Список сокращений 4
Введение 5
Актуальность проблемы 5
Цель исследования: 5
Задачи исследования: 5
Теоретическое значение исследования: 6
Практическое значение исследования: 7
Глава 1. Обзор литературы 8
1.1. Современные представления об определении и классификации нейроэпителиальных опухолей 8
1.2. Эпидемиология нейроэпителиальных опухолей 11
1.3. Обзор клинических проявлений, характерных для нейроэпителиальных опухолей
1.4. Основные аспекты диагностики нейроэпителиальных опухолей различных типов
1.5. Молекулярно-генетические маркеры, связанные с этиологией и патогенезом нейроэпителиальных опухолей 25
1.6. Злокачественная трансформация нейроэпителиальных опухолей 30
Глава 2. Материал и методы 35
2.1. Материал исследования 35
2.2. Методы исследования 35
2.2. Статистическая обработка результатов 36
Глава 3. Результаты собственных исследований. 37
3.1. Частота встречаемости мутации IDH в глиомах GII/GIII 37
3.2. Частота встречаемости ко-делеции 1p19q в глиомах GII/GIII 37
3.3. Частота встречаемости уровней экспрессии генов TP, MGMT, PDGFR-α, VEGF, C-kit, β-тубулина в глиомах GII/GIII 38
3.4. Частота злокачественной трансформации у больных с астроцитомами GII/GIII 39
3.5. Частота злокачественной трансформации у больных с олигодендроглиомами GII/GIII 40
3.6. Сравнительная морфо-генетическая характеристика ДАGII и ОДГGII при их злокачественной трансформации в ААGIII, АОДГGIII или вторичную ГБGIV 41
3.7. Сравнительная морфо-генетическая характеристика ААGIII и АОДГGIII при их злокачественной трансформации во вторичную ГБGIV 45
3.8. Изменения экспрессии генов при злокачественной трансформации опухолей 48
3.9. Зависимость безрецидивной выживаемости от экспрессии генов и тактики лечения 50
3.11. Зависимость безрецидивной и общей выживаемости от мутации IDH и ко-делеции 1p19q в случае ДАGII/ОДГGII 52
3.12. Зависимость безрецидивной и общей выживаемости от мутации IDH и ко-делеции 1p19q в случае ААGIII/АОДГGIII 55
3.13. Анализ клинических и молекулярно-генетических факторов риска наступления злокачественной трансформации 58
Глава 4. Заключение 60
Выводы 62
Список литературы 65
Приложения 75
Приложение 1. Классификация опухолей ЦНС ВОЗ (2016) [5,6] 75
Актуальность проблемы
На данный момент хирургический метод является господствующим в лечении таких нейроэндокринных опухолей, как глиомы головного мозга, и можно констатировать, что несмотря на возможности современной нейрохирургии, подавляющее большинство опухолей склонно к рецидивированию, которое с высокой долей вероятности сопровождается злокачественной трансформацией первичного новообразования. Данная тенденция наблюдается повсеместно и существенно ухудшает прогноз пациентов с этой патологией, несколько нивелируя прогностическое значение гистологической структуры опухоли в связи с высокой частотой последующей трансформации. Кроме того, современные стандарты и рекомендации по лекарственному лечению глиом головного мозга не имеют четкой доказательной базы и зачастую противоречат друг другу, основываясь на небольшом числе исследований. На нынешнем этапе развития нейроонкологии не существует четких маркеров и предикторов лекарственного лечения опухолей головного мозга, а действующие стандарты не всегда позволяют добиваться эффективных терапевтических результатов. Наряду с проблемами стратегии лечения обращает на себя внимание отсутствие прогностических маркеров течения глиальных опухолей головного мозга, как клинических, так и молекулярно-генетических факторов, позволяющих так или иначе предсказать вероятность рецидивирования и злокачественной трансформации.
Цель исследования:
Определить клинические и молекулярно-генетические характеристики глиом головного мозга до и после их злокачественной трансформации
Задачи исследования:
1. Изучить частоту встречаемости молекулярно-генетических маркеров (мутаций в генах IDH1, IDH2, ко-делеции 1p19q, уровней экспрессии генов: MGMT, VEGF, PDGFR, TP, c-kit) в ДАGII, ААGIII, ОДГGII и АОДГGIII
2. Определить частоту злокачественной трансформации глиом GII/GIII
3. Выявить группы риска злокачественной трансформации у больных с глиомами GII/GIIIв зависимости от клинических и молекулярно-генетических аспектов с целью оптимизации тактики лечения
4. Оценить изменения уровней экспрессии генов MGMT, VEGF, PDGFR, TP, c-kit после злокачественной трансформации глиом GII/GIII
5. Выявить зависимость длительности безрецидивной и общей выживаемости от наличия мутации в генах IDH1 и IDH2, ко-делеции 1p19q, проводимого лечения и уровня экспрессии генов MGMT, VEGF, PDGFR, TP, c-kit.
