Введение 4
1 Литературный обзор 6
1.1 Метод позитронной эмиссионной томографии (ПЭТ) 6
1.2 Преимущества фтора-18 при использовании в методе ПЭТ 8
1.3 Метод нуклеофильного радиофторирования как основной метод получения
РФП для ПЭТ 9
1.3.1 Выделение фтора-18 из водной мишени циклотрона 10
1.3.2 Ароматическое нуклеофильное фторирование 11
1.3.3 Роль защитных и уходящих групп при введении метки фтор-18 в
ароматические субстраты 12
1.4 Особенности синтеза 6-[18Т]-Т-ФДОФА методом нуклеофильного
радиофторирования 13
2 Экспериментальная часть 16
2.1 Синтез 4,5 замещенных нитробензальдегидов 16
2.2 Радиохимический синтез 16
2.2.1 Оборудование 16
2.2.2 Реактивы и материалы 17
2.2.3 Подготовка модуля для нуклеофильного фторирования 17
2.2.4 Подготовка реагентов и материалов 19
2.3 Анализ реакционной смеси методом тонкослойной радиохроматографии
(радиоТСХ) 20
2.4 Получение фтора-18 и его комплекса с МФК 20
2.5 Проведение реакции нуклеофильного радиофторирования 21
2.6 Оценка эффективности снятия защиты с гидрокси групп при использовании
ТУА-УША в синтезе 6-[18Т]-Ь-ФДОФА 21
3 Результаты и обсуждение 23
3.1 Выбор защитных групп 23
3.2 Синтез 18Р-фторированных замещённых нитробензальдегидов IVA-VIIIA ....24
3.3 Сравнение результатов радиофторирования соединений IV-VIII и значений
химических сдвигов некоторых атомов углерода 26
3.4 Кислотный гидролиз 27
Выводы 29
Благодарности 30
Список цитируемой литературы
Позитронная эмиссионная томография (ПЭТ) - современный метод медицинской визуализации, позволяющий получать in vivoинформацию о нарушениях физиологических и биохимических процессов на молекулярном уровне. Исключительные возможности метода обусловлены использованием радиофармпрепаратов (РФП), меченных короткоживущими изотопами элементов- органогенов с позитронным типом распада (11С - T1/220.4 мин; 13N - Т1/2 9,98 мин; 15O - Т1/2 2,04 мин), а также 18F - Т1/2 109.8 мин.
Современной тенденцией развития ПЭТ является разработка новых РФП на основе все более сложных биомолекул. Прямое введение метки в такие молекулы зачастую требует сложного многостадийного процесса. Изотоп вводят в относительно простую реакционноспособную молекулу, и далее полученный радиоактивный синтон участвует в реакции или последовательности реакций, приводящих к образованию более сложных молекул.
В настоящее время 2-[18Р]-фтор-2-дезокси-Э-глюкоза ([18Р]ФДГ) является основным РФП для ПЭТ (более 80% исследований). ПЭТ с [18Р]ФДГ позволяет количественно определить скорость регионального потребления глюкозы - уникальную характеристику, непосредственно связанную с метаболической активностью опухоли, скоростью ее роста, степенью злокачественности и др. Это исследование играет огромную роль в современной онкодиагностике, однако, имеет ряд ограничений в случае опухолей с низкой скоростью гликолиза. Что касается опухолей мозга, их визуализация с [18Р]ФДГ осложняется высоким уровнем физиологического накопления глюкозы (основного энергетического субстрата мозга) серым веществом. Кроме того, [18Р]ФДГ утилизируется в макрофагах, продуцируемых в абсцессах или очагах воспаления в послеоперационный период или при инфильтрирующем росте, что является основной причиной ложно-положительных заключений [1].
