ВВЕДЕНИЕ 9
1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 12
1.1 Биологическая мембрана: химический состав, функции и структурная
организация 12
1.2 Методы исследования физико-химического состояния биологических
мембран 16
2 ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ 29
2.1 Характеристика материалов и реактивов 29
2.2 Выращивание проростков пшеницы 29
2.3 Экстрагирование липидов из корней пшеницы 30
2.4 Определение состава и содержания липидов в экстрактах из корней пшеницы с применением инструментальной тонкослойной хроматографии 31
2.5 Определение проницаемости и фазового состояния мембран клеток
корней пшеницы 40
2.6 Общие методы исследования 40
2.6.1 Инструментальная тонкослойная хроматография 40
2.6.2 Определение выхода электролитов и индекса мембранной
стабильности 41
2.6.3 Определение величины генерализационной поляризации
возбуждения флуоресценции липофильного зонда лаурдана в мембранах
микросомальной фракции растительных клеток 41
2.7 Статистическая обработка результатов 42
3 ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ43
3.1 Обоснование исследования 43
3.2 Исследование влияния мембранотропных веществ на проницаемость
мембран клеток корней пшеницы 44
3.3 Исследование липидного профиля в экстрактах из клеток корней
пшеницы, выращенных при действии мембранотропных веществ 46
3.4 Исследование влияния мембранотропных веществ на характеристики мембран клеток корней пшеницы 56
ВЫВОДЫ 58
Список использованной литературы 59
Приложение 66
Актуальность. Различные неблагоприятные факторы окружающей среды воздействуют на растения вызывают в них стресс, что приводят к нарушениям жизнедеятельности растений. Липиды - это один из важных классов биологических соединений, который претерпевает существенные изменения в ответе растения на стрессовые воздействия [1]. Известно, что результатом стрессового воздействия на растение являются изменения метаболических процессов, идущих в клетке: активация ферментной системы, изменение текучести мембран, фотосинтетической способности [2]. Изучение этих изменений имеет важное фундаментальное значение, в первую очередь для культур, имеющих важное сельскохозяйственное значение. К важнейшим сельскохозяйственным культурам относится пшеница. Несмотря на широкую изученность пшеницы как основной продовольственной культуры, данные о ее липидном профиле, в том числе изменении его состава, при воздействии различных стрессоров до сих пор ограничены.
Целью настоящего исследования явилось изучение взаимосвязи состава липидов в корнях проростков пшеницы Triticum aestivum L.с проницаемостью клеточных мембран и их фазового состояния при действии мембранотропных веществ.
В соответствии с целью в работе были поставлены следующие задачи:
1) определить проницаемость мембран клеток корней проростков, выращенных на средах с добавлением мембранотропных веществ, для электролитов путем оценки их выхода методом кондуктометрии;
2) исследовать липидный профиль в корнях проростков, выращенных на средах с добавлением мембранотропных веществ, методом инструментальной тонкослойной хроматографии на лабораторном комплексе «CAMAG» (Швейцария);
3) оценить величину генерализованной поляризации возбуждения флуоресценции липофильного зонда лаурдана в мембранах микросомальной
фракции клеток корней проростков пшеницы, выращенных на средах с добавлением мембранотропных веществ.
Научная новизна.
Впервые исследован качественный состав липидных соединений и определенно их количество в корнях проростков пшеницы, выращенных при воздействии СаС12(10-3 М) и Д-ситостерин (5*10-4 М), уплотняющих мембрану, а также нистатина (10-4 М) и детергента тритон Х-100 (1,6-10-5 М), которые увеличивают ее проницаемость.
Показано, что при выращивании пшеницы на среде с добавлением Д- ситостерина происходит существенное изменение состава липидов в клетках корней. Происходит увеличением стеринов и моногалактозилдиацилгрицерида (в 3,4 и 2 раза, соответственно) и снижение фосфатидилхолина и гликоцерамидов (1,4 и 2, соответственно) При этом обнаруженные изменения в липидном профиле влияют на мембранные характеристики клеток корней пшеницы - увеличение мембранной стабильности на 4,7 % и уплотнение мембран в 1,3 раза.
Установлено, что при выращивании растений в течение 4 суток на среде с добавлением нистатина в концентрации 10-4 М, происходит адаптация растений к данному мембранотропу, которая заключается в восстановлении мембранных характеристик - текучести и проницаемости. Одним из факторов в этом механизме адаптации является снижение (в 3,3 раза) количества в мембранах доли стеринов.
