Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Исследование структуры бычьего инсулина методами двумерной спектроскопии ЯМР

Работа №76830

Тип работы

Магистерская диссертация

Предмет

физика

Объем работы78
Год сдачи2017
Стоимость4825 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
45
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


Введение
Теоретические основы методов исследования 6
1.1 Общие принципы двумерной спектроскопии ЯМР 6
1.1.1 Корреляционная спектроскопия 9
1.1.2 NOESY спектроскопия 16
1.1.3 Эксперимент DOSY 18
1.2 Подавление сигнала растворителя в спектрах ЯМР 20
1.2.1 Преднасыщение и биномиальная импульсная последовательность 21
1.2.2 Спин-лок и импульсный градиент магнитного поля для устранения сигнала
растворителя 25
1.2.3 Постэкспериментальная обработка сигнала 28
1.3 Общие принципы моделирования структуры 29
1.3.1 Метод симулированного отжига 35
1.3.2 Использование дополнительных потенциалов 37
2 Первичная структура и функции бычьего инсулина 44
2.1 Экспериментальная часть 47
3 Исследование пространственной структуры бычьего инсулина 48
ОСНОВНЫЕ РЕЗУЛЬТАТЫ И ВЫВОДЫ 62
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ 63
ПРИЛОЖЕНИЕ

Знание структуры белков в растворе и в комплексе с другими молекулами представляет большой интерес для понимания их фармакологического действия. Непременным условием для установления структуры и свойств образца с помощью спектроскопии ядерного магнитного резонанса (ЯМР) является соотнесение сигналов в спектрах [1]. Для выполнения соотнесения обычно пользуются одно- и двумерными спектрами [2].
Инсулин является незаменимым лекарством для больных сахарным диабетом, поскольку он оказывает влияние на обмен глюкозы в организме [3-5]. Понимание механизма взаимодействия семейства инсулинов с мицеллярными образованиями представляет интерес в настоящее время, так как в будущем это может позволить создавать более эффективные и удобные лекарства (например, принимать инсулин перорально). Хотя понимание взаимодействия инсулина с рецептором и клеточной мембраной было достигнуто за последнее десятилетие, к сожалению, некоторые вопросы остаются до конца нерешенными [6-16]. Кроме того, в настоящее время активно ведутся разработки полимерных оболочек, внутри которых содержится инсулин [17-22], а также активно исследуется влияние наночастиц на стабилизацию структуры инсулина [23-26] с целью адресной доставки лекарственного средства. С другой стороны, физико-химические свойства, такие как растворимость и стабильность, особенно важны в приготовлении лекарственных препаратов.
Для создания терапевтических форм инсулина часто требуется наличие иона цинка Zn2+, в присутствие которого происходит гексамеризация (6 мономеров) инсулина [27, 28]. Данное число олигомеров является отнюдь не случайным, поскольку хранение инсулина в организме человека происходит именно в гексамерной форме [29], а далее, после поступления в кровь, происходит разделение на мономеры [30]. Существует две разновидности гексамеров инсулина - T6и R6 [31-33], однако, по данным последних
исследований, активной является только форма Т6 [34]. Между двумя формами постоянно происходят переходы [35, 36]. Кроме того, в настоящее время активно ведется разработка генно-инженерных форм инсулина, с измененной аминокислотной последовательностью, с целью достижения пролонгированного действия лекарственного препарата [37-39]. Совместно с этим ведется поиск структуры [40-43] и исследование динамики данных инженерно- модифицированных инсулинов [44-47], а также белка-предшественника - проинсулина [48].