Для диагностики опухолей мозга предложено использовать РФП класса аминокислот, например, Тфметил^^метионин. Однако, малый период полураспада углерода-11 (20,4 мин) приводит к сложностям в использовании данного радиотрейсера: невозможности проводить длительные исследования, необходимости начинать синтез с большой активности. Кроме того, применение радиотрейсеров на основе углерода-11 возможно лишь в центрах, оборудованных собственным циклотроном. В последние годы отмечается все больший интерес к фторированным аналогам аминокислот ([18Р]ФЛЛ), меченных более долгоживущим фтором-18, характеристики которых подробно рассмотрены в обзоре [2]. Предполагается, что [18Р]ФЛЛ являются перспективными агентами для дифференциации опухолевого и воспалительного процессов. В настоящее время наибольшее применение в диагностике опухолей находит меченный фтором-18 аналог тирозина, О-(2’-[18Р]фторэтил)-Ь-тирозин ([18Р]ФЭТ) [2]. Введение метки фтор-18 в алкильную цепочку молекулы [18Р]ФЭТ возможно простым и удобным методом прямого нуклеофильного радиофторирования (как и в случае [18Р]ФДГ), что во многом способствовало внедрению данного РФП в практику ПЭТ.
Другим важнейшим РФП класса аминокислот является 6-[18F]-L-3,4- дигидроксифенилаланин (6-[18Р]Ж-ФДОФЛ), радиотрейсер с широким спектром применения (диагностика болезни Паркинсона, глиом, нейроэндокринных опухолей и др.). Однако, его внедрение в практику тормозится отсутствием эффективных методов синтеза. В отличие от [18Р]ФЭТ, получение 6-[18F]-L- ФДОФЛ методом нуклеофильного радиофторирования является сложной задачей и осуществляется в несколько стадий. Первой из них является введение метки в ароматическое кольцо реакцией нуклеофильного замещения уходящей группы в молекуле бензальдегида (БЛ) на [18F] фторид в присутствии межфазных катализаторов. Гидроксильные группы в молекуле БЛ на этой стадии должны быть защищены и удаляются на последней стадии. Именно она представляется сложной для автоматизации в модулях синтеза: удаление традиционно используемых защитных метилендиокси- или 4,5-диметокси групп требует применения агрессивных реагентов и жестких условий (57% HI, 180-200°С, 20 мин).
Целью данной работы является поиск и экспериментальное исследование 4,5-замещённых нитробензальдегидов с лабильными защитными группами для использования в качестве предшественников в синтезе 6-|181'|-1,-ФДОФЛ. Необходимым требованием к этим соединениям являются высокая эффективность реакции нуклеофильного радиофторирования, а также возможность удаления защитных групп с использованием водных растворов HCl.
- изучена эффективность реакции радиофторирования серии новых 4,5-замещённых нитробензальдегидов, используемых в качестве предшественников в синтезе 6-[18F]- L-ФДОФА;
- по данным 13С ЯМР отмечена корреляция значения эффективности радиофторирования и величины химического сдвига атома углерода активного центра, на котором происходит замещение нитро-группы на фтор-18;
- для каждого из изученных нитробензальдегидов найдены условия снятия защитных групп на последней стадии синтеза 6-[18F]- L-ФДОФА;
- показано, что 4,5-диэтоксиметокси-2-нитробензальдегид (VI) обеспечивает высокую эффективность радиофторирования и возможность снятия защиты в мягких условиях и может быть использован в синтезе 6-|181’|-1,-ФДОФА в качестве предшественника.
