Введение 4
Глава 1. Биологически активные соединения растений 5
1.1. Природно-трансгенные виды 5
1.2. Генетическая информация Ti плазиды 6
1.3. Род Linaria- распространение видов 10
1.4. Биологически активные соединения рода Linaria 14
1.5. Применение биологически активных соединений 17
1.6. Биологические активности соединений 19
Глава 2. Материалы и методы исследований 26
2.1. Материалы исследований 26
2.1.1. Объекты исследований 26
2.1.2. Питательные среды 2 8
2.1.3. Подготовка образцов для хроматографии 29
2.1.4. Проверка на фунгицидную и антибиотическую активность 29
2.1.5. Проверка соединений на инсектицидную активность 30
2.2. Методы исследований 30
2.2.1. Спиртовая экстракция 31
2.2.2. Метод тонкослойной хроматографии (ТСХ) 31
2.2.3. Метод дисков на культурах 31
2.2.4. Спектрофотометрический метод 32
Глава 3. Результаты и обсуждение 33
Заключение 42
Список использованных источников
Трансгенные растения являются одним из наиболее распространенных объектов исследований в биотехнологии, генетике и селекции растений, а также одной из наиболее популярных биологических тем, обсуждаемых в средствах массовой информации. Это вызвано, с одной стороны, широкими перспективами, которые открывают трансгенные технологии, с другой стороны - опасениями, связанными с возможными последствиями возделывания генетически модифицированных организмов (ГМО).
В настоящее время по данным ISAAA (The International Service for the Acquisition of Agri-biotech Applications) зарегистрировано более 400 коммерческих линий трансгенных растений [85]. Из них более 300 было получено при помощи агробактериальной трансформации или посредством гибридизации форм, полученных с помощью данного метода [11]. Таким образом, данный подход является на сегодняшний день наиболее распространенным для получения трансгенных линий, стабильно наследующих чужеродную ДНК. В основе метода лежит способность агробактерий переносить фрагмент ДНК своей плазмиды, называемый клТ-ДНК, и интегрировать его в хромосому растения хозяина [25]. Он наследуется в ряду клеточных делений [65]. Путем включения в последовательность клТ-ДНК генов, представляющих интерес для исследователя, трансформации такими конструкциями клеток растений и индукции регенерации побегов из трансгенных клеток получено большинство известных ныне трансгенных линий [76].
Вместе с тем были обнаружены примеры появления трансгенных растений в природе. Предковые формы таких растений были трансформированы в природных условиях и не только смогли выжить после трансформации, но и дать начало новым видам, в геномах которых стабильно из поколения в поколение передавалась Т-ДНК, которая получила название клеточной (клТ-ДНК) [86]. Трансгенные формы на сегодняшний день выявлены в пределах родов Nicotiana, Ipomoea, Linaria[23, 34, 51, 56, 57, 79].
Актуальность данной темы заключается в том, что вторичные метаболиты, как известно, не только играют важную роль в адаптации растений к условиям окружающей среды, но и являются одним из основных источников фармацевтически активных препаратов [3, 66].
Так же изучение природно-трансгенных растений может способствовать пониманию функций и эволюционной роли генов клТ-ДНК.
Целью дипломной работы являлся анализ мажорных вторичных метаболитов растений рода Linariaи оценка их биологической активности.
Для достижения данной цели были поставлены следующие задачи:
1. Оценить метаболитный профиль растений рода Linaria,контрастных по содержанию T-ДНК;
2. Провести анализ грубых экстрактов на фунгицидную активность;
3. Установить обладают ли экстракты антирадикальной активностью;
4. Проанализировать фракции на инсектицидную активность;
5. Проанализировать фракции на антибиотическую (антибактериальную) активность.
Данная выпускная квалификационная работа состоит из 3 глав. В первой главе содержится анализ научной литературы по освещаемой теме, во второй - материалы и методы проведенного исследования, в третьей главе представлены результаты исследования.
Объект исследования - растения рода Linaria.
Предмет исследования - выделенные из вышеуказанных растений вторичные метаболиты, обладающие биологической активностью.
Поиск, изучение и использование биологически активных соединений в растениях - важное направление исследований на сегодняшний день, которое способно разрешить многие задачи и вопросы, стоящие перед различными областями биотехнологии.
