Тип работы:
 Предмет:
 Язык работы:


РАЗРАБОТКА МИКРОНАСАДКИ ДЛЯ ЭКСТРУДЕРА 3Д ПРИНТЕРА, ПЕЧАТАЮЩЕГО КЛЕТОЧНЫМИ СФЕРОИДАМИ

Работа №75277

Тип работы

Магистерская диссертация

Предмет

биология

Объем работы95
Год сдачи2018
Стоимость4985 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
47
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


Введение 3
Глава 1. Обзор литературы 5
1.1. ЗЭ-принтеры и применение их медицине 5
1.2. Процесс печати на 3О-принтере 10
1.3. Приготовление сфероидов 18
1.4. Системы для инкапсуляции клеток 30
1.5. Микроинструменты для микрохирургии и микроманипуляций с
клетками 33
1.6. Материалы и оборудование для изготовления
микроинструментов 54
Глава 2. Материал и методы исследования 63
Глава 3. Полученные результаты и их обсуждение 72
Выводы 82
Список использованных источников 83
Приложения 94

3Э-принтер - это новое устройство для печати трехмерных моделей. 3Э-принтер позволяет выводить трехмерную информацию, т.е. создавать определенные физические объекты. В основе печати на 3Э-принтере лежит принцип послойного наращивания вещества в различных состояниях.
Экспериментальное развитие печати органов началось около десяти лет тому назад. На первом этапе это больше всего походило на создание деталей для конструктора «Лего», когда исследователи могли получать лишь отдельные фрагменты той или иной ткани. Затем появилась возможность создавать сегменты внутреннего органа, уже снабженные сосудистой сетью, что стало определяющим этапом развития новой технологии.
Технология биопринтинга базируется на известном явлении самосборки (направленной самоорганизации) клеточных структур. Этот процесс, управляемый силами поверхностного натяжения и межбелковыми взаимодействиями, повсеместно встречается в живом мире, начиная от формирования клеточных мембран и заканчивая образованием органов у эмбриона.
Современные 3D технологии применяются во многих сферах жизни общества. Стремительное совершенствование этих технологий позволяет использовать 3D принтеры в самых различных областях науки и техники. Сегодня уникальные методы современной печати активно применяются в медицине и дальнейшие перспективы их применения безграничны.
Данная тема актуальна, так как в настоящее время стали интенсивно использовать 3Э-принтеры для печати органов и тканей, а разработка насадки для экструдера позволяют улучшить условия печати клеточными сфероидами, так как это позволяет задавать и регулировать параметры выходного биоматериала из экструдера.
Цель работы - разработать микронасадку для экструдера 3D биопринтера печатающего клеточными сфероидами.
Для достижения поставленной цели были определены задачи:
1. Определить материал для изготовления стеклянной части
микронасадки;
2. Разработать технологию изготовления суживающейся части
микронасадки;
3. Разработать опытный образец микронасадки для экструдера 3D биопринтера;
4. Провести испытания микронасадки с использованием клеточных сфероидов.
Объект исследования: объектом исследования является микронасадка 3О-принтера для экструдера и параметры при которых она изготавливается.
Предмет научного исследования: разработка технологии изготовления микронасадки для экструдера 3О-принтера и возможность ее применения при печати клеточными сфероидами.
Научная новизна: в ходе проделанной работы были созданы микронасадка для экструдера 3Б-принтера, которая способна печатать клеточными сфероидами. Данный микроинструмент был изготовлен на новом оборудовании различных компаний США и Японии. В России мало организаций, которые занимаются разработками данного типа.
Практическая значимость: разработанная микронасадка может быть использована в технологии 3D биопринтинга, которое нуждается в интенсивном развитии.
Структура работы: магистерская диссертация изложена на 89 страницах. Она состоит из оглавления, введения, трех основных разделов, выводов. Список использованных источников включает 110 наименований. В работе используется 43 рисунка и приложения.


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!
ДИПЛОМНЫЕ МАГИСТЕРСКИЕ ДИССЕРТАЦИИ
КУРСОВЫЕ СТАТЬИ ВКР

1. Для изготовления микронасадки оптимальными являются заготовки из боросиликатного стекла с наружным диаметром. 1.0 мм, а внутренним диаметром 0.50 мм.
2. Технология изготовления состоит 5 этапов: формовка на пуллире, подрезка на микрокузнице, шлифовка на гриндере, подготовка канюли, сборка микронаксадки.
3. Разработан опытный образец, который состоит из стеклянной суживающейся части и пластиковой канюли.
4. Изготовленные микронасадки прошли испытания и могут использоваться для печати клеточными сфероидами.



