Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Исследование таксономической структуры почвенного и ризосферного микробиомов различных сортов Triticum aestivum (Пшеница мягкая) и Secale cereale (Рожь посевная), культивируемых в двух типах почв

Работа №70660

Тип работы

Бакалаврская работа

Предмет

биология

Объем работы51
Год сдачи2016
Стоимость4760 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
238
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


Введение 4
Обзор литературы 7
1. История развития исследований микробного сообщества ризосферы.
Ассоциативные микроорганизмы 7
2. Развитие метагеномного подхода к исследованию биоразнообразия 10
3. Биоинформационный анализ данных по таксономической структуре микробиомов 15
4. Особенности исследования ризосферного микробиома 17
5. Современные исследования ризосферного микробиома 18
Материалы и методы исследования 22
1. Объекты исследования 22
2. Методы исследования 23
2.1. Постановка вегетационного опыта 23
2.3. Выделение и очистка ДНК 23
2.3. Биоинформационный анализ данных 24
Результаты и обсуждение 26
1. Биоинформационный анализ результатов секвенирования 26
нуклеотидных последовательностей 26
2. Метагеномная характеристика ризосферного эффекта 31
2.1. Анализ показателей альфа-разнообразия 31
2.2. Анализ показателей бета-разнообразия (кластерный анализ РСоА) 32
2.3. Анализ таксономической структуры сообществ 36
Заключение 42
Выводы 43
Список литературы

Разнообразие микроорганизмов, ассоциированных с корнями растений, огромно и
составляет десятки тысяч видов. Однако лишь недавно была признана колоссальная роль
микробиома в жизни растения и выдвинута идея о рассмотрении его в качестве второго
генома растения (Berendsen et al., 2012). Понимание механизмов формирования и функциональной нагрузки ризосферного микробиома позволит разработать эффективные системы повышения продуктивности растений, обогатит наши знания в области экологии
растительно-микробных взаимодействий.
Первые работы в области растительно-микробных взаимодействий появились около 150 лет назад, большая часть из них была направлена на поиски микробиологических
факторов продуктивности культурных растений. Прежде всего ученых интересовали
азотфиксирующие, рост стимулирующие микроорганизмы, а также патогенная микробиота. Особое внимание уделялось изучению морфологических и физиологических свойств
полученных штаммов и их влияния на растение, предоставляющее ризосферную нишу.
Однако вскоре стало понятно, что в ризосфере существуют так называемые некультивируемые бактерии и археи, присутствие которых невозможно детектировать традиционными методами культивирования на питательных средах (Hugenholtz et al., 1998; Oliver
et al., 2005; Handelsman et al., 2004). Появление новых методов, основанных на секвенировании выделяемых из среды нуклеотидных последовательностей, позволило перейти к
анализу этой многочисленной группы микроорганизмов (по разным оценкам некультивируемые микроорганизмы могут составлять от 90% до 99% состава сообщества). При исследовании некультивируемой части микробного сообщества, объектом исследования
становится метагеном – совокупный генетический материал экосистемы (Vogel et al.,
2009; Riesenfeld et al., 2004). Последующий анализ позволяет в зависимости от задач исследования произвести оценку таксономической и/или функциональной структуры сообщества посредством выбора ген-специфичных праймеров и/или секвенирования полноразмерных геномов. В качестве филогенетического маркера для прокариотов в подавляющем большинстве работ используется структура вариабельных участков гена 16S рРНК.
Использование метагеномных технологий при исследовании сообществ ризосферы
имеет ряд преимуществ, связанных с возможностью более полной детекции состава сообщества, меньшей трудоемкостью и быстротой анализа. Кроме того, метагеномные методы
позволяют проводить исследование биологических объектов на генном и геномном уровне, исследовать метаболические пути, вовлеченные во взаимодействие отдельных компонентов микробного сообщества и предполагать их функции. Все это позволяет постепенно5
выходить на системный уровень понимания закономерностей функционирования почвенных микробных сообществ. В перспективе ожидается появление проектов по комплексному исследованию метагенома, транскриптома, протеома, метаболома, что обеспечит
дальнейшее развитие идеи объединенного анализа.