В качестве образца исследования был выбран бычий инсулин. Бычий инсулин отличается от человеческого тремя аминокислотными остатками, и вследствие этого факта лечение бычьим инсулином вызывало побочные действия и аллергические реакции [49]. Бычий инсулин состоит из 51 аминокислоты. Хотя в настоящее время существует множество методов для синтеза инсулина [50-54], наиболее простым является его выделение из живой клетки (печени быка) [55]. Первым шагом является запись спектров, обработка и их соотнесение, т.е. приписание сигналов [56]. Из-за такого большого количества аминокислот соотнесение сигналов представляло собой непростую задачу, поскольку образец был с природным содержанием изотопов [57]. Впервые были получены значения химического сдвига ядер 1Н и 13С основной и боковых цепей. Следующим шагом являлся анализ полученных данных и моделирование структуры, которая была до настоящего момента неизвестна. В свою очередь знание трехмерной конфигурации молекулы позволяет исследовать взаимодействие с клеточными структурами.
Кроме того, в данной работе поднят вопрос об агрегации бычьего инсулина. Межмолекулярная близость способствует формированию 0- складчатых элементов, которые могут объяснить дальнейшую олигомеризацию небольших пептидов, таких, как амилоидные белки [58] или протегрины [59, 60]. Подобное поведение человеческого инсулина было замечено достаточно давно [61], его способность к агрегации зависит от многих внешних факторов (температура, кислотность среды, ионная сила), и, помимо этого, от определенной последовательности аминокислотных остатков. Несмотря на это, данная проблема по-прежнему является очень важной, являясь стимулом к поиску поиск новых производных инсулина и ингибиторов фибриллизации инсулина [62-67].
Итак, целью данной работы является исследование пространственной структуры (координаты атомов протеина в .pdb формате) бычьего инсулина в растворе по данным современных методов (включая двумерную) спектроскопии ЯМР высокого разрешения.

Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


1) Зарегистрированы двумерные спектры ЯМР TOCSY и NOESY, и проведено полное соотнесение сигналов ядер 1H и 13C (кроме сигналов карбонильных углеродов).
2) Из анализа экспериментальных данных ЯМР спектроскопии NOESY были найдены ограничения на расстояния и двугранные углы в молекуле.
3) Впервые была получена пространственная структура (координаты атомов протеина в .pdb формате) бычьего инсулина в водном растворе. Результаты депонированы в международную базу данных структур Protein Data Bank (PDB ID 5MIZ).
4) Линейные размеры смоделированной молекулы находятся в соответствии с теми, которые были получены экспериментально из спектров ЯМР DOSY и анализа времён корреляции при большом разбавлении.
5) Показано, что подвижность молекулы меняется с изменением концентрации образца, что является свидетельством наличия обменных процессов между мономерной и димерной формами инсулина в растворе.
6) Качество полученной структуры подтверждено построением графика Рамачандрана, а также вычислением среднеквадратичного отклонения положений тяжелых атомов основной цепи от среднего.



1. Cavanagh, J. Protein NMR spectroscopy: Principles and practice [Text] /
J. Cavanagh et al. - Amsterdam : Elsevier, 2007. - 920 p.
2. Rule, G. Fundamentals of Protein NMR Spectroscopy [Text] / G. Rule,
K. Hitchens. - Dordrecht: Springer, 2006. - 543 p.
3. Quantitative Insulin Analysis Using Liquid Chromatography-Tandem Mass Spectrometry in a High-Throughput Clinical Laboratory [Text] / Z. Chen, M.P. Caulfield, M.J. McPhaul et al. // Clin. Chem. - 2013. - V. 59. - P. 1349¬1356.
4. 13C Nuclear Magnetic Resonance Study of Glycogen Resynthesis in Muscle After Glycogen-Depleting Exercise in Healthy Men Receiving an Infusion of Lipid Emulsion [Text] / M.-C. Delmas-Beauvieux, B. Quesson, E. Thiaudigre et al. // Diabetes. - 1999. - V. 48. - P. 327-333.
5. Insulin stimulates the halting, tethering, and fusion of mobile GLUT4 vesicles in rat adipose cells [Text] / V.A. Lizunov, H. Matsumoto, J. Zimmerberg et al. // J. Cell Biol. - 2005. - V. 169. - P. 481-489.
6. Ge, Y. 31P NMR study on the autophosphorylation of insulin receptors in the plasma membrane [Text] / Y. Ge, H. Peng, K. Huang // Anal. Bioanal. Chem. - 2006. - V. 385. - P. 834-839.
