Введение 12
1 Обзор литературы 14
1.1 Структура и свойства глутатиона 14
1.2 Фармакологические свойства глутатиона 17
1.3 Методы определения глутатиона 19
1.4 Вольтамперометрический метод анализа 34
2 Экспериментальная часть 37
2.1 Аппаратура, ячейки, электроды 37
2.2 Реактивы 40
2.3 Объекты исследования 40
2.4 Вольтамперометрический метод определения глутатиона в модельных растворах и в сыворотке крови человека на ртутно-пленочном электроде..40
2.4.1 Исследование электрохимических свойств глутатиона на ртутнопленочном электроде 40
2.4.1.1 Исследование влияния природы фонового электролита на токи
окисления и восстановления глутатиона на ртутно-пленочном электроде 44
2.4.1.2 Исследование влияния рН фонового электролита среды Бриттона-
Робинсона на токи окисления глутатиона на ртутно-пленочном электроде 52
2.4.1.3 Предположительный механизм окисления-восстановления глутатиона
на ртутно-пленочном электроде 54
2.4.1.4 Подбор оптимальных параметров времени накопления и потенциала накопления для определения глутатиона в модельных растворах на ртутно-
пленочном электроде 55
2.4.2 Электрохимические свойства цистина, цистеина, глицина 56
2.4.3 Вольтамперометрический метод определения глутатиона в модельных
растворах на углеродсодержащем электроде 62
2.5.1 Исследование влияния природы фонового электролита на токи
окисления серебра в присутствии глутатиона на углеродсодержащем электроде 63
2.5.2 Исследование оптимальных параметров потенциала накопления и времени накопления на ток окисления серебра в присутствии глутатиона на
углеродсодержащем электроде 65
2.5.3 Исследование зависимостей AI от концентрации глутатиона в растворе на углеродсодержащем электроде в присутствии ионов серебра 67
2.6 Сравнительное определение суммарного содержания тиоловых соединений в сыворотке крови человека в пересчете на глутатион методом вольтамперометрии на ртутно-пленочном электроде и углеродсодержащем
электроде в присутствие ионов серебра 70
3 Финансовый менеджмент, ресурсоэффективность и ресурсосбережение.^
3.1 Предпроектный анализ 72
3.1.1 Потенциальные потребители результатов исследования 72
3.1.2 Анализ конкурентных технических решений с позиции
ресурсоэффективности и ресурсосбережения 72
3.1.3 SWOT-анализ 73
3.1.4 Оценка готовности проекта к коммерциализации 74
3.1.5 Метод коммерциализации результатов научно-технического
исследования 76
3.2 Инициация проекта 76
3.2.1 Устав проекта 76
3.2.2 Организационная структура проекта 77
3.2.3 Ограничения и допущения проекта 77
3.3 Планирование управления научно-техническим проектом 78
3.3.1 Иерархическая структура работ проекта 78
3.3.2 План проекта 80
3.3.3 Бюджет научного исследования 82
3.4 Определение ресурсной (ресурсосберегающей), финансовой, бюджетной,
социальной и экономической эффективности
исследования 89
3.4.1 Оценка сравнительной эффективности исследования 89
4 Социальная ответственность 92
4.1 Производственная безопасность 92
4.1.1 Анализ вредных и опасных факторов, которые может создать объект
исследования 92
4.2 Экологическая безопасность 99
4.2.1 Анализ влияния объекта и процесса исследования на окружающую
среду 99
4.2.2 Мероприятия по защите окружающей среды 99
4.3 Безопасность в чрезвычайных ситуациях 99
4.4 Правовые и организационные вопросы обеспечения безопасности... 104
4.4.1 Организационные мероприятия при компоновке рабочей зоны 104
Заключение 106
Список использованных источников 108
Приложение А. Английская часть 114
В последние годы в научных медицинских публикациях все чаще встречается термин «оксидативный стресс», который широко применяется при описании патогенеза многих заболеваний и мишеней действия лекарственных средств. Под оксидативным стрессом подразумевается нарушение баланса окислительных и восстановительных реакций в организме (ткани, клетке, ее отдельных органеллах) в сторону избыточного образования свободных радикалов, которые являются сильными окислителями и способны повреждать жизненно важные молекулы - ферменты, белки, фосфолипиды мембран, нуклеиновых кислот. В настоящее время в отношении более чем 60 заболеваний выявлена патогенетическая связь с оксидативным стрессом. Любые болезни, связанные с инфекцией, воспалением, синдромом ишемииреперфузии, эндотелиальной дисфункцией, а также онкологическая патология и сахарный диабет сопровождаются массивным образованием свободных радикалов.
