Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Разработка системы экспрессии рекомбинантных генов в клетках Enterococcus spp

Работа №136752

Тип работы

Дипломные работы, ВКР

Предмет

биология

Объем работы45
Год сдачи2019
Стоимость4220 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
15
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


Список сокращений 3
Введение 4
Глава 1. Обзор литературы 5
1.1 Плазмиды как векторы для доставки ДНК в клетки реципиентов 5
1.2 Альтернатива E.coliкак системы синтеза гетерологичных белков 6
1.3 Определение пробиотиков 9
1.4 Характеристика бактерий рода Enterococcusи их применение в качестве
пробиотических препаратов 10
1.5 Характеристика бактериоцинов энтерококков 12
1.6 Области применения флуоресцентных белков 14
Глава 2. Материалы и методы 17
2.1 Штаммы и условия культивирования 17
2.2 Выделение и очистка ДНК 17
2.2.1 Экспресс выделение геномной ДНК методом термического лизиса 17
2.2.2 Выделение плазмидной ДНК из клеток E.coli 17
2.2.3 Экстракция тотальной ДНК 18
2.2.4 Выделение ДНК из агарозного геля 19
2.2.5 Очистка ПЦР амплификата 19
2.3 Полимеразная цепная реакция (ПЦР) 19
2.4 Линейный электрофорез в агарозном геле 20
2.5 Молекулярное клонирование 20
2.5.1 Рестрикция вектора и амплификата 20
2.5.2 Лигирование 21
2.5.3 Трансформация клеток E.coli 21
2.6 Электропорация клеток E.faecium 21
2.7 Оценка экспрессии репортерных генов 22
2.7.1 Детекция флуоресценции 22
2.7.2 Индукция флуоресценции синтетическим феромоном EntF 22
2.7.3 Оценка стабильности плазмид в энтерококках 23
Глава 3. Результаты 24
3.1 ПИР-амплификация слитых конструкций, состоящих из промоторной области
гена entA и кодирующей части репортерного гена 24
3.2 Клонирование слитых конструкций в плазмиду и трансформация E.coli 26
3.3 Электропорация E.faecium 28
3.4 Индукция экспрессии репортерных генов при помощи синтетического
феромона 32
3.5 Оценка стабильности плазмиды pBSU101 в клетках энтерококков 33
Глава 4. Обсуждение полученных результатов 35
Заключение 38
Выводы 40
Список литературы 41

В настоящее время идет активный поиск новых систем экспрессии рекомбинантных генов в клетках самых разных микроорганизмов. Одним из перспективных направлений этого поиска можно считать создание рекомбинантных штаммов энтерококков, которые могут быть применены в качестве «живых вакцин» - пробиотических штаммов содержащих рекомбинантные плазмиды и экспрессирующих поверхностные антигенные белки патогенных бактерий (Гупаловаи др.,2013).
Одними из наиболее удобных для использования репортерных генов на ранних этапах разработки экспрессионных векторов являются гены, кодирующие разнообразные флуоресцентные белки. Наблюдать экспрессию этих генов в бактериальных культурах возможно без трудоемкого этапа выделения и анализа мРНК.
Кроме того, в настоящее время активно изучается возможность использования энтерококков в качестве пробиотических бактерий для человека и животных. Создание штамма энтерококков, прижизненно меченного флуоресцентными белками, могло бы способствовать изучению длительности персистирования, локализации и установлению эффективности вводимых пробиотиков в организме лабораторных животных.
В связи с этим была поставлена следующая цель исследования:
Исследовать экспрессию рекомбинантных генов, помещенных под контроль промотора гена entAв клетках энтерококков.
Задачи исследования:
1. Создать генетическую конструкцию, состоящую из кодирующей части генов флуоресцентных белков turborfpи egfp,и промоторной области гена entA штамма Enterococcus faeciumL-3.
2. Создать плазмидный вектор, содержащий полученную генетическую конструкцию и внедрить его в клетки в клетки Enterococcus faecium.
3. Качественно оценить экспрессию репортерных генов в клетках полученных рекомбинантных штаммов.