Практическая значимость.
Методические разработки и данные представленные в диссертации Белкиной А. В. имеют научно-прикладную значимость и могут быть использованы в исследовательских и образовательных учреждений.
По результатам исследования опубликованы 1 статья и 3 тезиса доклада: в материалах: II международного симпозиума «Молекулярные аспекты редокс-метаболизма растений» (Уфа, 2017), IV российского симпозиума с международным участием «Фитоиммунитет и клеточная сигнализация у растений» (Казань, 2016), годичного собрания общества физиологов растений России «Экспериментальная биология растений: фундаментальные и прикладные аспекты» (Судак, 2017).
Часть результатов работы получена в лаборатории Окислительно - восстановительного метаболизма КИББ ФИЦ КазНЦ РАН.
Автор выражает благодарность соавторам за помощь в проведении экспериментов и обсуждении полученных результатов.
Работа выполнена при финансовой поддержке гранта РФФИ (№ 16 - 04 - 00676 А).
1) Установлено, что при воздействии хлорида кальция в липидном составе клеток корней пшеницы изменений не происходит, при этом увеличивается индекс мембранной стабильности на 7 %, по величине генерализованнной поляризации, полученной спектральным методом с флуоресцентным зондом, мембраны (в 1,2 раза) становятся более упорядоченными;
2) Показано, что при действии Д-ситостерина в клетках корней пшеницы происходит увеличение мембранной стабильности на 4,7 % и упорядоченности липидного бислоя, что очевидно связано с обнаруженными изменениями в их липидном составе содержания следующих соединений - увеличением стеринов и моногалактозилдиацилгрицерида ( в 3,4 и 2 раза соответственно) и снижением фосфатидилхолина и гликоцерамидов (1,4 и 2 соответственно);
3) Выявлено, что в клетках корней пшеницы при выращивании на растворе нистатина в течении 4 суток не происходит снижения мембранной стабильности и упорядоченности мембран, что свидетельствует о более высоком адаптационном ресурсе растений к дестабилизирующему действию примененного мембранотропного соединения, в частности за счет уменьшения в липидном профиле количества стеринов (в 3,3 раза);
4) При обработке корней пшеницы тритоном Х - 100 наблюдается сильное повреждение клеточных мембран - увеличивается выход электролитов в 2 раза, и почти на 28 % снижается индекс мембранной стабильности. Это воздействие вызывает у растений стрессовый ответ. Показано, что происходит увеличение доли терпеноидов в сумме липидов, которые являются предшественниками биосинтеза стеринов, выполняющих в растениях регуляторную и структурную функции.
1. Mazur, P Freezing injury in plants / P. Mazur // Ann. Rev. Plant Physiol. -1969. - V. 20. - P 419-448.
2. Dubey, R.S. Photosynthesis in plants under stressful conditions / R.S. Dubey // Ed. M. Pessarakli. - New York: Marcel Dekker Inc., 1997. - P 859 - 875.
3. Рис, Э. Введение в молекулярную биологию. От клеток к атомам : [пер. с англ] / Э. Рис, М. Стернберг. - М.: Мир, 2002. - 142с. - Перевод изд: From cells to atoms an illustrated introduction to molecular biology / Anthony R. Rees, Michael J. E. Sternberg. - London : by Blackwell Scientific Publications, 1984.
4. Banfalvi, G. Permeability of biological membranes / G. Banfalvi. - Springer, 2016. - 263 p.
5. Holthuis, J.C.M. Lipid landscapes and pipelines in membrane homeostasis /
J. C.M. Holthuis, A.K. Menon // Nature. - 2014. - V.510. - pp 48-57.
6. Lynch, D.V. An introduction to plant sphingolipids and a review of recent advances in understanding their metabolism and function / D.V. Lynch, T.M. Dunn // New Phytol. - 2004. - V.161. - P 677-702.
7. Sena, F. Spectral phasor analysis reveals altered membrane order and function of root hair cells in Arabidopsis dry2/sqe1-5 drought hypersensitive mutant / F.Sena , M.Sotelo-Silveira, S.Astrada , M.A.Botella, L.Malacrida, O. Borsani //Plant Physiol Biochem.- 2017. - V. 119. - pp 224-231.
8. Martin, S. W. Lipid microdomains - plant membranes get organized / S. W. Martin, B. J. Glover, J. M. Davies, // Trends Plant Sci. - 2005. - V.10. - P 263¬265.
