Введение 2
2. Обзор литературы 4
2.1 .Онтогенез и патогенез неокортекса 4
2.1.1. Закономерности и аномалии миграции нейронов коры 4
2.1.2. Структурно-функциональная дифференцировка нейронов и ее нарушения 11
2.1.3. Аномалии развития мозолистого тела 21
2.2. Характеристика форм ДЦП 28
2.3. Организация внутри- и межполушарных связей неокортекса при ДЦП по данным прижизненной нейровизуализации 32
3. Материалы и методы 40
4. Результаты 44
5. Обсуждение 55
6. Выводы 63
7. Список литературы
В последние десятилетия во всем мире отмечается неуклонное снижение показателей перинатальной и ранней неонатальной смертности. На этом фоне заболеваемость детей, связанная с отклонениями внутриутробного генеза постоянно увеличивается. По данным отечественных неонатологов из всех случаев патологии нервной системы 80% развивается пренатально (обзоры, Барашнев, 2000; Володин и др., 2001; Пальчик, 2002, 2007; Пальчик, Шабалов, 2006, 2009).
Одной из наиболее актуальных проблем детской неврологии является детский церебральный паралич (ДЦП), при котором кроме задержки моторного развития наблюдают, как правило, когнитивные, сенсорные, поведенческие девиации. В настоящее время установлено, что в 75% случаев ДЦП развивается у плода пренатально, 5% случаев является последствием родовой травмы и 20% возникают постнатально. Среди возможных причин развития ДЦП строго доказанной является пренатальная гипоксия, которую вызывают многочисленные этиологические факторы.
В последние годы заметно возросло число публикаций, посвященных изучению влияния неблагоприятных факторов среды обитания на развивающуюся ЦНС (Fujioka et al., 2001; Kofman, 2002; Kinnunen et al., 2003; Patin et al., 2004; Fertuzinhos et al., 2009). Получены свидетельства того, что влияние тератогенных факторов на организм в ранние периоды формирования мозга (критические периоды) оставляют длительный след, создают основу для развития многообразных нервно-психических изменений, проявляющихся после рождения по мере взросления особи (Отеллин и др., 2007).
Несмотря на остроту вопроса, диагностика патологии ЦНС внутриутробного генеза проводится поздно, после начала клинической манифестации болезни (у детей старше 1.5 лет), когда пластичность мозга, а, значит, и эффективность коррекционной терапии по сравнению с периодом новорожденности снижены (Пальчик, Шабалов, 2006, 2009; обзоры Koman et al, 2004; Steenbergen, Gordon, 2006).
Несомненно, что в такой ситуации на первое место выходят проблемы ранней диагностики неврологической патологии внутриутробного генеза. Однако недостаток фундаментальных знаний об особенностях развития мозга человека не позволяет эффективно разрабатывать такие методы. Проблема видится еще более острой в свете последних молекулярно-генетических, иммуногистохимических исследований, которые выявляют ярко выраженную видоспецифичность ключевых процессов кортикогенеза у человека. Так, сравнение сроков нейрогенеза в коре мозга эмбрионов крысы и человека показывает, что весь пренатальный период нейрогенеза у крысы соответствует первым 12 неделям эмбриогенеза у человека, а более поздние стадии дифференцировки коры у крысы проходят постнатально (Kostovic, Rakic, 1990; Molnar et al., 2006; Краснощекова и др., 2008, 2010). Таким образом, полномасштабное использование модельных экспериментов на животных для изучения закономерностей пренатального онтогенеза коры ограничено, и получить исчерпывающее представление о ходе развития неокортекса мозга человека можно только путем исследования аутопсийного материала.
В лаборатории функциональной нейроморфологии кафедры цитологии и гистологии СПбГУ благодаря иммуногистохимическим исследованиям патологоанатомического материала впервые установлена гетерохронная последовательность критических периодов нейрогенеза коры мозга человека на протяжении 2-3 триместров гестации. На основе этих данных, а также данных, полученных методом диффузионно-тензорной трактографии и свидетельствующих о строгой парцелляции каллозальной комиссуры, была сформулирована гипотеза. Согласно этой гипотезе в зависимости от временного совпадения критического периода морфогенеза и воздействия вредного фактора патологический процесс затрагивает разные области неокортекса и соответствующие им сегменты мозолистого тела (Краснощекова и др., 2010). Данная гипотеза подтверждена результатами морфометрического анализа мозолистого тела на магнито-резонансных томограммах мозга недоношенных детей младшего грудного возраста, в сравнении с их доношенными сверстниками (Ткаченко и др., 2014, Krasnoschekova et al., 2013).
