Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


ПРОЕКТИРОВАНИЕ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТИ, ОБЕСПЕЧИВАЮЩЕЙ ЭФФЕКТИВНЫЙ СИНТЕЗ РЕКОМБИНАНТНОГО БЕЛКА А STAPHYLOCOCCUS AUREUS В СИСТЕМЕ ESCHERICHIA COLI

Работа №97271

Тип работы

Главы к дипломным работам

Предмет

биология

Объем работы40
Год сдачи2019
Стоимость2500 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
39
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


ВВЕДЕНИЕ 3
ГЛАВА 1. БИОЛОГИЧЕСКАЯ И БИОХИМИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА
БЕЛКА А STAPHYLOCOCCUS AUREUS 5
1.1. Белок А Staphylococcus aureus. Краткая история открытия и изучения белка
А Staphylococcus aureus 5
1.2. Структура белка А Staphylococcus aureus (состав и строение) 7
1.3. Последовательность, кодирующая фрагменты белка А Staphylococcus aureus9
1.4. Аффинная хроматография на белке А Staphylococcus aureus 11
1.5. Конструирование рекомбинантных плазмид 16
1.6. Варианты конструкции рекомбинантного белка А Staphylococcus aureus .... 17
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ 21
2.1. Объекты исследования 21
2.2. Материалы исследований 21
2.3. Методы исследований
ВЫВОДЫ
БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК


Белок A (англ. protein A) - белок молекулярной массой 40-60 кДа, выделенный с поверхности клеточной стенки золотистого стафилококка (Staphylococcus aureus). Роль белка A в патогенезе стафилококковой инфекции заключается в том, что молекулы IgG связываются с поверхностью бактериальных клеток в неправильной ориентации. Это приводит к нарушению опсонизации и фагоцитоза. Белок A связывается с Fc-участком антител, взаимодействуя при этом с тяжёлыми цепями.
Белок A широко используется в молекулярно биологических и биохимических исследованиях, так как специфически связывает многие иммуноглобулины млекопитающих, особенно, иммуноглобулины класса G. Одной из основных областей использования белка А, в настоящее время является аффинная хроматография. Благодаря аффинной хроматографии на белке А, удается получать фармакологически чистые препараты рекомбинантных антител.
Потребность в хроматографических сорбентах с белком А заставили искать альтернативные золотистому стафилококку источник этого белка. В течение двух десятилетий при помощи технологий рекомбинантной ДНК и белковой инженерии были разработаны варианты белка А, обладающие высокой степенью устойчивости к денатурирующим агентам, рН среды и повышенной температуре. Однако ряд проблем связанных с препаратами рекомбинантного белка А остаются не решенными.
Данная работа направлена на синтез новой последовательности нуклеиновых кислот, которые кодируют усеченные полипептиды рекомбинантного белка А, векторы, клетки и способы их применения.
Целью данной работы является проектирование нуклеотидной последовательности обеспечивающей эффективный синтез рекомбинантного белка А Staphylococcus aureus в системе E.coli.
Для достижения цели были поставлены следующие задачи:
1. Провести проектирование экспрессионной кассеты включающей ген инженерного варианта Z-домена белка А Staphylococcus aureus.
2. Провести оптимизацию кодонного состава Z-домена белка А
Staphylococcus aureus для экспрессии в системе E.coli.
3. Провести оптимизацию нуклеотидной последовательности химерного белка включающего Z-домен белка А Staphylococcus aureus для экспрессии в системе E.coli;
4. Провести подбор лидерной последовательности, обеспечивающей экспорт белка в культуральную среду.
Предполагается, что использование набора биоинформатических инструментов позволит разработать плазмидный вектор, обеспечивающий высокоэффективный синтез и секрецию рекомбинантного варианта белка А Staphylococcus aureus.


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


1. Спроектирована экспрессионная кассета, включающая ген инжинерного варианта Z-домена белка А Staphylococcus aureus при помощи пакета программ SnapGene.
2. Оптимизирован кодонный состав последовательности Z-домена белка А Staphylococcus aureus для экспрессии в системе E.coli при помощи инструмента GeneOptimizer.
3. Усовершенствована первичная последовательность Z-домена белка А Staphylococcus aureus для экспрессии в системе E.coli при помощи инструмента GenScript Rare Codon Analysis Tool
4. Проведено клонирование последовательности Z-gene в составе экспрессионного вектора.