6. Провести сравнительную морфо-генетическую характеристику опухолей при их злокачественной трансформации
Теоретическое значение исследования:
В рамках данного исследования было проанализирована молекулярно-генетическая картина нейроэпителиальных опухолей с учетом их биологической гетерогенности, произведена оценка экспрессии основных генов, характерных для данных опухолевых подтипов как до рецидива и злокачественной трансформации, так и после. Была проанализирована частота рецидивирования и злокачественной трансформации нейроэпителиальных опухолей на примере популяции г. Санкт-Петербурга, выявлены биологические и молекулярно-генетические факторы риска злокачественной трансформации, оценены показатели выживаемости, такие как безрецидивная выживаемость и общая выживаемость и рассчитана возможная зависимость данных показателей от молекулярной структуры опухоли, тактики лечения и различных клинических факторов, а также была описана морфологическая характеристика новообразований головного мозга до и после их злокачественной трансформации. Данная работа дает представление об этиопатогенезе развития нейроэпителиальных опухолей, формирует понятие о комплексе изменений клинического, генетического и морфологического характера, сопутствующих такому распространенному и малоизученному событию, как злокачественная трансформация, что имеет несомненную теоретическую ценность для понимая природы этой группы новообразований.
Практическое значение исследования:
В ходе исследования было проанализировано влияние клинических и молекулярных факторов на злокачественную трансформацию нейроэпителиальных опухолей, что имеет очевидное практическое значение, так как позволяет стратифицировать опухоли головного мозга на этапе диагностики для установления приблизительного риска возможной малигнизации. Кроме того, была изучена взаимосвязь молекулярно-генетических и клинических факторов и показателей выживаемости, что позволяет вывести возможные прогностические паттерны общей и безрецидивной выживаемости ещё на уровне обследования первичной опухоли. Немаловажным также представляется тот факт, что в рамках работы была оценена корреляция показателей выживаемости и терапевтического подхода, на основе чего можно указать предпочтительные с точки зрения более благоприятного прогноза лекарственные тактики и, наоборот, нежелательные для нейроэпителиальных опухолей лечебные стратегии. В дополнение к этому была проанализирована эффективность исследования определенных молекулярно-генетических маркеров в качестве предикторов лекарственного лечения и была выявлена корреляция экспрессии тех или иных генов и терапевтического ответа на определенные фармакологические средства. Вышеупомянутые этапы проведенной работы обладают практическим значением и способны оказать положительное влияние на лечебный подход к нейроэпителиальным опухолям.
Частота встречаемости мутации IDH в ДАGII составила - 79%, ОДГGII - 100%, ААGIII – 60% , АОДГGIII - 86%. Частота встречаемости ко-делеции 1p19q в ДАGII составила - 19%, ОДГGII - 100%, ААGIII – 17% , АОДГGIII - 100%.
2. Рецидив первичной опухоли наблюдался в ДАGII наблюдался в 69%, ОДГGII– в 100 %, в ААGIII– в 35%, в АОДГGIII - 35%. Злокачественной трансформация в ДАGII наблюдалась в 95%, ОДГGII– в 100 %, в ААGIII– в 69%, в АОДГGIII - 20%.
3. При многофакторном анализе на риск быстрой трансформации ДАGII в ААGIII или вторичную ГБGIV оказали влияние возраст (p=0,009), уровень экспрессии генов: MGMT (р=0,003), TP (р=0,023) и был близок ген VEGF (р=0,054). При линейном анализе на риск трансформации повлияло накопление контраста опухолью (р=0,0014) и размер опухоли на первом МРТ (р=0,045).
