Список сокращений 3
Введение 4
ГЛАВА 1. КЛАСТЕРЫ ДИФФЕРЕНЦИРОВКИ И ИХ СПЕЦИФИЧНОСТЬ ... 6
1.1. Т-клеточный иммунный ответ 6
1.2. СО-рецепторы 8
1.3. Семейство И7-2 11
1.4. Методы исследования белок-белковых взаимодействий 15
1.4.1. Метод фагового дисплея 16
1.4.2. Пептидные микрочипы 17
1.4.3. Рентгеноструктурный анализ белковых комплексов 19
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ 22
2.1. Материалы исследования 22
2.2. Методы исследования 24
2.3. Календарный план исследования 31
2.4. Бюджет исследования 32
ГЛАВА 3. СПЕЦИФИЧЕСКИЕ ПЕПТИДЫ, БЛОКИРУЮЩИЕ B7-2 35
3.1. Отбор специфических пептидов 35
3.2. Идентификация аминокислотных последовательностей 38
3.3. Анализ иммунохимических свойств отобранных пептидов 39
ВЫВОДЫ 44
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ 45
БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК 46
По данным Росстата на 2018 год рак занимает второе место по смертности населения. Из-за устойчивости к лекарствам, отсутствия опухолевой избирательности, разработанные методы лечения рака утратили терапевтический эффект. В связи с этим, необходим поиск новых терапевтических и диагностических агентов (Marqus, Pirogova, Piva, 2017).
В качестве основы для разработки эффективных средств терапии онкологических заболеваний выступают пептиды, характеризующиеся высокой специфичностью взаимодействия с мишенью. Важной особенностью использования пептидов является отсутствие накопления их в органах, например, почках или печени, что снижает уровень токсического эффекта (Titov, 2013).
В настоящее время технология фагового дисплея является одним из методов поиска новых пептидных лигандов. Фаговые пептидные библиотеки являются источником получения пептидов, которые способны избирательно взаимодействовать с белками, липидами, углеводами (Urban, Mosmajer, Bosma, 2019). Важным преимуществом метода является возможность определения аминокислотной последовательности пептида по кодирующей его ДНК. Для отобранных пептидов проводится аффинная селекция с целью получения высокоспецифичных пептидных лигандов. Путем секвенирования ДНК отобранных клонов, определяется первичная структура пептида.
Пептиды, которые обладают высокой аффинностью и лишены токсичности и иммуногенности, являются основой для разработки средств, регулирующих иммунный ответ, а также создания эффективных лекарственных веществ.
Цель исследования - отобрать пептиды, блокирующие ко- регуляторный белок B7-2, с помощью аффинной селекции.
Для достижения поставленной цели были сформулированы следующие задачи:
1. Отобрать пептиды, используя фаговую пептидную библиотеку GerLab;
2. Определить нуклеотидные последовательности, кодирующие аминокислоты пептидов отобранных клонов секвенированием по Сэнгеру;
3. Провести биоинформатический анализ полученных последовательностей с помощью программы BioEdit.
4. Проанализировать иммунохимические свойства отобранных пептидов методами ИФА и дот-блот анализа.
Практическая значимость: результаты данного исследования могут быть использованы для дальнейшего изучения иммунного ответа и разработки иммунотерапевтических средств против раковых заболеваний.
1. Титр бактериофагов, отобранных после трех раундов аффинной селекции фаговой пептидной библиотеки против ко-регуляторной молекулы В7-2, составил 1010, 1011, 109 соответственно. Концентрация выделенной из бактериофагов одноцепочечной ДНК составила примерно 90 нг/мкл;
2. Определены нуклеотидные последовательности 9 фаговых клонов в области встройки чужеродных пептидов;
3. На основе компьютерного анализа выявлены 2 группы пептидов. Первая группа, представленная единичными клонами, не имеет между собой общего аминокислотного мотива в составе, экспонируемого пептиды CPSASSQLTC,
QMPALMQQ, AHIEVVSP. Вторая группа представлена клонами бактериофагов, несущих одну аминокислотную последовательность CLARCLGRC;
4. На основе результатов иммунохимического анализа показано, что максимальным сродством к молекуле В7-2 обладает пептид второй группы бактериофагов состава CLARCLGRC.
