Список сокращений 6
Введение 8
Глава 1. Обзор литературы 12
1.1. Дегенеративные изменения в нейронах при Болезни Альцгеймера 12
1.2. Динамические микротрубочки и плюс-концевые белки в нейронах 15
1.3 Семейство белков EB 19
Глава 2. Материалы и методы 23
2.1. Выделение первичной нейрональной культуры гиппокампа 23
2.2. Ведение первичной гиппокампальной культуры 24
2.3. Ведение клеточной линии HEK 293T 24
2.4. Кальций-фосфатная трансфекция первичных гиппокампальных нейронов 24
2.5. Сборка лентивирусных частиц 25
2.6. Вестерн-блот анализ 25
2.7. Приготовление Л042 олигомеров 26
2.8. Иммуноцитохимическое окрашивание 27
2.9. Конфокальная микроскопия 27
2.10. Изучение морфологии дендритных шипиков нейронов 28
2.11. Анализ распределения постсинаптического белка PSD-95 28
2.12. Статистический анализ 28
Глава 3. Результаты 30
3.1. Проверка эффективности вирусной трансдукции в первичной нейрональной гиппокампальной культуры 30
3.2. Влияние вирус-опосредованной гиперэкспрессии и нокдауна белков EB3 на плотность и размер кластеров белка PSD-95 в дендритах первичных гиппокампальных нейронов 31
3.3 Влияние вирус-опосредованной гиперэкспрессии белков EB3 в условиях низкой амилоидной токсичности на плотность и размер кластеров белка PSD-
95 в дендритах первичных гиппокампальных нейронов 32
3.4 Влияние гиперэкспрессии белка EB3 на морфологию дендритных
шипиков в условиях низкой амилоидной токсичности 34
Заключение 36
Выводы 37
Список используемых источников 38
Актуальность исследования
Множество нейродегенеративных заболеваний, в частности, болезнь Альцгеймера (БА), характеризуются нарушением в формировании синаптических контактов или потерей их стабильности. Специализированные мембранные выросты - дендритные шипики, формирующие контакт между аксоном и дендритом, подвергаются постоянному изменению в форме и плотности. Ранее считалось, что цитоскелет дендритных шипиков представлен исключительно актином, а тубулин участвует лишь в формировании дендритов и аксонов. Недавно было показано, что динамические тубулиновые микротрубочки способны временно проникать в дендритный шипик, регулируя синаптическую пластичность [36]. Однако в настоящее время данное явление изучено недостаточно, поэтому проведение исследований в данном направлении крайне актуальны.
Плюс-концевой белок end-binding protein 3 (EB3) крепится к
положительному концу нейрональных тубулиновых микротрубочек. Нейропротекторная функция EB3 продемонстрирована только на одной мышиной линии PS1-M146V-KI [56], моделирующей БА. Данная линия характеризуется экспрессией белка Пресенилина 1 с мутацией характерной для наследственной формы данного заболевания, а также отсутствием выраженного накопления бета-амилоида в головном мозгу грызунов.
Для подтверждения нейропротекторного потенциала белка EB3 необходимо оценить влияние данного белка также в условиях низкой амилоидной токсичности, моделирующей болезнь Альцгеймера. БА является одной из самых распространенных форм деменции, которая поражает пожилых людей. Однако на сегодняшний день данное заболевание считается неизлечимым, поэтому исследования в данной области необходимы для разработки эффективной терапии, предотвращающей дегенеративные изменения в синапсах.
Объект и предмет исследования
В данной работе рассмотрено влияние белка EB3 на морфологию дендритных шипиков в условиях амилоидной токсичности на первичной нейрональной гиппокампальной культуре.