7. Studies of insulin action on the amphibian oocyte plasma membrane using NMR, electrophysiological and ion flux techniques [Text] / G.A. Morrill, S.P. Weinstein, A.B. Kostellow, R.K. Gupta // Biochim. Biophys. Acta. - 1985. - V. 844. - P. 377-392.
8. Mechanism of Transmembrane Signaling: Insulin Binding and the Insulin Receptor [Text] / F.P. Ottensmeyer, D.R. Beniac, R.Z.-T. Luo, C.C. Yip // Biochemistry. - 2000. - V. 39. - P. 12103-12112.
9. Perry, M.C. Interaction of Insulin with Phospholipid in membrane model [Text] / M.C. Perry, W. Tampion, J.A. Lucy // Biochem. J. - 1970. - V. 119. - P.
50.
10. Biphasic Effects of Insulin on Islet Amyloid Polypeptide Membrane Disruption [Text] / J.R. Brender, E.L. Lee, K. Hartman et al. // Biophys. J. - 2011. - V. 100. - P. 685-692.
11. Aptamer-based single-molecule imaging of insulin receptors in living cells [Text] / M. Chang, M. Kwon, S. Kim et al. // J. Biomed. Opt. - 2014.
- V. 19, №5. - P. 1-7.
12. Insulin Interactions with Liver Plasma Membranes [Text] / P. Freychet, R. Kahn, J. Roth, D.M. Neville // J. Biol. Chem. - 1972. - V. 247, №12.
- P. 3953-3961.
13. Structural Studies of the Detergent-solubilized and Vesicle- reconstituted Insulin Receptor [Text] / C.N. Woldin, F.S. Hing, J. Lee et al. // J. Biol. Chem. - 1999. - V. 274, №49. - P. 34981-34992.
14. Yip, C.C. Three-dimensional Structural Interactions of Insulin and its Receptor [Text] / C.C. Yip, P. Ottensmeyer // J. Biol. Chem. - 2003. - V. 278, №30. - P. 27320-27332.
15. Bastidas, M. Thermodynamic and Structural Determinants of Differential Pdx1 Binding to Elements from the Insulin and IAPP Promoters [Text] / M. Bastidas, S.A. Showalter // J. Mol. Biol. - 2013. - V. 425. - P.3360¬3377
16. Cuatrecacas, P. Interaction of Insulin with the Cell Membrane: the Primary Action of Insulin [Text] / P. Cuatrecacas // Biochemistry. - 1969. - V. 63.
- P.450-457.
17. Synthesis of pH-responsive starch nanoparticles grafted poly (L- glutanic acid) for insulin controlled release [Text] / Z. Zhang, H. Shan, L. Chen et al. // Eur. Polym. J. - 2013. - V. 49. - P. 2082-2091.
18. Enteric-coated capsules filled with mono-disperse micro-particles containing PLGA-lipid-PEG nanoparticles for oral delivery of insulin [Text] / F. Yu, Y. Li, C.S. Liu et al. // Int. J. Pharm. - 2015. - V. 484. - P. 181-191.
19. Knipe, J.M. Enzymatic Biodegradation of Hydrogels for Protein Delivery Targeted to the Small Intestine [Text] / J.M. Knipe, F. Chen, N.A. Peppas // Biomacromolecules. - 2015. - V. 16. - P. 962-972.
20. Mishra, N.K. Inhibition of Human and Bovine Insulin Fibril Formation by Designed Peptide Conjugates [Text] / N.K. Mishra, K.B. Joshi, S. Verma // Mol. Pharm. - 2013. - V. 10. - P. 3903-3912.
21. Media-dependent morphology of supramolecular aggregates of b- cyclodextrin-grafted chitosan and insulin through multivalent interactions [Text] / Y. Daimon, H. Izawa, K. Kawakami et al. // J. Mater. Chem. - 2014. - V. 2. - P. 1802-1812.
22. Preparation of multi-responsive micelles for controlled release of insulin [Text] / G. Jiang, T. Jiang, H. Chen et al. // Colloid. Polym. Sci. - 2015. - V. 293. - P.209-215.