9. Bhat, R.A. Lipid rafts in plants / R.A. Bhat, R. Panstruga // Planta - 2005. - V. 223. - P 5-19.
10. Jacobson, K. Lipid rafts: at a crossroad between cell biology and physics /
K. Jacobson, O.G. Mouritsen, R.G. Anderson // Nat. Cell Biol. - 2007. - V. 9. - P 7-14.
11. Fielding, C.J. Membrane cholesterol and the regulation of signal transduction / C. J. Fielding, P E. Fielding // Biochem. Soc. Trans. - 2004. -V.32.
- P.65-69.
12. Grosjean, K. Differential effect of plant lipids on membrane organization: Specificities of phytosphingolipids and phytosterols / K. Grosjean, S. Mongrand,
L. Beney, F. Simon-Plas, P Gerbeau-Pissot // J. Biol. Chem. - 2015. - V. 290. - pp 5810-5825.
13. Ando, J. Sphingomyelin distribution in lipid rafts of artificial monolayer membranes visualized by raman microscopy / J. Ando, M. Kinoshita, J. Cui, H. Yamakoshi, K. Dodo, K. Fujita, M. Murata, M. Sodeoka // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 2015. - V. 112. - pp 4558-4563.
14. Pike, L.J. Cholesterol depletion delocalizes phosphatidylinositol bisphosphate and inhibits hormone-stimulated phosphatidylinositol turnover / L. J. Pike and J. M. Miller // J. Biol. Chem. - 1998. - V. 273. - P 22298-22304.
15. Burkart, R. Dynamic complexity: plant receptor complexes at the plasma membrane /R. Burkart, Y. Stahl //Current Opinion in Plant Biology. - 2017. - V. 40. - .pp 15-21.
16. Schapire, A. Plasma membrane repair in plants / A. Schapire, V. Valpuesta,
M. Botella // Plant Science. - 2009. - V.14. - pp 645-652.
17. Volkov, A. Cold plasma interactions with plants: Morphing and movements of Venus flytrap and Mimosa pudica induced by argon plasma jet / A. Volkov, K. Xu, V. Kolobovc //Bioelectrochemistry. - 2017. - V. 118. - pp 100-105.
18. Baloyi, N. Proteomic analysis of Arabidopsis plasma membranes reveals lipopolysaccharide-responsive changes /N. Baloyi, A. Dubery, A. Piater // Biochemical and Biophysical Research Communications. - 2017. - V. 486. - pp 1137-1142.
19. Валитова, Ю.Н. Связывание стеринов влияет на функционирование мембран и состав сфинголипидов в корнях пшеницы / Ю.Н. Валитова, Е.Р. Котлова, А.В. Новиков, А.Л. Шаварда, К.А. Артеменко, Р.А. Зубарев, Ф.В. Минибаева // Биохимия. - 2010. - Т. 75(5). - С. 644 - 653.
20. Valitova, J.N. Effects of sterol-binding agent nystatin on wheat roots: The changes in membrane permeability, sterols and glycoceramides / J.N. Valitova, F.V. Minibayeva, E.R. Kotlova, A.V. Novikov, A.L. Shavarda, L.I. Murtazina, I.S. Ryzhkina // Phytochemistry. - 2011. - V. 72(14-15). - P. 1751-1759.
21. Valitova, J. Sterol binding by methyl-b-cyclodextrin and nystatin - comparative analysis of biochemical and physiological consequences for plants / J. Valitova, A. Sulkarnayeva, E. Kotlova, A. Ponomareva, F. Mukhitova, L. Murtazina, I. Ryzhkina, R. Beckett , F. Minibayeva // FEBS J. - 2014. - V. 281(8). - P 2051-2060.
22. Сулкарнаева, А.Г. Cтрессиндуцированные изменения мембранныхстеринов в корнях пшеницы / А. Г. Сулкарнаева, Ю. Н. Валитова, Ф. К. Мухитова, Ф. В. Минибаева // Доклады академии наук. - 2014. - Т. 455, № 2. - С. 229-231.
23. http://old.pskgu.ru/ebooks/revinbio/revinbio_2_21.pdf
24. Carde, J. Electron Microscopyof Plant Cell Membrans / J. Carde // Methods in Enzymology. - 1987. - V. 148. - pp 599-622.
25. Kobayashi, S. Confocal cryomicroscopic analysis and cryodynamics of endoplasmic reticulum in herbaceous plant cells /S. Kobayashi, N. Kutsuna,K.Tanino, Y. Kawamura//Environmental and Experimental Botany. - 2014. - V. 106. - pp 44- 51.