Теоретическая и методологическая база исследования
При написании выпускной квалификационной работы были использованы российские и зарубежные источники по соответствующей тематике. Исследования производились с использованием материалов и методов, применяющихся в Лаборатории молекулярной нейродегенерации СПбПУ. В ходе работы были освоены следующие методы: культивирование диссоциированных нейронов гиппокампа мышей, ведение клеточной линии HEK293T, сборка лентивирусов, Вестерн-блот анализ, иммуноцитохимический анализ, выделение плазмидной ДНК, кальций-фосфатная трансфекция нейронов, конфокальная микроскопия, анализ морфологии дендритных шипиков в программном обеспечении NeuronStudio, деконволюция конфокальных изображений, бинаризация изображений, анализ размера и плотности кластеров в программном обеспечении Synpanal.
Степень научной разработанности проблемы
Снижение плотности дендритных шипиков продемонстрировано в различных мышиных моделях, таких как PS1-M146V-KI [56], APP-KI [75], APPPS1 [57]. Однако, влияние белка EB3 на морфоло рассмотрено только на мышах линии PS1-М146V-KI. Данная трансгенная линия характеризируется мутацией M146V в белке Пресенилине 1, однако в нейронах мышей линии PS1- М146V-KI не происходит характерное для БА накопление бета-амилоида [56].
EB3 взаимодействует также с белком постсинаптической плотности 95 (PSD-95, Postsynaptic density protein-95), способствуя модуляции динамики МТ во время образования дендритов [69]. PSD-95 является маркерным белком для постсинаптической плотности, которая состоит из большого количества рецепторов, регуляторных белков и молекул, принимающие участие в синаптической передаче. Впервые рассмотрено влияние гиперэкспрессии и нокдауна EB3 на плотность и размер кластеров белка PSD-95 в дендритах гиппокампальных нейронов в норме и в условиях амилоидной токсичности.
Научная новизна и практическая значимость
В данной работе исследуется влияние белка EB3 на гиппокампальные нейроны в норме и при воздействии олигомерами бета-амилоида в низкой концентрации. Ранее подобные исследования не проводились, и полученные результаты позволяют сделать предположения о роли динамических тубулиновых микротрубочек в функционировании нейронов. Произведение оценки нейропротекторного потенциала белка EB3 позволит разработать новые механизмы и мишени для предотвращения дегенеративных изменений в гиппокампальных нейронах при БА, ассоциированных с (=являющихся причиной) прогрессирующей потерей памяти у пациентов.
На основе полученных результатов, можно предположить о перспективности использования белка EB3 в качестве возможной терапевтической мишени для создания лечения БА.
Цель и задачи исследования
Цель исследования - изучить влияние гиперэкспрессии и нокдауна белка ЕВ3 на гиппокампальные нейроны в норме и на клеточной модели болезни Альцгеймера.
Для реализации цели были поставлены следующие задачи:
1. Осуществить сборку вирусов для гиперэкспрессии и нокдауна белка ЕВ3 и определить их оптимальную концентрацию для воздействия на первичные гиппокампальные нейроны;
2. Разработать методический подход для анализа плотности и размера кластеров белка PSD-95 в дендритах нейронов;
3. Оценить влияние вирус-опосредованной гиперэкспрессии и нокдауна белка EB3 на плотность и размер кластеров постсинаптического белка PSD-95 в дендритах первичных гиппокампальных нейронов в норме и в условиях низкой амилоидной токсичности;
4. Изучить влияние гиперэкспрессии и нокдауна белка EB3 на плотность дендритных шипиков и ширину их головки в норме и в условиях низкой амилоидной токсичности.
Белок EB3, стабилизирующий полимеризующиеся микротрубочки, крепится к положительному концу нейрональных тубулиновых микротрубочек. В предыдущих исследованиях было продемонстрировано влияние уровня экспрессии белка EB3 в нейронах на морфологию дендритных шипиков [77]. Гиперэкспрессия EB3 увеличивает количество грибовидных шипиков и способна восстановить их дефицит на мышиной модели БА [56].