23. Kumari, H. Solution structures of nanoassemblies based on Pyrogallol[4]arenes [Text] / H. Kumari, C.A. Deakyne, J.L. Atwood // Acc. Chem. Res. - 2014. - V. 47. - P. 3080-3088.
24. Pharmacological effect of orally delivered insulin facilitated by multilayered stable nanoparticles [Text] / C.B. Woitiski, R.J. Neufeld, F. Veiga et al. // Eur. J. Pharm. Sci. - 2010. - V. 41. - P.556-563.
25. Biodegradable nanoparticles loaded with insulin-phospholipid complex for oral delivery: Preparation, in vitro characterization and in vivo evaluation [Text] / F. Cui, K. Shi, L. Zhang et al. // J. Controlled Release. - 2006. - V. 114. - P. 242-250.
26. Polyelectrolyte complex nanoparticles of amino poly(glycerol methacrylate)s and insulin [Text] / X. Lu, H. Gao, C. Li et al. // Int. J. Pharm. -
2012. - V. 423. - P. 195-201.
TI. Role of zinc in insulin biosynthesis. Some possible zinc-insulin
interactions in the pancreatic B-cell [Text] / S.O. Emdin, G.G. Dodson, J.M. Cutfield, S.M. Cutfield // Diabetologia. - 1980. - V. 19. - P. 174-182.
28. Multimerization and Aggregation of Native-State Insulin: Effect of Zinc [Text] / Y. Xu, Y. Yan, D. Seeman et al. // Langmuir. - 2012. - V. 28. - P. 579-586.
29. Fu, Z. Regulation of Insulin Synthesis and Secretion and Pancreatic Beta-Cell Dysfunction in Diabetes [Text] / Z. Fu, E.R. Gilbert, D. Liu // Curr. Diabetes Rev. - 2013. - V. 9. - P. 25-53.
30. Investigation of the Physico-Chemical Properties that Enable Co-Formulation of Basal Insulin Degludec with Fast-Acting Insulin Aspart [Text] / S. Havelund, U. Ribel, F. Hubalek et al // Pharm. Res. - 2015. - V. 32. - P. 2250¬2258.
31. Unraveling the symmetry ambiguity in a hexamer: Calculation of the R6-human insulin structure [Text] / S.I. O'Donoghue, X. Chang, R. Abseher et al. // J. Biomol. NMR. - 2000. - V. 16. - P. 93-108.
32. Spontaneous Aggregation of the Insulin-Derived Steric Zipper Peptide VEALYL Results in Different Aggregation Forms with Common Features [Text] / D. Matthes, V. Daebel, K. Meyenberg et al. // J. Mol. Biol. - 2014. - V. 426. - P. 362-276.
33. A T3R3 hexamer of the human insulin variant B28Asp [Text] /
L. C. Palmieri, M.P. Favero-Retto, D. Laurengo, L.M. Lima // Biophys. Chem. -
2013. - V. 173-174. - P. 1-7.
34. Insight into the Structural and Biological Relevance of the T/R Transition of the N-Terminus of the B-Chain in Human Insulin [Text] / L. Kosinova, V. Veverka, P. Novotna et al. // Biochemistry. - 2014. - V. 53. - P. 3392-3402
35. Kaarsholm, N.C. Comparison of Solution Structural Flexibility and Zink binding domains for Insulin, Proinsulin and Miniproinsulin [Text] / N.C. Kaarsholm, H. -C. Ko, M.F. Dunn // Biochemistry. - 1989. - V. 28. - 4427-4435.
36. Kadima, W. Role of Metal ions in the T To R Transition in Insulin Hexamer [Text] / W. Kadima // Biochemistry. - 1999. - V. 38, №41. - P. 13443-13452.
37. Olsen, H.B. Solution Structure of an Engineered Insulin Monomer [Text] / H.B. Olsen, S. Ludvigsen, N.C. Kaarsholm // Biochemistry. - 1996. - V. 35. - P. 8836-8845.