1. Летаров А.В., Куликов Е.Е. Адсорбция бактериофагов на клетках бактерий // Успехи биологической химии, 2017. - Т. 57. - С. 153-208.
2. Парамонов А. А., Каюмова Л.Н., Брускин С.А. и др. Репертуар Т- клеточных рецепторов при некоторых иммунозависимых дерматозах // Российский журнал кожных и венерических болезней, 2015. - №18(4). - С. 34-41.
3. Першина А.Г., Сазонов А.Э., Мильто И.В. Использование магнитных наночастиц в биомедицине // Бюллетень сибирской медицины, 2008. - №2. - С. 70-78.
4. Сулейманова Н.Л., Агеева Е.С., Кораблева Т.Р Сравнительный анализ образования кристаллов в высыхающей капле в норме и при патологии // Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture, 2019. - Т. 11. - №5-2. - С. 134-139.
5. Феофилова М.А., Томарева Е.И., Евдокимова Д.В. Возможности кристаллографических методов в исследовании патологии человека (обзор литературы) // Вестник новых медицинских технологий, 2017. - Т. 24. - №4. - С. 198-208.
6. Шаповал А. И., Шаповал С. П., Щербакова Н. С., Д. Н. Щербаков Молекулы контроля иммунитета семейства В7. часть 2. представители семейства В7: B7-H3, B7-H4, B7-H5, B7-H6, B7-H7 и ILDR2 и их рецепторы // Биоорганическая химия, 2019. - Т.45. - №5. - С. 472-487.
7. Щербакова Н.С., Чикаев А.Н., Карпенко Л.И. Влияние биотинилирования антител 2F5 на отбор пептидов из комбинаторной фаговой библиотеки // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология, 2012. - №1. - С. 20-25.
8. Actor J. K. A Functional Overview of the Immune System and Immune Components // Introductory Immunology, 2019. - P. 1-16.
9. Aghebati-Maleki L., Bakhshinejad B., Baradaran B., et al. Phage display as a promising approach for vaccine development // Journal of Biomedical Science, 2016. - No23(1). - P. 1-18.
10. Alberts B., Johnson A., Lewis J., et al. Molecular biology of the cell. 4th edn // Annals of Botany, 2003. - No91(3). - P. 401-401.
11. Andersen M. H., Schrama D., Straten, P., et al. Cytotoxic T Cells // Journal of Investigative Dermatology, 2006. - No. 126(1). - P. 32-41.
12. Beier K.C., Kallinich T., Hamelmann E. Master switches of T-cell activation and differentiation // European Respiratory Journal, 2007. - No. 29(4). - P. 804¬812.
13. Capece D., Verzella D., Fischietti M. et al. Targeting Costimulatory Molecules to Improve Antitumor Immunity // Journal of Biomedicine and Biotechnology, 2012. - P. 1-17.
14. Cwirla S.E., Peters E.A., Barrett R.W., n gp . Proc. Natl. Acad. Sci. // USA 87, 1990. - P. 6378-6382.
15. Dunne M., Rupf B., Tala M., et al. Reprogramming Bacteriophage Host Range through Structure-Guided Design of Chimeric Receptor Binding Proteins // Cell Reports, 2019. - No29. - P. 1336-1350.
16. Engel P., Boumsell L., Balderas R. et al. CD Nomenclature 2015: Human Leukocyte Differentiation Antigen Workshops as a Driving Force in Immunology // The Journal of Immunology, 2015. - Vol. 195(10). - P. 4555-4563.
17. Esenten J., Helou A., Chopra G. et al. CD28 Costimulation: From Mechanism to Therapy // Immunity, 2016. - Vol. 44. - No5. - P. 973-988.