Известно, что белок EB3 взаимодействует с белком PSD-95, способствуя модуляции динамики МТ во время образования дендритов [69]. В предыдущих исследованиях показана связь между кластеризацией белка PSD-95 и стабильностью дендритного шипика in vivo [9], в связи с чем, было принято решение оценить влияние вирус-опосредованной гиперэкспрессии и нокдауна белка EB3 на плотность и размер кластеров постсинаптического белка PSD-95 в дендритах первичных гиппокампальных нейронов в норме и в условиях низкой амилоидной токсичности.
В данном исследовании показано, что гиперэкспрессия белка EB3 увеличивает ширину головки грибовидных шипиков в первичных гиппокампальных нейронах. Гиперэкспрессия белка EB3 в условиях низкой амилоидной токсичности, моделирующих БА, предотвращает уменьшение числа шипиков и сокращение размера их головки. Увеличение размера головки грибовидных шипиков коррелирует с силой синапса и размером постсинаптической плотности.
Продемонстрировано влияние гиперэкспрессии и нокдауна белка EB3 на плотность и размер кластеров белка PSD-95 в дендритах гиппокампальных нейронов в норме и в условиях амилоидной токсичности. Для подсчета плотности и размера кластеров PSD-95 в работе был разработан алгоритм с применением локальной бинаризации и программы Synpanal. Гиперэкспрессия белка EB3 вызывает увеличение плотности кластеров белка PSD-95 в сравнении с контрольной группой, но не изменяет их размер. Нокдаун белка ЕВ3 уменьшает размер и плотность кластеров белка PSD-95.
На основе полученных результатов, можно предположить о перспективности изучения белка EB3 в качестве возможной мишени для создания лечения БА.
Выводы:
1. При помощи Вестерн-блот анализа продемонстрирована эффективность собранных лентивирусных частиц для управления экспрессией белка ЕВ3 и определена оптимальная нетоксичная концентрация лентивирусов для воздействия на первичные гиппокампальные нейроны;
2. Разработан и успешно применен метод анализа плотности и размеров кластеров белка PSD-95 в дендритах нейронов. Метод основан на коррекции фона и устранении шума изображений, с последующим применением локальной бинаризации изображений для выделения кластеров белка PSD-95, полученных с помощью конфокальной лазерной сканирующей микроскопии;
3. Гиперэкспрессия белка EB3 вызывает увеличение ширины головки дендритных шипиков и увеличение плотности кластеров белка PSD-95 в сравнении с контрольной группой, но не изменяет их размер. Вирус- опосредованный нокдаун белка EB3 приводит к значительному уменьшению плотности и размера кластеров постсинаптического белка PSD-95.
4. В условиях низкой амилоидной токсичности происходит снижение головки и плотности дендритных шипиков. Гиперэкспрессия белка EB3 предотвращает снижение количества дендритных шипиков в гиппокампальных нейронах и увеличивает ширину их головки, а также увеличивает плотность кластеров белка PSD-95. Полученные результаты позволяют сделать вывод о нейропротекторном свойстве данного белка на клточной модели БА.
а также увеличивает плотность кластеров белка PSD-95. Полученные результаты позволяют сделать вывод о нейропротекторном свойстве данного белка на клточной модели БА.
Список используемых источников
1. Akhmanova A., Steinmetz M.O. Tracking the ends: A dynamic protein network controls the fate of microtubule tips // Nature Reviews Molecular Cell Biology. 2008. № 4 (9). C. 309-322.
2. Alves-Silva J. [и др.]. Spectraplakins promote microtubule-mediated axonal growth by functioning as structural microtubule-associated proteins and EB1- dependent + TIPs (tip interacting proteins) // Journal of Neuroscience. 2012. № 27 (32). C. 9143-9158.
3. Arendt T. Neurodegeneration and plasticity // International Journal of Developmental Neuroscience. 2004. № 7 (22). C. 507-514.
4. Bearce E.A., Erdogan B., Lowery L.A. TIPsy tour guides: How microtubule plus¬end tracking proteins (+TIPS) facilitate axon guidance // Frontiers in Cellular Neuroscience. 2015. № JUNE (9). C. 1-12.