38. NMR structure of Biosynthetic Engineered Human Insulin Monomer B31LYS-B32ARG in water/acetonitrile solution. Comparison with the Solution Structure Native Human Insulin Monomer [Text] / W. Bocian, P. Borowicz, J. Mikolajczyk et al. // Biopolymers. - 2008. - V. 89. - P. 320-330.
39. Two-dimensional NMR studies on des-pentapeptide-insulin [Text] / R. Boelens, M.L. Ganadu, P. Verheyden, R. Kaptein // Eur. J. Biochem. - 1990. - V. 191. - P. 147-153.
40. Flexibility and Bioactivity of Insulin: an NMR Investigation of the Solution Structure and Folding of an Unusually Flexible Human Insulin Mutant with Increased Biological Activity [Text] / D. Keller, R. Clausen, K. Josefsen, J.J. Led // Biochemistry. - 2001. - V. 40. - P. 10732-10740.
41. Novel recombinant insulin analogue with flexible C-terminus in B chain. NMR structure of biosynthetic engineered A22G-B31K-B32Rhuman insulin monomer in water/acetonitrile solution [Text] / P. Borowicz, W. Bocian, J. Sitkowski et al. // Int. J. Biol. Macromol. - 2011. - V. 49. - P. 548-554.
42. Molecular Simulation-Based Structural Prediction of Protein Complexes in Mass Spectrometry: The Human Insulin Dimer [Text] / J. Li, G. Rossetti, J. Dreyer et al. // PLOS Comput. Biol. - 2014. - V. 10. - P. 1-9.
43. Kaarsholm, N. The high resolution solution structure of the insulin monomer determined by NMR [Text] / N. Kaarsholm, S. Ludvigsen // Receptor. - 1995. - V. 5. - P. 1-8.
44. Heteronuclear NMR As a 4-in-1 Analytical Platform for Detecting Modification-Specific Signatures of Therapeutic Insulin Formulations [Text] / X. Jin, S. Kang, H. Kwon, S. Park // Anal. Chem. - 2014. - V. 86. - P. 2050-2056.
45. Heteronuclear NMR provides an accurate assessment of therapeutic insulin’s quality [Text] / M. Quinternet, J.-P. Starck, M.-A. Delsuc, B. Kieffer // J. Pharm. Biomed. Anal. - 2013. - V.78-79. - P. 252-254.
46. On the DMSO-Dissolved State of Insulin: A Vibrational Spectroscopy Study of Structural Disorder [Text] / W. Dzwolak, J. Kalinowski, C. Johannessen et al. // J. Phys. Chem. B. - 2012. - V. 116, №39. - P. 11863-11871.
47. Structural meta-analysis of regular human insulin in pharmaceutical
formulations [Text] / M.P. Favero-Retto, L.C. Palmieri, T.A. Souza et al. // Eur. J. Pharm. Biopharm. - 2013. - V. 85. - P. 1112-1121.
48. Solution Structure of Proinsulin [Text] / Y. Yang, Q. -X. Hua, J. Liu et al. // J. Biol. Chem. - 2010. - V.285, №11. - P. 7847-7851.
49. Insulin allergy and insulin resistance [Text] / J. Dolovich, J.D. Schnatz, R.E. Reisman et al. // J. Allergy Clin. Immunol. - 1970. - V. 3, №3. - P. 127-137.
50. Expression in Escherichia coli of chemically synthesized genes for human insulin [Text] / D.V. Goeddel, D.G. Kleid, F. Bolivar et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 1979. - V. 76. - P. 106-110.
51. Marglin, B. The Synthesis of Bovine Insulin by the Solid Phase Method [Text] / B. Marglin, R.B. Merrifield // J. Am. Chem. Soc. - 1966. - V. 88. - P. 5051-5052.
52. Total synthesis of crystalline bovine insulin [Text] / Y.T. Kung, Y.C. Du, W.T. Huang et al. // Sci. Sin. - 1965. - V. 14. - P. 1710-1716.