1. Ахтамов М.А., Сидикова К.А. Стафилококковые инфекции: Микробиология, эпидемиология, специфическое лечение и профилактика. - Ташкент, 1981. - 129 с.
2. Михайлов М.В., Дубовая В.И., Такаева Н.А., Носков А.Н., Добрица А.П. Рекомбинантная плазмида ДНК РММ 9, кодирующая синтез белка А Staphylococcus aureus, способ её конструирования и штамм бактерий Bacillus subtilis - продуцент белка А Staphylococcus aureus. - Москва : Государственный комитет по делам изобретений и открытий, 1995. - 6 с.
3. Смирнова А.М., Трояшкин А.А., Падерина Е.М. Микробиология и порфилактика стафилококковых инфекций. — Ленинград : Медицина, 1977. - 216 с.
4. Уилсон К., Дж. Уолкер. Принципы и методы биохимии и молекулярной биологии. - Москва: БИОНОМ : Лаборатория знаний, 2015. - 855 с.
5. Anthony Newcombe, Chrissie Cresswell, Susannah Davies, Keith Watson, Guy Harris, Kieran O’Donovan, Richard Francis. Optimised affinity purification of polyclonal antibodies from hyper immunised ovine serum using a synthetic Protein A adsorbent, MAbsorbent® A2P // Chromatography, - USA, 2005 - . 215 p.
6. Arne Forsgren, John Sjoquist. Protein A from staphylococcus aureus. //
Microbiolog. New York, 2019. - 179 p.
7. Asplund M., Ramberg M., Johansson B. Development of a cleaning in place protocol and repetitive application of Escherichia coli homogenate on STREAMLINE (™) Q XL. - USA // Biochemistry, 2000. - 235 р.
8. Besse F., Ephrussi A. Translational control of localized mRNAs: restricting protein synthesis in space and time. - New York // Biology, 2008. - 80 р.
9. Braisted Andrew, Melissa Starovasnik, James Wells. Peptide variants of protein A. - USA // United States Patent, 2001. - 51 p.
10. Carter P. Site-specific proteolysis of fusions proteins. Protein purification: from molecular mechanisms to large-scale processes. - USA // American Chemical Society, 1990. - 193 p.
11. Chung B.K., Lee D.Y. Computational codon optimization of synthetic gene for protein expression. - New York // BMC Syst Biol., 2012. - 134 p.
12. Deisenhofer J. Crystallographic refinement and atomic models of a human Fc- fragment and its complex with fragment B of protein A from Staphylococcus aureus at 2.9- and 2.8-A resolution. - USA // Biochemistry, 2008. - 70 p.
13. Diesenhofer J. Crystallographic Refinement and Atomic Models of a Human Fc-fragment and Its Complex with Fragment B of Protein A from Staphylococcus aureus at 2.9-and 2.8-Angstroms Resolution. - USA // Biochemistry, 1981. - 237 p.
14. Feinstein G. Affinity Chromotography of Biological Macromolecules. -
London // Nature, 1971. - 396 p.
15. Forsberg G., Baastrup B., Brobjer M., Lake M., Jo’mvall H., Hartmanis M. Comparison of two chemical cleavage methods for preparation of a truncated form of recombinant human insulin-like growth factor I from secreted fusion protein. - USA // BioFactors, 1989. - 112 p.
16. Forsgren A., Sjoquist J. Protein A from S, aureus: I. Pseudoimmune reaction with human gamma-globulin. - New York // Immunology, 1966. - 827 p.
17. Fowler Kathleen. Removal of Leaked Affinity Purification Ligand. - USA // International Patent, 2014. - 93 p.
18. Frank J. Advances in immunology. - London // Academic of immunology, 1982. - 158 p.
19. Fuglsang A. Codon optimizer: a freeware tool for codon optimization . - New York // Protein Expr. Purif., 2003. - 247 p.
20. Geiger T., Clarke S. Deamidation isomerization andracemization at asparaginy l and asparty l residues in peptides. - USA // Biol Chem, 1987. - 794 p.
21. Gouda H., Torigoe H., Saito A., Sato M., Arata Y., Shimada I. These- Dimensional Solution Structure of the B Domain of Staphylococcal Protein A: Comparisons of the Solution and Crystal Structures. - USA // Biochemistry, 1992. - 31 p.
22. Grote A., Hiller K., Scheer M., Munch R., Nortemann B. A novel tool to adapt codon usage of a target gene to its potential expression host. - London // Nucleic Acids Res, 2005. - 526 p.
23. Grov A., Myklestad B., Oeding P. Immunochemical studies on antigen preparations from staphylococcus aureus. - USA // Pathologica et Microbiologica Scandinavica, 1994. - 588 p.
