Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Формирование макроэмульсии и гидрогелевых микрочастиц для культивирования клеток

Работа №74049

Тип работы

Бакалаврская работа

Предмет

биология

Объем работы59
Год сдачи2019
Стоимость4770 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
59
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


ВВЕДЕНИЕ 4
ГЛАВА 1. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР 8
1.1. Методы биопечати 8
1.2. Капельная микрофлюидика 10
1.3. Гидрогели 14
1.4. Синтез гидрогелевых частиц для последующего культивирования клеток на их поверхности 16
1.5. Упаковка клеток в макроэмульсию 18
1.6. Постановка целей и задач исследования 21
ГЛАВА 2. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ 22
2.1. Оборудование, материалы и реагенты 22
2.2. Изготовление микрофлюидных чипов для формирования
капель 29
2.3. Теоретическое описание генерации капель 33
2.4. Экспериментальная установка 35
2.5. Формирование гидрогелевых микрочастиц 38
2.5.1. GelMA 38
2.5.2. Агароза 42
2.6. Культивирование клеток на поверхности гидрогелевых микрочастиц 44
2.7. Упаковка клеток в макроэмульсию 46
2.8. Наблюдение за культивацией клеток в макроэмульсии в
чипах-коллекторах 50
ЗАКЛЮЧЕНИЕ 53
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ


Тема SD-печати тканей и органов актуальна как никогда. Искуственные ткани и органы могут быть использованы не только для восполнения нехватки донорских органов, замещения аномальных или некротических тканей, но и для подбора индивидуальной терапии, клинических тестов, что может существенно сократить тестирование лекарств на животных, а также для фундаментальных исследований клеточных процессов и межклеточного взаимодействия в естественных условиях.
Человеческие органы представляют собой сложные структуры, состоящие из комбинаций различных типов тканей. Клетки этих тканей узко специализированы и сгруппированы вместе для выполнения определенных функций, [1]. Часто клиническое лечение органов ограничено из-за недостатка доступных донорских органов или иммунного отторжения донорской ткани. В поиске альтернатив традиционным стратегиям лечения или замене поврежденных органов тканевая инженерия рассматривается как перспективное решение. SD-печать - это технология быстрого прототипирования и аддитивного производства, используемая для изготовления сложных конструкций с высокой точностью в процессе послойного изготовления.
SD-печать биоактивных систем содержит два типа изготовления каркасов: бесклеточные функциональные каркасы, которые включают биологические компоненты, и загруженные клеткой конструкции. Оба варианта нацелены на производство биосовместимых имплантируемых конструкций для регенерации тканей и органов.
Бесклеточные каркасы, скаффолды, используются в качестве поддерживающей конструкции для биочернил содержащих клетки. Наиболее распространены чернила, в которых клетки смешиваются с гидрогелями, состоящими из макромолекулярного каркаса, придающего свойства твердого тела, и низкомолекулярной среды. Печать может осуществляться с помощью различных техник, таких как выдавливание и образование пузырьков. После печати в скаффолды или на подложку гель полимеризуется химическим или физическим способом, а также при помощи облучения в зависимости от типа геля.
Однако, во всех этих случаях искуственные ткани находятся в контакте с воздухом и требуют дополнительной адаптации к переносу в жидкую среду. Для решения этой задачи были разработаны капельные чернила, в которых жидкие водные капли, содержащие клетки внутри себя, образуются в гидрофобной жидкости. Помимо прочего, капельные чернила обладают таким несомненным преимуществом, как возможность комбинации различных клеток и материалов при печати структур желаемой формы и размеров из неограниченного количества слоев.
Один из варинтов расположения клеток - внутри жидких капель. В этом методе клетки заранее добавляются в жидкую клеточную среду, из которой в дальнейшем будет генерироваться макроэмульсия, представляющая из себя дисперсную систему, образованную из двух и более несмешивающихся жидкостей.

Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


Основные результаты проделанной работы и выводы:
• Разработаны топологии микрофлюидных чипов для формирования макроэмульсии и гидрогелевых микрочастиц требуемых размеров методами капельной микрофлюидики в генераторе эмульсий с фокусировкой потока: диаметром 150-200 мкм для гидрогелевых частиц и 70-100 мкм для капель из жидкой среды, а также чип-коллектор для наблюдения за жизнедеятельностью клеток в одиночных каплях макроэмульсии;
• Методом “мягкой” литографии из полидиметилсилоксана изготовлены экспериментальные образцы чипов для формирования макроэмульсии и полимерных микрочастиц, а также чипов для наблюдения за жизнедеятельностью клеток в одиночных каплях;
• Сформированы сфероиды из термореактивного агарозного биополимера и фотоотверждаемого биополимера GelMA с использованием контроллера давлений и вакуумного насоса, определены тем-пературные условия для генерации. Определены диаметры микрочастиц, доказана высокая монодисперсность микрочастиц, получаемых при помощи метода фокусировки потока как с помощью контроллера давлений, так и вакуумного насоса.