53. The Chemical Synthesis of Insulin: From the Past to the Present [Text] / A. Belgi, M.A. Hossain, G.W. Tregear, J.D. Wade // Immun. Endocr. Metab. Agents Med. Chem. - 2011. - V. 11. - P. 40-47.
54. Sun, Y. The creation of synthetic crystalline bovine insulin [Text] / Y. Sun // Protein Cell. - 2015. - V. 6. - P. 781-783.
55. Insulin receptor gene expression in normal and diseased bovine liver [Text] / G.W. Liu, Z.G. Zhang, J.G. Wang et al. // J. Comp. Pathol. - 2010. - V. 143. - P. 258-261.
56. Assignment of NMR spectra of proteins using triple-resonance two-dimensional experiments [Text] / J. -P. Simorre, B. Brutscher, M.S. Caffrey, D. Marion // J. Biomol. NMR. - 1994. - V. 4. - P. 325-333.
57. Dai, B. Efficient removal of unwanted signals in NMR spectra using the filter diagonalization method [Text] / B. Dai, C.D. Eads // Magn. Reson. Chem. - 2010. - V. 48. - P. 230-234.
58. Solution structures of Alzheimer’s amyloid A013-23peptide: NMR studies in solution and in SDS [Text] / K.S. Usachev, A.V. Filippov, E.A. Filippova et al. // J. Mol. Struct. - 2013. - V. 1049. - P. 436-440.
59. Antimicrobial peptide protegrin-3 adopt an antiparallel dimer in presence of DPC micelles: a high-resolution NMR study [Text] / K.S. Usachev, S.V. Efimov, O.A. Kolosova et al. // J. Biomol. NMR. - 2015. - V.62. - P. 71-79.
60. High-resolution NMR structure of the antimicrobial peptide protegrin-2 in the presence of DPC micelles [Text] / K.S. Usachev, S.V. Efimov, O.A. Kolosova et al. // J. Biomol. NMR. - 2015. - V.61. - P. 227-234.
61. Toward understanding insulin fibrillation [Text] / J. Brange, L. Andersen, E.D. Laursen et al. // J. Pharm. Sci. - 1997. - V. 86. - P. 517-525.
62. Choudhary, S. Inhibition of insulin fibrillation by osmolytes: Mechanistic Insights [Text] / S. Choudhary, N. Kishore, R.V. Hosur // Sci. Rep. -
2015. - V. 5. - P. 1-10.
63. Gibson, T.J. Inhibition of insulin fibrillogenesis with targeted peptides [Text] / T.J. Gibson, R.M. Murphy // Protein Sci. - 2006. - V. 15. - P. 1133-1141.
64. Monitoring and Inhibition of Insulin Fibrillation by a Small Organic Fluorogen with Aggregation-Induced Emission Characteristics [Text] / Y. Hong, L. Meng, S. Chen et al. // J. Am. Chem. Soc. - 2012. - V. 134. - P. 1680-1689.
65. Inhibition of Insulin Amyloid Fibrillation by a Novel Amphipathic Heptapeptide [Text] / B.N. Ratha, A. Ghosh, J.R. Brender et al. // J. Biol. Chem. -
2016. - V. 291. - P. 23545-23556.
66. Wang, S. Amyloid fibrillation and cytotoxicity of insulin are inhibited by the amphiphilic surfactants [Text] / S. Wang, K.-N. Liu, T.-C. Han // Biochim. Biophys. Acta. - 2010. - V. 1802. - P. 519-530.
67. Use of a Small Peptide Fragment as an Inhibitor of Insulin Fibrillation Process: A Study by High and Low Resolution Spectra [Text] / V. Banerjee, R.K. Kar, A. Datta et al. // Plos One. - 2013. - V. 8. - P. 1-15.
68. Ernst, R. Principles of Nuclear Magnetic Resonance in One and Two Dimensions [Text] / R. Ernst, G. Bodenhausen, A. Wokaun. - Oxford: Clarendon Press, 1987. - 601 p.
