Исследование особенностей альфа 7 и альфа 9 никотиновых ацетилхолиновых рецепторов методами сайт-направленного мутагенеза и флоуресцентной детекции кальция
Надсемейство пентамерных лиганд-управляемых ионных каналов (пЛУИК)
представляет собой группу трансмембранных рецепторов, обеспечивающих селективный пассивный транспорт ионов через плазматическую мембрану посредством изменения конформации при связывании с молекулами лигандов. Последние можно классифицировать по типу вызываемых ими изменений активности
рецептора на: агонисты, переводящие рецептор в активное состояние; антагонисты, блокирующие его; и аллостерические модуляторы, селективно регулирующие действие других лигандов. По строению пЛУИК представляют собой белковые комплексы из пяти субъединиц, симметрично расположенных вокруг центрального ионного канала. В каждой субъединице выделяют три функциональных домена: внеклеточный, трансмембранный и цитоплазматический. Надсемейство пЛУИК включает семейство Цис-петельных рецепторов, представителями которого являются никотиновые ацетилхолиновые рецепторы (нАХР)
наряду с серотониновыми рецепторами (5-НТ3Р) и рецепторами γ-аминомасляной кислоты (ГАМКАР). Ключевой особенностью строения рецепторов данного
семейства является наличие пары цистеинов, расположенных во внеклеточном
домене и соединенных друг с другом посредством дисульфидной связи. нАХР
широко распространены по всему животному миру от нематод до человека и экспрессируются во многих областях центральной и периферической нервной системы, а также в глиальных, эпителиальных, эндотелиальных, дендритных и др.
клетках. К лигандам нАХР, как видно из названия, относят эндогенный ацетилхолин и экзогенный никотин. Вследствие широкой распространенности в организме и вовлеченности во многие физиологические процессы, нАХР являются
перспективной мишенью лекарственных средств при патологиях нервной и иммунной систем, в частности при болезни Альцгеймера, шизофрении, миастении,
эпилепсии и др. Гомопентамерные α7 нАХР представляют особый интерес, поскольку обладают уникальными свойствами: высокой проницаемостью для9
ионов кальция, высоким сродством к α-бунгаротоксину (α-BTX), относительно
низким сродством к никотину и быстрой десенситизацией. Мышечные нАХР,
наряду с α7 нАХР обладающие высоким сродством к α-BTX, играют важнейшую
роль в жизнедеятельности млекопитающих через обеспечение работы скелетной
мускулатуры. Мутации в генах субъединиц мышечного нАХР зачастую приводят к появлению редких генетических заболеваний — наследственных миастений. Наиболее интересными с точки зрения изучения фундаментальных механизмов функционирования нАХР являются миастении так называемых «медленных каналов». Этот тип наследственных миастений вызван мутациями, повышающими активность мышечного нАХР, что приводит к избыточному проникновению ионов кальция в мышечные волокна и повреждению мышечной ткани. Таким образом, исследование нАХР, проницаемых для ионов кальция и их мутантных форм является актуальной задачей, как с точки зрения фундаментальной
науки, так и для создания новых лекарственных средств.
Целью данной работы является исследование молекулярных механизмов
функционирования различных типов рецепторов, в частности с мутантными α7
и мышечными нАХР, с помощью сочетания методов сайт-направленного мутагенеза и кальциевого имиджинга.
Для достижения цели были поставлены следующие задачи:
1) получить точечный мутант α7 нАХР с двойной заменой в участке связывания с лигандами на основе двух мутантов с одиночными заменами:
L119D и F209S;
2) исследовать функциональную активность мутантов мышечного рецептора на основе мутанта, ассоциированного с наследственной миастенией
медленных каналов.
Была произведена мутация F209S в нАХР α7-го подтипа с мутацией
L119D. В процессе внесения мутации F209S произошла незапланированная дупликация участка «C»-петли, что произошло вследствие
наличия в «C»-петле повторяющихся нуклеотидных последовательностей.
2. Были обработаны данные кальциевого имиджинга мышечного нАХР
дикого типа (WT) и мутантных рецепторов при аппликации агониста
(ацетилхолина) в разных концентрациях. Исследование показало, что
при низких концентрациях ацетилхолина (10 мкМ) мутанты G173S,
L219T и L219A проявляют повышенную активность в сравнении с мышечным нАХР дикого типа (WT), а мутация L219A взаимодействует с
мутацией G173S (вызывающей миастению), что приводит к уменьшению чувствительности двойного мутанта и к низким, и к слишком высоким концентрациям ацетилхолина. Благодаря графикам падения интенсивности флуоресценции во времени было выявлено, что мутации в
положениях 173 и 219 мнАХР функционально и топологически взаимосвязаны.