В норме образование свободных радикалов и недоокисленных продуктов метаболизма происходит во время биохимических реакций организма непрерывно. Баланс поддерживается антиоксидантными ферментами, способными нейтрализовать молекулы с высоким окислительным потенциалом. В организме существует четыре линии антиоксидантной защиты, которые последовательно восстанавливают активные формы кислорода (свободные радикалы), продукты перекисного окисления жиров и белков. Основным внутриклеточным антиоксидантом с мощным детоксикационным действием является глутатион.
Целью данной работы является определить глутатион в сыворотке крови человека методом вольтамперометрии
В рамках этой цели были сформулированы следующие задачи:
• подобрать оптимальные условия определения глутатиона в модельных растворах на ртутно-пленочном электроде: выбор диапазона потенциала; выбор рН буферных растворов(фосфатный, боратный,
Бриттона-Робинсона буферные растворы); выбор скорости развертки потенциала (W, мВ/с); диапазон линейной зависимости тока Ip, мкА от концентрации С, моль/л;
• подобрать оптимальные условия определения на углеродсодержащем электроде в присутствии ионов серебра: выбор рН буферных растворов; выбор скорости развертки потенциала (W, мВ/с); диапазон линейной зависимости тока Ip, мкА от концентрации С, моль/л;
• провести сравнительное определение в сыворотке крови человека на ртутно-пленочном и углеродсодержащем электродах в присутствии ионов серебра
В процессе исследования были сделаны следующие выводы:
1. Подобраны оптимальные условия определения глутатиона в модельных растворах на ртутно-пленочном электроде:
• Буфер: гидрофталат калия рН=4,01;
• Скорость развертки: W=40 мВ/с;
• Потенциал накопления: Енак=-0,4 В;
• Время накопления: 1:нак=110 с;
• Линейный диапазон концентраций GSH: от 0,34*10-4 моль/дм3 до
1,66*10-4 моль/дм3.
2. Подобрали оптимальные условия определения глутатиона в модельных растворах на углеродсодержащем электроде в присутствии ионов серебра:
• Буфер: гидрофталат калия рН=4,01;
• Скорость развертки: W=100 мВ/с;
• Потенциал накопления: Енак=0 В;
• Время накопления: 1:нак=10 c
• Линейный диапазон концентраций GSH: от 1*10-6 моль/дм3 до 5,94*10-6
-5
моль/дм .
3. Проведено сравнительное определение глутатиона в сыворотке крови человека на ртутно-пленочном и углеродсодержащем электродах в присутствии ионов серебра.
Результаты определения содержания глутатиона в сыворотке крови человека, полученные методом вольтамперометрии на ртутно-пленочном электроде близки к данными, полученными методом титрования в присутствии ионов серебра на углеродсодержащем электроде, Кроме того, методика титрования в присутствии ионов серебра на углеродсодержащем электроде оказалась более чувствительной и позволяет не использовать токсичную ртуть, что несомненно указывает на ее конкурентные преимущества.
На сегодняшний день данные методики определения содержания глутатиона в сыворотке крови человека можно рекомендовать для проведения анализов в клинических биохимических лабораториях.
1. Глутатион [Электронный ресурс]. - Режим доступа www.URL: http://lifebio.wiki.
