. H.; Grur, E. E. Polyethylene glycol-promoted development of somatic embryos in loblolly pine (Pinus taeda L.). In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant 33:184-189; 1997.
64. Litvay, J. D.; Verma, D. C.; Johnson, M. A. Influence of a loblolly pine (Pinus taeda L.) culture medium and its components on growth and somatic embryogenesis of the wild carrot (Daucus carota L.). Plant Cell Rep. 1985. 4:325¬328; 1985.
65. Malabadi R. B., Teixeira da Silva J. A., Mulgund G. S. Induction of somatic embryogenesis in Pinus caribaea. Tree and Forestry Science and Biotechnology, 5(1), 27-32, 2011b.
66. Malabadi R.B., Choudhury H., Tandon P. Plant regeneration via somatic embryogenesis in Pinus kesiya (Royle ex. Grod.) // Appl Biol Res. 2002. V. 4. P. 1¬10.
67. Malabadi R.B., Van Staden J. Somatic embryogenesis from vegetative shoot apices of mature trees of Pinus patula // Tree Physiology. 2005. V. 25. P. 11¬16. 78. Merkle S.A., Dean J.E. Forest tree biotechnology // Curr. Opin. Biotechnol. — 2000. — 11, N 3. — P. 298—302. 79. Merkle S.A., Parrott W.A., Flinn B.S. Morphogenic aspects of somatic embryogenesis // In vitro embryogenesis in plants / Ed. T.A. Thorpe. — Netherlands: Dordrecht: Kluwer Acad. Publ., 1995. — P. 155— 203. 49
68. Nomura K., Komamine A.I. Identification and isolation of single cells that produce somatic embryos at a high frequency in a carrot suspension culture. Plant
Physiol. 79: 988-991; 1985.
69. Nunes, Sandra, et al. "Somatic embryogenesis of hybrid Pinus elliottii var. elliottiix P. caribaea var. hondurensis and ploidy assessment of somatic plants."Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC) 132.1 (2018): 71-84.
70. Singh H. Embryology of Gymnosperms. Berlin: Gebruder Borntraeger. 1978. 302 p.
71. Skolmen R.G. Acacia (Acacia koa Gray) // Biotechnology in Agriculture and Forestry. Trees 1 / Ed. Y.P.S. Bajaj. — Vol. 1. — Berlin: Springer Verlag, 1986. — P. 375—384.
72. Stasolla C., Kong L., Yeung E.C., Thorpe T.A. Maturation of somatic embryos in conifers: morphogenesis, physiology, biochemistry and molecular biology // In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 2002 V. 38. P. 93-105. 9
73. Stasolla C., Yeung E. C. Recent advances in conifer somatic embryogenesis: improving somatic embryo quality // Plant Cell Tiss. Organ Cult. 2003. V. 74. P. 15- 35
74. Von Arnold S, Sabala I., Bozhkov P. et al. Developmental pathways of somatic embryogenesis // Plant Cell Tissue Organ Cult. 2002. V. 69. P. 233-249.