[1] L. G. Zhang et al. 3D Bioprinting for Organ Regeneration // Adv. Healthcare Mater. - 2017 - Vol. 6(1): 1601118
[2] J. Park, I. Wetzel et al. A 3D human triculture system modeling neurodegeneration and neuroinflammation in Alzheimer’s disease // Nature Neiroscience - 2018 - Vol. 21(7): 941-951
[3] H. Kimura, Y. Sakai, T. Fujii Organ/body-on-a-chip based on microfluidic technology for drug discovery // Drug Metabolism and Pharmacokinetics - 2018 - Vol. 3(1): 43-48
[4] X. Du 3D Bio-Printing Review // IOP Conf. Series: Materials Science and Engineering - 2018 - Vol. 301: 012023
[5] S. Derakhshanfar et al. 3D bioprinting for biomedical devices and tissue engineering: A review of recent trends and advances == Bioactive Materials - 2018 - Vol. 3(2): 144-156
[6] A. Ovsianikov et al. Bioink properties before, during and after 3D bioprinting // Biofabrication - 2016 - Vol. 8(3): 032002
[7] H. Fischer et al. Three-dimensional printing of stem cell-laden hydrogels submerged in a hydrophobic high-density fluid == Biofabrication - 2013 - Vol. 5(1): 015003
[8] Keekyoung Kim et al. An Integrated Microfluidic Flow-focusing Platform for On chip Fabrication and Filtration of Cell-laden Microgels // Lab on a Chip - 2019 - Vol. 19(9): 1621-1632
[9] Thebergeetal A.B. Microdroplets in microfluidics: an evolving platform for discoveries in chemistry and biology == Angewandte Chemie International Edition - 2010 - Vol. 49: 5846-5868
[10] Shembekar N., Chaipan C., Utharalaa R. Merten C.A. Droplet-based microfluidics in drug discovery, transcriptomics and high-throughput molecular genetics // Lab Chip - 2016 - Vol. 16: 1314-1331
[11] Menachery A., Graham D., Messerli S.M., Pethig R., Smith P.J. Dielectrophoretic tweezer for isolating and manipulating target cells // IET Nanobiotechnol - 2011 - Vol.
[12] Kim J.H. et al. Droplet Microfluidics for Producing Functional Microparticles // Langmuir - 2014 - Vol. 5(1): 1-7
[13] Chen S. et al. Tunable Janus colloidal photonic crystal supraballs with dual photonic band gaps // J. Mater. Chem. C. - 2014 - Vol. 2: 9431¬9438
[14] Nisisako T., Suzuki H., Hatsuzawa T. Biconvex Polymer Microlenses with Tunable Imaging Properties Designed by Janus Droplet Microfluidics // Micromachines - 2015 - Vol. 6: 1435-1444
[15] Geng Y., Noh J., Drevensek-Olenik I. et al. High-fidelity spherical cholesteric liquid crystal Bragg reflectors generating unclonable patterns for secure authentication // Scientific Reports - 2016 - Vol. 6: 26840
[16] Elvira K.S., Leatherbarrow R., Edel J., deMello A. Droplet dispensing in digital microfluidic devices: Assessment of long-term reproducibility // Biomicrofluidics - 2012 - Vol. 6: 022003
[17] Chong Z.Z., Tan S.H., Ganan-Calvo A.M., Tor S.B., Loha N.H., Nguyen
N.-T. Active droplet generation in microfluidics // Lab Chip - 2016 - Vol. 16(1): 35-38
[18] Nunes J.K., Tsai S.S.H., Wan J., Stone H.A. Dripping and jetting in microfluidic multiphase flows applied to particle and fibre synthesis == J. Phys. D: Appl. Phys. - 2013 - Vol. 46: 114002
[19] Baret J.C. Surfactants in droplet-based microfluidics // Lab Chip - 2012-Vol. 12(3): 422-433
[20] Nisisako T. et al. Synthesis of Monodisperse Bicolored Janus Particles with Electrical Anisotropy Using a Microfluidic Co-Flow System // Adv. Mater - 2006 - Vol. 18: 1152-1156
[21] Shklyaev S. Janus droplet as a catalytic micromotor // EPL - 2015 - Vol. 110: 54002
[22] Элиас Г.-Г. Мегамолекулы: изд. Л.: Химия, 1990. - 272 с.
[23] Qiushui Chen, David A. Weitz Controlled Assembly of Heterotypic cells in a Core-Shell Scaffold: Organ in a Droplet // Lab Chip - 2016 - Vol. 16(8): 1346-1349
[24] Ozbolat I T, Chen H, Yu Y. Development of “Multi-arm Bioprinter” for hybrid biofabrication of tissue engineering constructs // Robotics Computer Integrated Manufacturing - 2014 - Vol. 30(3): 295-304
[25] Kuijpers A J, van Wachem P B, van Luyn M J, et al. In vivo compatibility and degradation of crosslinked gelatin gels incorporated in knitted Dacron == Journal of Biomedical Materials Research - 2015 -Vol. 51(1): 136-145.