На данный момент эта тема чрезвычайно актуальна в зарубежной науке – организованы проекты по изучению ризосферного микробиома модельных объектов, таких как
Arabidopsis thaliana, активно изучается ризосферный микробиом сельскохозяйственнозначимых культур – Oryza sativa, Zea mays, Lactuca sativa.
Однако метагеномный подход к исследованию разнообразия находится сегодня на
стадии становления и ставит перед учеными ряд сложных задач, основными из которых
являются воспроизводимость данных секвенирования, зависящая от глубины секвенирования и числа повторностей, а также биологическая интерпретация получаемых результатов. Поскольку метагеномные исследования ризосферного микробиома практически не
представлены в отечественной научной литературе, одной из задач данного исследования
стал анализ воспроизводимости данных высокопроизводительного секвенирования при
проведении такого рода анализа.
Новизна данной работы также обусловлена выбранными объектами исследования -
ризосферными комплексами, наиболее характерными для территории России и состоящими из почв и сортов культурных растений, типичных для российского агропромышленного комплекса (АПК).
Таким образом, целью данной работы является исследование таксономической
структуры почвенного и ризосферного микробиомов различных сортов Triticum aestivum
(Пшеница мягкая) и Secale cereale (Рожь посевная), культивируемых в черноземной и
дерново-подзолистой почвах.

Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


1. Показатели альфа разнообразия снижались в ризосферных почвах по сравнению с контрольными. Достоверные различия в показателях альфа разнообразия были вы-явлены для ризосфер пшеницы на черноземной почве.
2. В ходе анализа бета разнообразия было показано, что определяющее влияние на формирование ризосферного микробиома оказывает тип почвы, вид и сорт расте-ния оказывают заметно меньшее воздействие.
3. В таксономическом составе контрольных почвенных и ризосферных микробиомов
доминировали бактерии из фил Proteobacteria, Actinobacteria, Bacteroidetes,
Acidobacteria, Verrucomicrobia, Planctomycetes и археи из филы Crenarchaeota. В сообществе ризосфер обоих растений увеличивалась доля бактерий из фил Proteobacteria и Bacteroidetes.
4. В случае дерново-подзолистой почвы, в ризосфере ржи достоверно увеличивают свою долю микроорганизмы из групп Comamonadaceae, Solirubrobacterales, и Gaiellaceae, в ризосфере пшеницы - Gaiellaceae и неидентифицированные предста-вители класса Acidobacteria-6. Микроорганизмы, относящиеся к группе Acidobacteria-6, также увеличивают свою долю в ризосфере ржи и пшеницы, куль-тивируемых на черноземе.
5. Были обнаружены микроорганизмы, которые достоверно изменяют свою долю как в ризосфере ржи, так и пшеницы среди них бактерии из семейств Oxalobacteraceae, Gaiellaceae и класса Acidobacteria-6. На обоих типах почв наблюдалось снижение доли бактерий из семейства Oxalobacteraceae в почвах ризосферы обоих растений по сравнению с контрольной почвой.



1. Андронов Е.Е., Пинаев А.Г., Першина Е.В., Чижевская Е.П. Научно¬методические рекомендации по выделению высокоочищенных препаратов ДНК из объектов окружающей среды. СПб, 2011
2. Боронин А. М. Ризосферные бактерии рода Pseudomonas, способствующие росту и развитию растений //Соросовский образовательный журнал. - 1998. - Т. 10. - С. 25-31.
3. Добровольский Г. В. Почвы речных пойм центра Русской равнины. 2-е изд., пе- рераб. и доп.-М.: Изд-во МГУ, 2005.-293 с. - 2005.
4. Доросинский Л. М. Клубеньковые бактерии и нитрагин. Л.: Колос, 1970. 191С.
5. Еникеева М. Г., Руднева В. Л., Сизова Т. П. О микофлоре сосняков разных типов.