Однако, приведённые сведения касаются морфометрического анализа только строго сагиттальных срезов мозга. Вместе с тем, МРТ исследование назначается только тем детям, которые имеют выраженные неврологические нарушения и сопряжено с небезразличными для здоровья вспомогательными процедурами. В то же время ультразвуковое чрезродничковое обследование мозга является рутинным, проводится неоднократно в течение первого года жизни детей, но не позволяет получить строго ориентированных срединно-сагиттальных изображений. Обычно в УЗИ используют такие морфометрические показатели, как билатеральный диаметр мозга и параметры межжелудочкового расстояния, которые позволяют оценить степень гидроцефалии, часто развивающейся на фоне перинатального повреждения белого вещества мозга. Но относительно характера и степени его повреждения эти показатели однозначной интерпретации не имеют и не могут служить предиктами ДНП.
В связи с этим в настоящей работе был аппробирован интегральный метод оценки состояния конечного мозга по параметрам, которые косвенно или прямо указывают на дефицит белого вещества полушарий. Это определило цель настоящего исследования.
Цель работы: сравнительное морфометрическое исследование полушарий мозга детей разного возраста с детским церебральным параличом (ДЦП) и без патологии центральной нервной системы по данным магнито-резонансной томографии (МРТ).
В соответствии с этой целью были поставлены следующие задачи:
1. Сравнительный МР-морфометрический анализ межжелудочкового расстояния и билатерального диаметра мозга детей с ДЦП и без патологии ЦНС;
2. Сравнительный МРТ-морфометрический анализ мозолистого тела мозга детей с ДЦП и без патологии ЦНС;
3. Сравнительный анализ мозга детей с ДЦП и без патологии ЦНС с помощью интегрального морфометрического показателя.
1. Сравнительный анализ межжелудочкового расстояния и билатерального диаметра мозга на магнито-резонансных аксиальных томограммах не позволяет достоверно различать мозг детей групп контроля и с ДЛП всех возрастов.
2. Толщина мозолистого тела в области колена и валика на магнито-резонансных аксиальных томограммах мозга детей с возрастом увеличивается, как в группе контроля, так в группе ДЛП.
3. Толщина мозолистого тела в области колена и валика на магнито-резонансных аксиальных томограммах мозга детей всех возрастов из группы контроля достоверно не различается, а у детей с ДЛП различается в младшем возрасте.
4. Значение коэффициента дефицита белого вещества, использованного при МР- морфометрии аксиальных томограмм мозга, достоверно выше в группе детей с ДЛП младшего возраста, по сравнению с их ровесниками из группы контроля.
1. Барашнев Ю. И. Клинико морфологическая хариктеристика и исходы церебральных расстройств при гипоксически - ишемических энцефалопатиях / Ю. И. Барашнев // Акушерство и гинекология. - 2000. - №5. - С.39 - 42
2. Володин Н.Н., Медведев М.И., Рогаткин С.О. Перинатальная энцефалопатия и ее последствия — дискуссионные вопросы семиотики и терапии. Рос педиат.; журн. 2001;1:4-8 с.
3. Долгих В.В., Власенко А.В., Ледяева Н.П., Рычкова Л.В., Лаптева И.Н. Опыт применения высоких технологий в реабилитации детей со спастическими формами детского церебрального паралича // Вестн. Росздравнадзора. 2014. № 3. С. 24-26.
4. Жаботинский ЮМ. Нормальная и патологическая морфология нейрона. Л., 1965, 165 с.