2. Struznka L, Chalimoniuk M, Sulkowski G. The role of astroglia in Pb- exposed adult rat brain with respect to glutamate toxicity. Toxicology 212 (2-3): - 2005. - P.185-194.
3. F.D. Carvalho, F. Remiao, P. Vale, Glutathione and cysteine measurement in biological samples by HPLC with a glassy carbon working detector // Biomed. Chromatogr. - 1994. - Vol.8 - P. 134-136.
4. О.Я Бабак. Глутатион в норме и при патологии: биологическая роль и возможности клинического применения. - 2015.
5. Nagy, P. Kinetics and mechanisms of thiol-disulfide exchange covering direct substitution and thiol oxidation-mediated pathways, Antioxidants & Redox Signaling, 18. - 2013. - P. 1623-1641.
6. Janssen-Heininger, Y.M., Nolin, J.D., Hoffman, S.M., van der Velden, J.L., Tully, J.E., Lahue, K.G., Abdalla, S.T., Chapman, D.G., Reynaert, N.L., van der Vliet, A., and Anathy, V. Emerging mechanisms of glutathione- dependent chemistry in biology and disease, Journal of Cellular Biochemistry, 114. - 2013. - Р. 1962-8.
7. Danyelle M. Townsend, Kenneth D. Tew, Haim Tapiero Department of Pharmacology, Fox Chase Cancer Center, 7701 Burholme Ave., Philadelphia, PA 19111, USA Faculte de pharmacie, Universite de Paris, CNRS UMR 8612, 5, rue Jean-Baptiste Clement, 94200 Chatenay Malabry, France. The importance of glutathione in human disease.
8. Franco, R., and Cidlowski, J.A. Apoptosis and glutathione: beyond an antioxidant, Cell Death and Differentiation, 16, - 2009. - Р. 1303-1314.
9. Deponte, M. (2013) Glutathione catalysis and the reaction mechanisms of glutathione-dependent enzymes, Biochimica et Biophysica Acta, 1830. - 2013. - Р 3217-3266.
10. Galano, A., and Alvarez-Idaboy, J.R. Glutathione: mechanism and kinetics of its nonenzymatic defense action against free radicals, RSC Advances, 1. - 2011. - Р. 1763-1771.
11. Winterbourn, C.C. Superoxide as an intracellular radical sink, Free Radical Biology and Medicine, 14. - 1993. - Р. 85-90.
12. Hagen TM1. Fate of dietary glutathione: disposition in the gastrointestinal tract. Am J Physiol. - 1990.
13. Fukagawa NK1, Ajami AM, Young VR. Plasma methionine and cysteine kinetics in response to an intravenous glutathione infusion in adult humans. Am J Physiol. - 1996.
14. Iantomasi T1. Glutathione transport system in human small intestine epithelial cells. Biochim Biophys Acta. - 1997.
15. Witschi A1. The systemic availability of oral glutathione. Eur J Clin Pharmacol. - 1992.
16. Aebi S1, Assereto R, Lauterburg BH. High-dose intravenous glutathione in man. Pharmacokinetics and effects on cyst(e)ine in plasma and urine. Eur J Clin Invest. - 1991.
17. Thompson GA, Meister A. Hydrolysis and transfer reactions catalyzed by gamma-glutamyl transpeptidase; evidence for separate substrate sites and for high affinity of L-cystine. Biochem Biophys Res Commun. - 1976.
18. Orlowski M, Meister A. The gamma-glutamyl cycle: a possible transport system for amino acids. Proc Natl Acad Sci U S A. - 1970.
19. Sze G1, et al. Bidirectional membrane transport of intact glutathione in Hep G2 cells. Am J Physiol. - 1993.
20. Benard O1, Balasubramanian KA. Effect of oxidant exposure on thiol status in the intestinal mucosa. Biochem Pharmacol. - 1993.