1. видовой состав и представленность видов //Vestnik. - 1960. - С. 100.
6. Жебрак И.С., Скоробогатова Р.А., Кожевин П.А. Динамикапопуляции Corynebacterium glutamicum в почве и корневой зоне растений //Вест. МГУ им. М.В. Ломоносова. Сер 17. Почвоведение, - 1998. С48-51.
7. Жуковская П. Н. Состав ризосферных микроорганизмов культурных растений //Труды Всесоюзного научно-исследовательского института удобрений, агротех¬ники и агропочвоведения им. К. К-Гедройца. - 1949. - №. 29.
8. Ивлев А. М. Эволюция почв // Владивосток. - Изд. Дальневосточного универси- тета.-2005.-97 с. - 2005.
9. Израильский В.П., Рунов Е.В., Бернард В.В. Клубеньковые бактерии и нитрагин. М.: Сельхозгиз, 1933. 232 с.
10. Калакуцкий Л. В., Парийская А. Н. Азотфиксирующие симбиозы актиномицетов с растениями //Изв. АН СССР. Сер.биол. - 1982. - №. 2. - С. 255-270.
11. Кордюм В.А., Мошинец Е.В., Цапенко М.В., Адамчук-Чалая Н.И., Иродов Д.М., Андриенко В.И. Микроорганизмы ризосферы - полный мониторинг // Почвове¬дение. - 2008. - Т. 9, № 1-2. - С. 53-63.
12. Корляков К.А., Арсентьева Н.Ю., Нохрин Д.Ю. Влияние сложности рельефа сте¬кол на формирование монокультур микроорганизмов // Вестник уральской меди¬цинской академической науки, 2011, № 4/1 (38). С. 35
13. Куан Ч. М., Егоров М. А. исследование ростостимулирующей активности штам¬ма рода Bacillus, выделенного из клубеньков Vigna cylindrical //Журнал издается с 1999 г. - 1999. - С. 106.
14. Мишустин Е. Н. Географический фактор, почвенные типы и их микробное насе¬ление //Микрофлора почв северной и средней части СССР. М.: Наука. - 1966. - С. 3-23.
15. Полянская Л. М., Оразова М. Х., Звягинцев Д. Г. Гетерогенность корня как ме-стообитания микроорганизмов //Микробиология. - 1994. - Т. 63. - №. 4. - С. 706¬714.
16. Першина Е.В., Андронов Е.Е., Самосоров Г.Г., Семенов А.Н. Генное досье мик¬робиома //Наука из первых рук . 2013. №1
17. Порозов, Ю., Дольник, А., Тамазян, Г., Першина, Е., Вяткина, К., Пинаев, А. Г., & Андронов, Е. Е. Концепция универсальной ТАКСОНОМИЧЕСКОЙ таксоно¬мической системы бактерий: эволюционное пространство гена 168-рРНК V. 1.0. //Сельскохозяйственная биология. - 2012. - №. 5.
18. Проворов Н. А., Воробьев Н. И. Генетические основы эволюции растительно-микробного симбиоза //ИА Тихоновича. СПб.: Информ-Навигатор. - 2012.
19. Рыбчин В.Н. Основы генетической инженерии. - Минск: Высшая школа, 1986.
20. Сергеева Р. В. Основные формы ризосферных бактерий и динамика их развития на поверхности корней помидоров //Труды Плодоовощного ин-та им. Мичурина. - 1960. - Т. 11. - С. 169-171.
21. Тихонович И. А., Проворов Н. А. Симбиозы растений и микроорганизмов: моле-кулярная генетика агросистем будущего //СПб.: Изд-во СПбГу. - 2009.
22. Умаров М. М. Ассоциативная азотфиксация в биогеоценозах //Почвенные орга¬низмы как компонент биогеоценоза. М.: Наука. - 1984. - С. 185-199.