5. Зыкин ПА, Краснощекова ЕИ, Федосеева КН, Ткаченко ЛА, Николаев АА, Покусаева ИН, Смолина ТЮ. Особенности развития коры полушарий конечного мозга человека в течение 16-20 недель гестации (гистологическое, иммуногистологическое исследовании) //Вестник СПбГУ, 2009, серия 3, №2. с. 81-92
6. Краснощекова ЕИ, Зыкин ПА, Ткаченко ЛА, Смолина ТЮ. Развитие пирамидных,. Физиология человека, 2010. 185
7. Краснощекова ЕИ, Федосеева КН, Самарина АС, Смолина ТЮ. Пренатальный онтогенез височной области коры мозга человека.// Рос. Физиол.журнал , 2007; 7, 762-768
8. Краснощекова ЕИ, Федосеева КН, Самарина АС, Смолина ТЮ. Развитие височной области коры мозга человека в средний и поздний периоды пренатального онтогенеза.//Вестник СПБГУ, 2007; 3: 108-116
9. Е.И.Краснощёкова, П.А.Зыкин, Л.А.Ткаченко, Т.А.Александров, В.М.Середа, Возрастная динамика развития мозолистого тела мозга у детей и ее особенности при детском церебральном параличе//Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2016. №6. В печати.
10. Махова И.Ю. 3.5. Отечественные теории периодизации психического развития // Психология развития: теоретические основы : учеб. пособие. — Хабаровск: ДВГУПС, 2006.
11. Отеллин В.А., Хожай Л.И., Ордян Н.Э. Пренатальные стрессорные воздействия и развивающийся головной мозг. СПб: Десятка, 2007. 236 с.
12. Пальчик А.Б., Шабалов Н.П. Гипоксически-ишемическая энцефалопатия новорожденных. М.: МЕДпресс-информ, 2006. 228 c.
13. Пальчик АБ. Эволюционная неврология.2002, 384 с.
14. Пальчик АБ. Введение в неврологию развития. 2007, 370 с.
15. Пальчик А.Б, Шабалов Н.П. Гипоксически- ишемическая энцефалопатия новорожденных МедПресс-Информ, 2013 г.
16. Пальчик А.Б., Шабалов Н.П. Токсические энцефалопатии новорожденных. 2009, 160 c.
17. Ткаченко Л.А., Н.О. Торонова, Е.И. Краснощекова, Т.А. Александров, П.А. Зыкин, А.Н. Ялфимов. Сравнительное МРТ-морфометрическое исследование мозолистого тела доношенных и недоношенных детей раннего грудного возраста // Физиология человека, 2014. Т. 40, № 1. С. 36-42.
18. Стольный В.Н. Изменения структурных образований перивентрикулярной зоны головного мозга плодов и новорожденных при плацентарной недостаточности в различные гестационные сроки: Автореф. дис... канд. мед. наук. Омск, 1997. 154 с.
19. Чернышева Н.В., Милованова О.А., Лобов М.А. и др. Дисгенезии мозга: гипо-, агенезии мозолистого тела (обзор литературы) // Клиническая неврология. - 2012. №1. - С 38-40.
20. Шевченко А.А. Врожденные пороки развития центральной нервной системы (ЦНС): клинико-неврологические аспекты и проблемы пренатальной диагностики. // Международные обзоры: клиническая практика и здоровье. журнал №2 (8) / 2014
21.
21. Alcamo E.A., Chirivella L., Dautzenberg M., Dobreva G., Farinas I., Grosschedl R., McConnell SK. Satb2 regulates callosal projection neuron identity in the developing cerebral cortex.//Neuron. 2008 Feb 7;57(3):364-377
22. Alexander AL., Lee JE., Lazar M., Boudos R., Dubray MB., Oakes TR., Miller JN., Lu J. Jeong EK., McMahon WM., Bigler ED, Lainhart, JE. 2007. Diffusion tensor imaging of the corpus callosum in Autism.// NeuroImage, 2007; 34, 61-73.
23. Ansado J., Collins L., Fonov V., Garon M., Alexandrov L., Karama S., Evans A., Beauchamp M.H.: Brain Development Cooperative Group. A new template to study callosal growth shows specific growth in anterior and posterior regions of the corpus callosum in early childhood // Eur. J. Neurosci. 2015. Vol. 42, N 1. P. 1675-1684.