1. Готье С. В., Хомяков С. М. Оценка потребности населения в трансплантации органов, донорского ресурса и планирование эффективной сети медицинских организаций (центров трансплантации) // Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2013. Т. XV, № 3. С. 11-24.
2. Климушева Н. Ф. Трансплантация солидных органов: пути оптимизации и повышения эффективности: дис. докт. мед. наук. М., 2016. 248 с.
3. Козыренко О. Ю. ЗО-принтер и медицина // Медицина третьего тисячолггтя. 2011. № 14. С. 24-25.
4. Миронов В. А. ЗО-биопечать: любые органы на заказ // Инициативы 21 века. 2013. № 2. С. 94-98.
5. Телепнева А. А., Вовк О.Ю. Трехмерная печать органов -
будущее трансплантологии // Студенческий научный форум: VII
Международная студенческая электронная научная конференция. Моска. 2015. C. 1-2.
6. Фонбрюн П. Методы микроманипуяций / под ред. С. Я. Залкинда. Москва: Издательство иностранной литературы. 1951. 89-96. с.
7. Abdallah B. M., Kassem M. Human me senchymal stem cells: from basic biology to clinical applications // Gene Ther. 2008. V. 15, № 2. P. 109-116.
8. Almqvist K., Wang L., Wang J. et al. Culture of chondral in alginate surrounded by fibrin gel: characteristics of the cells over a period of eight weeks // Ann. Rheum. Diseases. 2001. V. 60. P. 781-790.
9. Bao G., Suresh S. Cell and molecular mechanics of biological materials // Nature materials, 2013. Vol. 2, № 11. P. 715-725.
10. Bose S., Vahabzadeh S., Bandyopadhyay A. Bone tissue engineering using 3D printing // Mater. Today. 2013. Vol.16, № 12. Р.496-504.
11. Botman A., Mulders J. J. L., & Hagen C. W. Creating pure
nanostructures from electron-beam-induced deposition using purification techniques: a technology perspective // Nanotechnology, 2009. Vol. 20. P. 5-14.
12. Braeckmans K., Peeters L., Sanders N. N., et al. Three-dimensional fluorescence recovery after photobleaching with the confocal scanning laser microscope // Biophys J. 2009. P. 40-52.
13. Bulanova E. A., Koudan E. V., Degosserie J., et al. Bioprinting of a functional vascularized mouse thyroid gland construct // Biofabrication. 2017. №
9. Р. 1-13.
14. Butcher J. T, McQuinn T. C., Sedmera D., et al. Transitions in early embryonic atrioventricular valvular function correspond with changes in cushion biomechanics that are predictable by tissue composition // Circ Res. Vol. 100 № 13. 2007. P. 3-11.
15. Campo E. M., Mamojka B., Wenn D., Ramos I., Esteve J., and Terentjev E. M., “Education and dissemination strategies in photoactuation,”, in preparation // SPIE NanoScience + Engineering. 2011. № 11. Р. 47-56.
16. Campo, E. M., Lopez-Martinez, M. J., Fernandez, E., et al. Image- guided 3D-printing and haptic modeling in plastic surgery // CRC Taylor and Francis Press. 2014. № 25. P. 30.
17. Chia H. N, Wu B. M. Recent advances in 3D printing of biomaterials // J. Biol Eng. 2015. Vol. 9. P. 4.
18. Chua C. K., Leong K. F., Lim C. S. Rapid Prototyping: Princi-ples and Applications // World Scientific. 2010. № 8. P. 15.
19. Cohen A., Laviv A., Berman P., Nashef R., Abu-Tair J. Mandibular reconstruction using stereolithographic 3-dimensional printing modeling technology // Oral surgery, oral medicine, oral pathology, oral radiology, and endodontics. 2009. № 12. P. 108.
20. Delmarcelle A. S., Villacorte M., Hick A. C. and Pierreux C. E. An ex vivo culture system to study thyroid development J // Journal of visualized experiments: JoVE. 2014. № 14. Р. 8-15.
21. Dezawa M., Kanno H., Hoshino M., et al. Specific induction of neuronal cells from bone marrow stromal cells and application for autologous transplantation // J. Clin. Invest. 2004. Vol. 113, № 12. P. 1701-710.
22. Dougherty G. Medical Image Processing: Techniques and