4. При анапластической трансформации ДА/ОДГGII в АА/АОДГGIII и вт. ГБGIV числовое выражение Ct менялось в каждом исследуемом гене, но наиболее выражено в гене TP – в 71,4% (5/7), MGMT – в 62,5% (5/8), С-kit - в 62,5% (5/8) и VEGF – в 50% (4/8). При трансформации ААGIII и АОДГGIII во вт. ГБGIV числовое выражение Ct менялось в каждом исследуемом гене, но наиболее выражено в гене MGMT – в 66,7% (4/6), β-тубулин – в 80% (4/5), VEGF – в 80% (4/5)
5. На БРВ у больных с ДАGII и ААGIII оказывало влияние наличие мутации в гене IDH (р=0,051 и р<0,0001 соответственно). У больных с ААGIII наличие мутации в гене IDH увеличивало медиану ОВ, но без статистической достоверности (р=0,056). Присутствие ко-делеции 1p19q не влияло на БРВ и ОВ у больных с ДАGII и ААGIII
6. Морфологические факторы, сопутствующие злокачественной трансформации: пролиферация сосудов и эндотелия, повышение плотноклеточности опухоли, увеличение индекса пролиферативной активности, наличие некрозов (в случае вторичных глиобластом).
Выводы
В рамках исследования были получены результаты в рамках каждого тезиса, поставленного в цели и задачах. Была оценена частота встречаемости мутации IDH в глиомах GII/GIII: наиболее часто мутация IDH встречается в олигодендроглиальных опухолях, соответствуя в астроцитомах значениям, указанным в литературе. В целом для глиальных опухолей характерна высокая частота мутации IDH, превышающая во всех подтипах 50%. Примечательно, что для ААGIII частота мутации IDH ниже, чем в ДАGII – для последних характерна также более высокая частота злокачественной трансформации.
Была оценена частота встречаемости ко-делеции 1p19q в глиомах GII/GIII: для астроцитарных опухолей она стабильно невысокая при абсолютно подавляющей встречаемости в олигодендроглиальных новообразованиях вне зависимости от степени дифференцировки.
Была проанализирована частота встречаемости уровней экспрессии генов TP, MGMT, PDGFR-α, VEGF, C-kit, β-тубулина в глиомах GII/GIII. Низкие и средние значения экспрессии гена ТР во всех подтипах говорят об умеренном пролиферативном потенциале глиальных опухолей; преимущественно низкие и средние значения гена MGMT указывают на предположительно благоприятный терапевтический ответ на терапию алкильными агентами, в частности, темозоломидом; средние значения PDGFR-α в астроцитарных опухолях, средние и высокие в ОДГGII и и средние в АОДГGIII могут указывать на умеренный пролиферативный потенциал; относительно одинаково низкие и средние значения экспрессии гена VEGF в low-grade глиомах, возможно, указывают на в целом стабильный неоангиогенез в этих опухолях вне зависимости от grade; низкий и средний уровень экспрессии гена c-kit, возможно, является предиктором ответа опухолей на терапию иматинибом; стабильно высокий уровень экспрессии β-тубулина, возможно, говорит не в пользу эффективности терапии препаратами винкристина, паклитаксела и т.п.
Была изучена частота злокачественной трансформации глиом головного мозга – наиболее злокачественная транформация была характерна для диффузных астроцитом GII (95%) и олигодендроглиом GII (100%). В среднем частота злокачественной трансформации среди GII-III глиом составила 71%. Частота злокачественной трансформации для опухолей GIII несколько ниже. Как правило, трансформация происходит из GII в GIII и с GIII в GIV. Частота рецидивов опухолей перекликается с частотой злокачественной трансформации.
Были исследованы морфологические факторы, сопутствующие злокачественной трансформации: пролиферация сосудов и эндотелия, повышение плотноклеточности опухоли, увеличение индекса пролиферативной активности, наличие некрозов (в случае вторичных глиобластом).
Было изучено изменение уровня экспрессии генов при злокачественной трансформации: увеличение уровней экспрессии генов при трансформации ААGIII и АОДГGIII во вторичную ГБGIV подтверждает неблагоприятный прогноз заболевания, снижение чувствительности опухоли к терапии темозоломидом во 2-й линии терапии (в 75%, 3/4) и целесообразности назначения бевацизумаба при трансформации опухоли во вторичную ГБGIV, что подтверждается высоким уровнем экспрессии гена VEGF в материале от второй операции в 80% случаев (4/5).