24. Arlotta P., Molyneaux BJ.,Chen J., Inoue J.,Kominami R., Macklis JD. Neuronal subtype¬specific genes that control corticospinal motor neuron development in vivo.//2005, Neuron; 45: 207-221
25. Ashok Panigrahy Ж Patrick D. Barnes Robert L. Robertson Ж Lynn A. Sleeper James W. Sayre. Quantitative analysis of the corpus callosum in children with cerebral palsy and developmental delay: correlation with cerebral white matter volume. J. Pediatr Radiol (2005) 35: 1199-1207
26. Ashwal S, Russman BS, Blasco BA, Miller G, Sandler A, Shevell M, Stevenson R. Practice parameter: diagnostic assesment of the children with cerebral palsy.// Neurology, 2004; 62: 851¬863
27. Avanzino L, Teo JT, Rothwell JC. Intracortical circuits modulate transcallosal inhibition in humans.// J Physiol 2007; 583:99-114
28. Babcock MA, Kostova FV, Ferriero DM, et al. Injury to the preterm brain and cerebral palsy: clinical aspects, molecular mechanisms,unanswered questions, and future research directions.//Child Neurol 2009; 24: 1064-84.
29. Baenziger O, Martin E, Steinlin M, Good M, Largo R, Burger R, Fanconi S, Duc G, Buchli R, Rumpel H, Boltshauser E. Early pattern recognition in severe perinatal asphyxia: a prospective MRI study.//Neuroradiology, 1993; 35:437-442.
30. Battal B., Kocaoglu M., Akgun V., Bulakbasi N., Tayfun C. Corpus callosum: normal imaging appearance, variants and pathologic conditions // J. Med. Imaging Radiat. Oncol. 2010. Vol. 54, N 6. P. 541-549.
31. Barkovich AJ: Current concepts of polymicrogyria.//Neuroradiology 2010, 52:479-487.
32. Barkovich A. James,Hetts SW, Sherr EH, Chao S, Gobuty S, Anomalies of the Corpus Callosum: An MR Analysis of the Phenotypic Spectrum Of Associated Malformations.// AJR, 2006;187: 1343-1348
33. Baron JC, Levasseur M, Mazoyer B, et al. Thalamocortical diaschisis: positron emission tomography in human.//J Neurol Neurosurg Psychiatry, 1992;55:935-942
34. Bartzokis G., Sultzer D., Lu P.H., Nuechterlein K.H., Mintz J.,Cummings J.L. Heterogenous age-related breakdown of white matter structural integrity: implications for cortical “disconnection” in aging and Alzheimer's disease.// Neurobiol.Aging, 2004; 25, 843-851.
35. Bayer, S. A., and Altman, J. Atlas of Human Central Nervous System Development: The Human Brain During the Second Trimester.//2005. Boca Raton, FL, CRC Press.
36. Bedeschi M.F.et al. Agenesis of the corpus callosum: clinical and genetic study in 63 young patients.// Pediatr. Neurol., 2006;34,186-193
37. Benini R., Dagenais L,.Shevell M.I . Normal imaging in patients with cerebral palsy: what does it tell us?// The Journal of Pediatrics, 2013; 162:369-374
38. Bielle F, Griveau A, Narboux-Neme N, Vigneau S, Sigrist M, Arber S, Wassef M, Pierani A. Multiple origins of Cajal-Retzius cells at the borders of the developing pallium.//Nat Neurosci. 2005; 8:1002-1012.
39. Boettger T., Rust M.B., Maier H. Loss of K-Cl co-transporter KCC3 causes deafness, neurodegeneration and reduced seizure and reduced seizure threshold.// EMBO J., 2003; 22, 5422-5434
40. Bonneau D, Toutain A, Laquerriere A, Marret S, Saugier-Veber P, Barthez MA, Radi S, Biran-Mucignat V, Rodriguez D, Gdlot A. X-linked lissencephaly with absent corpus callosum and ambiguous genitalia (XLAG): clinical, magnetic resonance imaging, and neuropathological findings.// Ann Neurol. 2002 Mar; 51(3):340-349
41. Britanova O. et al. Satb2 is a postmitotic determinant for upper-layer neuron specification in the neocortex.//2008, Neuron; 57:378-392
42. Bonneau D, Toutain A, Laquerriere A, Marret S, Saugier-Veber P, Barthez MA, Radi S, Biran-Mucignat V, Rodriguez D, Gdlot A. X-linked lissencephaly with absent corpus callosum and ambiguous genitalia (XLAG): clinical, magnetic resonance imaging, and neuropathological findings.// Ann Neurol. 2002 Mar; 51(3):340-349
43. Byrd S.E. Absence of the corpus callosum: computed tomographic evaluation in infants and children//S.E. Byrd, D.C. Harwood-Nash, C.R. Fitz//J Can Assoc Radiol. 1978. No 29. P.108¬112
44. Cascio C, Styner M, Smith RG, Poe MD. Reduced relationship to cortical white matter volume revealed by tractography-based segmentation of the corpus callosum in young children with developmental delay.//Am J Psychiatry. 2006; 163:2157-63
45. Cauller LJ. Backward cortical projections to primary somatosensory cortex in rats extend longhorizontal axons in layer I.//1998, J.Comp.Neurol;390:297-310.