5. Boros B.D. [и др.]. Dendritic spine remodeling accompanies Alzheimer’s disease pathology and genetic susceptibility in cognitively normal aging // Neurobiology of Aging. 2019. (73). C. 92-103.
6. Brouhard G.J., Rice L.M. The contribution of ар-tubulin curvature to microtubule dynamics // Journal of Cell Biology. 2014. № 3 (207). C. 323-334.
7. Caille I. [и др.]. Soluble form of amyloid precursor protein regulates proliferation of progenitors in the adult subventricular zone // Development. 2004. № 9 (131). C. 2173-2181.
8. Cammarata G.M., Bearce E.A., Lowery L.A. Cytoskeletal social networking in the growth cone: How +TIPs mediate microtubule-actin cross-linking to drive axon outgrowth and guidance // Cytoskeleton. 2016. № 9 (73). C. 461-476.
9. Cane M. [и др.]. The relationship between PSD-95 clustering and spine stability In Vivo // Journal of Neuroscience. 2014. № 6 (34). C. 2075-2086.
10. Cassimeris L.U. [и др.]. Dynamic instability of microtubules // BioEssays. 1987. № 4 (7). C. 149-154.
11. Chang C.L. [и др.]. EB1 binding restricts STIM1 translocation to ER-PM junctions and regulates store-operated Ca2+ entry // Journal of Cell Biology. 2018. № 6 (217). C. 2047-2058.
12. Chen G.F. [и др.]. Amyloid beta: Structure, biology and structure-based therapeutic development // Acta Pharmacologica Sinica. 2017. № 9 (38). C. 1205-1235.
13. Chretien D., Fuller S.D., Karsenti E. Structure of growing microtubule ends: Two-dimensional sheets close into tubes at variable rates // Journal of Cell Biology. 1995. № 5 (129). C. 1311-1328.
14. Cole S.L., Vassar R. The role of amyloid precursor protein processing by BACE1, the P-secretase, in Alzheimer disease pathophysiology // Journal of Biological Chemistry. 2008. № 44 (283). C. 29621-29625.
15. Coles C.H., Bradke F. Coordinating Neuronal Actin-Microtubule Dynamics // Current Biology. 2015. № 15 (25). C. R677-R691.
16. Dawkins E., Small D.H. Insights into the physiological function of the P-amyloid precursor protein: Beyond Alzheimer’s disease // Journal of Neurochemistry. 2014.
№ 5 (129). C. 756-769.
17. Dominguez-alvaro M. [и др.]. Three-dimensional analysis of synapses in the transentorhinal cortex of Alzheimer’s disease patients // Acta Neuropathologica Communications. 2018. № 1 (6). C. 1-15.
18. Duyckaerts C., Delatour B., Potier M.C. Classification and basic pathology of Alzheimer disease // Acta Neuropathologica. 2009. № 1 (118). C. 5-36.
19. Eom T.Y. [и др.]. Differential regulation of microtubule severing by APC underlies distinct patterns of projection neuron and interneuron migration // Developmental Cell. 2014. № 6 (31). C. 677-689.
20. Erdogan B. [и др.]. The microtubule plus-end-tracking protein TACC3 promotes persistent axon outgrowth and mediates responses to axon guidance signals during development // Neural Development. 2017. № 1 (12). C. 1-10.
21. Furukawa K. [и др.]. Increased Activity-Regulating and Neuroprotective Efficacy of a-Secretase-Derived Secreted Amyloid Precursor Protein Conferred by a C- Terminal Heparin-Binding Domain // Journal of Neurochemistry. 2002. № 5 (67). C. 1882-1896.
22. Gary J. Brouhard [и др.]. XMAP215 Is a Processive Microtubule Polymerase // Cell. 2008. № 1 (132). C. 79-88.
23. Geraldo S. [и др.]. Targeting of the F-actin-binding protein drebrin by the microtubule plus-tip protein EB3 is required for neuritogenesis // Nature Cell Biology. 2008. № 10 (10). C. 1181-1189.