23. Шапошников А.И., Белимов А.А., Кравченко Л.В., Виванко Д.М. Взаимодейст¬вие ризосферных бактерий с растениями: механизмы образования и факторы эффективности ассоциативных симбиозов // Сельскохо-зяйственная биология. 2011. № 3. C. 16-22.
24. Шильникова В. К. Процесс инфицирования бобового растения клубеньковыми бактериями //Биол. азот в сельском хозяйстве СССР.-М.: Наука. - 1989. - С. 46¬52.
25. Широких А. А., Мерзаева О. В., Широких И. Г. Методические подходы к изуче¬нию микроорганизмов прикорневой зоны растений (обзор)
//Сельскохозяйственная биология. - 2007. - №. 1.
26. Яковлева З. М., Мишустин Е. Н. Бактероиды клубеньковых бактерий. - Наука, 1975. 172С.
27. Arkhipova T. N. et al. Ability of bacterium Bacillus subtilis to produce cytokinins and to influence the growth and endogenous hormone content of lettuce plants //Plant and Soil. - 2005. - Т. 272. - №. 1-2. - С. 201-209.
28. Badri D. V., Vivanco J. M. Regulation and function of root exudates //Plant, Cell & Environment. - 2009. - Т. 32. - №. 6. - С. 666-681.
29. Bais H. P. et al. The role of root exudates in rhizosphere interactions with plants and other organisms //Annu. Rev. Plant Biol. - 2006. - Т. 57. - С. 233-266.
30. Bates S. T. et al. Examining the global distribution of dominant archaeal populations in soil //The ISME journal. - 2011. - Т. 5. - №. 5. - С. 908-917.
31. Berendsen R. L., Pieterse C. M. J., Bakker P. A. H. M. The rhizosphere microbiome and plant health //Trends in plant science. - 2012. - Т. 17. - №. 8. - С. 478-486.
32. Bockelmann U., Lunsdorf H., Szewzyk U. The detection of extracellular DNA as a structural component in the EPS of bacterial strains //Geophys Res Abstr. - 2007. - Т.
9. - С. 01325.
33. Bonito G. et al. Plant host and soil origin influence fungal and bacterial assemblages in the roots of woody plants //Molecular ecology. - 2014. - Т. 23. - №. 13. - С. 3356¬3370.
34. Bulgarelli D. et al. Revealing structure and assembly cues for Arabidopsis root¬inhabiting bacterial microbiota //Nature. - 2012. - Т. 488. - №. 7409. - С. 91-95.
35. Bulgarelli D. et al. Structure and functions of the bacterial microbiota of plants //Annual review of plant biology. - 2013. - Т. 64. - С. 807-838.
36. Caporaso J. G. et al. QIIME allows analysis of high-throughput community sequencing data //Nature methods. - 2010. - Т. 7. - №. 5. - С. 335-336.
37. Chaparro J. M., Badri D. V., Vivanco J. M. Rhizosphere microbiome assemblage is af¬fected by plant development //The ISME journal. - 2014. - Т. 8. - №. 4. - С. 790-803.
38. Cohan F. M. What are bacterial species? //Annual Reviews in Microbiology. - 2002. - Т. 56. - №. 1. - С. 457-487.
39. Cohan F. M., Perry E. B. A systematics for discovering the fundamental units of bacte¬rial diversity //Current Biology. - 2007. - Т. 17. - №. 10. - С. R373-R386.
40. Costa R. et al. Cultivation-independent analysis of Pseudomonas species in soil and in the rhizosphere of field-grown Verticillium dahliae host plants //Environmental micro¬biology. - 2006. - Т. 8. - №. 12. - С. 2136-2149.
41. Branton D. et al. The potential and challenges of nanopore sequencing //Nature bio¬technology. - 2008. - Т. 26. - №. 10. - С. 1146-1153.
42. DeSantis T. Z. et al. Greengenes, a chimera-checked 16S rRNA gene database and workbench compatible with ARB //Applied and environmental microbiology. - 2006. - Т. 72. - №. 7. - С. 5069-5072.