46. Cho H.K., Jang S.H., Lee E, Kim S.Y., Kim S., KwonY.H. , So S.M. Diffusion Tensor Imaging-Demonstrated Differences between Hemiplegic and Diplegic Cerebral Palsy with Symmetric Periventricular Leukomalacia.//AJNR Am J Neuroradiol , 2013; 1-4
47. Chugani, H. T., Phelps, M. E. & Mazziotta, J. C. Positron emission tomography study of human brainfunctional development.// Ann. Neurol, 1987; 22, 487-497
48. Clarke, S., Kraftsik, R., Van der Loos, H., and Innocenti, G. M. (1989). Forms and measures of adult and developing human corpus callosum: is there sexual dimorphism? J. Comp. Neurol. 280, 213-230.
49. Crino PB, Eberwine J. Cellular and molecular basis of cerebral dysgenesis.// J Neuropathol Exp Neurol 1997;50: 907-916
50. Cubelos B et al. Cux1 and Cux2 regulate dendritic branching, spine morphology, and synapses of the upper layer neurons of the cortex.//2010, Neuron; 66: 523-535
51. De Lacoste MC, Kirkpatrick JB, Ross ED. Topography of the human corpus callosum.// J Neuropathol Exp Neurol. 1985; 44:578-91
52. De Luca AM, David H Ledbetter, Christa L Martin.Genetic insights into the causes and classification of the cerebral palsies.//Lancet Neurol 2012; 11: 283-92
53. De Vries LS. Neurological assessment of the preterm infant.// Acta Pediatrica, 1996; 85: 765¬771
54. DeAzevdo, L.C., Hedin-Pererira C.,Lent.R Callosal neurons in cingulate cortical plate and subplate of human fetuses.//J. Comp. Neurol, 1997; 386, 60-70
55. Demyanenko G.P., Tsai A.Y., Maness P.F. Abnormalities in neuronal process extention, hippocampal development, and the ventricular system of L1 knockout mice.// J.Neurosci.,1999;19, 4907-4920
56. Dobins WB, Ledbetter DH. Clinical and molecular studies in 62 patiens with type 1 lissencephaly.// Ann Nurol 1990; 28: 440 (abstract)
57. Donahoo A.L.S. and Richards L.J. Understanding the mechanisms of callosal development through the use of transgenic mouse models.// 2009, Semin.Pediatr. Neurol; 16: 127-142
58. Dougherty R, Ben-Shachar M, Bammer R, Brewer A, Wandell B. Functional organization of human occipital-callosal fiber tracts.//PNAS. 2005;102:7350-5
59. Edwards T.J., Sherr E.H., Barkovich A.J., Richards L.J. Clinical, genetic and imaging findings identify new causes for corpus callosum development syndromes // Brain. 2014. Vol. 137, Pt 6. P. 1579-1613.
60. Evrard PH, Miladi N, Bonnier CH., Greessens P. Normal and abnormal development of the brain.//Handbook of neuropsychology, 1992
61. Evrard SG, Vega MD, Ramos AJ, Tagliaferro P, Brusco A. Altered neuron-glia interactions in a low, chronic prenatal ethanol exposure.// Brain Res Dev Brain Res., 2003; 147(1-2):119-33
62. Fazeli A, Dickinson SL, Hermiston ML et al. Phenotype of mice lacking functional deleted in colorectal cancer (Dcc) gen.// 1997 ,Nature: 386: 796-804.