На сегодняшний день природно-трансгенные формы описаны в пределах трех родов двудольных растений. Наибольший интерес вызывает обсуждение возможных функций клТ-ДНК, включая её влияние на синтез вторичных метаболитов.
Исходя из проанализированной литературы и проведенных нами исследований, мы убедились, что иридоидные соединения характерны для узкого класса растений. Они обладают разнообразными биологическими активностями (противоопухолевой, антимикробной), что делает их весьма перспективными с практической точки зрения их дальнейшего изучения. Однако их детекция вызывает ряд вопросов, т.к. они не светятся под ультрафиолетом. Точную идентификацию затрудняет так же и то, что иридоиды находятся в растении вместе с другими соединениями, такими как флавоноиды.
В соответствии с результатами нашего исследования нами были сделаны следующие выводы:
1. Оценен метаболитный профиль растений рода Linaria,контрастных по содержанию T-ДНК. Выявлено 4 мажорных метаболита, представляющих собой 2 группы соединений - иридоиды и флавоноиды: антирринозид, линарин, антиррид, ацетопекталинарин.
2. Проведенный анализ показал фунгистатическую активность против грибов рода Fusarium.
3. Из рассмотренных экстрактов только экстракты Lgв концентрации 0.5% обладают незначительной антирадикальной активностью.
4. Проанализированные фракции обладают инсектицидной активностью.
5. Антибактериальной активностью обладают экстракты Lvв концентрации 0.5%.
Для более точного выяснения роли клТ-ДНК требуются дополнительные исследования, включающие описание новых примеров горизонтального переноса генов от агробактерий к растениям, а также более глубокое исследование уже описанных видов. Поиск новых примеров трансгенных растений может осуществляться путем применения биоинформатических подходов для анализа отсеквенированных геномов растений, а также молекулярно-биологическими методами.
1. Белоусова Л. С., Денисова Л. В. Редкие растения мира. - М. : Лесная промышленность, 1983. - 344 с.
2. Гаммерман А. Ф., Кадаев Г. Н., Яценко-Хмелевский А. А. Лекарственные растения (Растения-целители) : справ. пособие. - 3-е изд., перераб. и доп. - М. : Высш. шк., 1983. - 400 с. ил.
3. Георгиевский В. П., Комиссаренко П. Ф., Дмитрук С. Е. Биологически активные вещества лекарственных растений. - Новосибирск: Наука, Сиб. отд- ние, 1990. - 333 с.
4. Глик Б., Пастернак Дж. Молекулярная биотехнология: принципы и применение : пер с англ. - М. : Мир, 2002. - 589 с.
5. Дмитриевский Д. И. Технология лекарственных препаратов промышленного производства : учебное пособие. - Харьков : НФаУ, 2005. - Ч.1. Основные процессы и аппараты в фармацевтическом производстве. Экстракционные препараты. - 145 с.
6. Губанов И. А. и др. Linaria vulgaris Mill. - Льнянка обыкновенная //
Иллюстрированный определитель растений Средней России. В 3 т. - М. : Т-во науч. изд. КМК, Ин-т технолог. иссл., 2004. - Т. 3. Покрытосеменные
(двудольные: раздельнолепестные). - С. 181.
7. Кагирова К. С. и др. Особенности фенотипического проявления rol-генов agrobacterim rhizogenes в растениях // Биомика. - 2017. - Том 9 ; № 4. - С. 304¬316.
8. Куприянова Л. А. Род 1328. Льнянка - Linaria // Флора СССР : в 30 т. - М. ; Ленинград : Изд-во АН СССР, 1955. - Т. 22 / ред. тома Б. К. Шишкин, Е. Г. Бобров. - С. 201-202.
9. Лекарственные растения и их применение / [Д. К. Гесь, Н. В. Горбач, Г. Н. Кадаев и др.] ; Науч. ред. засл. деят. наук БССР, акад. И. Д. Юркевич, засл. деят. науки БССР, акад. И. Д. Мишенин ; АН БССР, Ин-т эксперим. ботаники им. В. Ф. Купревича. - 7-е изд. - Минск : Наука и техника, 1976. - 591 с.
10. Ломагина З. В., Беленовская Л. М. Род Linaria // Растительные ресурсы СССР. Цветковые растения, их химический состав, использование: Семейства Caprifoliaceae-Plantagnaceae / Отв. ред. П. Д. Соколов. - Л. : Наука, 1990. - Т. 5. - С. 142-147.