1. Mariama, J., Evolution of Pentameric Ligand-Gated Ion Channels: Pro-Loop Receptors / J. Mariama, T. Antoine, H. Jerome // PLoS One - 2016. - Vol. 11, №3. - e0151934.
2. Corringer, P.J. et al. Structure and pharmacology of pentameric receptor chan¬nels: from bacteria to brain / P-J Corringer, F. Poitevin, M. S. Prevost, L. Sau- guet, M. Delarue, J-P. Changeux // Structure - 2012. Vol. 20, №6. - P. 41-56.
3. Edson, Х. А. et al. Mammalian Nicotinic Acetylcholine Receptors: From Structure to Function / X. A. Edson, F. R. P. Edna, A. Manickavasagom, W. R. Scott / / Physiol Rev - 2009. - Vol. 89, №1. - P. 73-120.
4. Sine, S.M., End-plate acetylcholine receptor: structure, mechanism, pharma¬cology, and disease /S. M. Sine // Physiol Rev - 2012. - Vol. 92, №3. - P.
1189 -1234.
5. Corradi, J. B. W., Understanding the Bases of Function and Modulation of a7 Nicotinic Receptors: Implications for Drug Discovery / J. B. W. Corradi, C. Bouzat // Mol Pharmacol - 2016. - Vol. 90, №3. - P. 288-99.
6. Paulo, J.A., Proteomic analysis of an alpha7 nicotinic acetylcholine receptor interactome / J.A. Paulo, W. J. Brucker, E. Hawrot // J Proteome Res - 2009. - Vol. 8, №4. - P. 1849-1858.
7. Jones, A.K., Proteins interacting with nicotinic acetylcholine receptors: ex¬panding functional and therapeutic horizons / A.K. Jones, S. D. Buckingham,
D. B. Sattelle // Trends Pharmacol Sci - 2010. - Vol. 31, №10. - P. 455-462.
8. King, J.R. et al. Identification and characterization of a G protein-binding clus¬ter in a7 nicotinic acetylcholine receptors / J. R. King, J. C. Nordman, S. P. Bridges, M. Lin // J Biol Chem - 2015. - Vol. 290, №33. - P. 20060-20070.
9. Bouzat, C. et al. The interface between extracellular and transmembrane do¬mains of homomeric Cys-loop receptors governs open-channel lifetime and rate of desensitization / C. Bouzat, M. Bartos, J. Corradi, S. M. Sine // J Neu- rosci - 2008. - Vol. 28, №31 - P. 7808-7819.
10. Yan, H. et al. The coupling interface and pore domain codetermine the single¬channel activity of the a7 nicotinic receptor / H. Yan, N. Pan, F. Xue, Y. Zheng, C. Li, Y. Chang, Z. Xu, H. Yang, J. Zhang / / Neuropharmacology -
2015. - Vol. 95. - P. 448-458.
11. Althoff, T. et al. X-ray structures of GluCl in apo states reveal a gating mech¬anism of Cys-loop receptors / T. Althoff, R. E. Hibbs, S. Banerjee, E. Gouaux // Nature - 2014. - Vol. 512, №7514 - P. 333-337.
12. Andersen, N. et al. Functional relationships between agonist binding sites and coupling regions of homomeric Cys-loop receptors / N. Andersen, J. Corradi, M. Bartos, S. M. Sine, C. Bouzat // J Neurosci - 2011. - Vol. 31, №10 - P. 3662-3669.
13. Guan, Z.Z. et al. Decreased protein levels of nicotinic receptor subunits in the hippocampus and temporal cortex of patients with Alzheimer’s disease / Z. Z. Guan, X. Zhang, R. Ravid, A. Nordberg // J Neurochem - 2000. - Vol. 74, №1 - P. 237-243.
14. Dineley, K.T. Nicotinic ACh receptors as therapeutic targets in CNS disorders / K. T. Dineley, A. A.Pandya, J. L. Yakel // Trends Pharmacol Sci - 2015. - Vol. 36, №2 - P. 96-108.
15. Shelukhina, I. et al. Calcium imaging with genetically encoded sensor Case12: Facile analysis of a7/a9 nAChR mutants / I. Shelukhina, E. Spirova, D. Kudryavtsev, L. Ojomoko, M. Werner, C. Methfessel, M. Hollmann, V. Tsetlin // PLoS One - 2017. - Vol. 12, №8 - e0181936.
16. Hone, A.J. a9-containing nicotinic acetylcholine receptors and the modulation of pain / A. J. Hone, D. Servent, J. M. Mcintosh // Br J Pharmacol - 2018. - Vol. 175, №11 - P. 1915-1927.
17. Nevin, S.T. et al. Are alpha9alpha10 nicotinic acetylcholine receptors a pain target for alpha-conotoxins? / S. T. Nevin, R. J. Clark, H. Klimis, M. J. Chris¬tie, D. J. Craik, D. J. Adams // Mol Pharmacol - 2007. - Vol. 72, №6 - P. 1406-1410.