18. Feng Y., van der Veeken J., Shugay M., et al. A mechanism for expansion of regulatory T-cell repertoire and its role in self-tolerance // Nature, 2015. - No. 528(7580). - P. 132-136.
19. Flajnik M.F., Tlapakova T., Criscitiello M. F., et al. Evolution of the B7 family: co-evolution of B7H6 and NKp30, identification of a new B7 family member, B7H7, and of B7’s historical relationship with the MHC // Immunogenetics, 2012. - No64(8). - P. 571-590.
20. Garaizar J., Brena S., Bikandi J., et al. Use of DNA microarray technology and gene expression profiles to investigate the pathogenesis, cell biology, antifungal susceptibility and diagnosis of Candida albicans // FEMS Yeast Research, 2006. - No6(7). - P. 987-998.
21. Guram K., Kim S. S., Wu V., et al. A Threshold Model for T-Cell Activation in the Era of Checkpoint Blockade Immunotherapy // Frontiers in Immunology, 2019. - Vol. 10. - P. 1-20.
22. Haddad Y., Xhaxhiu K., Kopel P., et al. The Isolation of DNA by Polycharged Magnetic Particles: An Analysis of the Interaction by Zeta Potential and Particle Size // International Journal of Molecular Sciences, 2016. - No17(4). - P. 550.
23. Hall D., Ptanek J., Snyder M. Protein microarray technology // Mechanisms of Ageing and Development, 2007. - No. 128(1). - P. 161-167.
24. Henry J., Miller M.M., Pontarotti P. Structure and evolution of the extended B7 family // Immunology Today, 1999. - No20(6). - P. - 285-288.
25. Kaempfer R. Bacterial Superantigen Toxins, CD28, and Drug Development // Toxins, 2018. - No. 10 (11). - P. 1-6.
26. Kalina T., Fiser K., Perez-Anders M. et al. CD Maps - Dynamic Profiling of CD1 - CD100 Sarface Expression on Human Leukocyte and Lymphocyte Subsets // Frontiers in Immunology, 2019. - No10. - P. 1-15.
27. Kasman L.M., Porter L.D. Bacteriophages // StatPearls, 2019. - No. 1 - P. 1¬2.
28. Kraj P., Ignatowicz L. The mechanisms shaping the repertoire of CD4+ Foxp3+ regulatory T cells // Immunology, 2018. - No. 153(3). - P. 290-296.
29. Lauvau G., Soudja S.M. Mechanisms of memory T cell activation and effective immunity // Advances in Experimental Medicine and Biology, 2015. - No. 850. - P. 73-80.
30. Leite D.M.C., Brochet X., Resch, G., et al. Computational prediction of inter-species relationships through omics data analysis and machine learning // BMC Bioinformatics, 2018. - Vol. 19(S14). - P. 151-159.
31. Linsley P.S., Ledbetter J.A. The Role of the CD28 Receptor During T Cell Responses to Antigen // Annual Review of Immunology, 1993. - No11(1). - P. 191-
212.
32. Marqus S., Pirogova E., Piva T.J. Evaluation of the use of therapeutic peptides for cancer treatment // Journal of Biomedical Science, 2017. - No. 24(1). - P. 2-15.
33. Matsubara T. Potential of Peptides as Inhibitors and Mimotopes: Selection of Carbohydrate-Mimetic Peptides from Phage Display Libraries // Journal of Nucleic Acids, 2012. - P. 1-15.
34. Mehla J., Dedrick R.M., Caufield J.H., et al. Virus-host protein-protein interactions of mycobacteriophage Giles // Scientific Reports, 2017. - No7(1). - P. 1-10.
35. Metzker M.L. Emerging technologies in DNA sequencing // Genome Research, 2005. - No15(12). - P. 1767-1776.
36. Miura K. An overview of current methods to confirm protein-protein interactions // Protein & Peptide Letters, 2018. - No. 8. - Vol. 25. - P. 728-733.