Были проанализированы зависимость безрецидивной выживаемости от экспрессии генов и тактики лечения – длительной БРВ в случае ЗТ ДАGII/ОДГGII в ААGIII/АОДГGIII способствует проведение лучевой терапии в адъювантном режиме. При этом отмечалась связь низкой экспрессии MGMT, при которых БРВ достигала высоких значений. В случае ЗТ ААGIII/АОДГGIII во вторичную ГБGIV достоверно высокие значения БРВ отмечались при проведении химиолучевой терапии темозоломидом в первой линии и лучевой терапии с применением бевацизумаба и иринотекана во второй линии.
Была исследована зависимость безрецидивной и общей выживаемости от мутации IDH и ко-делеции 1p19q в случае ДАGII/ОДГGII: статистически достоверное увеличение БРВ наблюдалось в опухолях с мутацией IDH. Влияние мутации в генах IDH 1/2 на ОВ не оказалось столь выраженным. Наличие ко-делеции 1p19q не привело к статистическому увеличению БРВ/ОВ. Также была изучена зависимость безрецидивной и общей выживаемости от мутации IDH и ко-делеции 1p19q в случае ААGIII/АОДГGIII: статистически достоверное увеличение БРВ наблюдалось в опухолях с мутацией IDH. Мутация в генах IDH 1/2 также оказала положительное влияние на общую выживаемость. Наличие ко-делеции 1p19q не привело к статистическому увеличению БРВ/ОВ.
Наконец, был проведен анализ клинических и молекулярно-генетических факторов риска наступления злокачественной трансформации: на риск быстрой трансформации ДАGII в ААGIII или вторичную ГБGIV оказали влияние возраст (p=0,009), уровень экспрессии генов: MGMT (р=0,003), TP (р=0,023) и был близок ген VEGF (р=0,054). При линейном анализе на риск трансформации повлияло накопление контраста опухолью (р=0,0014) и размер опухоли на первом МРТ (р=0,045).
1. Deborah A. Forst; Brian V. Nahed et. al. Low-Grade Gliomas. The Oncologist 2014; 19; 403-413
2. Louis D.; Schiff D., Batchelor T. et al. Classification and pathologic diagnosis of gliomas.UpToDate, 2019
3. Bailey P, Cushing H. A classification of the tumors of the glioma group on a histogenetic basis with a correlated study of prognosis, JB Lippincott, Philadelphia 1926.
4. Kernohan JW, Marbon RF. A simplified classification of the gliomas. Proc Staff Meet Mayo Clin 1949; 24:71.
5. Louis D.N., Ohgaki H., Wiestler O.D., Cavenee W.K. (Eds): WHO Classification of Tumours of the Central Nervous System (Revised 4th edition). IARC: Lyon. 2016; 4: 408.
6. МацкоД.Е., МацкоМ.В., ИмянитовЕ.Н.: Нейроонкология. Практическая онкология, Т. 18, №1, 2017
7. Louis DN, Perry A, Reifenberger G, et al. The 2016 World Health Organization Classification of Tumors of the Central Nervous System: a summary. Acta Neuropathol 2016; 131:803.
8. Forst DA, Nahed BV, Loeffler JS, Batchelor TT. Low-grade gliomas. Oncologist. 2014 Apr;19(4):403-13
9. Louis DN, Ohgaki H, Wiestler OD, Cavenee WK. Classification of Tumours of the Nervous System, IARC Press, Lyon, France 2007
10. Central Brain Tumor Registry of the United States. Statistical Report: Primary Brain and Central Nervous System Tumors Diagnosed in the United
States in 2010-2008 (March 23, 2012 Revision). Hinsdale, IL: CBTRUS, 2012.
11. Cavaliere R, Farace E, Schiff D. Clinical implications of status epilepticus in patients with neoplasms. Arch Neurol 2006; 63:1746.
12. Ostrom QT, Gittleman H, Truitt G, et al. CBTRUS Statistical Report: Primary Brain and Other Central Nervous System Tumors Diagnosed in the United States in 2011-2015. Neuro Oncol 2018; 20 Suppl 4:iv1.
13. Злокачественные новообразования в России в 2017 году (заболеваемость и смертность). Под ред. А.Д. Каприна, В.В. Старинского, Г.В. Петровой - М.: МНИОИ им. П.А. Герцена, 2018.
14. Ries LAG, Eisner MP, Kosary CL, Hankey BF, Miller BA, Clegg L, Mariotto A, Fay MP, Feuer EJ, Edwards BK (eds). SEER Cancer Statistics Review, 1975-2001, National Cancer Institute. Bethesda, MD seer.cancer.gov/csr/1975_2001 (Accessed on April 06, 2011).