11. Матвеева Т. В. , Сокорнова С. В. Биологические особенности природно-трансгенных растений и их роль в эволюции // Физиология растений. - 2017. - Т. 64 ; № 5. - С. 323-336.
12. Матвеева Т. В. Горизонтальный перенос генов между Agrobacterium spp. и
высшими растениями : автореферат дисс. доктора биологических наук : 03.02.07 / Матвеева Татьяна Валерьевна; [Место защиты: Федеральное
государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Санкт-Петербургский государственный университет]. - СПб., 2013. - 35 с.
13. Матвеева Т. В. Природно-трансгенные растения, как модель для изучения отсроченных экологических рисков возделывания ГМО // Экологическая генетика. - 2015. - T. 13 ; №2. - С. 118-126.
14. Павлова О. А. Нуклеотидные последовательности Linaria dalmatica (L.) P. Mill, приобретенные в результате горизонтального переноса : aвтореф. дис.канд. биол. наук. СПб. : СПбГУ, 2013. - 18 с.
15. Хелдт Г. В. Биохимия растений / Ганс-Вальтер Хелдт ; пер. с англ. М. А. Брейгиной [и др.] ; под ред. А. М. Носова, В. В. Чуба. - 2-е изд. - Москва : Бином. Лаб. знаний, 2014. - 471 с.
16. Akkol E.K, Ercil D. Antinociceptive and anti-inflammatory activities of some Linaria species from Turkey // Pharm Biol. - 2009. - V. 47. - P. 188-194.
17. Angiosperm Phylogeny Group. An update of the Angiosperm Phylogeny Group classification for the orders and families of flowering plants: APG IV // Bot. J. Linn. Soc. - 2016. - V. 181 ; №1. - P. 1-20.
18. Benrezzouk R. et al. Inhibition of human sPLA2 and 5-lipoxygenase activities by two neo-clerodane diterpenoids // Life Sci. - 1999. - V. 64. - PL 205-211.
19. Biere A., Marak H.B., Van Damme J.M.M. Plant chemical defense against herbivores and pathogens: generalized defense or trade-offs? // Oecologia. - 2004. - V. 140. - P. 430-441.
20. Blanco-Pastor J. L., Vargas P., Pfeilm B. E. Coalescent simulations reveal hybridization and incomplete lineage // PLoS ONE. - 2012. - V. 7. - e39089.
21. Bonesi M. et al. In vitro biological evaluation of novel 7-O-dialkylaminoalkyl cytotoxic pectolinarigenin derivatives against a panel of human cancer cell lines // Bioorg Med Chem Lett. - 2008. - V. 18. - P. 5431-5434.
22. Boros C. A., Stermitz F. R. Iridoids. An updated review. Part II. // J. Nat. Prod. - 1990. - V. 53. - P. 1055-1147.
23. Chen K. et al. Deepsequencing of the ancestral tobacco species Nicotiana tomentosiformis reveals multiple T-DNA inserts and a complex evolutionary history of natural transformation in the genus Nicotiana // Plant J. 2014. - V. 80. ; № 4. - P. 669-682.
24. Cheriet T. et al. Chemical constituents and biological activities of the genus Linaria (Scrophulariaceae) // Natural Product Research. - 2015. - Vol. 29 ; № 17. - P. 1589-1613.
25. Chilton M. D. et al. Stable incorporation of plasmid DNA into higher plant cells: the molecular basis of crown gall tumorigenesis // Cell. - 1977. - V. 11 ; № 2. - P. 26371.
26. Degot A.V. et al. Study of Linaria macroura // Chem. Nat. Comp. -1983. -№ 3. - P. 388-389.
27. Dolnik C. et al. Neophytic Coripsermum pallasii (Stev.) (Chenopodiaceae) invading migrating dunes of the southern coast of the Baltic sea // Pol. J. Ecol. - 2011. - № 59(1). - Р. 95-103.
28. El-Naggar L. J., Beal J. L. Iridoids. An updated review. Part I. // J. Nat. Prod. - 1980. - V. 43. - P. 649-707.
29. Ercil D., Sakar M. K. Chemical constituents of Linaria aucheri // Turk. J. Chem. - 2004. - V. 28. - P. 133-139.
30. Esposito P., Scarpati M. L. Iridoids. IX. 10-O-b-glucosylaucubin from Linaria vulgaris // Gazz Chim Ital. - 1970. - V. 100. - P. 836-845. Italian.