18. Simard A.R., et al. Differential modulation of EAE by a9*- and 02*-nicotinic acetylcholine receptors / A. R. Simard, S. St-Pierre, A. Kousari, V. Patel, P. Whiteaker, B. J. Morley, R. J. Lukas, F-D. Shi // Immunol Cell Biol - 2013. - Vol. 91, №3 - P. 195-200.
19. Hughes, B.W. Molecular architecture of the neuromuscular junction. / B. W. Hughes, L. L. Kusner, H. J. Kaminski // Muscle Nerve - 2006. - Vol. 33, №4 - P. 445-461.
20. Wells, G.B. Structural answers and persistent questions about how nicotinic receptors work / G. B. Wells // Front Biosci - 2008. - Vol. 13 - P. 5479-510.
21. Unwin, N. Refined Structure of the Nicotinic Acetylcholine Receptor at 4 A° Resolution / N. Unwin // J Mol Biol - 2005. - Vol. 346, №4 - P. 967-89.
22. Albuquerque, E.X. et al. Mammalian Nicotinic Acetylcholine Receptors: From Structure to Function / E. X. Albuquerque, E. F. R. Pereira, M. Alkon- don, S. W. Rogers // Physiol Rev - 2009. - Vol. 9, №1 - P. 73-120.
23. Lindstrom, J.M. Nicotinic acetylcholine receptors of muscles and nerves: comparison of their structures, functional roles, and vulnerability to pathol¬ogy / J. M. Lindstrom // Ann N Y Acad Sci - 2003. - Vol. 998 - P. 41-52.
24. Karlin, A. Functional domains of the nicotinic acetylcholine receptor / A. Kar¬lin, R. N. Cox, M. Dipaola, E. Holtzman, P. N. Kao, P. Lobel, L. Wang, N. Yodh // Ann NY Acad Sci - 1986 - Vol. 463 - P. 53-69.
25. Kuryatov, A. et al. Mutation causing autosomal dominant nocturnal frontal lobe epilepsy alters Ca2+ permeability, conductance, gating of human «402 nic¬otinic acetylcholine receptors / A. Kuryatov, V. Gerzanich, M. Nelson, F. Olale, J. Lindstrom // J Neurosci - 1997 - Vol. 17, №23 - P. 9035-9047.
26. Lester, H.A. et al. Hypersensitive knockin mouse strains identify receptors and pathways for nicotine action / H. A. Lester, C. Fonck, A. R. Tapper, S. McKinney, M. I. Damaj, S. Balogh, J. Owens, J. M. Wehner, A. C. Collins, C. Labarca / / Curr Opin Drug Discov Dev - 2003 - Vol. 6, №5 - P. 633-639.
27. Bruses, J.L. et al. Membrane lipid rafts are necessary for the maintenance of the (a)7 nicotinic acetylcholine receptor in somatic spines of ciliary neurons /
J. L. Bruses, N. Chauvet, U. Rutishauser // J Neurosci - 2001 - Vol. 21 - P. 504-512.
28. Zhu, D. Lipid rafts serve as a signaling platform for nicotinic acetylcholine receptor clustering / D. Zhu, W. C. Xiong, L. Mei // J Neurosci - 2006 - Vol. 26, №18 - P. 4841-4851.
29. Shen, J-x., Yakel, J.L., Nicotinic acetylcholine receptor-mediated calcium sig¬naling in the nervous system / J-x. Shen, J. L. Yakel // Acta Pharmacol Sin - 2009 - Vol. 30, №6 - P. 673-80.
30. Papke, R.L. et al. alpha7 receptor-selective agonists and modes of alpha7 re¬ceptor activation / R. L. Papke, E. Meyer, T. Nutter, V. V. Uteshev // Eur J Pharmacol - 2000 - Vol. 393, №1-3 - P. 179-95.
31. Lendvai, B. et al. a7 nicotinic acetylcholine receptors and their role in cogni¬tion / B. Lendvai, F. Kassai, A. Szajli, Z. Nemethy // Brain Res Bull - 2013 - Vol. 93 - P. 86-96.
32. Shytle, R.D. et al. Cholinergic modulation of microglial activation by alpha 7 nicotinic receptors / R. D. Shytle, T. Mori, K. Townsend, M. Vendrame, N. Sun, J. Zeng, J. Ehrhart, A. A. Silver, P. R. Sanberg, J. Tan // J Neurochem - 2004 - Vol. 89, №2 - P. 337-343.
