📄Работа №135522

Тема: Содержание представителей рода Mycobacterium в воде и обрастаниях аквариумов с замкнутой системой очистки воды

📝
Тип работы Бакалаврская работа
📚
Предмет биология
📄
Объем: 55 листов
📅
Год: 2017
👁️
Просмотров: 99
4355 руб.
🛒 Купить работу
Не подходит эта работа?
Закажите новую по вашим требованиям
Узнать цену на написание
ℹ️ Настоящий учебно-методический информационный материал размещён в ознакомительных и исследовательских целях и представляет собой пример учебного исследования. Не является готовым научным трудом и требует самостоятельной переработки.
📋 Содержание 📖 Введение ✅ Заключение 📕 Литература 🔍 Похожие 🛒 Купить

📋 Содержание

Введение
Обзор литературы «Микобактерии в замкнутых системах очистки и распределения воды»
1.1. Таксономическое положение, классификация и идентификация микобактерий
1.2. Биологические свойства микобактерий
1.2.1 Структурные особенности клеточной стенки микобактерий
1.2.2. Физиологические особенности и места обитания микобактерий, оценка их численности
1.2.3. Бактериальные биоплёнки с участием микобактерий
1.2.4. Микобактерии в симбиозе с Protozoa
1.3 Условно-патогенные микобактерии и их участие в патогенезе у людей и гидробионтов
1.3.1. Условно-патогенные микобактерии, вызывающие заболевания у гидробионтов
1.3.2. Условно-патогенные микобактерии, вызывающие заболевания у людей
1.4. Современные представления об эффективности санации водных систем в отношении условно-патогенных микобактерий
Материалы и методы
2.1. Объект исследования
2.2. Окраска бактериальных мазков на кислото-спиртоустойчивость
2.3. Методики проведения идентификационных тестов
Результаты и их обсуждение
3.1. Оценка численности микобактерий в исследованных образцах
3.2. Определение оптимального времени оценки
кислото-спиртоустойчивости для бактериальных штаммов
3.3. Идентификация штаммов микобактерий
3.4. Заключение
Выводы
Список литературы

📖 Введение

В настоящее время всё большое внимание уделяется микробиологическим рискам, связанным с аквакультурой, то есть с искусственным разведением гидробионтов (рыб, ракообразных, моллюсков и др.). Современные объекты аквакультуры все чаще конструируются с замкнутым оборотом воды, её фильтрацией и санацией. На таких объектах создаются условия для формирования специфических биоценозов, в первую очередь, микробиоценоза биофильтров и различных типов обрастаний, включающих как автотрофных, так и гетеротрофных микроорганизмов. Появляется все больше литературных данных о присутствии в подобных биоценозах патогенных и условно-патогенных бактерий, в частности микобактерий, способных повлиять на здоровье объектов аквакультуры и обслуживающего персонала. Ежегодно регистрируется рост количества случаев заболеваний кожи, лимфатических сосудов, легочных и генерализованных инфекций, вызванных у людей нетуберкулезными микобактериями.
Широкому распространению и накоплению микобактерий в замкнутых водных системах с дезинфекцией воды способствует специфическое строение оболочки микобактерий. В ней содержатся гидрофобные миколовые кислоты, снижающие чувствительность микобактерий к дезинфекции, облегчающие их прикрепление к твёрдым поверхностям и последующее образование биоплёнок. Таким образом, на объектах аквакультуры и крупнотоннажной аквариумистике актуально изучать присутствие микобактерий не только в воде, но и в грунте, на водных растения, конструкционных элементах, обрастаниях на стенках и в биофильтрах.
В научной литературе имеются ограниченные данные о содержании микобактерий в водных образцах. Недостатком этих исследований является отсутствие эффективного метода выявления микобактерий и отработанного общепризнанного алгоритма проведения этапов их выявления (Falkinham, 2009).
На кафедре микробиологии СПбГУ на протяжении нескольких последних лет исследуется персистенция санитарно-показательных и условно-патогенных бактерий в водных системах с рециркуляцией санируемой воды на примере крупнотоннажных аквариумов Санкт-Петербургского океанариума. Ранее нами была проведена предварительная оценка содержания микобактерий в воде одного из пресных аквариумов, она составила не менее 10 КОЕ/мл воды (Шакирова, 2016). Был предложен алгоритм выявления этих бактерий из водных образцов. На этом этапе было выделено 3 первых штамма водных условно-патогенных микобактерий.
В соответствии с вышеизложенной целью данной работы было выявление и оценка численности микобактерий в воде и обрастаниях пресноводного крупнотоннажного аквариума Санкт-Петербургского Океанариум, выделение и идентификация новых штаммов микобактерий. Для достижения постановленной цели были сформулированы следующие задачи:
1. Оценить численность микобактерий в воде и обрастаниях пресноводного аквариума № 4. Сформировать коллекцию штаммов микобактерий.
2. Определить оптимальное время оценки кислото-спиртоустойчивости для выделенных штаммов при оценке их численности.
3. Провести идентификацию штаммов микобактерий в коллекции по фенотипическим признакам.

Возникли сложности?

Нужна качественная помощь преподавателя?