63. Fertuzinhos S, Krsnik Z, Kawasawa YI, Rasin MR, Kwan KY, Chen JG, Judas M, Hayashi M, Sestan N. Selective depletion of molecularly defined cortical interneurons in humanholoprosencephaly with severe striatal hypoplasia.//Cereb Cortex. 2009 Sep;19(9):2196-207
64. Folkerth RD. Periventricular leukomalacia: overview and recent findings. //Pediatr Dev Pathol 2006;9:3-13
65. Freud S. Die infantile Cerebrallahmung. In: Nothnagel H, ed.SpecieIIe PathoIogie und Therapie, edn IX, part 111. Vienna:Holder, 1897: 1-327.
66. Friede R.L. Dvelpomental neuropathology//Springer-Verlag, New York, 1989; p 577
67. Garcez, P. P., Henrique, N. P., Furtado, D. A., Bolz, J., Lent, R., and Uziel, D. (2007). Axons of callosal neurons bifurcate transiently at the white matter before consolidating an interhemispheric projection. Eur. J. Neurosci. 25:1384-1394.
68. Gu C. et al. Neurotropilin-1 conveys semaphorinand VEGF signaling during neural and cardiovascular development.//2003, Dev Cell; 5: 45-57
69. Guerrini R, Parrini E. Neuronal migration disorders.// Neurobiology of Disease, 2010; 38: 154-166
70. Guerrini R, Dobyns WB, Barkovich AJ. Abnormal development of the human cerebral cortex: genetics, functional consequences and treatment options.// Trends Nurosci, 2008; 31:154-162
71. Guerrini R., Filippi T., Neuronal migration disorders, genetics, and epileptogenesis.//Child Neurol, 2005; 20: 287-299
72. Hagberg B, Hagberg G.The origins of cerebral palsy. In: David TJ (Ed).Recent advances in paediatrics XI. Edinburgh: Churchill Livingstone1993:67-83.
73. Han W, Kwan KY, Shim S, Lam MM, Shin Y, Xu X, Zhu Y, Li M, Sestan N.TBR1 directly represses Fezf2 to control the laminar origin and development of the corticospinal tract.//Proc Natl Acad Sci U S A. 2011 Feb 15;108(7):3041-3406
74. Harding B, Copp A. Malformations of the nervous system.//Greenfields Neuropathology, 1997; pp 521-538
75. Hasan K, Kamali A, Kramer L, Papnicolaou AC, Fletcher JM , Cobbs LE. Diffusion tensor quantification of the human midsagittal corpus callosum subdivisions across the lifespan.//Brain Research, 2008; 1 2 27: 5 2 -67
76. Hayakawa K, Kanda T, Hashimoto K, et al. MR imaging of spastic diplegia: the importance of corpus callosum. //Acta Radiol. ,1996;37:830-836
77. Hofer S, Frahm J. Topography of the human corpus callosum revisited-comprehensive fiber tractography using diffusion tensor magnetic resonance imaging.// Neuroimage. Vol. 32, N 3. P. 989-994
78. Hoon AH Jr, Lawrie WT Jr, Melhem ER, Reinhardt EM, van Zijl PC, Solaiyappan BE, et al. Diffusion tensor imaging of periventricular leukomalacia shows affected sensory cortex white
matter pathways.// Neurology,2002; 59: 752-6.
79. Huang H, Zhang J, Jiang H, Wakana S, Poetscher L, Miller MI, et al. DTI tractography based parcellation of white matter: application to the mid-sagittal morphology of corpus callosum.// Neuroimage, 2005; 26:195-205
80. Huang, H., Xue, R., Zhang, J., Ren, T., Richards, L. J., Yarowsky, P., Miller, M. I., and Mori, S. Anatomical characterization of human fetal brain development with diffusion tensor magnetic resonance imaging.//2009. J. Neurosci. 29:4263-4273.
81. Hutchins BI, Li L, Kalil K. Wnt/Calcium Signaling Mediates Axon Growth and guidance in the developing corpus callosum.// Dev Neurobiol. 2011 Apr;71(4):269-283
82. Itoh K. et al. Brain development in mice lacking L1-L1 homophilic adhesion.// J.Cell Biol, 2004; 165, 145-154
83. Johnston MV, Trescher WH, Ihida A, Nakajima W. Neurobiology of hypoxic-ischemic injury in the develoing brain.//Pediatric research, 2001; 49: 735-741
84. Jong DL, Dong IK, Young HR,Geum J W, Chang P, Dong GK,Kucukali I, De Reuk J, Decoo D, Strijckman K, Goethals P, Lemahieu I. Positron emission tomography in spastic diplegia// Clin Neurol Neurosurg, 1995; 97:28-31
85. Jones E.G. Possible determinants of the degree of retrograde neuronal labeling with horseradish peroxidase.-Brain Res., 1975 , v.85, №2, p.249-253.