33. Sinkus, M.L. The human CHRNA7 and CHRFAM7A genes: A review of the genetics, regulation, and function / M. L. Sinkus, S. L. Graw, R. Freedman, R. G. Ross, S. Leonard // Neuropharmacology - Vol. 96 - P. 274-288.
34. Martelli, D. et al. The cholinergic anti-inflammatory pathway: a critical re¬view / D. Martelli, M. J. McKinley, R. M. McAllen // Auton Neurosci - 2014
- Vol. 182 - P. 65-69.
35. Jonge, W.J. The alpha7 nicotinic acetylcholine receptor as a pharmacological target for inflammation / W. J. Jonge, L. Ulloa // Br J Pharmacol - 2007 - Vol. 151, №7 - P. 915-929.
36. Baez-Pagan, C.A. Activation of the macrophage a7 nicotinic acetylcholine receptor and control of inflammation / C. A. Baez-Pagan, M. Delgado-Velez,
J. A. Lasalde-Dominicci // J Neuroimmune Pharmacol - 2015 - Vol. 10, №3
- P. 468-476.
37. Egea, J. et al. Anti-inflammatory role of microglial alpha7 nAChRs and its role in neuroprotection / J. Egea, I. Buendia, E. D. Parada, E. Navarro, R. Leon, M. G. Lopez // Biochem Pharmacol - 2015 - Vol. 97, №4 - P. 463-472.
38. Hone, A.J. a9-containing nicotinic acetylcholine receptors and the modulation of pain / A.J. Hone, D. Servent, J.M. McIntosh // Br J Pharmacol - 2018 - Vol. 175, №11 - P. 1915 - 1927.
39. Fucile, S. Ca2+ permeability of nicotinic acetylcholine receptors / S. Fucile // Cell Calcium. 2004. 35(1): p. 1-8.
40. Grassi, F. Calcium in fl ux through muscle nAChR-channels: One route, mul¬tiple roles / F. Grassi, S. Fucile // Neuroscince - 2019 - S0306-
4522(19)30251-9.
41. Entwistle, A. et al. The control of chick myoblast fusion by ion channels op¬erated by prostaglandins and acetylcholine / A. Entwistle, R. J. Zalin, S. Bevan, A. Warner // J Cell Biol - 1988 - Vol. 106 - P.1693-1702.
42. Constantin, B. Myoblast fusion requires cytosolic calcium elevation but not activation of voltage-dependent calcium channels / Constantin, B., Cognard, C., Raymond, G. // Cell Calcium - 1996 - Vol. 19 - №5 - P. 365-374.
43. Allard, B. et al. Intracellular Ca2+ changes and Ca2+-activated K+ channel ac¬tivation induced by acetylcholine at the endplate of mouse skeletal muscle fibres / B. Allard, J. C. Bernengo, O. Rougier, V. Jacquemond // J Physiol - 1996 - Vol. 494 - P. 337-349.
44. Young, K.A. Modulation of skeletal and cardiac voltage-gated sodium chan¬nels by calmodulin / K.A. Young, J.H. Caldwell // J Physiol - 2005 - Vol. 565 - P. 349-370.
45. Biswas, S. Mechanisms of a human skeletal myotonia produced by mutation in the C-terminus of NaV1.4: is Ca2+ regulation defective? / S. Biswas, D. A. DiSilvestre, P. Dong, G. F. Tomaselli // PLoS One - 2013 - 8e81063.
46. Otero-Cruz, J., D. et al. Decoding Pathogenesis of Slow-Channel Congenital Myasthenic Syndromes using Recombinant Expression and Mice Models / J.
D. Otero-Cruz, C. A. Baez-Pagan, L. Dorna-Perez, G. E. Grajales-Reyes, R. T. Ramirez-Ordonez, C. A. Luciano, C. M. Gomez, J. A. Lasalde-Dominicci // P R Health Sci J - 2010 - Vol. 29, №1 - P. 4-17.
47. Engel, A.G., Congenital myasthenic syndromes / A. G. Engel // Handb Clin Neurol - 2008 - Vol. 91 - P. 285-331.
48. National Center for Biotechnology [Электронный ресурс]. - Режим до-ступа: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nucleotide/, свободный - (18.05.20)
49. Agilent [Электронный ресурс]. - Режим доступа: https: //www. chem. ag- ilent.com/store/primerDesignProgram.jsp, свободный - (18.05.20)
50. Zheng L, Baumann U, Reymond JL., An efficient one-step site-directed and site-saturation mutagenesis protocol. Nucleic acids research. 2004. 32(14): e115.
51. National Center for Biotechnology [Электронный ресурс]. - Режим до-
ступа:https://https.ncbi.nlm.nih.gov/tools/primer-blast/,свободный -
(18.05.20)
52. National Center for Biotechnology [Электронный ресурс]. - Режим до-
ступа:https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi#AAB25224,свободный -
(18.05.20)