24. Geyer M. [и др.]. Microtubule-Associated Protein EB3 Regulates IP3 Receptor Clustering and Ca2+ Signaling in Endothelial Cells // Cell Reports. 2015. № 1 (12).
C. 79-89.
25. Gouveia S.M., Akhmanova A. Cell and molecular biology of microtubule plus end tracking proteins. End binding proteins and their partners / S.M. Gouveia, A. Akhmanova, 1-е изд., Elsevier Inc., 2010. 1-74 c.
26. Grishchuk E.L. [и др.]. Force production by disassembling microtubules // Nature. 2005. № 7066 (438). C. 384-388.
27. Gu J., Firestein B.L., Zheng J.Q. Microtubules in dendritic spine development // Journal of Neuroscience. 2008. № 46 (28). C. 12120-12124.
28. Hernandez-Zimbron L.F. [и др.]. Beta Amyloid Peptides: Extracellular and Intracellular Mechanisms of Clearance in Alzheimer’s Disease // Update on Dementia. 2016.
29. Honnappa S. [и др.]. An EB1-Binding Motif Acts as a Microtubule Tip Localization Signal // Cell. 2009. № 2 (138). C. 366-376.
30. Hu X. [и др.]. Activity-dependent dynamic microtubule invasion of dendritic spines // Journal of Neuroscience. 2008. № 49 (28). C. 13094-13105.
31. Jaworski J. [и др.]. Dynamic Microtubules Regulate Dendritic Spine Morphology and Synaptic Plasticity // Neuron. 2009. № 1 (61). C. 85-100.
32. Jiang K. [и др.]. A proteome-wide screen for mammalian SxIP motif-containing microtubule plus-end tracking proteins // Current Biology. 2012. № 19 (22). C. 1800¬1807.
33. Jillian J.Kril S.P., Harding A.J., Halliday G.M. Neuron loss from the hippocampus of Alzheimer’s disease exceeds extracellular neurofibrillary tangle formation // Acta Neuropathologica. 2002. № 4 (103). C. 370-376.
34. Kopeikina K.J., Hyman B.J., Spires-Jones T.L. Soluble forms of tau are toxic in alzheimer’s disease // Translational Neuroscience. 2012. № 3 (3). C. 223-233.
35. Kopke E. [и др.]. Microtubule-associated protein tau. Abnormal phosphorylation of a non- paired helical filament pool in Alzheimer disease // Journal of Biological Chemistry. 1993. № 32 (268). C. 24374-24384.
36. Korobova, F., & Svitkina T. Molecular Architecture of Synaptic Actin Cytoskeleton in Hippocampal Neurons Reveals a Mechanism of Dendritic Spine Morphogenesis // Molecular Biology of the Cell. 2010. № 1 (21). C. 165-176.
37. Lee, H., Engel, U., Rusch, J., Scherrer, S., Sheard, K., & Van Vactor D. The Microtubule Plus End Tracking Protein Orbit/MAST/CLASP Acts Downstream of the Tyrosine Kinase Abl in Mediating Axon Guidance // Neuron. 2004. № 6 (42). C. 913-926.
38. Lowery L.A. [и др.]. Growth cone-specific functions of XMAP215 in restricting microtubule dynamics and promoting axonal outgrowth // Neural Development. 2013. № 1 (8).
39. Lucaj C.M. [и др.]. Xenopus TACC1 is a microtubule plus-end tracking protein that can regulate microtubule dynamics during embryonic development //
Cytoskeleton. 2015. № 5 (72). C. 225-234.
40. Mark J. [и др.]. Differences in the pattern of hippocampal neuronal loss in normal ageing and Alzheimer ’ s disease // The Lancet. 1994. № 8925 (344). C. 769-772.