👨‍🎓 Помощь в написании
🎓 Дипломные 📘 Магистерские 📙 Диссертации 📗 Курсовые 📝 Статьи 📄 ВКР

✅ Заключение

Таким образом, предлагаемый нами алгоритм оценки численности микобактерий из воды и обрастаний с помощью прямого высева на неселективную среду Löwenstein-Jensen с желточной эмульсией и скрининг клонов на кислото-спиртоустойчивость в сочетании с тестом на арилсульфатазу оказался успешным.
Установленное нами содержание микобактерий в воде и обрастаниях– 1,1 ×103 КОЕ/мл воды и 2,3 × 107 КОЕ/г сырого веса обрастаний выше имеющихся на сегодняшний день данных о количественном содержании микобактерий в пресной воде из разных типов водных объектов (Fischeder et al., 1991; Le Dantec et al., 2002; Шакирова, 2016).
Все очищенные и идентифицированные штаммы микобактерий представлены следующими видами: M.porcinum,M.abscessus, M.smegmatis, M. senegalense, M.salmonifilum.
Все выделенные штаммы микобактерий относятся к условно-патогенным видам, опасным для персонала и гидробионтов. Основным источником этих микобактерий являются обрастания, в которых микобактерии находятся в прикреплённом состоянии в составе биоплёнок, что делает их устойчивыми в отношении дезинфицирующих воздействий.
Важно отметить, что видыM.porcinum,M. abscessusиM.salmonifilumранеенами были выделены из воды другого аквариума (№ 19).Это может указывать на значительное распространение данных видов микобактерий в пресноводных аквариумах Океанариума.

Нужна своя уникальная работа?
Срочная разработка под ваши требования
Рассчитать стоимость
ИЛИ
Поиск аналога