43. Diepeningen Van A. D. et al. DGGE fragments oscillate with or counter to fluctuations in cultivable bacteria along wheat roots //Microbial ecology. - 2005. - Т. 50. - №. 4. - С. 506-517.
44. Dillewijn Pieter, van. Plant - dependent active biological containment system for recombinant rhizobacteria / Dillewijn Pieter van, Vilchez Susana, A. Paz Jose, L. Ramos Juan // Environ. Microbiol. - 2004. - Vol. 6.- № 1. - p 88 - 92.
45. Dodds P. N., Rathjen J. P. Plant immunity: towards an integrated view of plant¬pathogen interactions //Nature Reviews Genetics. - 2010. - Т. 11. - №. 8. - С. 539¬548.
46. Dominguez-Bello M. G. et al. Delivery mode shapes the acquisition and structure of the initial microbiota across multiple body habitats in newborns //Proceedings of the National Academy of Sciences. - 2010. - Т. 107. - №. 26. - С. 11971-11975.
47. Edwards J. et al. Structure, variation, and assembly of the root-associated microbiomes of rice //Proceedings of the National Academy of Sciences. - 2015. - Т. 112. - №. 8. - С. E911-E920.
48. Fogg, G. E., Stewart, W. D. P., Fay, P., & Walsby, A. E. London and New York. The blue-green algae. Academic Press, London, 1973, 459 pp
49. Forney L.J., Zhou X., Brown C.J. Molecular microbial ecology: land of the one-eyed king // Current Opinion in Microbiology . 2004. № 7 P. 210-220
50. Fu, W. J., Stromberg, A. J., Viele, K., Carroll, R. J., & Wu, G. Statistics and bioinfor¬matics in nutritional sciences: analysis of complex data in the era of systems biology //The Journal of nutritional biochemistry. - 2010. - Т. 21. - №. 7. - С. 561-572.
51. Gilbert J. A. et al. Meeting report: the terabase metagenomics workshop and the vision of an Earth microbiome project //Standards in genomic sciences. - 2010. - Т. 3. - №.
3. - С. 243-248.
52. Hammer O., Harper D., Ryan P. PAST: Paleontological Statistics Software Package for education and data analysis.// Palaeontolia Electronica 4. - 2001.
53. Handelsman J, Rondon MR, Brady SF, Clardy J, Goodman RM. Molecular biological access to the chemistry of unknown soil microbes: a new frontier for natural products //Chemistry & biology. - 1998. - Т. 5. - №. 10. - С. R245-R249.
54. Handelsman J. Metagenomics: application of genomics to uncultured microorganisms //Microbiology and molecular biology reviews. - 2004. - Т. 68. - №. 4. - С. 669-685.
55. Hardoim P. R., van Overbeek L. S., van Elsas J. D. Properties of bacterial endophytes and their proposed role in plant growth //Trends in microbiology. - 2008. - Т. 16. - №.
10. - С. 463-471.
56. Hiltner L. Uber neuere Erfahrungen und Probleme auf dem Gebiete der Bodenbakteriologie unter besonderer Berucksichtigung der Grundungung und Brache //Arbeiten der Deutschen Landwirtschaftlichen Gesellschaft. - 1904. - Т. 98. - С. 59¬78.
57. Hodkinson B. P., Grice E. A. Next-generation sequencing: a review of technologies and tools for wound microbiome research //Advances in wound care. - 2015. - Т. 4. - №. 1. - С. 50-58.
58. http://greengenes.lbl.gov/cgi-bin/nph-index.cgi
59. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/
60. https://rdp.cme.msu.edu/
61. http://silva.se/
62. http://qiime.org/
63. Hugenholtz P., Goebel B. M., Pace N. R. Impact of culture-independent studies on the emerging phylogenetic view of bacterial diversity //Journal of bacteriology. - 1998. - Т. 180. - №. 18. - С. 4765-4774.
64. inceoglu O. et al. Comparative analysis of bacterial communities in a potato field as determined by pyrosequencing //PLoS One. - 2011. - Т. 6. - №. 8. - С. e23321..