15. Davis FG, Freels S, Grutsch J, et al. Survival rates in patients with primary malignant brain tumors stratified by patient age and tumor histological type: an analysis based on Surveillance, Epidemiology, and End Results (SEER) data, 1973-1991. J Neurosurg 1998; 88:1.
16. Chakrabarti I, Cockburn M, Cozen W, et al. A population-based description of glioblastoma multiforme in Los Angeles County, 1974-1999. Cancer 2005; 104:2798.
17. Cairncross JG, Laperriere NJ: Low-grade glioma. To treat or
not to treat? Arch Neurol 46: 1238-1239, 1989
18. Eric T Wong, MD, Julian K Wu, MD. Incidence of primary brain tumors. UpToDate, 2019
19. Radhakrishnan K, Mokri B, Parisi JE, et al. The trends in incidence of primary brain tumors in the population of Rochester, Minnesota. Ann Neurol 1995; 37:67.
20. Modan B, Wagener DK, Feldman JJ, et al. Increased mortality from brain tumors: a combined outcome of diagnostic technology and change of attitude toward the elderly. Am J Epidemiol 1992; 135:1349.
21. Curado. M. P., Edwards, B., Shin. H.R., Storm. H., Ferlay. J., Heanue. M. and Boyle. P., eds. Cancer Incidence in Five Continents, Vol. IX IARC Scientific Publications No. 160, 2007.
22. Eric T Wong, Julian K Wu, Overview of the clinical features and diagnosis of brain tumors in adults. UpToDate, 2019
23. Forsyth PA, Posner JB. Headaches in patients with brain tumors: a study of 111 patients. Neurology 1993; 43:1678.
24. Valentinis L, Tuniz F, Valent F, et al. Headache attributed to intracranial tumours: a prospective cohort study. Cephalalgia 2010; 30:389.
25. Cavaliere R, Farace E, Schiff D. Clinical implications of status epilepticus in patients with neoplasms. Arch Neurol 2006; 63:1746.
26. Ferreri AJ. How I treat primary CNS lymphoma. Blood. 2011;118:510-522
27. Ferreri AJ, Abrey LE, Blay J-Y, et al. Management of primary central nervous system lymphoma: a summary statement from the 8th International Conference on Malignant Lymphoma. J Clin Oncol. 2003;21:2407-2414
28. Ohgaki H, Kleihues P. Population-based studies on incidence, survival rates, and genetic alterations in astrocytic and oligodendroglial gliomas. J Neuropathol Exp Neurol. 2005;64:479-489
29. Snyder H, Robinson K, Shah D, et al. Signs and symptoms of patients with brain tumors presenting to the emergency department. J Emerg Med. 1993;11:253-258
30. Whittle IR, Pringle AM, Taylor R. Effects of resective surgery for left-sided intracranial tumors on language function: a prospective study. Lancet. 1998;351:1014-1018
31. Wu JS, Zhou LF, Tang WJ, et al. Clinical evaluation and follow-up outcome of diffusion tensor imagingbased functional neuronavigation: a prospective, controlled study in patients with gliomas involving pyramidal tracts. Neurosurgery. 2007;61:935-948
32. Anderson MD, Colen RR, Tremont-Lukats IW. Imaging mimics of primary malignant tumors of the central nervous system (CNS). Curr Oncol Rep 2014; 16:399.
33. Branzoli F, Di Stefano AL, Capelle L, et al. Highly specific determination of IDH status using edited in vivo magnetic resonance spectroscopy. Neuro Oncol 2018; 20:907.
34. Jackson RJ, Fuller GN, Abi-Said D, et al. Limitations of stereotactic biopsy in the initial management of gliomas. Neuro Oncol 2001; 3:193.
35. Louis DN, Perry A, Burger P, et al. International Society Of Neuropathology--Haarlem consensus guidelines for nervous system tumor classification and grading. Brain Pathol 2014; 24:429.
36. Suzuki H, Aoki K, Chiba K, et al. Mutational landscape and clonal architecture in grade II and III gliomas. Nat Genet 2015; 47:458.
37. Reuss DE, Mamatjan Y, Schrimpf D, et al. IDH mutant diffuse and anaplastic astrocytomas have similar age at presentation and little difference in survival: a grading problem for WHO. Acta Neuropathol 2015; 129:867.