21. Pastore A1. Analysis of glutathione: implication in redox and detoxification. Clin Chim Acta. - 2003.
22. Bogaards JJ1, Venekamp JC, van Bladeren PJ. Stereoselective conjugation of prostaglandin A2 and prostaglandin J2 with glutathione, catalyzed by the human glutathione S-transferases A1-1, A2-2, M1a-1a, and P1-1. Chem Res Toxicol. - 1997.
23. Roman Kand’ar, Pavla Zakova, Halka Lotkova, Otto Kucerab, Zuzana Cervinkova. Determination of reduced and oxidized glutathione in biological samples using liquid chromatography with fluorimetric detection. - 2007. - P. 1382-1387.
24. D.J. Reed, J.R. Babson, P.W. Beatty, A.E. Brodie, W.W. Ellis, D.W. Potter. High-performance liquid chromatography analysis of nanomole levels of glutathione, glutathione disulfide, and related thiols and disulfides. - 1980. - P. 5562.
25. John P. Richie Jr., Calvin A. Lang. The determination of glutathione, cyst(e)ine, and other thiols and disulfides in biological samples using high- performance liquid chromatography with dual electrochemical detection. - 1987. - P. 9-15.
26. Catherine Ceresera, Jerome Guichard, Jocelyne Drai, Edith Bannier, Isabelle Garcia, Sophie Boget, Parviz Parvaz, Andre Revol. Quantitation of reduced and total glutathione at the femtomole level by high-performance liquid chromatography with fluorescence detection: application to red blood cells and cultured fibroblasts. - 2001. - P. 123-132.
27. Jeffrey Lakritz, Charles G. Plopper, Alan R. Buckpitt. Validated High- Performance Liquid Chromatography-Electrochemical Method for Determination of Glutathione and Glutathione Disulfide in Small Tissue Samples. - 1997. - P. 63-68.
28. Amy F Loughlin, Gary L Skiles, David W Alberts, William H Schaefer. An ion exchange liquid chromatography/mass spectrometry method for the determination of reduced and oxidized glutathione and glutathione conjugates in hepatocytes. - 2001. - P. 131-142.
29. DU Xiao-li, ZHU Zhu , FU Qiang, LI Da-kui. HPLC method for determination of glutathione in human plasma. - 2006.
30. E. Bald, R. Glowacki. Analysis of saliva for glutathione and metabolically related thiols by liquid chromatography with ultraviolet detection. - 2005. - P. 431-433.
31. Andre R.T.S. Araujo, M. Lucia M.F.S. Saraiva, Jose L.F.C. Lima. Determination of total and oxidized glutathione in human whole blood with a sequential injection analysis system. - 2008. - P. 1511-1519.
32. Irfan Rahman, Aruna Kode1 & Saibal K Biswas. Assay for quantitative determination of glutathione and glutathione disulfide levels using enzymatic recycling method. - 2007.
33. Frank Tietze. Enzymic method for quantitative determination of nanogram amounts of total and oxidized glutathione: Applications to mammalian blood and other tissues. - 1969. - P. 502-522.
34. M.A. Raggi, L. Nobile, A.G. Giovannini. Spectrophotometric determination of glutathione and of its oxidation product in pharmaceutical dosage forms. - 1991. - P. 1037-1040.
35. Joseph Eliot Woodbridge. US 3864085 A, Glutathione reagent and test method
36. Victor H. Cohn, Jerry Lyle. A fluorometric assay for glutathione, - P. 434-440.
37. G. K. Budnikov, G. K. Ziyatdinova, Ya. R. Valitova. Electrochemical Determination of Glutathione. - 2004. - P. 573-576.
38. Madalena C. C. Areias, Kenichi Shimizu and Richard G. Compton. Voltammetric detection of glutathione: an adsorptive stripping voltammetry approach. - 2016.
39. Jahan Bakhsh Raoof, Reza Ojani, Hassan Karimi-Maleh, Mohammad R. Hajmohamadi and Pouria Biparva. Multi-wall carbon nanotubes as a sensor and ferrocene dicarboxylic acid as a mediator for voltammetric determination of glutathione in hemolysed erythrocyte. - 2011.