86. Jovanov-Milosevic, N., Benjak, V., and Kostovic, I. Transient cellular structures in developing corpus callosum of the human brain.//2006. Coll. Antropol. 30, 375-381.
87. Judas, M., Rados, M., Jovanov-Milosevic, N., Hrabac, P., Stern-Padovan, R., and Kostovic, I. Structural, immunocytochemical, and MR imaging properties of periventricular crossroads of growing cortical pathways in preterm infants.//2005. AJNR Am. J. Neuroradiol. 26, 2671-2684.
88. Judkins AR., Martinez D., Frreira P., Dobyns W.B., Golden AJ. Polymicrogyria includes fusion of the molecular layer and decreased neuronal populations, but normal cortical laminar organization.// J Neuropathol Exp Neurol, 2011; 70: 438-443
89. Kasprian, G., Brugger, P. C., Weber, M., Krssak, M., Krampl, E., Herold, C., and Prayer, D. In utero tractography of fetal white matter development.//2008. Neuroimage 43, 213-224.
90. Kenneth Y.Kwan, Nedan Sestan , E.S. Anton.Transcriptional co-regulation of neuronal migration and laminar identity in the neocortex.//Development, 2012; 139, 1535-1546
91. Keogh JM, Badawi N. The origins of cerebral palsy.//Curr Opin Neurol, 2006; 19: 129-34.
92. Kim EJ, Battiste J, Nakagawa Y, Johnson JE. Ascl (Mash1) lineage cells contribute to discrete cell population in CNS architecture.// Molecular and cellular neuroscience, 2008; 38: 595-606
93. Kinnunen AK, Koenig JI, Bilbe G. Repeated variable prenatal stress alters pre- and postsynapticgene expression in the rat frontal pole.//J Neurochem. 2003 Aug; 86(3):736-48.
94. Koerte I, Pelavin P, Kirmess B, Fuchs T, Berweck S, Laubender R.P., Borggraefe I, Schroeder S, Danek A, Rummeny C, Reiser M, Kubick M, Shenton M, Ertl-Wagner B, Heinen F. Anisotropy of transcallosal motor fibers indicates functional impairment in children with periventricular leukomalacia.//Dev Med Child Neurol., 2011; 53(2): 179-186
95. Kofman O. The role of prenatal stress in the etiology of developmental behavioural disorders. // Neurosci Biobehav Rev. 2002 Jun; 26(4):457-70. Review
96. Koman LA, Smith BP, Shilt JS. Cerebral palsy.// Lancet. 2004 May 15; 363(9421):1619-31.
97. Kostovic I, Judas M, Sedmak G. Devlopmental history of the subplate zone , subplate neurons and interstitial white matter neurons: rlevance for schizophrenia.// International Journal of
Developmantal neuroscience, 2011; 29: 193-205
98. Kostovic I, Judas M. Correlation between sequential ingrowth of afferents and transient patterns of cortical lamination in preterm infants.// Anat. Rec.2002;267,1-6
99. Elena Krasnoshchekova, Pavel Zykin, Natalia Toronova, Lyubov Tkachenko, Yulia Stepanenko, Anatoly Yalfimov, Timofey Aleksandrov. Corpus callosum in preterm infants and patients with cerebral palsy// Procedia, 2013 in press
100. Kostovic I. Prenatal development of nucleus basalis complex and related fiber systems in man:histochemical study.// Nuroscience ,1986;17,1047-1077
101. Krageloh-Mann I. Imaging of early brain injury and cortical plasticity.// Exper Neurol, 2004 190: 84-90
102. Krageloh-Mann I, Horber V. The role of magnetic resonance imaging in elucidating the pathogenesis of cerebral palsy: a systematic review.//Developmental Medicine in Child Neurology, 2007; 49: 144-151