Applications // Springer. 2011. № 13. P. 33.
23. Drake C. J. and Fleming P. A. Vasculogenesis in the day 6.5 to 9.5 mouse embryo // Blood. 2000. Vol. 95. № 17. Р. 85.
24. Duarte Campos D. F., Blaeser A., Weber M., et al. Three-dimensional printing of stem cell-laden hydrogels submerged in a hydrophobic high-density fluid // Biofabrication. 2013. Vol. 5. № 2. Р. 98.
25. El-Baz A. S., Acharya U. R., Mirmehdi M., Suri J. S. Multi Mo-dality State-of-the-Art Medical Image Segmentation and Regis-tration // Methodologies. Biomed. Sci. 2011. Vol. 696. № 15. P. 25.
26. Ergenc, A., Olgac, N. New technology for cellular piercing: rotationally oscillating p-injector, description and validation tests // Biomedical Microdevices. 2013. Vol. 9. № 6. P. 885-891.
27. Forgacs G., Foty R. A., Shafrir Y., et al. Viscoelastic properties of living embryonic tissues: a quantitative study // Biophys J. 1998. № 5. P. 27-34.
28. Friedrich J., Ebner R., Kunz-Schughart L. A. Experimental anti-tumor therapy in 3-D: spheroids - old hat or new challenge // Int J Radiat Biol. 2007. P. 49-71.
29. Fullerton J., Frodsham G., Day R. 3D printing for the many, not the few // Nat. Biotechnol. 2014. Vol.3., № 11. Р. 1086-1087.
30. Gerstle T. L, Ibrahim A. M, Kim P. S, Lee B. T, Lin S. J. A plastic surgery application in evolution: three-dimensional printing // Plast Reconstr Surg.
2014. № 33. P. 133.
31. Goiato M. C., Santos M. R., Pesqueira A. A, et al. Prototyping for surgical and prosthetic treatment // J. Craniofac Surg. 2011. № 7. P. 22.
32. Hannen E. J. Recreating the original contour in tumor deformed mandibles for plate adapting // Int J. Oral Maxillofac Surg. 2006. № 12. P. 35.
33. Herlin C., Koppe M., Beziat J. L., et al. Rapid prototyping in craniofacial surgery: using a positioning guide after zygomatic osteotomy - a case report // J. Craniomaxillofac Surg. 2011. № 16. P. 39.
34. Hiller, J.; Lipson H. Methods of parallel voxel manipulation for 3D digital printing // Proceedings of the 18th solid freeform fabrication symposium. 2007. № 11. P. 200-211.
35. Hirai S., Kasai S., Mito M. Encapsulated Hepatocyte Transplantation for the Treatment of D galactosamine Induced Hepatic Failure in Rats // Eur. Surg. Res. 1993. V. 25. № 4. P. 193-202.
36. Horvath L., Umehara Y., Jud C., et al. Engineering an in vitro airblood barrier by 3D bioprinting // Sci. Rep. 2015. Vol. 5. № 17. P.79-74
37. Hoy M. B. 3D printing: making things at the library // Med Ref Serv Q. 2013. № 4. P. 32.
38. Huang T., Kimura Y., & Yanagimachi R. The use of piezo
micromanipulation for intracytoplasmic sperm injection of human oocytes // Journal of Assisted Reproduction and genetics, 2013. Vol. 13. №. 4. P. 320-328
39. Hull C. W. Apparatus for Production of Three-Dimensional Objects by Stereolithography // Science. 1986. № 26. P. 13.
40. Hunt N. C., Shelton R. M., Grover L. M. An alginate hydrogel matrix for the localized delivery of a fibroblast/keratinocyte co culture // Biotech. J. 2009. V. 4. № 5. P. 730-737.
41. Hunt N. C., Shelton R. M., Grover L. M. Reversible mitotic and metabolic inhibition following the encapsulation of fibroblasts in alginate hydrogels // Biomaterials. 2009. V. 30. № 32. P. 6435-6443.
42. Iniewski K. Medical Imaging: Principles // Detectors, and Electronics. John Wiley & Sons. 2009. P. 32.
43. Ittner, L., & Gotz, J. Pronuclear injection for the production of transgenic mice // Nature protocols, 2007. Vol. 2. №. 5. P. 1206-1215.
44. J., Plaza J. A. Sharpened transparent micronozzles fabrication for cell membrane piercing // Proceedings of SPIE, the International Society for Optical Engineering. 2009. № 21. P. 78-90.
45. Jakab K., Damon B., Marga F., et al. Relating cell and tissue mechanics: implications and applications // Dev Dyn. 2008. № 15. P. 38-49.