📕 Список литературы

1. Шакирова А.С. 2016. Выявление представителей рода Mycobacterium в аквариумной воде, находящейся в замкнутой системе очистки. СПбГУ. Выпускная квалификационная работа, СПбГУ.
2. Agbalika F, Dailloux M, Escallier,Joret, JC. 1984. Analyses bacteriologiques et recherché de mycobacteries al’aquarium tropical de Nancy. Revue fr. Aquariol. 10:113–124.
3. Akbari S, Mosavari N, Tadayon K, Rahmati-Holasoo H.Isolation of Mycobacterium fortuitum from fish tanks in Alborz, Iran. Iran J. Microbiol. 6(4):234-9.
4. Aro L, Correa, Martínez K, Ildefonso A. 2014. Characterization of Mycobacterium salmoniphilum as causal agent of mycobacteriosis in Atlantic salmon, Salmo salar L., from a freshwater recirculation system. J. Fish. Dis, 37: 341–348.
5. Aronson JD. 1926. Spontaneous Tuberculosis in Salt Water Fish. J. Infect. Dis. 39(4): 315-320.
6. Ashburner, LD. 1977. Mycobacteriosis in hatchery-confined chinooksalmon (Oncorhynchus tshawytscua) in Australia. J. Fish. Biol. 10:523–528.
7. Astrofsky KM, Schrenzel MD, Bullis RA, Smolowitz RM, Fox JG. 2000. Diagnosis and management of atypical Mycobacterium spp. infections in established laboratory zebrafish (Brachydanio rario) facilities. Comp. Med. 50: 666-672.
8. Bataillon E, Terre L. 1897. La form saprophytique de la tuberculose humaine et de la tuberculose aviare. Comp. Rend. 124:1399-1400.
9. Barksdale L, Kim KS. 1977. Mycobacterium.Bacteriol. Rev. 41(1):217-372.
10. Barker DJ. 1973. Epidemiology of Mycobacterium ulcerans infection. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 67:43–47.
11. Bennett SN, Peterson DE, Johnson DR, Hall WN, Robinson-Dunn B, Dietrich S. 1994. Bronchoscopy-associated Mycobacterium xenopi pseudoinfections. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 150(1):245-50.
12. Beran V, Matlova L, Dvorska L, Svastova P, Pavlik I. 2006. Distribution of mycobacteria in clinically healthy ornamental fish and their aquarium environment. J. Fish Dis. 29(7):383-93.
13. Bland CS, Ireland JM, Lozano E. 2005. Mycobacterial ecology of the Rio Grande. Appl. Environ. Microbiol. 2005. 71(10):5719–5727.
14. Brennan PJ, Nikaido H. 1995. The envelop of Mycobacteria. Ann. Rev. Biochem. 64:29-6.
15. Brennan PJ. 2003. Structure, function, and biogenesis of the cell wall of Mycobacterium tuberculosis. Tuberculosis (Edinb). 83(1-3):91-7.
16. Brooks RW, Parker BC, Gruft H, Falkinham JO III. 1984. Epidemiology of infection by nontuberculous mycobacteria. V. Numbers in eastern United States soils and correlation with soil characteristics. Am. Rev. Respir. Dis. 130(4):630-3.
17. Burback BL, Perry JJ. 1993. Biodegradation and biotransformation of groundwater pollutant mixtures by Mycobacterium vaccae. Appl. Environ. Microbiol. 59(4):1025-9.
18. Carson LA, Petersen NJ, Favero MS, Aguero SM. 1978. Growth characteristics of atypical mycobacteria in water and their comparative resistance to disinfectants. Appl. Environ. Microbiol. 36(6):839-46.
19. Castillo-Rodal AI, Mazari-Hiriart M, Lloret-Sánchez LT. 2012. Potentially pathogenic nontuberculous mycobacteria found in aquatic systems. Analysis from a reclaimed water and water distribution system in Mexico City. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 31(5):683-94.
20. Сhapman JS, Bernard JS, Speight M. 1965. Isolation of mycobacteria from raw milk. Am. Rev. Respir. Dis. 91:351-5.
21. Chang TC, Hsieh CY, Chang CD, Shen YL, Huang KC, Tu C, Chen LC, Wu ZB, Tsai SS. 2006. Pathological and molecular studies on mycobacteriosis of milkfish Chanos chanos in Taiwan. Dis. Aquat. Organ. 72(2):147-51.
22. Cheung PY, Kinkle BK. 2001. Mycobacterium diversity and pyrene mineralization in petroleum-contaminated soils. Appl. Environ. Soil Sci. 67(5): 2222–2229.
23. Collins FM. 1971. Relative susceptibility of acid-fast and non-acid-fast bacteria to ultraviolet light. Appl. Microbiol. 21(3):411-3.
24. Collins CH, Yates MD. 1984. Infection and colonisation by Mycobacterium kansasii and Mycobacterium xenopi: aerosols as a possible source? J. Infect. 8(2):178-9.
25. Connell N, Nikaido H. 1994. Membrane Permeability and Transport in Mycobacterium tuberculosis. Tuberculosis. 18:333-352.
26. Costerton JW, Lewandowski Z, Caldwell DE, Korber DR, Lappin-Scott HM. 1995. Microbial. biofilms. Annu. Rev. Microbiol. 49:711-745.
27. Covert TC, Rodgers MR, Reyes AL, Stelma GN. 1999. Occurrence of nontuberculous mycobacteria in environmental samples. Appl. Environ. Microbiol. 65(6):2492-6.
28. Dailloux M, Hartemann P, Beurey J. 1980. Study on the relationship between isolation of mycobacteria and classical microbiological and chemical indicators of water quality in swimming pools. Zentralbl. Bakteriol. Mikrobio.l Hyg. B. 171(6):473-86.
29. David HL. 1973. Response of Mycobacteria to ultraviolet light radiation. Am. Rev. Respir. Dis. 108(5):1175-85.
30. De Groote MA. 2004. Pulmonary infection in non-HIV infected individuals. World Health Organization. Pathogenic Mycobacteria in Water: A Guide to Public Health Consequences, Monitoring and Management. Published by IWA Publishing, London, UK.
31. Donlan RM. 2002. Biofilms: microbial life on surfaces. Emerg. Infect. Dis. 8:881–890.
32. Du Moulin GC, Stottmeier KD, Pelletier PA, Tsang AY, Hedley-Whyte J. 1988. Concentration of Mycobacterium avium by hospital hot water systems.JAMA.260(11):1599-601.