65. inceoglu O. et al. Effects of plant genotype and growth stage on the betaproteobacterial communities associated with different potato cultivars in two fields //Applied and En-vironmental Microbiology. - 2010. - Т. 76. - №. 11. - С. 3675-3684. Kalisky T., Quake S. R. Single-cell genomics //Nature methods. - 2011. - Т. 8. - №. 4. - С. 311¬314.
66. Kennedy J., Marchesi J. R., Dobson A. D. W. Marine metagenomics: strategies for the discovery of novel enzymes with biotechnological applications from marine environ¬ments //Microbial cell factories. - 2008. - Т. 7. - №. 1. - С. 1.
67. Levy-Booth D. J. et al. Cycling of extracellular DNA in the soil environment //Soil Bi¬ology and Biochemistry. - 2007. - Т. 39. - №. 12. - С. 2977-2991.
68. Long S. R. Rhizobium-legume nodulation: life together in the underground //Cell. - 1989. - Т. 56. - №. 2. - С. 203-214.
69. Lorenz M. G., Wackernagel W. Adsorption of DNA to sand and variable degradation rates of adsorbed DNA //Applied and environmental microbiology. - 1987. - Т. 53. - №. 12. - С. 2948-2952.
70. Lozupone C., Knight R. UniFrac: a new phylogenetic method for comparing microbial communities //Applied and environmental microbiology. - 2005. - Т. 71. - №. 12. - С. 8228-8235.
71. Lozupone C. A., Knight R. Global patterns in bacterial diversity //Proceedings of the National Academy of Sciences. - 2007. - Т. 104. - №. 27. - С. 11436-11440.
72. Lundberg D. S. et al. Defining the core Arabidopsis thaliana root microbiome //Nature.
- 2012. - Т. 488. - №. 7409. - С. 86-90.
73. Mendes R. et al. Deciphering the rhizosphere microbiome for disease-suppressive bac¬teria //Science. - 2011. - Т. 332. - №. 6033. - С. 1097-1100.
74. Neilands J. B. Siderophores: structure and function of microbial iron transport com¬pounds //Journal of Biological Chemistry. - 1995. - Т. 270. - №. 45. - С. 26723¬26726.
75. Nielsen K. M., Calamai L., Pietramellara G. Stabilization of extracellular DNA and proteins by transient binding to various soil components //Nucleic acids and proteins in soil. - Springer Berlin Heidelberg, 2006. - С. 141-157.
76. Oliver J. D. et al. The viable but nonculturable state in bacteria //J Microbiol. - 2005. - Т. 43. - №. 1. - С. 93-100.
77. Pace N. R. Mapping the tree of life: progress and prospects //Microbiology and Molec¬ular Biology Reviews. - 2009. - Т. 73. - №. 4. - С. 565-576.
78. Palmer C. et al. Development of the human infant intestinal microbiota //PLoS Biol. - 2007. - Т. 5. - №. 7. - С. e177.
79. Paul, E. A. & Clark, F. E. Soil microbiology and biochemistry; Academic Press, San Diego, - 1989.
80. Peng J. et al. Graphene quantum dots derived from carbon fibers //Nano letters. - 2012.
- Т. 12. - №. 2. - С. 844-849.
81. Peiffer J. A. et al. Diversity and heritability of the maize rhizosphere microbiome under field conditions //Proceedings of the National Academy of Sciences. - 2013. - Т. 110.
- №. 16. - С. 6548-6553.
82. Ranjan R. et al. Isolation of novel lipolytic genes from uncultured bacteria of pond wa¬ter //Biochemical and biophysical research communications. - 2005. - Т. 335. - №. 1.
- С. 57-65.
83. Redford A. J. et al. The ecology of the phyllosphere: geographic and phylogenetic vari¬ability in the distribution of bacteria on tree leaves //Environmental microbiology. -
2010. - Т. 12. - №. 11. - С. 2885-2893.