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


В результате проведенной работы был получен рекомбинантный вектор, созданный на основе плазмиды широкого круга хозяев pAT29, в которую была встроена слитая конструкция из кодирующей области гена turborfpи промоторной области гена entA.Внедрение данного вектора в клетки штамма E.coli JM109 привело к появлению целевого фенотипа у бактериальных клеток. При этом присутствие данного вектора в клетках E.faecium A64 привело к приобретению ими устойчивости к селективному фактору спектиномицину, но способность к флуоресценции у штаммов отсутствовала. При трансформации того же штамма E.faeciumплазмидой pBSU101, содержащей ген egfp,наблюдали появление характерной флуоресценции у энтерококков. Это привело нас к заключению, что для применения в качестве репортерного гена, позволяющего оценить экспрессию гетерологичных генов в энтерококках, а также для их прижизненного мечения, следует использовать ген egfp вместо turborfp.
В перспективе планируется использовать полученные данные для конструирования рекомбинантных векторов, которые могли бы способствовать гетерологичной экспрессии генов в клетках различных грамположительных и грамотрицательных бактерий.



1. Алехина Г.Г. Пробиотики - новый подход к старым проблемам / Г.Г.
Алехина, А.Н. Суворов // Успехи современного естествознания. - 2007. - №6. - с 36-39.
2. Баймиев Ан.Х. Получение флуоресцентно меченных штаммов клубеньковых бактерий дикорастущих бобовых для их детекции in vivo и in vitro / Ан.Х. Баймиев, Р.С. Ямиданов, Р.Т. Матниязов, Д.К. Благова, Ал.Х. Баймиев, А.В. Чемерис // Молекулярная биология. - 2011. - №6. - с 984-991.
3. Бондаренко В.М. Симбиотические энтерококки и проблемы энтерококковой оппортунистической инфекции / В. М. Бондаренко, А. Н. Суворов - 2007.
4. Госманов Р.Г. Ветеринарная санитарная микробиология / Р.Г. Госманов, А.И. Ибрагимова. - Казань. - 2006.
5. Гупалова Т.В. Создание и опыт применения живой вакцины на основе штамма пробиотика Enterococcus faecium L3 для профилактики вагинальной инфекции, вызванной Streptococcus agalactiae / Т. В. Гупалова, Г. Ф. Леонтьева, Е. И. Ермоленко, К. Б. Грабовская, Т. А. Крамская, А. Н. Цапиева, И. В. Королева, А. Н. Суворов // Медицинский академический журнал. - 2013. - №2. - с 64-70.
6. Ермоленко Е.И. Молочнокислые бактерии: индивидуальные особенности действия на патогенные микроорганизмы, макроорганизм и его микробиоту / Е.И. Ермоленко - 2009.
7. Журавлева Г.А. Генная инженерия в биотехнологии / Г.А. Журавлева. - СПб: Эковектор.- 2016. - с 328.
8. Каширская Н.Ю. Значение пробиотиков и пребиотиков в регуляции кишечной микрофлоры / Н.Ю. Каширская // Трудный пациент. - 2009. - №2.
9. Миронова А.В. Факторы вирулентности энтерококков / А.В. Миронова, О.А. Коршукова // Здоровье. Медицинская экология. Наука. - 2015. - №2. - с73-78.
10. Суворов А.Н. Пробиотики. Критерии выбора оптимального штамма / А.Н. Суворов, Г.Г. Алехина // Гастроэнтерология Санкт-Петербурга. - 2002. - № 2-3. - с 126.
11. Щепитова Н.Е. Биологические свойства фекальных изолятов энтерококков, выделенных от животных / Н.Е. Щепитова - 2015.
12. Лппё J. Protein Secretion in Gram-Positive Bacteria: From Multiple Pathways to Biotechnology / J. Лппё, Л. Economou, K. Bernaerts // Current Topics in Microbiology and Immunology. - 2016. - № 404. - p 267-308.