46. Kasza K. E., Rowat A. C., Liu J., et al. The cell as a material // Curr Opin Cell Biol. 2007. № 9. P. 1-7.
47. Kim B. S., Baez C. E., Atala A. Biomaterials for tissue engineering // World J.Urol. 2000. V. 18, N 1. P. 2-9.
48. Kishigami S., Hikichi T., Van Thuan N., et al. Normal specification of the extraembryonic lineage after somatic nuclear transfer // FEBS Letters. 2006. Vol. 580/ №. 7. P. 1801-1806.
49. Klein G. T, Lu Y., Wang M. Y. 3D printing and neurosurgery - ready for prime time? // World Neurosurg. 2013. №18. P. 80.
50. Kloss D., Fischer M., Rothermel A., Simon J. C., Robitzki A. A. Drug testing on 3D in vitro tissues trapped on a microcavity chip // Lab Chip. 2008. №10. P. 79-84.
51. Kunz-Schughart L. A., Freyer J. P., Hofstaedter F., et al. The use of 3¬D cultures for highthroughput screening: the multicellular spheroid model. J Biomol Screen. 2008. № 33. P. 73-85.
52. Lee D. A., Reisler T., Bader D. L. Expansion of chondrocytes for tissue engineering in alginate beads enhances chondrocytic phenotype compared to conventional monolayer techniques // Acta Orth. 2003. Vol. 74. № 1. P. 6-15.
53. Leung L. Y., Tian D., Brangwynne C. P., et al. A new microrheometric approach reveals individual and cooperative roles for TGF-beta1 and IL-1beta in fibroblastmediated stiffening of collagen gels // FASEB J. 2007. № 2. P. 64-73.
54. Lin R. Z, Chang H. Y. Recent advances in three-dimensional multicellular spheroid culture for biomedical research // Biotechnol J. 2008. № 3. P. 72-84.
55. Luk J. M., Wang P. P., Lee C. K. et al. Hepatic potential of bone marrow stromal cells: development of in vitro co culture and intraportal transplantation models // J. Immun. Meth. 2005. Vol. 305. № 1. P. 39-47.
56. Maguire T., Novik E., Schloss R., Yarmush M. AlginatePLL microencapsulation: effect on the differentiation of embryonic stem cells into hepatocytes // Biotech. Bioengin. 2006. Vol. 93. № 3. P. 581-591.
57. Malboubi M., Ostadi H., Wang, S., et al. The Effect of Pipette Tip Roughness on Giga-seal Formation // Proceedings of the World Congress on Engineering 2009. № 7. Р. 113-120.
58. Mano J. F, Silva G. A, Azevedo H. S et al. Natural origin biodegradable systems in tissue engineering and regenerative medicine: present status and some moving trends // J. Royal Soc. Interf. 2007. Vol. 4, № 17. P. 999-1030.
59. Martin I., Simmons P.J., Williams D.F. Manufacturing Challenges in Regenerative Medicine // Sci. Transl. Med. 2014. Vol. 6, № 232. P. 232.
60. Mironov V., Viscontia R. P, Kasyanovb V., et al. Organ printing: Tissue spheroids as building blocks // Biomaterials 2017. № 6. Р. 2-14.
61. Mohammad M. N., Mohammad R. Sadeghi and Mohammad Mehdi Akhondi. A Technique for Facile and Precise Transfer of Mouse Embryos // Avicenna J Med Biotech. 2013. № 5. P. 62-65.
62. Murphy S. V., Atala A. 3D bioprinting of tissues and organs // Nat. Biotechnol. 2014. Vol. 32. №8. Р.773-785.
63. Murua A., Portero A., Orive G, et al. Cell microencapsulation technology: towards clinical application // J. Control. Rel. 2008. Vol. 135. № 4. P. 76-83.
64. Nagy, A., Gertsenstein, M., Vintersten, K., et al. Manipulating the Mouse Embryo: A laboratory Manual, 3rd ed // Cold Spring Harbor Laboratoy Press. 2002. № 8. Р. 90.
65. Ono I., Gunji H., Suda K., Kaneko F. Method for preparing an exact- size model using helical volume scan computed tomography // Plast Reconstr Surg. 1994. № 7. P. 93.
66. Orive G., Hernandez R. M., Gascon A. R. Cell encapsulation: promise and progress // Nat. Med. 2003. Vol. 9. № 1. P. 104-107.
67. Ostad, H., Malboubi M., Prewett P. D., et al. Microelectronic // Engineering. 3D reconstruction of a micro pipette tip. 2009. Vol. 86. № 4-6. Р. 68-70.