84. Richter D. D., Markewitz D. How deep is soil? //BioScience. - 1995. - Т. 45. - №. 9. - С. 600-609.
85. Riesenfeld C.S., Schloss P .D., Handelsman J. Metagenomics, genomic analysis of microbial communities // Annual Review of Genetics. 2004. № 38. P. 525-552.
86. Rodriguez, H. Phosphate solubilizing bacteria and their role in plant growth promotion / Rodriguez H., Fraga R. // Biotech. Adv. - 1999. - Vol. 17. - P. 319-339.
87. Romanowski G., Lorenz M. G., Wackernagel W. Adsorption of plasmid DNA to min¬eral surfaces and protection against DNase I //Applied and Environmental Microbiolo¬gy. - 1991. - Т. 57. - №. 4. - С. 1057-1061.
88. Schlaeppi K. et al. Quantitative divergence of the bacterial root microbiota in Ara- bidopsis thaliana relatives //Proceedings of the National Academy of Sciences. - 2014.
- Т. 111. - №. 2. - С. 585-592.
89. Schmidt H., Eickhorst T., Tippkotter R. Monitoring of root growth and redox condi¬tions in paddy soil rhizotrons by redox electrodes and image analysis //Plant and soil. -
2011. - Т. 341. - №. 1-2. - С. 221-232.
90. Schreiter S. et al. Effect of the soil type on the microbiome in the rhizosphere of field- grown lettuce //The plant microbiome and its importance for plant and human health. - 2015. - С. 88.
91. Simon C., Daniel R. Metagenomic analyses: past and future trends // Appl Environ Microbiol. 2011. V. 4. № 77. P. 1153-1161
92. Siqueira J. O., Lambais M. R., Stumer S. L. Fungos micorrizicos arbusculares //Biologia, Ciencia e Desenvolvimento. - 2002. - Т. 25. - С. 12-21.
93. Spaepe, S. Indole-3-acetic acid in microbial and microorganism-plant signaling / Spaepe S., Vanderleyden J., Remans R. // FEMS Microbiol. Rev. - 2007. - Vol. 31. - P. 425-448.
94. Tournaa M., Stieglmeiera M., Spanga A. et al. Nitrososphaera viennensis, an ammonia oxidizing archaeon from soil // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 2011. - V. 108. -Р. 8420-8425.
95. Vancura V., Abd-el-Malek Y., Zayed M. N. Azotobacter and Beijerinckia in the soils and rhizosphere of plants in Egypt //Folia microbiologica. - 1965. - Т. 10. - №. 4. - С. 224-229.
96. Vogel T .M., Simonet P ., Jansson J.K., Hirsh P .R., Tiedje J.M., Van Elsas J.D., Bailey M.J., Nalin R., Philippot L. TerraGenome: a consortium for the se¬quencing of a soil metagenome // Nat Rev Microbiol. 2009. № 7. P. 252.
97. Wheatley R., Bengough G., Hallett P., Griffiths В., Daniell Т., Marshall В., Squire GR. Probing the soil-plant system? // Scottish Crop Research Institute. Annual Report. 2001/2002. P. 168-171.
98. Whipps, J.M. Microbial interactions and biocontrol in the rhizosphere / J.M. Whipps // J. Exp. Bot. - 2001. - Vol. 52. - P. 487-511.
99. Wigginton J. E., Abecasis G. R. PEDSTATS: descriptive statistics, graphics and quali¬ty assessment for gene mapping data //Bioinformatics. - 2005. - Т. 21. - №. 16. - С. 3445-3447.
100. Wittebolle L. et al. Initial community evenness favours functionality under selec¬tive stress //Nature. - 2009. - Т. 458. - №. 7238. - С. 623-626.
101. Xu J. Invited review: microbial ecology in the age of genomics and metagenomics: concepts, tools, and recent advances //Molecular ecology. - 2006. - Т. 15. - №. 7. - С. 1713-1731.
102. Zhang H. et al. A soil bacterium regulates plant acquisition of iron via deficien¬cy-inducible mechanisms //The Plant Journal. - 2009. - Т. 58. - №. 4. - С. 568-577.


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