[1] L.G. Strauss, J. Nucl. Med. 1996, V. 23. PP 1409-1415
[2] C. Huang, J. McConathy, J. Nucl. Med. 2013, V. 54. PP 1-4
[3] W.B. Ittner, M.M. Ter-Pogossian, Rev. Sci Inst., 1951, V.22, PP 638-641
[4] M.E. Phelps, E.J. Hoffman, N.A. Mullani, M.M. Ter-Pogossian, J Nucl. Med. 1975, V.16, PP 210-224
[5] M.M. Ter-Pogossian, M.E. Phelps, E.J. Hoffman, Radiology 1975, V.114, PP 446-453
[6] M.E. Phelps, J.C. Maziotta, H.R. Schelbert, New York, 1985, P. 704
[7] R.L. Wahl, J.W. Buchanan, Philadelphia, 2002, P. 462
[8] С.В. Медведев, Т.Ю. Скворцова, Р.Н. Красикова, Санкт-Петербург, 2008, С. 319
[9] Г.Е. Кодина, Р.Н. Красикова, Методы получения радиофармацевтических препаратов и радионуклидных генераторов для ядерной медицины, Учебное пособие для ВУЗов, Москва, ИД МЭИ,2014, С. 281
[10] P.W. Miller, N.J. Long, R.Vilar, A.D. Gee, Angew. Chem. Int. Ed. 2008, V. 47, PP 8998 - 9033
[11] R. H. Mach, S.W. Schwarz, PET Clin. 2010. V.5. PP 131-153
[12] R. M. Lambrecht, R. Neirinkhx, A. P. Wolf, Int. J. Appl. Rad. Isot., 1978, V.
29, P. 175
[13] M. Guilliame, A. Luxen, B. Nebeling, Int. J. Radiat. Appl. Instrum. Part A, 1991, P. 749
[14] R.J. Nickles, M. E. Daube, T. J. Ruth, Int. J. Appl. Rad.Isot., 1984, V. 35, P. 117
[15] В.В. Орловская, О.С. Фёдорова, Р.Н. Красикова, Радихимия, 2015, Т. 64, С.1518-1535
[16] J.R. Mercer, J. Pharm. Pharmaceut. Sci. 2007, V. 10, PP 180-202
[17] G. Firnau, R. Chiracal, E.S. Garnett, J. Nucl. Med., 1984, V. 25, PP 1228-1234.
[18] Н.А. Гомзина, Д.А. Васильев, Р.Н. Красикова, Радиохимия, 2002, Т. 44, С. 366-337
[19] C. Lemaire, L. Libert, A. Plenevaux, J. Aerts, X. Franci, A. Luxen, J. Fluorine Chem. 2012, V. 138, PP 48-55
[20] Y.-S. Ding, C.-Y. Shiue, J. S. Fowler, A. P. Wolf, A. Plenevaux, J. Fluorine Chem., 1990, V. 48, PP 189-205
[21] M. Attina, F. Cacace, A.P. Wolf, J. Label. Compd. Radiopharm, 1983, V. 20, PP 501-514
[22] R. Krasikova, Curr. Org. Chem., 2013, V. 17, PP 2097-2107
[23] H.H. Coenen, P.H. Elsinga, R. Iwata, M.R. Kilbourn, M.R.A.Pillai, M.G.R. Rajan, H.N.Jr. Wagner, J.J. Zaknun, Nucl. Med. Biol. 2010,V.37, PP 727-740
[24] Дж. МакОми, Защитные группы в органической химии, Мир, Москва, 1976, C. 391
[25] O. Couturier, A. Luxen, J.F.Chatal, Eur. J. Nucl. Med. Molec. Imag., 2004, V.
31. PP 1182-1206
[26] Р.Н. Красикова, О. Ф. Кузнецова, О.С. Федорова, И.К. Мосевич, В.И. Малеев, Ю.Н. Белоконь, Т.Ф. Савельева, А.С Сагиян, С.А. Дадаян, А.А. Петросян, Радиохимия, 2007, Т. 49, С. 449-454
[27] R. Krasikova, V. Orlovskaja, O. Fedorova, V. Maleev, T. Savelieva, Yu. Belokon, The Quart. J. Nucl. Med. Mol. Imaging, 2014, V. 58, PP 63-64
[28] В.В. Орловская, О.С. Фёдорова, Е.П. Студенцов, А.А Головина, Р.Н. Красикова, Радиохимия, 2016, №2, С. 507-512.