[26] Sanders, E. R. Aseptic Laboratory Techniques: Plating Methods // J. Vis. Exp. - 2012 - Vol. 63: e3064
[27] Bonga J. M. and P. von Andreas In Vitro Culture of Trees == Springer Science: Forestry Sciences - 1992 - Vol. 38(1): XVI, 238
[28] T. Maniatis, E. F. Fritsch, J. Sambrook Molecular Cloning - A Laboratory Manual: Chapter 5, protocol 1: N.Y.: Cold Spring Harbor Laboratory, 1982. - 545 p.
[29] David Freifelder, W. H. Freeman and Co. Physical Biochemistry: Applications to Biochemistry and Molecular Biology: San Francisco, 2nd Edition, 1982. - 624 p.
[30] X Leng et al. Agarose droplet microfluidics for highly parallel and efficient single molecule emulsion PCR // Lab on a chip - 2010 - Vol. 949: 413-422
[31] H Stratesteffen, H Fischer GelMA-collagen Blends Enable Drop-on- Demand 3D Printablility and Promote Angiogenesis // Biofabrication -2017-Vol. 9(4): 045002
[32] Chaenyung Cha et al. Microfluidics-Assisted Fabrication of Gelatin- Silica CoreShell Microgels for Injectable Tissue Constructs // Biomacromolecules - 2014 - Vol. 15(1): 283-290
[33] C. J. Ferris and M. Panhuis Bio-ink for on-demand printing of living cells // Biomaterials Science - 2013 - Vol. 1: 224-230
[34] Воюцкий С. С., Курс коллоидной химии: 2-е изд. - изд. М.: Химия, 1976.-512 с.
[35] Абрамзон А. А., Гаевой Г. М. Поверхностно-активные вещества: изд. Л.: Химия, 1979. - 376 с.
[36] С.А. Балезин, Б.В. Ерофеев, Н.И. Подобаев, Основы физической и коллоидной химии: изд. М.: Просвещение., 1975. - 398 с
[37] Cukierman E, Pankov R, Yamada KM. Cell interactions with three-dimensional matrices // Current Opinion in Cell Biology - 2002 - Vol. 14(5): 633-540
[38] J. Pan, C. Abell et al. Quantitative tracking of the growth of individual algal cells in microdroplet compartments // Integr. Biol. - 2011 - Vol. 3(10): 1043-1051
[39] S.-P. Zhao, Qun Fang et al. Three-Dimensional Cell Culture and Drug Testing in a Microfluidic Sidewall-Attached Droplet Array == Analytical Chemistry - 2017 - Vol. 89(19): 10153-10157
[40] Q. Zhang et al. Development of a facile droplet based single¬cell isolation platform for cultivation and genomic analysis in microorganisms // Nature, Scientific reports - 2017 - Vol. 7: 41192
[41] A. I. Segaliny et al. Functional TCR T cell screening using single-cell droplet microfluidics // Lab on a Chip - 2018 - Vol. 18(24): 3733-3749
[42] L. Mazutis, David A Weitz et al. Single-cell analysis and sorting using droplet-based microfluidics // Nature Protocols - 2013 - Vol. 8(5): 870¬891
[43] I. Ozbolat, H. Gudapatia A review on design for bioprinting // Bioprinting - 2016 - Vol. 3-4: 1-14
[44] A. Khademhosseini et al. Cell-laden microengineered gelatin methacrylate hydrogels // Biomaterials - 2010 - Vol. 31(21): 5536-5544
[45] Bukatin A.S., Dubina M.V. et al. Fabrication of high-aspect-ratio microstructures in polymer microfluid chips for in vitro single-cell analysis // Tech. Phys. - 2016 - Vol. 86(10): 125-130
[46] Seemann R., Brinkmann M., Pfohl T., Herminghaus S. Droplet based microfluidics // Rep. Prog. Phys. - 2012 - Vol. 75: 016601
[47] Cao B.Y., Sun J., Chen M., Guo Z.Y. Molecular momentum transport at fluid-solid interfaces in MEMS/NEMS: a review // Int J Mol Sci. - 2009 - Vol. 10(11): 4638-4706
[48] T. Cubaud and T. G. Mason Capillary threads and viscous droplets in square microchannels // Physics of Fluids - 2008 - Vol. 20: 053302
[49] Pilch M., Erdman C.A. Use of breakup time data and velocity history data to predict the maximum size of stable fragments for acceleration- induced breakup of a liquid drop // Int. J. Multiphase Flow - 1987 - Vol. 13(6): 741-757
[50] Евстрапов А.А. и др. Принципы, технологии и устройства капель¬ной микрофлюидикой. Часть 1. // Научное приборостроение - 2015 - том 25, .V3: 65-85
[51] L. Mazutis et al. Single-cell analysis and sorting using droplet-based microfluidics // Nature Protocols - 2013 - Vol. 8(5): 870-891
[52] Shapiro, H.M. Practical Flow Cytometry: 4th edn. Wiley-Liss, 2003. - 736 p.


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