33. Dubrou S, Konjek J, Macheras E. 2013. Diversity, community composition, and dynamics of nonpigmented and late-pigment.Appl. Environ. Microbiol. 79(18):5498-508.
34. Eaton T, Falkinham III JO, von Reyn CF. 1995. Recovery of Mycobacterium avium from cigarettes. J. Clin. Microbiol. 33:2757–8.
35. Engelhardt H, Heinz C, Niederweis M. 2002. A tetrameric porin limits the cell wall permeability of Mycobacterium smegmatis. J. Biol. Chem. 277(40):37567-72.
36. Euzebu, 2017 http://www.bacterio.net
37. Falkinham JO III, George KL, Parker BC, Gruft H. 1984. In vitro susceptibility of human and environmental isolates of Mycobacterium avium, M. intracellulare, and M. scrofulaceum to heavy-metal salts and oxyanions. Antimicrob. Agents. Chemother. 25(1):137-9.
38. Falkinham JO III. 1996. Epidemiology of infection by nontuberculous mycobacteria. Clin. Microbiol. Rev. 9(2):177-215.
39. Falkinham JO III, Norton CD, LeChevallier MW. 2001. Factors influencing numbers of Mycobacterium avium, Mycobacterium intracellulare, and other Mycobacteria in drinking water distribution systems. Appl. Environ. Microbiol. 67(3):1225-31.
40. Falkinham JO III. 2002. Nontuberculous mycobacteria in the environment. Clin. Chest. Med. 23(3):529-51.
41. Falkinham JO III. 2003. Factors influencing the chlorine susceptibility of Mycobacterium avium, Mycobacterium intracellulare, and Mycobacterium scrofulaceum. Appl. Environ. Microbiol. 69(9):5685-5689.
42. Falkinham JO III, Iseman MD, de Haas P, van Soolingen D. 2008. Mycobacterium avium in a shower linked to pulmonary disease. J. Water Health. 6(2):209-13.
43. Falkinham JO III. 2009. Surrounded by mycobacteria: nontuberculous mycobacteria in the human environment. J. Appl. Microbiol. (2):356-67.
44. Falkinham JO III. 2015. Common features of opportunistic premise plumbing pathogens. Int. J. Environ. Res. Public Health. 12(5):4533-45.
45. Fischeder R, Schulze-Röbbecke R, Weber A. 1991.Occurrence of mycobacteria in drinking water samples. Zbl. Balet. Hyg. I. Abt. Orig. B.192:154–8.
46. Geesey GG, Mutch R, Costerton JW, Green RB. 1978. Sessile bacteria: an important component of the microbial population in small mountain streams. Limnol. Oceanogr. 23(6):1214-1223.
47. George KL, Parker BC, Gruft H, Falkinham JO III. 1980. Mycobacterium xenopi and Mycobacterium kansasii in a hospital water supply. J. Hosp. Infect. 6(2):175-8.
48. George KL, Parker BC, Gruft H, Falkinham JO III. 1980. Epidemiology of infection by nontuberculous mycobacteria. II. Growth and survival in natural waters. Am. Rev. Respir. Dis. 122(1):89-94.
49. George KL, Falkinham JO III. 1986. Selective medium for the isolation and enumeration of Mycobacterium avium-intracellulare and M. scrofulaceum. Can. J. Microbiol. 32(1):10-4
50. Gillespie J, Barton LL, Rypka EW. 1986. Phenotypic changes in mycobacteria grown in oxygen-limited conditions. J. Med. Microbiol. 21(3):251-5.
51. Glover N, Holtzman A, Aronson T, Froman S. 1994. The isolation andidentification of Mycobacterium avium complex (MAC) recovered from Los Angeles potable water, a possible source of infection in AIDS patients. Intl. J.Environ. Hlth. Res. 4:63-72.
52. Graham L, Warren NG, Tsang AY, Dalton HP. 1988. Mycobacterium avium complex pseudobacteriuria from a hospital water supply. J. Clin. Microbiol. 25(5):1034–6.
53. Hayman J. 1993. Out of Africa: observations on the histopathology of Mycobacterium ulcerans infection. J. Clin. Pathol. 46:5–9.
54. Hedrick RP, McDowell T, Groff J. 1987. Mycobacteriosis in culturedstriped bass from California. J. Wildl. Dis.23:391–395.
55. Herbst LH, Costa SF, Weiss LM, Johnson LK, Bartell J, Davis R, Walsh M, Levi M. 2001. Granulomatous skin lesions in moray eels caused by a novel Mycobacterium species related to Mycobacterium triplex.Infect. Immun. (7):4639-46.
56. Holt JG, Krieg NR, Sneath PH, Staley JT, Williams ST. Bergey's Manual of Determinative Bacteriology. 9th edition. vol. 2. 1997. Baltimore. 606-612.
57. Hoffmann R, Michel R. 2001. Distribution of free-living amoebae (FLA) during preparation and supply of drinking water. Int. J. Hyg. Environ Health. 203(3):215-9.
58. Horsburgh CR, Metchock BG, McGowan JE, Thompson SE. 1992. AIDS. 6(5):512-4.
59. Iivanainen EL, Martikainen PJ, Katila ML. 1995. Effect of freezing of water samples on viable counts of environmental mycobacteria. Lett. Appl. Microbiol. 21(4):257-60.
60. Iivanainen EL, Martikainen PJ, Väänänen P, Katila ML. 1999. Environmental factors affecting the occurrence of mycobacteria in brook sediments. J. Appl. Microbiol. 86(4):673-81.
61. Jacobs JM, Stine CB, Baya AM, Kent ML. 2009. A review of mycobacteriosis in marine fish. Fish Dis. 32(2):119-30.
62. Jadin JB. 1975. Free-living pathogenic amoebae. Wiad. Parazytol. 21(3):493-8.
63. Jarlier V, Nikaido H. 1994. Mycobacterial cell wall: Structure and role in natural resistence to antibiotics. FEMS microbiol. Lett. 123:11-18.
64. Johnson LR. 2008. Microcolony and biofilm formation as a survival strategy for bacteria. J. Theor. Biol. 251(1):24-34.
65. Kothavade RJ, Dhurat RS, Mishra SN, Kothavade UR. 2013. Clinical and laboratory aspects of the diagnosis and management of cutaneous and subcutaneous infections caused by rapidly growing mycobacteria. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 32(2):161-88.
66. Kreth J, Zhu L, Merritt J, Shi W, Qi F. 2008. Role of sucrose in the fitness of Streptococcus mutans. Oral. Microbiol. Immunol. 23(3):213-9.