68. Ozbolat I. T., Yu Y. Bioprinting Toward Organ Fabrication: Challenges and Future Trends // IEEE Trans. Biomed. Eng. 2013. Vol.60, № 3. Р.691-699.
69. Pati F., Jang J., Ha D., Won Kim S., et al. Printing three-dimensional tissue analogues with decellularized extracellular matrix bioink // Nat. Commun.
2014. №5. P.35-39.
70. Pianykh O. S. Digital Imaging and Communications in Medi-cine (DICOM): A Practical Introduction and Survival Guide // Springer. 2009. № 1. P. 23-25.
71. Postek, M., Vladar, A. E., Kramar J., et al. “The helium ion microscope: a new tool for nanomanufacturing” // Proceedings of SPIE, the International Society for Optical Engineering, Instrumentation Metrology and Standards for nanomanufacturing. 2017 Vol. 6648. № 3. Р. 89-94.
72. Prusse U., Bilancetti L., Bucko M. et al. Comparison of different technologies for alginate beads production // Chem. Papers. 2008. V. 62. № 4. P. 364-374.
73. Rajan N., Habermehl J., Cote M. F, et al. Preparation of ready-to-use, storable and reconstituted type I collagen from rat tail tendon for tissue engineering applications // Nat. Protoc. 2006. № 4. Р. 1-8.
74. Rengier F., Mehndiratta A., von Tengg-Kobligk H., et al. 3D printing based on imaging data: review of medical applications. // Int J. Comput Assist Radiol Surg. 2010. № 5. P. 55.
75. Rozen W. M, Ting J. W, Baillieu C, Leong J. Stereolithographic modeling of the deep circumflex iliac artery and its vascular branching: a further advance in computed tomography-guided flap planning // Plast Reconstr Surg.
2012. №9. P. 130.
76. Scipioni, L., Sanford, C., Notte, J., Thompson, B, McVey, S. Understanding imaging modes in the helium ion microscope // Journal of Vacuum Science and Technology B. 2017. Vol. 76. № 6. Р. 250-255.
77. Song J. J, Guyette J. P., Gilpin S. E et al. Regeneration and experimental orthotopic transplantation of a bioengineered kidney // Nat Med.
2013. № 5. Р 46-51
78. Srinivasan V, Bassan J. 3D printing and the future of manufacturing // CSC Leading Edge Forum. 2012. № 7. P. 36.
79. Susienka M. J., Wilks B. T. and Morgan J. R. Quantifying the kinetics and morphological changes of the fusion of spheroid building blocks // Biofabrication. 2016. № 3. P 45-47.
80. Tasoglu S., Demirci U. Bioprinting for stem cell research // Trends Biotechnol. 2013. Vol. 31. №1. P. 10-19.
81. Tobias C. A., Dhoot N. O., Wheatley M. A. et al. Grafting of the BDNF Producing Fibro blasts into the Injured Spinal Cord without Immune Suppression in the Adult Rats // J. Neurotranspl. 2001. Vol. 18. № 3. P. 287-301.
82. Tseluyko S. S., Kushnarev V. A. Regenerative biological medicine: Achievements and Prospects // Amur Medical Journal. 2016. №1(13). Р.7-15.
83. Tuan R. S., Boland G., Tuli R. Adult me senchymal stem cells and cell based tissue engineering // Arthr. Res.Ther. 2003. Vol. 5. № 1. P. 32-45.
84. Tumbleston J. R, Shirvanyants D., Ermoshkin N., et al. Additive manufacturing. Continuous liquid interface production of 3D objects // Science.
2015. № 4. P. 52.
85. Utke I., Hoffmann P., Melngailis J. Gas-assisted focused electron beam and ion beam processing and fabrication. // J. Vac. Sci. Technol. 2008. № 6. Р. 1197-1272.
86. Utke I., Hoffmann P., Melngailis J. Gas-assisted focused electron beam and ion beam processing and fabrication. Sutter Instruments. P-97 Pipette cookbook (Rev. D) // J. Vac. Sci. Technol. B 26. 2017. Р. 197-272
87. Vos P. de, Faas M. M., Strand B., et al. Alginate based microcapsules for immunoisolation of pancreatic islets // Biomaterials. 2006. Vol. 27. № 32. P. 5603-5617.