13. Arias C.A. The rise of the Enterococcus: beyond vancomycin resistance / C.A.Arias, B.E. Murray // Nature Reviews Microbiology. - 2012. - № 10(4). - 266-278.
14. Aymanns S. High-Level Fluorescence Labeling of Gram-Positive Pathogens / S. Aymanns, S. Mauerer, Ger van Zandbergen, C. Wolz, B. Spellerberg // PLoS ONE.
- 2011. - № 6(6), e19822.
15. Bauer R. Regulation of the P-hemolysin gene cluster of Streptococcus anginosus by CcpA / R. Bauer, S.Mauerer, B. Spellerberg // Scientific reports. - 2018.
- № 8(1).
16. Chudakov D.M. Fluorescent proteins and their applications in imaging living cells and tissues / D.M. Chudakov, M.V. Matz, S. Lukyanov, K.A. Lukyanov // Physiological Reviews. - 2010. - № 90(3). - p 1103-1163.
17. Cui W. Exploitation of Bacillus subtilis as a robust workhorse for production of heterologous proteinsand beyond / W. Cui, L. Han, F. Suo, Z. Liu, L. Zhou, Z. Zhou // World Journal of Microbiology and Biotechnology. - 2018. - № 34(10).
18. Czamanski L. N. The art of vector engineering: towards the construction of next-generation genetic tools /L. N. Czamanski, C. A. Westmann, L.
Martins-Santana, Luana de Fatima Alves, L. M. O. Monteiro, M.-E. Guazzaroni, R.Silva-Rocha //Microbial Biotechnology. - 2019. - №12(1). - p 125-147.
19. Fisher K. The ecology, epidemiology and virulence of Enterococcus / K. Fisher, C. Phillips // Microbiology. - 2009. - 155. - № 6. - p1749-1757.
20. Gibson G.R. Dietary modulation of the human colonic microbiota: introducing the concept of prebiotics / G.R. Gibson, M.B. Roberfroid // The Journal of Nutrition. - 1995. - № 125(6).-p1407-1412.
21. Gleich-Theurer U. Human Serum Induces Streptococcal C5a Peptidase Expression / U. Gleich-Theurer, S. Aymanns, G. Haas, S. Mauerer, J. Vogt, В. Spellerberg // Infection and immunity. - 2009. - № 77(9). - p 3817-3825.
22. Hamed M.B. Monitoring Protein Secretion in Streptomyces Using Fluorescent Proteins / M. B. Hamed, K. Vrancken, B. Bilyk, J. Koepff, R. Novakova, L. van Mellaert, M. Oldiges, A. Luzhetskyy, J. Kormanec, J. Anne, S. Karamanou, A. Economou // Frontiers in Microbiology. - 2018. - 9:3019.
23. Hansen J.N. Nisin as a model food preservative / J.N. Hansen., W.E. Sandine// Critical Reviews in Food Science and Nutrition. - 1994. - 34(1). -p 69-93.
24. Hickey R.M. Potential of the enterocin regulatory system to control expression of heterologous genes in Enterococcus/ R.M. Hickey, D.P. Twomey, R.P. Ross1, C. Hill // Journal of Applied Microbiology. - 2003. - № 95(2). -p 390-397.
25. Jiang Y. Polyglutamine toxicity in yeast uncovers phenotypic variations between different fluorescentprotein fusions / Y. Jiang, S. E. Di Gregorio, M. L. Duennwald, P. Lajoie // Traffic. - 2016. - № 18(1). - p 58-70.
26. Karaseva A. Draft Genome Sequence of Probiotic Enterococcus faecium Strain L-3 /A. Karaseva, A. Tsapieva, J. Pachebat, A. Suvorov // Genome Announcements. - 2016. - 4(1):e01622-1.
27. Lederberg J. Cell genetics and hereditary symbiosis / J. Lederberg //Physiological Reviews. - 1952. - №32(4).-p403-430.
28. Liu Y. Probiotics in Disease Prevention and Treatment / Y. Liu, D.Q. Tran, J.M. Rhoads // The Journal of Clinical Pharmacology. - 2018. - №58. -p 164-179.