67. Kullavanijaya P, Sirimachan S, Bhuddhavudhikrai P. 1993. Mycobacterium marinum cutaneous infections acquired from occupations and hobbies. Int. J. Dermatol. 32(7):504-7.
68. Linell F, Norden, A. 1951. Epidemic of Skin Lesions Produced by a Special Type of Acid-Fast Bacilli. Int. J. Dermatol. 8(7):312-9.
69. Le Dantec C, Duguet JP, Montiel A, Dumoutier N, Dubrou S, Vincent V. 2002. Occurrence of mycobacteria in water treatment lines and in water distribution systems. Appl. Environ. Microbiol. 68(11):5318-25.
70. Lee ES, Yoon TH, Lee MY, Han SH, Ka JO. 2010. Inactivation of environmental mycobacteria by free chlorine and UV. Water Res.44(5):1329-34.
71. Lewis K. 2001. Riddle of biofilm resistance. Antimicrob. Agents Chemother. 45(4):999-1007.
72. Lewis FMT, Marsh BJ, Von Reyn C.F. 2003. Fish tank exposure and cutaneous infection due to Mycobacterium marinum: tuberculin skin testing, treatment, and prevention. Clin.Infect. Dis. 25(8):56-65.
73. Magee JG, Ward AC. Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology. 2nd edition. vol. 5. The Actinobacteria. Part A. Family III. Mycobacteriaceae. 2012. Springer: 312-375.
74. Maloney JM, Gregg CR, Stephens DS, Manian FA, Rimland D. 1987. Infections caused by Mycobacterium szulgai in humans. Rev. Infect. Dis. 9(6):1120-6.
75. Millar D, Ford J, Sanderson J, Withey S, Tizard M, Doran T. 1996. PCR to detect Mycobacterium paratuberculosis in retail supplies of whole pasteurized cows. Appl. Environ. Microbiol. 62(9):3446–52.
76. McCarthy CM. 1987. Utilization of nitrate or nitrite as single nitrogen source by Mycobacterium avium. J. Clin. Microbiol.25(2):263-7.
77. Mirsaeidi M, Machado RF, Garcia JG, Schraufnagel DE. 2014. Nontuberculous mycobacterial disease mortality in the United States, 1999-2010: a population-based comparative study. PLoS One. 9(3).
78. Naser SA, Schwartz D, Shafran I. 2000. Isolation of Mycobacterium avium subsp paratuberculosis from breast milk of Crohn's disease patients. Am. J. Gastroenterol. 95(4):1094-5.
79. Newsome AL, Scott TM, Benson RF, Fields BS. 1998. Isolation of an amoeba naturally harboring a distinctive Legionella species. Appl. Environ. Microbiol. 64(5):1688-93.
80. Nichols G, Ford T, Bartram J. Dufour A, Portaels F. 2004. Introduction. Pathogenic Mycobacteria in Water: A Guide to Public Health Consequences, Monitoring and Management. World Health Organization. Published by IWA Publishing, London, UK.
81. Nightingale SD, Byrd LT, Southern PM, Jockusch JD, Cal SX, Wynne BA. 1992. Incidence of Mycobacterium avium-intracellulare complex bacteremia in human immunodeficiency virus-positive patients. J. Infect Dis. 165(6):1082-5.
82. Noga EJ, Wright JF, Pasarell L. 1990. Some unusual features of mycobacteriosis in the cichlid fish Oreochromis mossambicus. J. Comp. Pat. 25(6): 128-36.
83. Norton CD, LeChevallier MW, Falkinham JO III. 2004. Survival of Mycobacterium avium in a model distribution system. Water. Res. 38(6):1457-66.
84. Novotny L, Halouzka R, Matlova L, Vavra O, Bartosova L, Slany M, Pavlik I. 2010. Morphology and distribution of granulomatous inflammation in freshwater ornamental fish infected with mycobacteria. J. Fish Dis. 33(12):947-55.
85. Ojha AK, Baughn AD, Sambandan D. 2008. Growth of Mycobacterium tuberculosis biofilms containing free mycolic acids and harbouring drug-tolerant bacteria. Mol. Micr. 69(1)164–174.
86. Parikka M, Hammarén MM, Harjula SK, Halfpenny NJ, Oksanen KE, Lahtinen MJ, Pajula ET, Iivanainen A, Pesu M, Rämet M. 2012. Mycobacterium marinum causes a latent infection that can be reactivated by gamma irradiation in adult zebrafish. PLoS Pathog. (9):e1002944.
87. Parker BC, Ford MA, Gruft H, Falkinham JO III. 1983. Epidemiology of infection by nontuberculous mycobacteria. IV. Preferential aerosolization of Mycobacterium intracellulare from natural waters. Am. Rev. Respir. Dis. 128(4):652-6.
88. Pedley S, Bartram J, Rees G, Dufour A, Cotruvo J. 2004. Pathogenic Mycobacteria in Water: A Guide to Public Health Consequences, Monitoring and Management. WHO. Cornwall, UK. 1-14.
89. Pérez J, Calzada J, León-Vizcaíno L, Cubero MJ, Velarde J, Mozos E. 2001. Tuberculosis in an Iberian lynx (Lynx pardina).Vet. Rec. 148(13):414-5.
90. Portaels F, Pattyn SR. 1982. Growth of mycobacteria in relation to the pH of the medium. Ann. Microbiol. 133(2):213-21.
91. Prasad BN, Gupta SK. 1978. Preliminary report on the engulfment and retention of mycobacteria by trophozoites of exenically grown Acanthamoeba castellanii. Curr. Sci. 47:245–247.
92. Prevots DR, Marras TK. 2015. Epidemiology of human pulmonary infection with nontuberculous mycobacteria: a review. Clin. Chest. Med. 36(1):13-34.
93. Primm TP, Lucero CA, Falkinham JO III. 2004. Health impacts of environmental mycobacteria. Clin. Microbiol. Rev. 17(1):98-106.
94. Recht J, Martínez A, Torello S, Kolter R. 2000. Genetic analysis of sliding motility in Mycobacterium smegmatis.J. Bacteriol.182(15):4348-51.
95. Reyrat JM, Kahn D. 2001. Mycobacterium smegmatis: an absurd model for tuberculosis? Trends in Microbiology. 9 (10):472–473.
96. Recht J, Martínez A, Torello S, Kolter R. 2001. Sliding motility and biofilm formation in mycobacteria. Acta. Cient. Venez.52:45-9.
97. Rodgers MR, Blackstone BJ, Reyes AL, Covert TC. 1999. Colonisation of point of use water filters by silver resistant non-tuberculous mycobacteria. J. Clin. Pathol. 52(8):629.