38. Louis DN, Ohgaki H, Wiestler OD, Cavenee WK. Classification of Tumours of the Nervous System, IARC Press, Lyon, France 2007.
39. Nobusawa S, Watanabe T, Kleihues P, Ohgaki H. IDH1 mutations as molecular signature and predictive factor of secondary glioblastomas. Clin Cancer Res 2009; 15:6002.
40. Yan H, Parsons DW, Jin G, et al. IDH1 and IDH2 mutations in gliomas. N Engl J Med 2009; 360:765.
41. Olar A, Wani KM, Alfaro-Munoz KD, et al. IDH mutation status and role of WHO grade and mitotic index in overall survival in grade II-III diffuse gliomas. Acta Neuropathol 2015; 129:585.
42. Palma L, Guidetti B. Cystic pilocytic astrocytomas of the cerebral hemispheres. Surgical experience with 51 cases and long-term results. J Neurosurg 1985; 62:811.
43. Jacob K, Albrecht S, Sollier C, et al. Duplication of 7q34 is specific to juvenile pilocytic astrocytomas and a hallmark of cerebellar and optic pathway tumours. Br J Cancer 2009; 101:722.
44. Cancer Genome Atlas Research Network, Brat DJ, Verhaak RG, et al. Comprehensive, Integrative Genomic Analysis of Diffuse Lower-Grade Gliomas. N Engl J Med 2015; 372:2481.
45. Camelo-Piragua S, Jansen M, Ganguly A, et al. Mutant IDH1-specific immunohistochemistry distinguishes diffuse astrocytoma from astrocytosis. Acta Neuropathol 2010; 119:509.
46. Horbinski C, Kofler J, Kelly LM, et al. Diagnostic use of IDH1/2 mutation analysis in routine clinical testing of formalin-fixed, paraffin-embedded glioma tissues. J Neuropathol Exp Neurol 2009; 68:1319.
47. Reuss DE, Mamatjan Y, Schrimpf D, et al. IDH mutant diffuse and anaplastic astrocytomas have similar age at presentation and little difference in survival: a grading problem for WHO. Acta Neuropathol 2015; 129:867.
48. Picca A, Berzero G, Bielle F, et al. FGFR1 actionable mutations, molecular specificities, and outcome of adult midline gliomas. Neurology 2018; 90:e2086.
49. Louis DN. Molecular pathology of malignant gliomas. Annu Rev Pathol 2006; 1:97.
50. Parsons DW, Jones S, Zhang X, et al. An integrated genomic analysis of human glioblastoma multiforme. Science 2008; 321:1807.
51. Yan H, Parsons DW, Jin G, et al. IDH1 and IDH2 mutations in gliomas. N Engl J Med 2009; 360:765.
52. Sanson M, Marie Y, Paris S, et al. Isocitrate dehydrogenase 1 codon 132 mutation is an important prognostic biomarker in gliomas. J Clin Oncol 2009; 27:4150.
53. Weller M, Felsberg J, Hartmann C, et al. Molecular predictors of progression-free and overall survival in patients with newly diagnosed glioblastoma: a prospective translational study of the German Glioma Network. J Clin Oncol 2009; 27:5743.
54. van den Bent MJ, Dubbink HJ, Marie Y, et al. IDH1 and IDH2 mutations are prognostic but not predictive for outcome in anaplastic oligodendroglial tumors: a report of the European Organization for Research and Treatment of Cancer Brain Tumor Group. Clin Cancer Res 2010; 16:1597.
55. Shirahata M, Ono T, Stichel D, et al. Novel, improved grading system(s) for IDH-mutant astrocytic gliomas. Acta Neuropathol 2018; 136:153.
56. Hartmann C, Hentschel B, Tatagiba M, et al. Molecular markers in low-grade gliomas: predictive or prognostic? Clin Cancer Res 2011; 17:4588.
57. Cairncross JG, Ueki K, Zlatescu MC, et al. Specific genetic predictors of chemotherapeutic response and survival in patients with anaplastic oligodendrogliomas. J Natl Cancer Inst 1998; 90:1473.
58. Louis DN, Giannini C, Capper D, et al. cIMPACT-NOW update 2: diagnostic clarifications for diffuse midline glioma, H3 K27M-mutant and diffuse astrocytoma/anaplastic astrocytoma, IDH-mutant. Acta Neuropathol 2018; 135:639.
59. Jiao Y, Killela PJ, Reitman ZJ, et al. Frequent ATRX, CIC, FUBP1 and IDH1 mutations refine the classification of malignant gliomas. Oncotarget 2012; 3:709.