88. Weber W., Rimann M., Schafroth T. et al. // Design of high throughput compatible protocols for microencapsulation, cryopreservation and release of bovine spermatozoa // J. Biotechnol. 2006. V. 123, N 2. P. 155-163.
89. Weibel D. B., DiLuzio W. R., Whitesides G. M. Microfabrication meets microbiology // Nature Reviews Microbiology. 2007. Vol. 5, № 3. Р. 209¬218.
90. Xu M., West E., Shea L. D., Woodruff T. K. Identification of a stage specific permissive in vitro culture environment for follicle growth and oocyte development // Biol. Repr. 2006.№ 14 P. 916-923.
91. Yaul M., Bhatti R., Lawrence S. Evaluating the process of polishing borosilicate glass capillaries used for fabrication of in - vitro fertilization (iVF) micro-pipettes // Biomedical Microdevices. 2017. № 5. Р. 123-128.
92. Yoshida N., Perry A. C. F. Piezo-actuated mouse intracytoplasmic sperm injection (ICSI) // Nature Protocols. 2007. № 4. Р. 296-304.
93. Zimmermann H., Shirley S. G., Zimmermann U. Alginate based encapsulation of cells: past, present and future // Cur. Diabetes Rep. 2007. № 7. P. 314-320.
94. Агентство по инновациям и развитию. URL:
http: //www. innoros. ru/news/regions/13/09/trekhmernyi-printer-napechataet- lyuboi-organ. (дата обращения: 02.11.2017).
95. Биопечать органов на 3D принтере, как это работает? URL: http://make-3d.ru/articles/biopechat-organov-na-3d-printere(дата обращения: 02.11.2017).
96. Еженедельник 2000. URL: Аспекты: Наука: Сердце, напечатанное на принтере. Режим доступа: http: //2000.net.ua/2000/aspekty/nauka. (дата обращения: 02.11.2017).
97. Журнал «Наука и жизнь», статья «Биопринтингом тканей и органов занялись в Москве» URL: http://www.nkj.ru/news/23148/. (дата обращения: 04.11.2017).
98. Журнал «Наука и жизнь», статья «Напечатайте мне почку» URL: http://www.nkj.ru/news/21766/. (дата обращения: 04.11.2013).
99. Купревич И. С. URL: Физико-химические свойства стекла // Стекло. 2008. URL: http: //ru.knowledgr.com. (дата обращения: 23.04.18).
100. Национальное географическое общество URL:
http://www.rusngo.ru/index. (дата обращения: 02.11.2017).
101. Новый век. URL: 3D-печать органов человека. Режим доступа: http://yvek.ru(дата обращения: 02.11.2017).
102. Седов А. Б. Микрокузница MF-900 // Научный парк СПБГУ.
2016. URL: http://researchpark.spbu.ru/rmkt-eq-rus/138-equipment-rmkt-dlya-
raboty-s-kletochnimi-kulturami (дата обращения: 23.04.18).
103. Сколково URL:
http: //community.sk.ru/press/b/weblog4/archive/2013/10/21/portrety-uchastnikov- otkrytyh-innovaciy-3d-bioprinting-solyushens.aspx. (дата обращения:
03.11.2017).
104. Трехмерная печать. URL: http://3dpr.ru/trehmernaya-pechat,
свободный. (дата обращения: 02.11.2017).
105. Федеральный специализированный журнал «Кто есть, Кто в
медицине», №1(58). 2013 год, Наталья Лучкина. URL:
http: //www.ktovmedicine.ru/news/2013/1/3d-bioprinting-revolyuciya-v- regenerativnoy-medicine.html. (дата обращения: 01.11.2013).
106. Хабрахабр URL: http: //habrahabr.ru/company/invitro/blog/194064/. (дата обращения: 01.11.2013).
107. Filipino students develop 3D printed trachea using stem cells from
patients. URL: http://www.3ders.org/articles/20150219-filipino-students-develop- 3d-printed-trachea-using-stem-cells-from-patients.html (дата обращения:
25.06.2017).
108. Live Journa. URL: Биопринтер уже реальность. Режим доступа: http://ifuture.livejournal.com/348317.html. (дата обращения: 04.11.2017)
109. Organovo. URL: Официальный сайт Режим доступа:
http://www.organovo.com. (дата обращения: 02.11.2017).
110. PitBit [Электронный ресурс]: Технологии: Медицина: Гибридный ЭЭ-биопринтер позволил «напечатать» хрящевую ткань. URL:
http: //pitbit.ru/news/technology/gibridnyy_3 d_bioprinter_pozvolil_napechatat_khr yashchevuyu_tkan. (дата обращения: 01.11.2013).


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ
.