98. Rose SJ, Babrak LM, Bermudez LE. 2015. Mycobacterium avium possesses extracellular DNA that contributes to biofilm formation, structural integrity, and tolerance to antibiotics. 10(5): 154-68.
99. Rowe HM, Withey JH, Neely MN. 2014. Zebrafish as a model for zoonotic aquatic pathogens. Dev. Comp. Immunol. 46(1):96-107.
100. Runyon EH. 1959. Source of scotochromogens.Am. Rev. Respir. Dis. 80:277-8.
101. Saito H, Tsukamura M. 1976. Mycobacterium intracellulare from public bath water. Japan. J. Microbiol. 20(6):561–3.
102. Saubolle MA, Kiehn TE, White MH. 1996. Mycobacterium haemophilum: microbiology and expanding clinical and geographic spectra of disease in humans. Clin. Microbiol. 9:435–447.
103. September SM, Brözel VS, Venter SN. 2004. Diversity of nontuberculoid Mycobacterium species in biofilms of urban and semiurban drinking water distribution systems. Appl. Environ. Microbiol. 70(12):7571-3.
104. Schulze-Röbbecke R, Fischeder R. 1989. Mycobacteria in biofilms. Zbl. Hyg. 188:385–90.
105. Schulze-Röbbecke R, Buchholtz K. 1992. Heat susceptibility of aquatic mycobacteria. Appl. Environ. Microbiol. 58(6):1869-73.
106. Schulze-Röbbecke R, Feldmann C, Fischeder R, Janning B, Exner M, Wahl G. 1995. Dental units: an environmental study of sources of potentially pathogenic mycobacteria. Tuber Lung Dis.76(4):318-23.
107. Simmon KE, Brown-Elliott BA, Ridge PG, Durtschi JD. 2011. Mycobacterium chelonae-abscessus complex associated with sinopulmonary disease, Northeastern USA. Emerg. Infect. Dis. 17(9):1692-700.
108. Slany M, Makovcova J, Jezek P, Bodnarova M, Pavlik I. 2014. Relative prevalence of Mycobacterium marinum in fish collected from aquaria and natural freshwaters in central Europe. J. Fish Dis. 37(6):527-33.
109. Slosárek M, Kubín M, Jaresová M. 1993. Water-borne household infections due to Mycobacterium xenopi. Cent. Eur. J. Public. Health. 1(2):78-80.
110. Smith DS, Lindholm-Levy P, Huitt GA, Heifets LB, Cook JL. 2000. Mycobacterium terrae: case reports, literature review, and in vitro antibiotic susceptibility testing. Clin. Infect. Dis. 30(3):444-53.
111. Song JY, Sohn JW, Jeong HW, Cheong HJ, Kim WJ, Kim MJ. 2006. An outbreak of post-acupuncture cutaneous infection due to Mycobacterium abscessus. BMC Inf. Dis. 6(6): 124-36.
112. Stahl DA, Urbance JW. 1990. The division between Fast- and Slow-Growing species corresponds to natural relationships among the Mycobacteria. J. Bact. 172(1):116-124.
113. Steed KA, Falkinham JO III. 2006. Effect of growth in biofilms on chlorine susceptibility of Mycobacterium avium and Mycobacterium intracellulare. Appl. Environ. Microbiol. 72(6):4007-11.
114. Stonebrink B. 1978. 1978. Counting colonies of microorganisms on solid media. Tijdschr. Diergeneeskd. 103(21):1166-73.
115. Smithwick RW. 1976. Laboratory Manual for Acid-fast Microscopy. 40 pp.
116. Strahl ED, Gillaspy GE, Falkinham JO III. 2001. Fluorescent acid-fast microscopy for measuring phagocytosis of Mycobacterium avium, Mycobacterium intracellulare, and Mycobacterium scrofulaceum by Tetrahymena pyriformis and their intracellular growth. Appl. Environ. Microbiol. 67(10):4432-9.
117. Suutari M, Laakso S. 1993. Effect of growth temperature on the fatty acid composition of Mycobacterium phlei. Arch. Microbiol. 159(2):119-23.
118. Taylor RH, Falkinham JO III, Norton C. 2000. Chlorine, chloramine, chlorine dioxide, and ozone susceptibility of Mycobacterium avium. Appl. Environ. Microbiol. 66:1702–1705.
119. Takigawa K, Fujita J, Negayama K, Terada S, Yamaji S, Kawanishi K, Takahara J. 1995. Eradication of contaminating Mycobacterium chelonae from bronchofibrescopes and an automated bronchoscope disinfection machine. Respir. Med. 89(6):423-7.
120. Talavlikar R, Carson J, Meatherill B, Desai S, Sharma M, Shandro C. 2011. Mycobacterium senegalense tissue infection in a child after fish tank exposure. Can. J. Infect. Dis. Med. Microbiol. 22(3):101-3.
121. Taylor SJ, Ahonen LJ, de Leij FA, Dale JW. 2003. Infection of Acanthamoeba castellanii with Mycobacterium bovis and M. bovis BCG and survival of M. bovis within the amoebae. Appl. Environ. Microbiol. 69(7):4316-9.
122. Thomson R, Tolson C, Carter R, Coulter C. 2013. Isolation of Nontuberculous Mycobacteria (NTM) from Household Water and Shower Aerosols in Patients with Pulmonary Disease Caused by NTM. J. Clin. Micr. 51(9):3006 –3011.
123. Torkko P, Suomalainen S, Iivanainen E. 2000. Mycobacterium xenopi and relatedorganisms isolated from stream waters in Finland and discription of M. botniense. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 50:283-289.
124. Torvinen E, Suomalainen S, Lehtola MJ, Miettinen IT, Zacheus O, Paulin L, Katila ML, Martikainen PJ. 2004. Appl. Environ. Microbiol. 70(4):1973-81.
125. Tsuyuguchi K, Matsumoto T. 2013.
126. Tsukamura M. Bacteriostatic effects of sulfadimethoxine and kitasamycin on Mycobacterium avium-M. intracellulare complex. 1978. Kekkaku. 58(4):247-50.
127. Turenne CY, Cook VJ, Burdz TV, Pauls RJ, Thibert L, Wolfe JN, Kabani A. 2004. Mycobacterium parascrofulaceum sp. nov., novel slowly growing, scotochromogenic clinical isolates related to Mycobacterium simiae. Int. J. Syst. Evol. Microbiol.54(5):1543-51.
128. Van Oss CJ, Gillman CF, Neumann AW. 1975. Phagocytic Engulfment and Cell Adhesiveness. Dekker, New York. 160 pp.