31. Feliciano A.S. et al. Neoclerodane diterpenoids from roots of Linaria saxatilis var glutinosa // Phytochem. -1993. - V. 33 ; № 3. м P. 631-633.
32. Fernandez-Mazuecos M., Vargas P. Historical Isolation versus Recent Long¬Distance Connections between Europe and Africa in Bifid Toadflaxes (Linaria sect. Versicolores) // Plos One. - 2011. - V. 6. - e22234.
33. Flores H. E., Hoy M.W., Pickard J. J. Secondary metabolites from root cultures // Trends Biotechnol. - 1987. - V. 5 ; № 3. - P. 64-69.
34. Furner I. J. An Agrobacterium transformation in the evolution of the genus Nicotiana // Nature. - 1986. - V. 319. ; № 6052. - P. 422-427.
35. Gelvin S. B. Chemical signaling between Agrobacterium and its host plant // Molecular signals in plant-microbe communications / Ed. Verma D.P.S. - 1992. - P. 137-167.
36. Gonuz A, Dujger B, Kargioglu M. The morphological, anatomical properties and antimicrobial activity of endemic Linaria corifolia Desf. (Scrophulariaceae) in Turkey // Pak J Biol Sci. - 2005. - V. 8. - P. 220-226.
37. Gordaliza M et al. Cytotoxic activity of neo-clerodane diterpenoids // Bioorg Med Chem Lett. - 1997. - V. 7. - P. 1649-1654.
38. Harborne J. B., Valdes B. Identification of scutellarein 40-methyl ether in Linaria aeruginea // Phytochem. Rev. - 1971. - V. 10. - P. 2850-2851.
39. Hong S. B. et al. A T-DNA gene required for agropine biosynthesis by transformed plants is functionally and evolutionary related to a Ti plasmid gene required for catabolism by Agrobacterium strains // J. Bacteriol. - 1997. - V. 179. - P. 4831-4840.
40. Hsu K. J. et al. History of the Mediterranean salinity crisis // Nature. - 1977. - V. 267. - P. 399-403.
41. Hua H, Sun J, Li X. [Flavonoids from yellow toadflax (Linaria vulgaris)]. // Chin Tradit Herb Drugs. - 1999. - V. 30. - P 332-334. Chinese.
42. Intrieri M. C., Buiatti M. The horizontal transfer of Agrobacterium rhizogenes genes and the evolution of the genus Nicotiana // Mol. Phylogenet. Evol. - 2001. - V. 20. - P. 100-110.
43. Janakat S., Al-Merie H. Evaluation of hepatoprotective effect of Pistacia lentiscus, Phillyrea latifolia and Nicotiana glauca // J. Ethnopharmacol. - 2002. - V. 83 ; № 1-2. - P. 135-138.
44. Jung U.S. et al.. Cosmetic composition containing Linaria japonica extract with antioxidant and antiinflammatory effects. - Repub Korea, 2007. - 782972 B1 1207. Korean.
45. Kelemen L, Scedo C. Data about the polyphenol content of Linaria vulgaris Mill species // Note I. Farmacia (Bucharest, Romania). - 2003. - V. 51. - P. 86-89.
46. Kitagawa I, et al. On the constituents of Linaria japonica Miq. II. The structure of linaridial, a new cis-clerodane-type diterpene dialdehyde // Chem. Pharm. Bull. -
1976. - V. 24 ; № 2. - P. 294-302.
47. Kitagawa I., Yoshihara M., Kamigauchi T. Linarienone, a newcis-clerodane-type diteppene from the subterranean part of Linaria japonica Miq. // Tetrahedron Lett. -
1977. - V. 14. - P. 1221-1224.
48. Kitagawa I., Yoshihara M., Tani T., Yosioka I. Linaridial, a new cis-clerodane-type diterpene dialdehyde, fromLinaria japonica Miq. // Tetrahedron Lett. - 1975. - V. 1. - P. 23-26.
49. Kuang K. R., Lu A. M. Flora of China. - Beijing, China // Beijing Science and Technology Press. - 2005. - V. 67.
50. Kuptsova L. P., Ban’kovskii A. I. A new flavonoid fromsome species of toadflax // Khim. Prir. Soedin. - 1970. - V. 6 ; № 1. - P. 128-129.