29. Gilmore M.S. Enterococci From Commensals toLeading Causes of Drug Resistant Infection / M.S. Gilmore, D.B. Clewell, Y. Ike - 2014.
30. Mundy L.M. Relationship between enterococcal virulence and antimicrobial resistance / L.M. Mundy, D.F. Sahm, M.S. Gilmore // Clinical Microbiology Revier. - 2000. - № 13(4).-513-22.
31. Muturi E. Green, Yellow, and Red Fluorescent Proteins as Markers for Bacterial Isolates from Mosquito Midguts / E. Muturi, J. Ramirez, C.-H. Kim // Insects. - 2019. - № 10(2).- p 49.
32. NilsenT. An Exported Inducer Peptide Regulates Bacteriocin Production in Enterococcusfaecium CTC492 /T. Nilsen, I.F. Nes, H. Holo // Journal of Bacteriology. - 1998. - №4.-p1848-1854.
33. O’KeeffeT. Characterization and Heterologous Expression of the Genes Encoding Enterocin A Production, Immunity, and Regulation in Enterococcus faeciumDPC1146/T. O’Keeffe, C. Hill, R. P. Ross // Applied and Environmental Microbiology. - 1999. - №4.-p1506-1515.
34. Paulson I.T. Role of mobile DNA in the evolution of Vancomycin-resistant Enterococcus faecalis / I.T. Paulson, L. Banerjee, G.S. Myers et al. // Science. - 2003. - Vol. 299. -№ 5615. - p 2071-2074.
35. Sava I.G. Pathogenesis and immunity in enterococcal infections / I.G. Sava, E. Heikens, J. Huebner // Clinical Microbiology and Infection. - 2010. - № 16(6). - p 533-540.
36. Semedo T. Virulence factors in food, clinical and reference enterococci: a common trait in the genus? /T. Semedo, M.A. Santos, M.F Lopes, J.J. Figueiredo Marques,M. T. Barreto Crespo, R. Tenreiro // Systematic and applied microbiology. - 2003. - № 26. - p 13-22.
37. Shabayek S. Making Fluorescent Streptococci and Enterococci for Live Imaging / S. Shabayek, B. Spellerberg// Bacterial Patogenesis. - 2016. - p 141-159.
38. Shemiakina I.I. A monomeric red fluorescent protein with low cytotoxicity /
I.I. Shemiakina, G.V. Ermakova, P.J. Cranfill, M.A. Baird, R.A. Evans, E.A.
Souslova, D.B. Staroverov, A.Y. Gorokhovatsky , E.V. Putintseva , T.V. Gorodnicheva, T.V. Chepurnykh , L. Strukova , S. Lukyanov, A.G. Zaraisky , M.W. Davidson, D.M. Chudakov, D. Shcherbo // Nature communications. - 2012. - № 3(1).
39. Shimomura O. The discovery of aequorin and green fluorescent protein / O. Shimomura // Journal of Microscopy. - 2005. - № 217(1). - p 3-15.
40. Trieu-Cuot P. A pair of mobilizable shuttle vectors conferring resistance to spectinomycin for molecular cloning in Escherichia coli and in gram-positive bacteria / Р. Trieu-Cuot, C. Carlier, C. Poyart-Salmeron, P. Courvalin // Nucleic Acids Research. - 1990. - Vol. 18. - № 14.- p 4296.
41. Tsolis K.C. Secretome Dynamics in a Gram-Positive Bacterial Model / K. C. Tsolis , M. B. Hamed, K. Simoens, J. Koepff , T. Busche, C. Ruckert, M. Oldiges, J. Kalinowski, J. Anne, J. Kormanec, K. Bernaerts, S. Karamanou, A. Economou // Molecular and Cellular Proteomics. - 2018. - RA118.000899.
42. Van Wamel W.J. Growth condition-dependent Esp expression by Enterococcus faecium affects initial adherence and biofilm formation / W.J .Van Wamel, A.P. Hendrickx, M.J Bonten, J. Top, G. Posthuma, R.J. Willems// Infection and immunity. - 2007. - № 75(2). - p 924-931.


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.



Подобные работы


©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