Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Структурные исследования инактивации белка рибосомы (HPF) бактерии Staphylococcus Aureus методами спектроскопии ЯМР высокого разрешения

Работа №76816

Тип работы

Бакалаврская работа

Предмет

физика

Объем работы56
Год сдачи2017
Стоимость4355 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
33
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


Список сокращений 3
ВВЕДЕНИЕ 4
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 7
1.1 Staphylococcus aureus 7
1.2 Фактор гибернации SaHPF из S.aureus 7
1.3 Структура фактора HPF из E.Coli 10
1.4 Структура SaHPF предсказанная с помощью биоинформатических методов13
1.5 Протокол выделения и очистки белка 16
1.6 Выделение плазмидной ДНК из бактерий E. coli 18
1.6.2 Лизис клеток 18
1.6.3 Очистка белка 20
1.7 Основы спектроскопии ЯМР 21
1.8 Многомерные эксперименты спектроскопии ЯМР 24
1.8.1 Эксперимент HSQC (Heteronuclear Single-Quantum Correlation spectroscopy) 26
1.8.2 HNCO и HNCA 26
1.8.3 Эксперимент HNCO 27
1.8.4 Эксперимент HNCA 28
1.8.5 Эксперимент HN(CO)CA 29
1.8.6 Эксперимент CBCANH 31
1.8.7 Эксперимент CBCA(CO)NH 32
2. ПРИГОТОВЛЕНИЕ ОБРАЗЦА БЕЛКА ДЛЯ СПЕКТРОСКОПИИ ЯМР 35
2.1 Приготовление образцов для спектроскопии ЯМР 35
2.2 Этапы выделения белка SaHPF из клеток E.Coli 36
2.3 Очистка белка SaHPF на колонке со смолой Ni-NTA Superflow 37
2.4 Осаждение белка в растворе 37
2.5 Конечная стадия очистки белка SaHPF на гель-фильтрационной колонке
Superdex 75 10/300 38
2.6 Электрофорез белка 38
3. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ ПО СПЕКТРОСКОПИИ ЯМР 41
3.1 Эксперименты 15N-1H HSQC 41
3.2 Отнесение сигналов в спектрах ЯМР 43
Заключение 47
Библиографический список 48
Приложение 1 54
Приложение 2