51. Kyndt T. et al. The genome of cultivated sweet potato contains Agrobacterium T- DNAs with expressed genes: An example of a naturally transgenic food crop // P. Natl. Acad. Sci. USA. - 2015. - V. 112. ; № 18. - P. 5844-5849.
52. Marak H. B., Biere A., Van Damme J. M. M. Two herbivore-deterrent iridoid glycosides reduce the in vitro growth of a specialist but not of a generalist pathogenic fungus of Plantago lanceolata L. // Chemoecol. - 2002. - V. 12. - P. 185-192.
53. Marak H. B., Biere A., Van Damme J. M. M. Systemic, genotype-specific induction of two herbivore-deterrent iridoid glycosides in Plantago lanceolata L. in response to fungal infection by Diaporthe adunca (Rob.) Niessel. // J. Chem. Ecol. - 2002. - V. 28 ; № 12. - P. 2429-2448.
54. Maron J. L. et al. Invasive plants escape from suppressive soil biota at regional scales // J. Ecol. - 2014. - V. 102. - P. 19-27.
55. Matveeva T., Sokornova S. Agrobacterium rhizogenes Mediated Transformation of Plants for Improvement of Yields of Secondary Metabolites // Reference Series in Phytochemistry. Bioprocessing of Plant in vitro Systems / Eds. Pavlov A., Bley T. - Springer, 2016. - P. 1-42.
56. Matveeva T.V. et al. Horizontal gene transfer from genus Agrobacterium to the plant Linaria in nature // Mol. Plant. Microbe Interact. - 2012. - V. 25. - P. 1542-1551.
57. Matveeva T.V. Naturally transgenic plants as a model for the study of the delayed environmental risks of GMO cultivation // Russ. J. Genet. - 2016. - V. 6 ; № 6. - P. 698-704.
58. Matveeva T. V., Kosachev P. A. Sequences homologous to Agrobacterium rhizogenes rolC in the genome of Linaria acutiloba // International conference on frontiers of environment, energy and bioscience (ICFEEB 2013) / Ed. Zheng D. - Lancaster, DES tech Publications Inc., 2013. - P. 541-546.
59. Matveeva T. V., Lutova L. A. Horizontal gene transfer from Agrobacterium to plants // Front. Plant. Sci. - 2014. - V. 5. - P. 326.
60. Matveeva T. V., Sokornova S. V., Lutova L. A. Influence of Agrobacterium oncogenes on secondary metabolism of plants // Phytochem. Rev. - 2015. - V. 14. - P. 541.
61. Mohajjel-Shoja H. et al. Biological activity of the Agrobacterium rhizogenes-derived trolC gene of Nicotiana tabacum and its functional relation to other plast genes // Mol. Plant. Microbe Interact. - 2011. - V. 24 ; № 1. - P. 44-53.
62. Nicoletti M. et al. A chemosystematic study of Scrophulariaceae iridoid glycosides // G. Bot. Ital. - 1988. - V. 122 ; № 1-2. - P. 13-24.
63. Nikolova-Damyanova B. et al. Quantitative thin layer chromatography of iridoid and flavonoid glucosides in species of Linaria Phytochem Anal. - 1994. - № 5. - Р. 38¬40.
64. Oinonen P.P. et al. Linarin, a selective acetylcholinesterase inhibitor from Mentha arvensis // Fitoterapia. - 2006. - V. 77. - P. 429-434.
65. Otten L. et al. Mendelian transmission of genes introduced into plants by the Ti plasmids of Agrobacterium tumefaciens // MGG. - 1981. - V. 183 ; № 2. - P. 209¬213.
66. Rao S. R., Ravishankar G. A. Plant cell cultures: Chemical factories of secondary metabolites. // Biotechnol Adv. - 2002. - V. 20. - P. 101-153.
67. Rhodes M. J. C. et al. Secondary product formation using Agrobacterium rhizogenes-transformed “hairy root” cultures // News Lett. - 1987. - V. 53. - P. 2-15.
68. Sampaio-Santos M. I., Kaplan M. A. C. Biosynthesis significance of iridoids in chemosystematics // J. Braz. Chem. Soc. - 2001. - V. 12 ; № 2. - P. 144-153.
69. Schmulling T. et al. Hormonal content and sensitivity of transgenic tobacco and potato plants expressing single rol genes of Agrobacterium rhizogenes T-DNA // Plant J. - 1993. - P. 371-382.