37. Orlikowsky T.W., Spring B., Dannecker G.E., et al. Expression and regulation of B7 family molecules on macrophages (M?) in preterm and term neonatal cord blood and peripheral blood of adults // Cytometry, 2003. - Vol. 53B(1). - P. 40-47.
38. Pennock N.D., White J.T., Cross E.W. T cell responses: naïve to memory and everything in between // Advances in Physiology Education, 2013. - No. 37(4). - P. 273-283.
39. Ph.D.™ Phage Display Libraries. Instructional manual. - New England BioLabs Inc. - 44 pages.
40. Piscitelli C.L., Kean J., de Graaf C., et al. A Molecular Pharmacologist’s Guide to G Protein-Coupled Receptor Crystallography // Molecular Pharmacology,
2015. - No88(3). - P. 536-551.
41. Porciello N., Kunkl M., Tuosto L. CD28 between tolerance and autoimmunity: the side effects of animal models // F1000Research, 2018. - No7. - P. 682.
42. Prisco A., Berardinis P., Filamentous Bacteriophage Fd as an Antigen Delivery System in Vaccination // International Journal of Molecular Sciences, 2012. - No13(4). - P. 5179-5194.
43. Reitinger O.I., Petriv K., Mehr C.L. et al. Purification and quantitation of bacteriophage M13 using desalting spin columns and digital PCR // J Virol Methods, 2012. - No. 185. - P. 171-174.
44. Ru 2 702 087 c2 wo 2016/102434 New methods for displaying cyclic peptides on bacteriophage particles.
45. Schildberg F.A., Klein S.R., Freeman G.J., et al. Coinhibitory pathways in the B7-CD28 ligand-receptor family // Immunity, 2016. - Vol. 44(5). - P. 955-972.
46. Sidhu S.S., Fairbrother W.J., Deshayes K. Exploring Protein-Protein Interactions with Phage Display // ChemBioChem, 2003. - No4(1). - P. 14-25.
47. Sidhu S.S., Lowman H.B., Cunningham B.C., et al. Phage display for selection of novel binding peptides. Applications of Chimeric Genes and Hybrid Proteins - Part C: Protein-Protein Interactions and Genomics // Methods in enzymology, 2000. - Vol. 328. - P. 333-363.
48. Smyth M.S. X-Ray crystallography // Molecular Pathology, 2000. - No53(1). - P. 8-14.
49. Su X.-D., Zhang H., Terwilliger T.C., et al. Protein Crystallography from the Perspective of Technology Developments // Crystallography Reviews, 2014. - No21(1-2). - P. 122-153.
50. Tan T.T.M., Tan Z.Y., Tan W.L., et al. Gel electrophoresis // Biochemistry and Molecular Biology Education, 2007. - No. 35(5). - P. 342-349.
51. Titov M.I. Medical preparations based on synthetic peptides // Вестник Санкт-Петербургского университета, 2013. - №4. - С. 86-102.
52. Wang J., Reinherz E. L. The structural basis of a0 T-lineage immune recognition: TCR docking topologies, mechanotransduction, and co-receptor function // Immunological Reviews, 2012. - No. 250(1). - P. 102-119.
53. Wilson R.K. Biotechniques 15// 1993. - P. 414-422.
54. Wu C.-H., Liu I.-J., Lu R.-M., et al. Advancement and applications of peptide phage display technology in biomedical science // Journal of Biomedical Science,
2016. - No23(1). - P. 1-14.
55. Zambrano-Mila M.S., Sanchez Blacio K.E., Vispo N.S. Peptide Phage Display: Molecular Principles and Biomedical Applications // Therapeutic Innovation & Regulatory Science XX(X), 2020. - P. 1-10.
56. Zhu B., Farris T.R., Milligan S.L., et al. Rapid identification of ubiquitination and SUMOylation target sites by microfluidic peptide array // Biochemistry and Biophysics Reports, 2016. - No. 5. - P. 430-438.