40. R. Moradi, S. A. Sebt, H. Karimi-Maleh, Roya Sadeghi, F. Karimi, A. Bahari and H. Arabi. Synthesis and application of FePt/CNTs nanocomposite as a sensor and novel amide ligand as a mediator for simultaneous determination of glutathione, nicotinamide adenine dinucleotide and tryptophan, - 2013.
41. Hassan Karimi-Maleh, Fahimeh Tahernejad-Javazmi, Ali A. Ensafi, Reza Moradi, Shadpour Mallakpour, Hadi Beitollahi. A high sensitive biosensor based on FePt/CNTs nanocomposite/N-(4-hydroxyphenyl)-3,5-dinitrobenzamide modified carbon paste electrode for simultaneous determination of glutathione and piroxicam. - 2014. - P. 1-7.
42. Ali A. Ensafi, Samira Dadkhah-Tehrani and Hassan Karimi-Maleh. Voltammetric determination of glutathione in haemolysed erythrocyte and tablet samples using modified-multiwall carbon nanotubes paste electrode. - 2011.
43. Jahan Bakhsh Raoof, Reza Ojani, Mansureh Kolbadinezhad. Voltammetric sensor for glutathione determination based on ferrocene-modified carbon paste electrode. - 2008.
44. J. B. Raoof, R. Ojani, H. Karimi-Maleh. Electrocatalytic oxidation of glutathione at carbon paste electrode modified with 2,7-bis (ferrocenyl ethyl) fluoren-9-one: application as a voltammetric sensor. - 2009. - P. 1169-1175.
45. A.A. Ensafi, Hassan Karimi-Maleh, S. Mallakpour. A new strategy for the selective determination of glutathione in the presence of nicotinamide adenine dinucleotide (NADH) using a novel modified carbon nanotube paste electrode. -
2013. - P. 186-193.
46. Afsaneh Safavi, Norouz Maleki, Elaheh Farjami and Farzaneh Aghakhani Mahyari. Simultaneous Electrochemical Determination of Glutathione and Glutathione Disulfide at a Nanoscale Copper Hydroxide Composite Carbon Ionic Liquid Electrode. - 2009. - P. 7538-7543.
47. Г.В. Прохорова. Введение в электрохимические методы анализа. -
1991.
48. Метод. указ.к лаб. работам /; Сост. Б.М. Стифатов, В.В. Слепушкин, Ю.В. Рублинецкая. Самара, Самар. гос. техн. ун-т, - 2013. - Р. 20 с.
49. Т.М.Гиндуллина, Н.М. Дубова. Аналитическая химия и ФХМА. Лабораторный практикум. - Ч.2. - 2013.
50. Т.В. Скиба. Разработка метода инверсионно- вольтамперометрического титрования для определения тиоловых, дисульфидных групп и сульфидной серы в природных водах и биожидкостях. - 2013.
51. СанПиН 2.2.4.1191-03. Гигиенические требования к микроклимату производственных помещений.
52 СП 52.13330.2011 Естественное и искусственное освещение.
53. СН 2.2.4/2.1.8.562-96. Шум на рабочих местах, в помещениях жилых, общественных зданий и на территории застройки.
54. СН 2.2.4/2.1.8.566. Производственная вибрация, вибрация в помещениях жилых и общественных зданий. - М.: Минздрав России, 1997.
55 ГОСТ 12.1.007-76 ССБТ. Вредные вещества. Классификация и общие требования безопасности.
56. Технический регламент от 24 декабря 2009 г. О безопасности средств индивидуальной защиты [Электронный ресурс]. Режим доступа www.URL:http://www.rg.ru/2010/03/30/tehreg-site-dok.html.
57. ГОСТ Р 12.1.019-2009 ССБТ. Электробезопасность. Общие требования и номенклатура видов защиты.
58. ГОСТ Р 22.0.07-95. Безопасность в чрезвычайных ситуациях. Источники техногенных чрезвычайных ситуаций. Классификация и номенклатура поражающих факторов и их параметров.