69. Keeler, J. Understanding NMR spectroscopy [Text] / J. Keeler. - Oxford: Wiley, 2010. - 526 p.
70. Blumich, B. NMR Imaging of Materials [Text] / B. Blumich. - Oxford: Clarendon Press, 2003. - 568 p.
71. Zangger, K. Pure shift NMR / K. Zangger // Prog. Nucl. Magn. Reson. Spectoscop. - 2015. - V. 86-87. - P. 1-20.
72. Kakita, V.M. Band-selective excited ultrahigh resolution PSYCHE-TOCSY: fast screening of organic molecules and complex mixtures [Text] / V.M. Kakita, S.P. Vemulapalli, J. Bharatam // Magn. Reson. Chem. - 2016. - V. 54. - P. 308-314.
73. A fast NMR method for resonance assignments: application to metabolomics [Text] / S.M. Pudakalakatti, A. Dubey, G. Jaipuria et al. // J. Biomol. NMR. - 2014. - V. 58. - P. 165-173.
74. Kock, M. FAST NOESY Experiments - An Approach for Fast Structure Determination [Text] / M. Kock, C. Griesinger // Angew. Chem. Int. Ed. - 1994. - V. 33. - P. 332-334.
75. Bull, T.E. ROESY relaxation theory [Text] / T.E. Bull // J. Magn. Reson. - 1988. - V. 80. - P. 470-481.
76. Williams, A.J. Modern NMR Approaches to the Structure Elucidation of Natural Products [Text] / A.J. Williams, G.E. Martin. D. Rovnyak. - Cambridge: Thomas Graham House, 2017. - 516 p.
77. Claridge, T.D. High-Resolution NMR Techniques in Organic Chemistry [Text] / T.D. Claridge. - Oxford: Elsevier Science, 2016. - 552 p.
78. High-Resolution Diffusion-Ordered 2D Spectroscopy (HR- DOSY) - A New Tool for the Analysis of Complex-Mixtures [Text] / H. Barjat, G.A. Morris, S. Smart et al. // J. Magn. Reson. B. - 1995. - V. 180. - P. 170-172.
79. Avance Tutorials [Электронный ресурс] / T. Parella. - 2003. - Режим доступа:http://triton.iqfr.csic.es/guide/tutorials/solvent,Свободный.
80. Plateau, P. Exchangeable proton NMR without base-line distorsion, using new strong-pulse sequences [Text] / P. Plateau, M. Gueron // J. Am. Chem. Soc. - 1982. - V. 104. - P. 7310-7311.
81. Hore, P.J. Solvent Suppression in Fourier Transform nuclear magnetic resonance [Text] / P.J. Hore // J. Magn. Reson. - 1983. - V. 55. - P. 283-300.
82. GROMACS user manual version [Электронный ресурс] / M.J. Abraham, D. van der Spoel, E. Lindahl et al. - 2011. - Режим доступа: http://www.gromacs.org,Свободный.
83. Лопатин, А. Метод отжига [Текст] / А. Лопатин. - Санкт- Петербург : Издательство СПбГУ, 2005. - С. 149.
84. Kuszewski, J. The impact of direct refinement against 13Caand 13Cp chemical shifts on protein structure determination by NMR [Text] / J. Kuszewski, J. Qun, A. Gronenborn et al. // J. Magn. Reson. B. - 1995. - V. 106. - P. 92-96.
85. Grishaev, A. An empirical backbone-backbone potential in proteins and its application to NMR structure refinement and validation [Text] / A. Grishaev, A. Bax // J. Am. Chem. Soc. - 2004. - V. 126. - P. 7281-7292.
86. Clore, G. x1 rotamer populations and angles of mobile surface side chains are accurately predicted by a torsion angle database potential of mean force [Text] / G. Clore, J. Kuszewski // J. Am. Chem. Soc. - 2002. - Vol. 124 - P. 2866-2867.
87. Kuszewski, J. Improvements and extensions in the conformational database potential for the refinement of NMR and X-ray structures of proteins and nucleic acids [Text] / J. Kuszewski, A.M. Gronenborn, G.M. Clore // J. Magn. Reson. - 1997. - V. 125. - P. 171-177.