🛒 Оформить заказ

⚡ Работу высылаем в течении 5 минут после оплаты.

🔍 ПОХОЖИЕ РАБОТЫ ПО ТЕМЕ

РОД ТАВОЛГА (SPIRAEA): ВИДОВОЕ РАЗНООБРАЗИЕ, БИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ И РОЛЬ В ОЗЕЛЕНЕНИИ Магистерская диссертация ландшафтная архитектура 2021 г. 5770 руб. Анализ маркерных последовательностей представителей рода Armillaria Бакалаврская работа биология 2018 г. 5900 руб. СРАВНИТЕЛЬНЫЙ АНАЛИЗ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ ВЕЩЕСТВ В ПЛОДАХ РОДА VACCINIUM Дипломные работы, ВКР биология 2017 г. 4750 руб. ИСКОПАЕМЫЕ МАКРООСТАТКИ ПРЕДСТАВИТЕЛЕЙ РОДА QUERCUSL. ИЗ ПАЛЕОГЕНОВЫХ ОТЛОЖЕНИЙ ВОСТОЧНОГО КАЗАХСТАНА И РЕКОНСТРУКЦИЯ УСЛОВИЙ ИХ ПРОИЗРАСТАНИЯ Дипломные работы, ВКР география 2023 г. 4350 руб. БИОТЕХНОЛОГИЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ ПРЕДСТАВИТЕЛЕЙ РОДА TRICHODERMA Бакалаврская работа биотехнология 2020 г. 4260 руб. Содержание представителей рода Mycobacteriumв воде и обрастаниях аквариумов с замкнутой системой очистки воды Бакалаврская работа биология 2017 г. 4335 руб. ГОРТЕНЗИЯ В ЛАНДШАФТНОМ ДИЗАЙНЕ Магистерская диссертация ландшафтная архитектура 2025 г. 5810 руб. СРАВНИТЕЛЬНАЯ ОЦЕНКА ИНФОРМАТИВНОСТИ ПОЛИМЕРАЗНОЙ ЦЕПНОЙ РЕАКЦИИ И MALDI-TOF МАСС-СПЕКТРОМЕТРИИ ПРИ ИДЕНТИФИКАЦИИ ПРЕДСТАВИТЕЛЕЙ РОДОВ LACTOBACILLUS И BIFIDOBACTERIUM Дипломные работы, ВКР биология 2017 г. 4900 руб. РОД EUPHRASIA L. (OROBANCHACEAE)ВО ФЛОРЕ АЛТАЯ Магистерская диссертация биология 2020 г. 4850 руб. Разнообразие видов рода Acer L. в зелёных насаждениях городов Карельского перешейка Бакалаврская работа география 2023 г. 4335 руб.