60. Watanabe K, Tachibana O, Sata K, et al. Overexpression of the EGF receptor and p53 mutations are mutually exclusive in the evolution of primary and secondary glioblastomas. Brain Pathol 1996; 6:217.
61. Pathology and genetics of tumours of the nervous system. In: World Health Organization Classification of Tumours of the Nervous System, Editorial and Consensus Conference Working Group, Louis DN, Ohgaki H, Wiestler OD, Cavenee WK (Eds), IARC Press, Lyon, France 2007.
62. Jones DT, Kocialkowski S, Liu L, et al. Tandem duplication producing a novel oncogenic BRAF fusion gene defines the majority of pilocytic astrocytomas. Cancer Res 2008; 68:8673.
63. Dougherty MJ, Santi M, Brose MS, et al. Activating mutations in BRAF characterize a spectrum of pediatric low-grade gliomas. Neuro Oncol 2010; 12:621.
64. Lassaletta A, Zapotocky M, Mistry M, et al. Therapeutic and Prognostic Implications of BRAF V600E in Pediatric Low-Grade Gliomas. J Clin Oncol 2017; 35:2934.
65. Hermanson M, Funa K, Hartman M, et al. Platelet-derived growth factor and its receptors in human glioma tissue: expression of messenger RNA and protein suggests the presence of autocrine and paracrine loops. Cancer Res 1992; 52:3213.
66. Morandi L, Franceschi E, de Biase D, Marucci G, Tosoni A, Ermani M, Pession A, Tallini G, Brandes A (2010). "Promoter methylation analysis of O6-methylguanine-DNA methyltransferase in glioblastoma: detection by locked nucleic acid based quantitative PCR using an imprinted gene (SNURF) as a reference". BMC Cancer. 10: 48
67. Hegi ME, Diserens AC, Gorlia T, Hamou MF, de Tribolet N, Weller M, Kros JM, Hainfellner JA, Mason W, Mariani L, Bromberg JE, Hau P, Mirimanoff RO, Cairncross JG, Janzer RC, Stupp R (2005). "MGMT gene silencing and benefit from temozolomide in glioblastoma". N. Engl. J. Med. 352 (10): 997–1003
68. Leu, Felten et al. IDH mutation is associated with higher risk of malignant transformation in low-grade glioma. J Neurooncol (2016) 127:363–372
69. Brat DJ, Mapstone TB. Malignant glioma physiology: cellular response to hypoxia and its role in tumor progression. Ann Intern Med 2003; 138:659.
70. Senger, DR; Galli, SJ; Dvorak, AM; Perruzzi, CA; Harvey, VS; Dvorak, HF (25 February 1983). "Tumor cells secrete a vascular permeability factor that promotes accumulation of ascites fluid". Science. 219 (4587): 983–5
71. Yarden Y, Kuang WJ, Yang-Feng T, Coussens L, Munemitsu S, Dull TJ, Chen E, Schlessinger J, Francke U, Ullrich A (November 1987). "Human proto-oncogene c-kit: a new cell surface receptor tyrosine kinase for an unidentified ligand". EMBO J. 6 (11): 3341–51
72. Zhou J, Giannakakou P (January 2005). "Targeting microtubules for cancer chemotherapy". Current Medicinal Chemistry. Anti-cancer Agents. 5 (1): 65–71.
73. Chaichana KL, et al. Recurrence and malignant degeneration after resection
of adult hemispheric low-grade gliomas. J Neurosurg 2010;112:10-17.
74. McCormack BM, et al. Treatment and survival of low-grade astrocytoma in
adults--1977-1988. Neurosurgery 1992;31:636-642; discussion 642.
75. van den Bent MJ, et al. Long-term efficacy of early versus delayed
radiotherapy for low-grade astrocytoma and oligodendroglioma in adults:
The eortc 22845 randomised trial. Lancet 2005;366:985-990.
76. Vertosick FT, Jr., Selker RG Arena VC. Survival of patients with well-
differentiated astrocytomas diagnosed in the era of computed tomography.
Neurosurgery 1991;28:496-501.