70. Smirnova I. P. et al. Structure of acetylpectolinarin, a newacylated flavonoid from plants of the genus Linaria // Chem. Nat. Comput. - 1974. - V. 10. ; № 3. - P. 320.
71. Sticher O. Plant monoterpenoids diterpenoids and sesquiterpenoids with pharmacological or therapeutical activity // New natural products and plant drugs with pharmacological, biological or therapeutical activity / Eds. Wagner H, Wolff P. - Berlin: Springer, 1977. - P. 148.
12. Stojanov N. Our Medicinal Plants, Part II / Ed. Stojanov N. - Sofia: Nauka i Iskustvo, 1973. - 99 p.
73. Suzuki K., Yamashita I., Tanaka N. Tobacco plants were transformed by Agrobacterium rhizogenes infection during their evolution // Plant J. - 2002. -V. 32. - № 5. - P 775-787.
74. Tundis R. et al. Iridoid glycosides from Linaria multicaulis (L.) Miller subsp. multicaulis (Scrophulariaceae) // Biochem Syst Ecol. - 2008. - V. 36. - P. 142-145.
75. Tundis R. et al. Potential antitumor agents: flavones and their derivatives from Linaria reflexa Desf. Bioorg // Med Chem Lett. - 2005. - V. 15. - P. 4757-4760.
76. Vain P. Thirty years of plant transformation technologydevelopment // Plant Biotechnol. J. - 2007. - V. 5. - P. 221-229.
77. Venditti A., Serrilli A. M., Di Cecco M. Phytochemical analysis of Plantago sempervirens from Majella National Park // Nat. prod. res. - 2012. - V. 26. ; № 2. - P. 2035-2039.
78. Vrchovska V. Assessing the antioxidative properties and chemical composition of Linaria vulgaris infusion // Nat Prod Res. - 2008. - V. 22. - P. 735-746.
79. White F.F. et al. Sequence homologous to Agrobacterium rhizogenes T-DNA in the genomes of uninfected plants // Nature. - 1983. - V. 301. - P. 348-350.
80. Widhalm J. R., Rhodes D. Biosynthesis and molecular actions of specialized 1,4- naphthoquinone natural products produced by horticultural plants // Horticulture Research. - 2016. - V. 3. - P. 16046.
81. Воинов Н. А., Волова Т. Г. Трансгенные растения и животные как
биореакторы // MEDBE.RU. - 2017 - 27 дек. - URL:
http://medbe.ru/materials/problemy-i-metody-biotekhnologii/transgennye-rasteniya-i-zhivotnye-kak-bioreaktory/?PAGEN_2=2 (дата обращения: 22.04.2018).
82. Льнянка обыкновенная (Дикий лен : [Электронный ресурс] : Linaria vulgaris// U-LEKAR.RU. - Режим доступа:http://www.u-lekar.ru/content/view/649/2/ (дата обращения: 25.04.2018).
83. Сокорнова C. В. и др. Микобиота растений рода Linaria,содержащих в геноме
клТ-ДНК [Электронный ресурс] // ResearchGate. - 2015. - май. - URL:
https://www.researchgate.net/publication/268745875_MIKOBIOTA_RASTENIJ_RODA_LINARIA_SODERZASIH_V_GENOME_klT-DNK (дата обращения: 25.04.2018).
84. Эндокринол крем-гель [Электронный ресурс] // Эвалар : [официальный сайт компании]. - URL: https://shop.evalar.ru/catalog/item/endokrinol-krem-gel/ (дата обращения: 20.03.2018).
85. ISAAA: / International Service for the Acquisition of Agri-biotech Applications. - 2018. - URL: http://www.isaaa.org/ (дата обращения: 15.03.2018).
86. Linaria algarviana Chav// FLORA-ON /Sociedade Portuguesa de Botanica. - 2012-2018. - URL: http//flora-on.pt/(датаобращения: 17.03.2018).
87. Mascenko, N. et al. Specific Action Of Iridoid Glycosides From Linaria Vulgaris
Mill. Depending On The Species // Agrobiodiversity for Improving Nutrition, Health and Life Quality. - 2017. - № 1. - URL:
http://agrobiodiversity.uniag.sk/scientificpapers/article/view/94 (дата обращения: 22.04.2018).