24. Gu’lich S., Linhult M., Nygren P., Uhlen M., Hober S. Stability towards alkaline conditions can be engineered into a protein ligand. - USA // Biotechnology, 2000. - 178 p.
25. Hale G., Drumm A., Harrison P., Phillips J. Repeated cleaning of protein A alfiinity column with sodium hydroxide. - New York // Immunology, 1994. - 171 p.
26. Hatfield G.W., Roth D.A. Optimizing scaleup yield for protein production: Computationally Optimized DNA Assembly (CODA) and Translation Engineering. - USA // Biotechnol Annu Rev, 2007. - 142 p.
27. Holm L. Codon usage and gene expression. - USA // Nucleic Acids Res, 1986. - 87 p.
28. Kanehisa M., Goto S., Kawashima S., Nakaya A. The KEGG databases at GenomeNet // Nucleic Acids Res, 2002. - V. 30.-P. 42-46.
29. Kosky A.A., Razzzaq U.O., Treuheit M.J., Brems D.N. The effects of alpha-helix on the stability of Asn residues. - London // Peptides, 1999. - 523 p.
30. Kossiakoff A.A. Tertiary structure is a principal determinant to proteindeamidation. - New York // Science, 2001. - 194 p.
31. Kosugi A., Yajima K. Process for producing protein A-like protein with use of Brevibacillus genus bacterium. - USA // United States Patent, 2016. - 89 p.
32. Kunkel A., Bebenek K., McClary J. Efficient sitedirected mutagenesis using uracil-containing DNA. - USA // Methods Enzymol, 1991. - 139 p.
33. Linhult M., Gulich S., Graslund T., Simon A., Karlsson M., Sjoberg A., Hober
S. Improving the tolerance of a protein a analogue to repeated alkaline exposures using a bypass mutagenesis approach. - London // Proteins: structure, function, and bioinformatics, 2004. - 416 p.
34. Martin Hall, Sture Larsson, Andreas Muranyi, Gustav Rodrigo, Per-Mikael Aberg. Chromatography ligand comprising domain C from Staphylococcus aureus protein A for antibody solation. - New York // United States Patent, 2012. - 11 p.
35. Martin Kangwa, Vikas Yelemane, Ayse Nur Polat, Kanaka Durga Devi Gorrepati, Mariano Gras. High-level fed-batch fermentative expression of an engineered Staphylococcal protein A based ligand in E. coli: purification and characterization. - USA // Medicine, 2015. - 107 p.
36. Martin L., Susanne G., Torbgorn G., Annelie S., Martin K., Anna S., Karin N., Sophia H. Improving the Tolerance of a Protein A Analogue to Repeated Alkaline Exposures Using a Bypass Mutagenesis Approach. - USA // Biochemistry, 2004 - 416 p.
37. Mueller L.A., Zhang P., Rhee S.Y. AraCyc. A Biochemical Pathway Database for Arabidopsis // Plant Physiol. 2003. - V. - 132. - P. 453-460.
38. Nakamura Y., Gojobori T., Ikemura T. Codon usage tabulated from international DNA sequence databases. - USA // Nucleic Acids Res., 2000 - 292 p.
39. Nilsson B., Abrahmsen L. Methods of biology. - London // Enzymology, 1990. - 185 p.
40. Nilsson B., Moks T., Jansson B., Abrahmsen L., Elmblad A., Holmgren E., Henrichson C., Jones T.A., Uhlen M.A. Synthetic IgG-binding domain basedon staphylococcal protein A. - USA // Protein Engeneering, 1987. - 113 p.
41. Payser James Ronald. Nucleic acids encoding recombinant protein A. - New York // United States Patent, 2010. - 37 p.
42. Prat Y., Fromer M., Linial N., Linial M. Codon usage is associated with the evolutionary age of genes in metazoan genomes. - USA // BMC Evol Biol., 2009 - 285 p.
43. Raab D., Graf M., Notka F., Schodl T., Wagner R. The Gene-Optimizer Algorithm: using a sliding window approach to cope with the vast sequence space in multiparameter DNA sequence optimization. Syst. Synth. - USA // Biol., 2010. - 215 p.
44. Sambrook Sambrook J., Fritsch E.F., Maniatis T. Molecular cloning, a laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory // New York. Biology, 1989. - 510 p.
45. Samuel Ray, Robert Perry, Hanson Road, Marcelo Fernandez-Lahore. - USA // Leaked affinity purification ligand. International Publication, 2014. - 52 p.
46. Sophia Hober, Hans Joohansson. Mutant protein. - USA // United States Patent, 2016. - 41 p.


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