Кокки - это разновидность бактерий, имеющих овальную или округлую форму, kokkos (означает по-гречески "зернышко"). В 1881 году, введен микробиологический термин “staphylococcus”,описывающий определенный вид бактерии. В окружающем мире множество самых разнообразных кокков, соседствующих с человеком на протяжении всей его жизни, но, самый известный всем микроб - это стафилококк. Рассматривая бактерии под микроскопом, можно заметить, что кокки собираются в группы, похожие на гроздь винограда, отсюда и название, staphylos (по-гречески означающее "гроздь"). Стафилококки - это род микроорганизмов, 27 видов из которых уже обнаружены на данный момент, 14 найдены на кожных покровах и слизистых человека. Большинство стафилококков являются безвредными для человека: но, из тех 14 видов, 3 имеют факторы патогенности, способные вызывать опасные для жизни болезни.
Эти три вида стафилококка: золотистый стафилококк (staphylococcus aureus), эпидермальный стафилококк (S.epidermidis), сапрофитный стафилококк (S. saprophyticus). В данной работе исследовался именно золотистый стафилококк, т.к. он является самым опасным.
Стафилококковая инфекция - обобщенное название для ряда заболеваний, вызываемых стафилококком. Из-за высокой устойчивости к антибиотикам, данные инфекции находятся на первом месте среди инфекционных заболеваний, носящих гнойно-воспалительный характер. Стафилококк способен вызывать практически в любом органе человека различные воспалительные процессы. При поражении внутренних органов, стафилококк может вызвать ангину, менингит, пневмонию, или же вовсе абсцессы внутренних органов. Как причина гнойных воспалений на коже, стафилококк проявляется в виде различных фурункулов, пиодермии. Являясь патогенными видами бактерий, стафилококки продуцируют энтеротоксин, имеющий антигенные свойства. Именно он является выделяемым фактором, вызывающим причины острых пищевых токсикоинфекции, гастроэнтерита и воспалений тонкой и толстой кишки.
Структурная биология является разделом молекулярной биологии, биохимии и биофизики, занимающийся изучением структуры биологических макромолекул, в частности белков и нуклеиновых кислот. С помощью изучения трехмерной структуры молекул методами рентгеноструктурного анализа, криоэлектронной микроскопии и ядерного магнитного резонанса, можно понять механизмы, протекающие в живых системах на молекулярном уровне.
Спектроскопия ядерного магнитного резонанса (ЯМР) высокого разрешения - один из самых информативных методов исследования молекулярной структуры и динамики биологических макромолекул в растворе. Применяется для решения проблем структурной биологии, медицинской физики, органической химии [1]. На основе экспериментальных данных ЯМР возможно определение параметров структуры исследуемой молекулы, например, из спектроскопии ядерного эффекта Оверхаузера (NOESY), возможно определение межпротонных расстояний между магнитными ядрами, отстоящими друг от друга на расстоянии менее 5 А [2, с.4].
Целью данной работы является выделения и очистка белка с мечеными изотопами по ядрам 15N и/или 13C в системе E.coliдля ЯМР исследований на примере специфического белка SaHPF, инактивирующего рибосомы бактерии Staphylococcus aureus,и экспериментальным путем изучения его структуры в дальнейшем с помощью спектроскопии ЯМР. Для достижения указанной цели необходимо выполнение следующих задач:
1) Разработка протокола экспрессии белка (наращивание культуры клеток E. coliс вставкой SaHPF; выделение белка SaHPF из клеток E. Coli; очистка белка SaHPF на колонке со смолой; осаждение белка в растворе; и конечная стадия очистки белка SaHPF на гельфильтрационной колонке).
2) Регистрация многомерных спектров ЯМР по ядрам 1H, 13C, 15N.
3) Анализ экспериментальных данных ЯМР, отнесение сигналов в спектрах к соответствующим магнитным ядрам молекулы белка.
Работа состоит из трех глав. В первой главе, носящей вводный характер, приведены основные понятия теории спектроскопии ЯМР, краткое описание исследуемого образца и основы методов выделения белков. Во второй главе описан разработанный протокол выращивания и очистки белка SaHPF золотистого стафилококка. Третья глава посвящена анализу экспериментальных данных спектроскопии ЯМР.
Актуальность исследования заключается в том, что исследуемый специфичный для стафилококка фактор инактивации рибосомы (SaHPF) с молекулярным весом 22 000 Да был обнаружен в стационарной фазе рибосом золотистого стафилококка, и его функция заключается в стрессовых для бактериальной клетки условиях в замедлении белкового синтеза за счет того, что рибосомы взаимодействуя с данным белком образуют трансляционно не активный 100S димер. В этой фазе бактериальные клетки устойчивы к внешним стресс условиям, что обеспечивает их резистентность к антимикробным агентам. Структура данного белка на данный момент не известна.


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


В результате проделанной работы были получены следующие результаты:
-Найдены подходящие условия экспрессии белка для исследования методом спектроскопии ЯМР.
-Спектры, полученные в ходе работы, были обработаны и проведено отнесение сигналов ЯМР ядер 1H, 13С и 15N аминокислотных остатков из основной белковой цепи С-домена белка SaHPF. Показано, что в структуре С-домена белка в растворе присутствуют элементы вторичной структуры в виде Р-складки: Pi (133-135 остаток), р2 (160-164 остаток), р3 (171-175 остаток), р4 (182-187 остаток) и а-спирали (146-156 остаток).
Следующим этапом по установлению структуры являются эксперименты по ядерному эффекту Оверхаузера (ЯЭО), которые позволят определить взаимодействующие через пространства ядра из различных частей молекулы. На основе полученных расстояний будет рассчитана структура исследуемой молекулы.