77. Daniels T.B. et al. Validation of EORTC prognostic factors for adults with low-grade glioma: a report using intergroup 86-72-51. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 2011 Sep 1;81(1):218-24
78. Murphy, Leyrer, Parsons et al. Risk Factors for Malignant Transformation of Low Grade Glioma. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 2018 Mar 15;100(4):965-971
79. Hunter C, et al. A hypermutation phenotype and somatic msh6 mutations in
recurrent human malignant gliomas after alkylator chemotherapy. Cancer
Res 2006;66:3987-3991.
80. Shaw EG1, Wang M, Coons SW, Brachman DG. Randomized trial of radiation therapy plus procarbazine, lomustine, and vincristine chemotherapy for supratentorial adult low-grade glioma: initial results of RTOG 9802. J Clin Oncol. 2012 Sep 1;30(25):3065-70
81. Buckner JC, Chakravarti A, Curran WJ Jr. Radiation plus Chemotherapy in Low-Grade Glioma. N Engl J Med. 2016 Aug 4;375(5):490-1.
82. Kamasak K., Ekici M.A., Gocmez C., et al. Malign Transformation in the Low Grade Astrocytomas and Related Factors. Turk Neurosurg. 2012;22(5):566-75. doi: 10.5137/1019-5149.JTN.5347-11.3.
83. Chul-Kee Park, Inho Park et al. Genomic dynamics associated with malignant transformation in IDH1 mutated gliomas. Oncotarget. 2015 Dec 22;6(41):43653-66. doi: 10.18632/oncotarget.6189.
84. Jaeckle KA, Decker PA et al. Transformation of low grade glioma and correlation with outcome: an NCCTG database analysis.J Neurooncol. 2011 Aug;104(1):253-9. doi: 10.1007/s11060-010-0476-2
85. Kaisorn L. Chaichana, Mattew J. McGirt et al. Recurrence and malignant degeneration after resection of adult hemispheric low-grade gliomas. J Neurosurg. 2010 Jan;112(1):10-7. doi: 10.3171/2008.10.JNS08608
86. Ittichai Sakarunchai, Rassamee Sangthong et al. Free Survival Time of Recurrence and Malignant Transformation and Associated Factors in Patients with Supratentorial Low-Grade Gliomas.J Med Assoc Thai. 2013 Dec;96(12):1542-9.
87. Tae-Young Jung, Shin Jung et al. Early prognostic factors related to progression and malignant transformation of low-grade gliomas. Clin Neurol Neurosurg. 2011 Nov;113(9):752-7. doi: 10.1016/j.clineuro.2011.08.002
88. Rotta, Olivera et al. Malignant transformation of low-grade gliomas in patients undergoing adjuvant therapy. Acta Neurol Belg. 2017 Mar;117(1):235-239. doi: 10.1007/s13760-016-0657-7
89. Laura, Snyder et al. The impact of extend of resection on malignant transformation of pure oligodendrogliomas. J Neurosurg. 2014 Feb;120(2):309-14. doi: 10.3171/2013.10.JNS13368
90. Bourdillon, Hlaihel et al. Prediction of anaplastic transformation in low-grade oligodendrogliomas based on magnetic resonance spectroscopy and 1p/19q codeletion status. J Neurooncol. 2015 May;122(3):529-37. doi: 10.1007/s11060-015-1737-x
91. Turkoglu, Gurer et al. Clinical outcome of surgically treated low-grade gliomas: A retrospective analysis of a single institute. Clin Neurol Neurosurg. 2013 Dec;115(12):2508-13. doi: 10.1016/j.clineuro.2013.10.010
92. Juratli, Peitzch et al. Accumulation of 2-hydroxyglutarate is not a biomarker for malignant progression in IDH-mutated low-grade gliomas. Neuro Oncol. 2013 Jun;15(6):682-90. doi: 10.1093/neuonc/not006
93. Morshed, Han, Hervey-Jumper et al. Molecular features and clinical outcomes in surgically treated low-grade diffuse gliomas in patients over the age of 60. J Neurooncol. 2019 Jan;141(2):383-391. doi: 10.1007/s11060-018-03044
94. Zhang, Chiang, Magge et al. Texture analysis on conventional MRI images accurately predicts early malignant transformation of low grade gliomas. Eur Radiol. 2019 Jan 7. doi: 10.1007/s00330-018-5921-1
95. Bashir, Brennum, Broholm et al. The diagnostic accuracy of detecting malignant transformation of low-grade glioma using O-(2-[18F]fluoroethyl)-l-tyrosine positron emission tomography: a retrospective study.J Neurosurg. 2018 Apr 1:1-14. doi: 10.3171/2017.8.JNS171577