88. Kuszewski, J. Sources of and solutions to problems in refinement of protein NMR structures against torsion angle potentials of mean force [Text] /
J. Kuszewski, G.M. Clore // J. Magn. Reson. - 2000. - V.146. - P. 249-254.
89. Kuszewski, J. Improving the quality of NMR and crystallographic protein structures by means of a conformational database potential derived from structure databases [Text] / J. Kuszewski, A.M. Gronenborn, G.M. Clore // Protein Sci. - 1996. - V. 5. - P. 1067-1080.
90. Kuszewski, J. Improving the Packing and Accuracy of NMR Structures with a Pseudopotential for the Radius of Gyration [Text] / J. Kuszewski, A.M. Gronenborn, G.M. Clore // J. Am. Chem. Soc. - 1999. - V. 121.
- P. 1337-1338.
91. Образование и секреция инсулина [Электронный ресурс] / О. Румянцева. - 2016. - Режим доступа:http ://o gormonah.ru/preparaty/sekretsiya-insulina.html,свободный.
92. Delaglio, F. NMRPipe: a multidimensional spectral processing system based on UNIX pipes [Text] / F. Delaglio, S. Grzesiek, G. Vuister et al. // J. Biomol. NMR. - 1995. - Vol. 6. - P. 277-293.
93. Sparky 3 [Электронный ресурс] / Goddard T. D., Kneller D. G.
- 2013. - Режим доступа:http://www.cgl.ucsf.edu/home/sparky,Свободный
94. Olsen, H. B. Investigations of Structure and Dynamics of Insulin Mutants using NMR Spectroscopy : дис. ... канд. физ.-мат. наук [Text] / H. B. Olson. - Roskilde University, 1996. - 63 c.
95. Wishart, D. The chemical shift index: a fast and simple method for the assignment of protein secondary structure [Text] / D. Wishart, B. Sykes, F. Richards // Biochem. - 1992. - Vol. 31. - P.1647-1651
96. Shen, Y. TALOS+: a hybrid method for predicting protein backbone torsion angles from NMR chemical shifts [Text] / Y. Shen, F. Delaglio, G. Cornilescu et al. // J. Biomol. NMR. - 2009. - Vol. 44. - P. 213-223
97. Ramachandran, G.N. Stereochemistry of polypeptide chain configurations [Text] / G.N. Ramachandran, C. Ramakrishnan, V. Sasisekharan // J. Mol. Biol. - 1963. - V. 5. - P. 95-99.
98. Two-dimensional NMR and photo-CIDNP studies of the insulin monomer: assignment of aromatic resonance with application to protein folding, structure and dynamics [Text] / M.A. Weiss, D.T. Nguyen, I. Khait et al. // Biochemistry. - 1989. - V. 28. - P. 9855-9873.
99. Hybrid multi-porphyrin supramolecular assemblies: Synthesis and structure elucidation by 2D DOSY NMR studies [Text] / I.A. Khodov, G.A. Alper, G.M. Mamardashvilli, N.Z. Mamardashvilli // J. Mol. Struct. - 2015. - V. 1099. - P. 174-180.
100. Phosphoesterase activity of polyoxomolybdates: diffusion-ordered NMR spectroscopy as a tool for obtaining insights into the reactivity of polyoxometalate clusters [Text] / L.V. Lokeren, E. Cartuyvels, G. Absillis et al. // Chem. Commun. - 2008. - V. 24. - P.2774-2776.
101. Determination of stereospecific assignments, torsion-angle constraints, and rotamer populations in proteins using the program AngleSearch [Text] / V.I. Polshakov, T.A. Frenkiel, B. Birdsall et al. // J. Magn. Reson. B. - 1995. - V. 108. - P. 31-43.
102. Lycknert, K. Solution structure of a type 1H antigen trisaccharide at a micellar surface: NMR relaxation and molecular dynamics simulation studies [Text] / K. Lycknert, T. Rundlof, G. Widwalm // J. Phys. Chem. - 2002. - V. 106. - P. 5275-5280.


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