1. Blokhin, D. NOE Effect of Sodium Dodecyl Sulfate in Monomeric and Micellar Systems by NMR Spectroscopy [Text] / D. Blokhin, E.A. Filippova, V.V. Klochkov // Applied Magnetic Resonance. - 2014. - V. 15. - P. 715-721.
2. Аюпов, Р.Х. Выделение и очистка белка для исследования методом ЯМР [Текст] / Р.Х. Аюпов, К.С. Усачев. - Учебно-методическое пособие. Рецензент: Д.х.н. А.В. Атанов / Казан. ун-т. - 2016. - 4 с.
3. Polikanov, Y. How Hibernation Factors RMF, HPF, and YfiA Turn Off Protein Synthesis [Text] / Y. Polikanov, G. Blaha, Th. Steitz. // Science. - 2012. - Vol. 336, N. 6083. - P. 915-918.
4. Ueta M. Formation of 100S ribosomes in Staphylococcus aureus by the hibernation promoting factor homolog SaHPF [Text] / M. Ueta, Ch. Wada , A. Wada // Genes to Cells. - 2010. -V. 15, N. 1. - P. 43-58.
5. Yang J. The I-TASSER Suite: Protein structure and function prediction Yan [Text] / J. Yang, A. Roy, D. Xu, J. Poisson, Y. Zhang // Nature Methods. - 2015. - V. 12. - P. 7-8.
6. Raman S. Structure prediction for CASP8 with all-atom refinement using [Text] / S. Raman, R.Rosetta Vernon, J. Thompson, M. Tyka, R. Sadreyev, J. Pei, D. Kim, E. Kellogg, F. DiMaio, O. Lange, L. Kinch, W. Sheffler, B- H. Kim, R. Das, N.V. Grishin, D.Baker // Proteins. - 2009. - V. 77, N. 9. - P. 89-99.
7. Xu D., Ab initio protein structure assembly using continuous structure fragments and optimized knowledge-based force field [Text] / D. Xu, Y. Zhang // Proteins. - 2012. - V. 80. - P. 1715-1735.
8. Ayupov R.K., Prediction of the threedimensional structure of the protein SaHPF and analysis of its molecular dynamics [Text] / R.K. Ayupov, N.I. Akberova, M.M. Yusupov // International journal of Pharmacy and Technology. - 2016. - Vol.8, Is.2. - P.14548-14557.
9. Ayupov R.K. Molecular dynamics of the pyridoxine derivative in the acetylcholinesterase active cavity [Text] / R.K. Ayupov, N.I. Akberova // Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences. - 2015. - V. 6, No 6. - P. 1717-1722.
10. Ayupov R.K. The ligand behavior on the surface of acetylcholinesterase [Text] / R.K. Ayupov, N.I. Akberova // Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences. - 2015. - V. 6, N 4. - P. 2202-2206.
11. Аюпов Р.Х. Анализ структуры белка SaHPF Staphylococcus aureus [Текст] / Р.Х, Аюпов, Н.И. Акберова // Ученые записки Казанского университета. Серия: Естественные науки. - 2016. - Т. 158, кн. 3. - с. 327-337.
12. Hengge-Aronis, R.. Regulation of gene expression during entry into stationary phase [Text] / F.C. Neidhardt, R.Curtiss III, J.L. Ingraham, E.C.C. Lin, K.B. Low, B. Magasanik, W.S. Reznikoff Riley, M. Schaechter, H.E. Umbargar // Escherichia coli and Salmonella: Cellular and Molecular Biology, 2nd edn. American Society for Microbiology, Washington, DC, - 1996. - P. 1497-1512.
13. Wada, A. Structure and probable genetic location of a ‘‘ribosome modulation factor’’ associated with 100S ribosomes in sta tionary-phase Escherichia coli cells [Text] / A. Wada, Y.Yamazaki, N. Fujita, & A. Ishihama, ( // Proc. Natl Acad. Sci. USA 87, - 1990. - P. 2657-2661.
14. Izutsu, K. Escherichia coli ribosomeassociated protein SRA, whose copy number increases during stationary phase [Text] / K. Izutsu, C. Wada, Y.Komine, T. Sako, C. Ueguchi, S. Nakura & A. Wada // J. Bacteriol. 183, - 2001.- P. 2765-2773.
15. Maki, Y. Two proteins, YfiA and YhbH, associated with resting ribosomes in stationary phase Escherichia coli [Text] / Y. Maki, H. Yoshida, & A. Wada // Genes Cells 5, - 2000. - P. 965-974.