📎 БАКАЛАВРСКАЯ РАБОТА ПО ПРЕДМЕТУ «БИОЛОГИЯ»

Найдено работ: 569

МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ОСОБЕННОСТИ ЭРИТРОЦИТАРНОЙ И ЛЕЙКОЦИТАРНОЙ ПОПУЛЯЦИИ ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ БОЛЬНЫХ ЭКЗЕМОЙ Бакалаврская работа биология 2019 г. 4670 руб. КАРИОТИП МАЛЯРИЙНЫХ КОМАРОВ ANOPHELES BEKLEMISHEVI STEGNII ЕТ KABANOVA, ANOPHELES ARTEMIEV1 GORDEEV ET AL., ANOPHELES MESSEAE FALL. (DIPTERA CULICIDAE) Бакалаврская работа биология 2020 г. 4360 руб. ИССЛЕДОВАНИЕ АКТИВНОСТИ СИСТЕМЫ ЗЕРКАЛЬНЫХ НЕЙРОНОВ У ЮНОШЕЙ ПРИ НАБЛЮДЕНИИ И ОТМЕРИВАНИИ ИНТЕРВАЛОВ ВРЕМЕНИ. ПРИ НАБЛЮДЕНИИ И РЕПРОДУКЦИИ РИТМА Бакалаврская работа биология 2019 г. 4480 руб. Демографическая структура и морфо-фенетическая характеристика населения соболя {Martes zibellina) Приморья Бакалаврская работа биология 2017 г. 4650 руб. ВЛИЯНИЕ ИПМИ И ИПВЧ НА НОРМАЛЬНЫЕ И ОПУХОЛЕВЫЕ КЛЕТКИ Бакалаврская работа биология 2019 г. 4390 руб. МЕЗОФАУНА УНИВЕРСИТЕТСКОЙ РОЩИ Г. ТОМСКА Бакалаврская работа биология 2016 г. 4480 руб. ФЕНОТИПИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ БОЛЕВОЙ И ОБОНЯТЕЛЬНОЙ ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ У ЛИЦ С ЗАВИСИМОСТЬЮ ОТ ПСИХОАКТИВНЫХ ВЕЩЕСТВ Бакалаврская работа биология 2018 г. 4400 руб. ОСОБЕННОСТИ ПЛОДОВИТОСТИ пыжьяновидных СИГОВ ИЗ ОЗ. КУТАРАМАКАН Бакалаврская работа биология 2017 г. 4380 руб. ФЕНОТИПИЧЕСКИЙ СОСТАВ, ТРАНСКРИПЦИОННЫЙ ПРОФИЛЬ И ПРОГНОСТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ ОПУХОЛЕВЫХ ГИБРИДНЫХ КЛЕТОК ПРИ НЕМЕЛКОЛЕТОЧНОМ РАКЕ ЛЕГКОГО Бакалаврская работа биология 2025 г. 4640 руб. ФИЗИЧЕСКИЙ СТАТУС ВИРУСА. ПАПИЛЛОМЫ ЧЕЛОВЕКА В ПРОГНОЗЕ РЕЦИДИВИРОВАНИЯ ЦЕРВИКАЛЬНЫХ ИНТРАЭПИТЕЛИАЛЬНЫХ НЕОПЛАЗИЙ. РАЗЛИЧНОЙ СТЕПЕНИ ТЯЖЕСТИ И РАКА ШЕЙКИ МАТКИ IN SITU Бакалаврская работа биология 2020 г. 4500 руб. СИНТАКСОНОМИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАСТИТЕЛЬНОСТИ ПОЙМЫ СРЕДНЕЙ ОБИ В РАЙОНЕ ДЕРЕВНИ КАЙБАСОВО (Томская область) Бакалаврская работа биология 2017 г. 4440 руб. ПОЛУЧЕНИЕ ЧИСТОЙ КУЛЬТУРЫ И ИЗУЧЕНИЕ ФИЗИОЛОГИИ МИКРООРГАНИЗМОВ ПОДЗЕМНОЙ БИОСФЕРЫ Бакалаврская работа биология 2019 г. 4370 руб. РАСПРОСТРАНЕНИЕ МИКРОСПОРИДИЙ р. Nosema НА ПАСЕКАХ РАЗНОЙ ГЕОГРАФИЧЕСКОЙ ЛОКАЛИЗАЦИИ Бакалаврская работа биология 2018 г. 4500 руб. ИССЛЕДОВАНИЕ ЗАРАЖЕННОСТИ МЕДОНОСНЫХ ПЧЕЛ (APIS MELLIFERA L.) МИКРОСПОРИДИЯМИ РОДА NOSEMA В РЕСПУБЛИКЕ БЕЛАРУСЬ Бакалаврская работа биология 2022 г. 4610 руб. ЦИТОЛОГИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ И ОПРЕДЕЛЕНИЕ УРОВНЕЙ ЭКСПРЕССИИ ГЕНОВ-МАРКЕРОВ Ml / М2 ФЕНОТИПОВ МИКРОГЛИИ В ПЕРВИЧНОЙ КУЛЬТУРЕ КЛЕТОК МОЗГА МЫШИ Бакалаврская работа биология 2023 г. 4375 руб.
📋 Содержание 📖 Введение ✅ Заключение 📕 Литература 🔍 Похожие 🛒 Купить ⬆️

Оценка стоимости

Это краткая форма заказа. После ее заполнения вы перейдете на полную форму заказа работы

Каталог работ (208935)

Поиск работ


©2026 Cервис помощи студентам в выполнении работ
.