26. Pabst, G. Applications of neutron and X-ray scattering to the study of biologically relevant model membranes / G. Pabst, N. Kucerka, M.-P. Nieh, M.C. Rheinstadter, J. Katsaras // Chemistry and Physics of Lipids. - 2010. - V. 163. - pp 460-479.
27. Bonaventura, G. Laurdan monitors different lipids content in eukaryotic membrane during embryonic neural development. C/ G. Bonaventura, M.L. Barcellona, O. Golfetto, J.L. Nourse, L.A. Flanagan, E. Gratton. //ell biochemistry and biophysics. - 2014. - V. 70(2). - pp 785-94.
28. Golfetto, O. Laurdan fluorescence lifetime discriminates cholesterol content from changes in fluidity in living cell membranes // O. Golfetto, E. Hinde, E. Gratton // Biophysical journal. - 2013. - V. 104(6). - pp 1238-47.
29. Литвин, Ф.Ф. Молекулярная спектроскопия: основы теории и практика. Учеб. пособие / Ф.Ф. Литвин, В.Т. Дубровский, Р.А. Хатыпов, К.В. Неверов, Т.Н. Калабухов, Г.В. Микулинская, Л.Я. Сатина. - М.: ИНФРА - М, 2016. - 263 с. - ISBN 978 - 5 - 16 - 005727 - 9.
30. Sanchez, S.A. Laurdan generalized polarization fluctuations measures membrane packing micro-heterogeneity in vivo / S. A. Sanchez, M. A. Tricerri, E. Gratton // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 2012. - V. 109. - pp 7314-7319.
31. Jay, A. Disorder Amidst Membrane Order: Standardizing Laurdan Generalized Polarization and Membrane Fluidity Terms / A. Jay, J. Hamilton // J Fluoresc. - 2017. - V. 27. - pp 243-249.
32. Jurkiewicz , P. Lipid hydration and mobility: an interplay between fluorescence solvent relaxation experiments and molecular dynamics simulations / P Jurkiewicz, L. Cwiklik, P Jungwirth, M. Hof // Biochimie. - 2012. - V. 94. - pp 26-32
33. Sanchez, S.A. Laurdan Generalized Polarization: from cuvette to microscope / S. A. Sanchez, M.A.Tricerri, G. Gunther, E.Gratton // FORMATEX. - 2007. - pp. 1007 - 1014.
34. Dietrich, C. Lipid rafts reconstituted in model membranes / C. Dietrich, L. Bagatolli, Z. Volovyk, N. Thompson, M. Levi, K. Jacobson, E. Gratton // Biophys
J. - 2001. - V. 80. - pp 1417-1428.
35. Нестеркина, И.С. Выявление липид-белковых микродоменов (рафтов) на вакуолярной мембране : автореферат диссертации ... кандидата биологических наук : 03.01.05 / Нестеркина Ирина Сергеевна. - Иркутск., 2011. - 104 с.
36. Нурминского, В.Н. Особенности структуры вакуоли растительной клетки, выявленные с помощью конфокальной микроскопии / В.Н. Нурминский, А.Л. Ракевич, Е.Ф. Мартынович, Н.В. Озолина, И.С. Нестеркина, Е.В. Колесникова, А.А. Пилипченко, Р.К. Саляев, М.Ю. Чернышов // Цитология. - 2015. - Т. 57(6). - С. 443-451.
37. Белугин, Б.В. Значение латеральной гетерогенности PIP-аквапоринов для транспорта воды через плазмалемму растительных клеток : автореферат диссертации ... кандидата биологических наук : 03.01.05 / Белугин Борис Владимирович. - Москва., 2011. - 111 с.
38. Nichols, B.W. Separation of the lipids of photosynthetic tissues: improvements in analysis by thin-layer chromatography / B.W. Nichols // Biochem. Biophys. Acta. - 1963. - V. 70. - P 417-422.
39. Kotlova, E.R. Alterations in the composition of membrane glycero- and sphingolipids in the course of Flammulina velutipes surface culture development / E.R. Kotlova, S.V. Senik // Microbiology. - 2009. - V. 78. - P 193-201.
40. Кейтс, М. Техника липидологии. Выделение, анализ и идентификация липидов / М. Кейтс. - М.: Изд-во Мир, 1975. - 322 с.