41. Marx A. [и др.]. Xenopus cytoplasmic linker-associated protein 1 (XCLASP1) promotes axon elongation and advance of pioneer microtubules // Molecular Biology of the Cell. 2013. № 10 (24). C. 1544-1558.
42. Mattie F.J. [и др.]. Directed microtubule growth, +TIPs, and Kinesin-2 Are required for uniform microtubule polarity in dendrites // Current Biology. 2010. № 24 (20). C. 2169-2177.
43. Mattson M.P. Cellular actions of 0-amyloid precursor protein and its soluble and fibrillogenic derivatives // Physiological Reviews. 1997. № 4 (77). C. 1081-1132.
44. Mcvicker D.P., Millette M.M., Dent E.W. Signaling to the microtubule cytoskeleton: An unconventional role for CaMKII // Developmental Neurobiology.
2015. № 4 (75). C. 423-434.
45. Merriam E.B. [и др.]. Dynamic microtubules promote synaptic NMDA receptor¬dependent spine enlargement // PLoS ONE. 2011. № 11 (6). C. 1-7.
46. Merriam E.B. [и др.]. Synaptic regulation of microtubule dynamics in dendritic spines by calcium, F-actin, and Drebrin // Journal of Neuroscience. 2013. № 42 (33).
C. 16471-16482.
47. Mogilner A., Oster G. Force generation by actin polymerization II: The elastic ratchet and tethered filaments // Biophysical Journal. 2003. № 3 (84). C. 1591-1605.
48. Moughamian A.J. [и др.]. Ordered recruitment of Dynactin to the microtubule plus-end is required for efficient initiation of retrograde axonal transport // Journal of Neuroscience. 2013. № 32 (33). C. 13190-13203.
49. Mudher A., Lovestone S. Alzheimer’s disease - Do tauists and baptists finally shake hands? // Trends in Neurosciences. 2002. № 1 (25). C. 22-26.
50. Mustyatsa V. V. [и др.]. EB-family proteins: Functions and microtubule interaction mechanisms // Biochemistry (Moscow). 2017. № 7 (82). C. 791-802.
51. Nakagawa H. [и др.]. EB3, a novel member of the EB1 family preferentially expressed in the central nervous system, binds to a CNS-specific APC homologue // Oncogene. 2000. № 2 (19). C. 210-216.
52. Neukirchen D., Bradke F. Neuronal polarization and the cytoskeleton // Seminars in Cell and Developmental Biology. 2011. № 8 (22). C. 825-833.
53. Nogales E., Wolf S.G., Downing K.H. Structure of the a0 tubulin dimer by electron crystallography // Nature. 1998. № 6663 (391). C. 199-203.
54. Nwagbara B.U. [и др.]. TACC3 is a microtubule plus end-tracking protein that promotes axon elongation and also regulates microtubule plus end dynamics in multiple embryonic cell types // Molecular Biology of the Cell. 2014. № 21 (25). C. 3350-3362.
55. Ohsawa I. [и др.]. Amino-terminal region of secreted form of amyloid precursor protein stimulates proliferation of neural stem cells // European Journal of Neuroscience. 1999. № 6 (11). C. 1907-1913.
56. Pchitskaya E. [и др.]. Stim2-Eb3 Association and Morphology of Dendritic Spines in Hippocampal Neurons // Scientific Reports. 2017. № 1 (7). C. 1-13.
57. Penazzi L. [и др.]. A0-mediated spine changes in the hippocampus are microtubule-dependent and can be reversed by a subnanomolar concentration of the microtubule-stabilizing agent epothilone D // Neuropharmacology. 2016. (105). C. 84-95.
58. Pianu B. [и др.]. The A01-42 peptide regulates microtubule stability independently of tau // Journal of Cell Science. 2014. № 5 (127). C. 1117-1127.
59. Popugaeva E. [и др.]. STIM2 protects hippocampal mushroom spines from amyloid synaptotoxicity // Molecular Neurodegeneration. 2015. № 1 (10).