16. Yamagishi, M. Regulation of Escherichia coli rmf gene encoding the ribosome modulation factor: growth phase- and growth rate-dependent control [Text] / M. Yamagishi, H. Matsushima, A. Wada, M. Sakagami N. Fujita, & A. Ishihama, // EMBO J. 12, - 1993. - P. 625-630.
17. Izutsu, K. Expression of ribosome modulation factor (RMF) in Escherichia coli requires ppGpp [Text] / K. Izutsu, A. Wada, & C. Wada // Genes Cells 6, - 2001. - P. 665-676.
18. Ueta, M. Ribosome binding proteins YfiA and YhbH have opposite functions during 100S formation in the stationary phase of Escherichia coli [Text] / M. Ueta, H. Yoshida, C. Wada, T. Baba, H. Mori, & A.Wada // Genes Cells 10, - 2005.- P. 1103-1112.
19. Ueta, M. Role of HPF (Hibernation Promoting Factor) in translational activity in Escherichia coli [Text] / R.L. Ohniwa, H.Yoshida, Y.Maki, C. Wada, & A. Wada // J. Biochem. 143, - 2008. - P. 425-433.
20. Yoshida, H. (2009). Activities of Escherichia coli ribosomes in IF3 and RMF change to prepare 100S ribosome formation on entering the stationary growth phase [Text] / H. Yoshida, M. Ueta, Y. Maki, A. Sakai, & A. Wada, // Genes Cells 14, - 2009. - P. 271-280.
21. Yoshida, H. The ribosome modulation factor (RMF) binding site on the 100S ribosome of Escherichia coli [Text]. / H. Yoshida, Y. Maki, H. Kato, H. Fujisawa, K. Izutsu, C. Wada, & A. Wada, // J. Biochem. 132, - 2002. - P. 983-989.
22. Genes to Cells. 2010. Vol. 15, P. 43-58.
23. Wutao, Z. Biochemical and Biophysical Research Communications / Z. Wutao, C.Weiyan, L.Xiuyu, Jian gui He, M. Hong // Science, - 2009, V.389, P. 580-585.
24. Polikanov Y. How Hibernation Factors RMF, HPF, and YfiA Turn Off Protein Synthesis / Y. Polikanov, G. Blaha, Th .Steitz // Science, - 2012, V. 336, N. 6083, P. 915-918.
25. Аюпов, Р.Х. Анализ структуры белка SaHPF Staphylococcus aureus / Р.Х. Аюпов, Н.И. Акберова // Ученые записки Казанского университета. Серия: Естественные науки. - 2016. - Т. 158, кн. 3. - С. 327-337.
26. Основные принципы магнитного резонанса [Электронный ресурс] -https://www.kazedu.kz/referat/160424 (дата обращения 10.05.17).
27. Ибрагимов А.Н. Хроматографические методы очистки белков [Текст] / А.Н. Ибрагимов, А.Г. Бикмуллин, А.Д. Сатаева, Л.В. Лопухов, Л.И. Зейнуллин, Ф.К. Алимова, - Учебно-методическое пособие. Рецензент: Д.б.н. Багаева Т.В., к.б.н. Невзорова Т.А. / Казан. ун-т. - 2013. - с. 26.
28. Ибрагимов А.Н. Хроматографические методы очистки белков [Текст] / А.Н. Ибрагимов, А.Г. Бикмуллин, А.Д. Сатаева, Л.В. Лопухов, Л.И. Зейнуллин, Ф.К. Алимова, - Учебно-методическое пособие. Рецензент: Д.б.н. Багаева Т.В., к.б.н. Невзорова Т.А. / Казан. ун-т. - 2013. - с. 21¬22.
29. Колтовая, Н.А. Руководство к практическим занятиям по молекулярной биологии [Текст] / Н.А. Колтовая - Учебно-методическое пособие. Рецензент: проф. Цыганков Ю.Д./ Дубна. ун-т. - 2010. - с. 13-16.
30. Изотопы: [электронный доступ] -https://ru.wikipedia.org/wikiZH3OTonbi(дата обращения 10.05.17).
31. Bax, A. 1H and 13C assignment from sensitivity enhanced detection of heteronuclear multiple-bond connectivity by two-dimensional multiple quantum NMR [Text] / A. Bax, M.F. Summers // J. Am. Chem. Soc. - 1986. - V. 108. - P. 2093-2094.
32. Teng Q. Structural Biology: Practical NMR Applications [Text] / Q. Teng // Department of Chemistry University of Georgia Athens, Georgia. - 2005. V.5. - P. 163-178.
33. Protein NMR. HNCO: [Electronic resource] -http://www.protein- nmr.org.uk/solution-nmr/spectrum-descriptions/hnco/(дата обращения 10.05.17). 