41. Shi, H.Comparative physiological, metabolomic, and transcriptomicanalyses revealmechanisms of improved abiotic stress resistance in bermudagrass [Cynodondactylon (L). Pers.] by exogenous melatonin/ H. Shi, C. Jiang, T. Ye,
D. X. Tan, R.J. Reiter, H. Zhang, R. Liu, Z. Chen //J. Exp. Bot. - 2015. - V. 66. - pp 681-694.
42. Минибаева, Ф.В. Электрогенез и дыхательный газообмен корней пшеницы при различном кальциевом и стериновом статусе : автореферат диссертации ... кандидата биологических наук : 03.00.12 / Минибаева Фарида Вилевна. - Казань., 1990. - 23 с.
43. Forstner, J. Calcium - binding sites in human erythrocyte ghosts / J. Forstner, J. Manery // Feb. Proc. - 1970. - V. 29. - p. 664.
44. Левин, С.В. Структурные изменения клеточных мембран / С.В. Левин.
- Л.: Наука ЛО, 1976. - 224 с.
45. Marsan, M. Ability of clionasterol and poriferasterol (24-epimers of sitosterol and stigmasterol) to regulate membrane lipid dynamics / M. Marsan, I. Muller , A. Milon //Chemistry and -Physics of Lipids. - 1996. - V. 84. - pp 117 - 121.
46. Coutinho, A. Cholesterol and ergosterol influence nystatin surface aggregation: relation to pore formation / A. Coutinho, L. Silva, A. Fedorov, M. Prieto // Biophys J. - 2004. - V. 87. - pp. 3264-3276.
47. Гордон, Л.Х. Энергетический обмен клеток корней пшеницы при модификации ионной проницаемости плазмалеммы каналоформером нистатином / Л.Х. Гордон, Ю.Н. Валитова, Т.И. Огородникова, Д.Ф. Рахматуллина, А.Ю. Алябьев, Н.Л. Лосева, А.Н. Ценцевицкий, Н.Ф. Рубан // Цитология. - 2005. - Т. 7(12). - С. 1088-1094.
48. Сулкарнаева, А. Г. Состав стеринов и активность генов C24-стерин метилтрансферазы Triticum aestivum при стрессе : автореферат дис. ... кандидата биологических наук : 03.01.05 / Сулкарнаева Альбина Гарифулловна. - Казань., 2016. - 24 с.
49. Васильев, Ю.М. Клеточная поверхность и реакция клеток / Ю.М. Васильев, А.Г. Маленков - Л. : Медицина, 1968. - 291 с.
50. https://genetics_dictionary.academic.ru/5005/%D0%A2%D1%80%D0%B8 %D1%82%D0%BE%D0%BD
51. Валитова, Ю. Н. Растительные стерины: многообразие, биосинтез, физиологические функции / Ю. Н. Валитова, А. Г. Сулкарнаева, Ф. В. Минибаева // Биохимия. - 2016. - Т. 81. - С. 1050 - 1068.
52. Ленинджер, А. Биохимия / А. Ленинджер. - М.: Изд-во Мир, 1974. - 957 с.
53. Эллиот, В. Биохимия и молекулярная биология / В. Эллиот, Д. Эллиот. - М. : МАИК «Наука/Интерпериодика», 2002. - 446 с. - ISBN 5 - 7846 - 0036 -2.
54. Zhang, M. Regulation of galactolipid biosynthesis by over expression of the rice mgd gene contributes to enhanced aluminum tolerance in tobacco /M. Zhang,X. Deng,L. Yin,L. Qi,X. Wang,S. Wang,H. Li //Front Plant Sci. - 2016. - V. 7. - P 337.
55. Baretto - Bergter, E. Structure and biological functions of fungal cerebrosides / E. Baretto - Bergter, M. R. Pinto, M. L. Rodrigues // Annals of the Brazilian Academy of Sciences. - 2004. - V. 76, № 1. - P 67 - 84.
56. Gerbeau-Pissot, P Modification of Plasma Membrane Organization in Tobacco Cells Elicited by Cryptogein / P Gerbeau-Pissot, C. Der, T. Dominique, I. Anca, K. Grosjean, Y. Roche, J. Perrier-Cornet, S. Mongrand, F. Plas // Plant Physiology. - 2014. - V. 164. - P 273 - 286.
57. Bagatolli, L. Water dynamics in glycosphingolipid aggregates studied by LAURDAN fluorescence / L. Bagatolli, , E. Gratton, , G. Fidelio // Biophys. J. - 1998. - V. 75. - P. 331-341.