60. Rice L.M., Montabana E.A., Agard D.A. The lattice as allosteric effector: Structural studies of a0- and y-tubulin clarify the role of GTP in microtubule assembly // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2008. № 14 (105). C. 5378-5383.
61. Rutherford E.L. [и др.]. Xenopus TACC2 is a microtubule plus end-tracking protein that can promote microtubule polymerization during embryonic development // Molecular Biology of the Cell. 2016. № 20 (27). C. 3013-3020.
62. Samsonov A. [и др.]. Tau interaction with microtubules in vivo // Journal of Cell Science. 2004. № 25 (117). C. 6129-6141.
63. Seetapun D. [и др.]. Estimating the microtubule GTP cap size in vivo // Current Biology. 2012. № 18 (22). C. 1681-1687.
64. Simic G. [и др.]. Tau protein hyperphosphorylation and aggregation in alzheimer’s disease and other tauopathies, and possible neuroprotective strategies // Biomolecules. 2016. № 1 (6). C. 2-28.
65. Sisodia S.S. Beta-Amiloid precursor protein cleavage a membrane-bound protease // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 1992. № July (89). C. 6075-6079.
66. Stepanova T. [и др.]. Visualization of microtubule growth in cultured neurons via the use of EB3-GFP (end-binding protein 3-green fluorescent protein) // Journal of Neuroscience. 2003. № 7 (23). C. 2655-2664.
67. Stepanova T. [и др.]. History-dependent catastrophes regulate axonal microtubule behavior // Current Biology. 2010. № 11 (20). C. 1023-1028.
68. Sun S. [и др.]. Reduced synaptic STIM2 expression and impaired store-operated calcium entry cause destabilization of mature spines in mutant presenilin mice // Neuron. 2014. № 1 (82). C. 79-93.
69. Sweet E.S., Tseng C.Y., Firestein B.L. To branch or not to branch: How PSD-95 regulates dendrites and spines // BioArchitecture. 2011. № 2 (1). C. 69-73.
70. Ur-Rahman A. Frontiers in Clinical Drug Research - CNS and Neurological Disorders / A. Ur-Rahman, под ред. A. - Ur-Rahman, Bentham Science Publishers,
2016. 117-120 c.
71. Vassar R. [и др.]. The 0-seeretase enzyme BACE in health and Alzheimer’s disease: Regulation, cell biology, function, and therapeutic potential // Journal of Neuroscience. 2009. № 41 (29). C. 12787-12794.
72. Walsh D.M., Selkoe D.J. A0 oligomers - A decade of discovery // Journal of Neurochemistry. 2007. № 5 (101). C. 1172-1184.
73. Willige D. Van De, Hoogenraad C.C., Akhmanova A. Microtubule plus-end tracking proteins in neuronal development // Cellular and Molecular Life Sciences. 2016. № 10 (73). C. 2053-2077.
74. Zanic M. [и др.]. Synergy between XMAP215 and EB1 increases microtubule growth rates to physiological levels // Nature Cell Biology. 2013. № 6 (15). C. 688¬693.
75. Zhang H. [и др.]. Neuronal store-operated calcium entry and mushroom spine loss in amyloid precursor protein knock-in mouse model of Alzheimer’s disease // Journal of Neuroscience. 2015. № 39 (35). C. 13275-13286.
76. Zhang R. [и др.]. Mechanistic origin of microtubule dynamic instability and its modulation by EB proteins // Cell. 2015. № 4 (162). C. 849-859.
77. Пчицкая Е.И, Попугаева Е.А., Власова О.Л. Б.И.. Роль белка STIM2 в формировании дендритных шипиков в условиях амилоидной синаптоксичности 2015.
78. Пчицкая Е.И., Жемков В.А., Безпрозванный И.Б. Динамические Микротрубочки При Болезни Альцгеймера: Связь С Патологией Дендритных Шипиков // Биохимия. 2018. № 9 (83). C. 1343-1350.