http://rmni.iqfr.csic.es/guide/eNMR/eNMR3Dprot/hnco.html (дата
обращения 10.05.17).
35. Structural Biology: Practical NMR Applications [Text]: - Ibid. P.169.
36. Protein NMR. HNCA: [Electronic resource] -http://www.protein-
nmr.org.uk/solution-nmr/spectrum-descriptions/hnca/ (дата обращения
10.05.17).
37. 3D HNCA: [Electronic resource] -
http://rmni.iqfr.csic.es/guide/eNMR/eNMR3Dprot/hnca. html (дата
обращения 10.05.17).
38. Structural Biology: Practical NMR Applications [Text]: - Ibid. P.169-170.
39. Protein NMR. HN (CO) CA: [Electronic resource] - http://www.protein- nmr.org.uk/solution-nmr/spectrum-descriptions/hncoca/(дата обращения 10.05.17).
40. 3D HN(CO)CA. [Electronic resource] -
http://rmni.iqfr.csic.es/guide/eNMR/eNMR3Dprot/hn(co)ca.html (дата
обращения 10.05.17).
41. Structural Biology: Practical NMR Applications [Text]: - Ibid. P.173-174
42. Protein NMR.CBCANH : [Electronic resource] -http://www.protein- nmr.org.uk/solution-nmr/spectrum-descriptions/cbcanh-hncacb/(дата обращения 10.05.17).
43. Structural Biology: Practical NMR Applications [Text]: - Ibid. P.176-177.
44. Protein NMR.CBCA(CO)NH: [Electronic resource] - http://www.protein- nmr.org.uk/solution-nmr/spectrum-descriptions/cbcaconh-hncocacb/(дата обращения 10.05.17).
45. Piotto, M. Gradient-tailored Excitation for Single-quantum NMR
Spectroscopy of Aqueous Solutions[Text] / M. Piotto, V. Saudek, and V. Sklenar, // J. Biomol. NMR 2, -1992. - P. 66.
46. Аюпов, Р.Х. Выделение и очистка белка [Текст]: Учебно- методическое пособие / Р.Х. Аюпов, М.М. Юсупов. - Казань: Казан. ун-т, 2015. - 19 с.
47. Berjanskii MV. A simple method to predict protein flexibility using secondary chemical shifts / MV. Berjanskii, DS. Wishart // J Am Chem Soc 127. - 2005. - Р. 14970-14971.


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