Введение 3
1 ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР 6
1.1 Физические основы функционирования липидно-пептидных систем 6
1.1.1 Структура и свойства биологических мембран 6
1.1.2 Модельные мембраны и их классификация 10
1.1.3 Структура и свойства пептидов 12
1.2 Липидно-протеиновые взаимодействия. Физические методы исследования. Роль 31P и 2Н ЯМР спектроскопии 18
1.2.1 Липидно-протеиновое взаимодействие. Специфическое липидно-пептидное взаимодействие 18
1.2.2 Основы ЯМР 23
1.2.3 Метод 31P и 2Н ЯМР спектроскопии в изучении модельных липидно-протеиновых систем 29
2 ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ 35
2.1 Объекты исследования 35
2.2 Приготовление образцов 40
2.3 Параметры экспериментальной аппаратуры 42
3 РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ 44
3.1 Результаты, полученные методом 31P ЯМР спектроскопии 44
3.2 Результаты, полученные методом 2Н ЯМР спектроскопии 59
ВЫВОДЫ 70
ЛИТЕРАТУРА 71
Физика конденсированного состояния является обширнейшей областью, включающей в себя множество подразделов. Среди наиболее динамично развивающихся из них можно выделить так называемый «Soft matter» - уникальное междисциплинарное направление, находящееся на стыке физики, химии и биологии. Это научное направление зародилось в 1970-х годах.
Одним из наиболее активно изучаемых классов объектов этого направления являются биологические системы, и, в частности, биомембраны и их модели. Дисциплина, в рамках которой происходят исследования этих объектов, называется «биомембранология». Она сосредоточена на получении информации о структурно-динамических свойствах биологических мембран, поскольку они представляют собой двумерную жидкокристаллическую систему, которая существует за счет физических взаимодействий. Физический аспект функционирования биологических мембран и подобных систем интенсивно исследуются при помощи всего арсенала современных физических методов, одним из основных из которых является метод ядерного магнитного резонанса (ЯМР).
Одной из актуальных задач, решаемых при помощи вышеописанного подхода, является изучение взаимодействия биологических мембран с антимикробными пептидами (АМП), и, в частности, протегринами. Научный интерес к протегринам обусловлен их антибактериальной, противогрибковой и противовирусной активностью как части иммунной системы млекопитающих [1,2]. При этом, поскольку механизм действия АМП на бактерии предполагает участие специфического липидно-пептидного взаимодействия, то АМП рассматриваются в качестве нового класса антибиотиков естественного происхождения [3,4]. Также считается, что именно благодаря такому механизму действия антибиотики на основе АМП не будут подвержены снижению эффективности, связанной с вырабатыванием резистентности у бактерий [5]. Очевидно, что для создания
таких лекарственных средств необходимо детальное и глубокое понимания механизма взаимодействия АМП с липидными мембранами.
Среди опубликованных работ, из которых можно получить некоторое представление о характере специфического липидно-пептидного взаимодействия, превалируют публикации предполагающие, что при внедрении в липидную систему пептиды формируют амфипатические структуры, одновременно содержащие положительно заряженные (или гидрофильные) и гидрофобные области [6]. Взаимодействие подобных дифильных образований с липидным бислоем приводит к структурным изменениям в мембране, таким как нарушения упорядоченности мембраны, формирование неламеллярных включений, мицелл, образование тороидальных пор и т.д. [4,7].
Несмотря на то, что большинство публикаций посвящено получению структурной информации о состоянии Протегринов [8,9,10,11], одна из альтернативных стратегий заключается в изучении интегральных свойств системы, таких как фазовое поведение мембраны, подвижность молекулярных компонент системы и т.п. В рамках данного подхода наиболее информативными представляются методы ЯМР-спектроскопии твердого тела, а в частности ее разновидности на ядрах 31P и 2H, которые и применялись в представленной работе. Также, отметим, что в рамках этого исследования была поставлена задача оценить влияние первичной структуры Протегринов на характер их взаимодействия с модельной мембраной и, как следствие, на ее интегральные свойства. С этой целью проводились эксперименты с модельными липидными системами, содержащими пептиды Протегрин-1, Протегрин-2, Протегрин-3, Протегрин-4 и Протегрин-5, имеющими различие в длине и составе аминокислотной последовательности [12]. Кроме того, если Протегрин-1 и его взаимодействие с липидами достаточно хорошо изучено [13,14], то остальные пептиды в данном аспекте исследуется впервые. Кроме того, особое внимание уделяется исследованию влияния температуры на характер взаимодействия и фазовое состояние мембраны. Для эксперимента был выбран диапазон температур, включающий точку основного фазового перехода гель - жидкий кристалл для исследованного липида.
Все измерения проведены на оборудовании ФЦКП ФХИКФУ. Работа выполнена при поддержке РФФИ гранта мол а № 14-04-31675.
1. Данные, полученные при помощи методов 2H и 31P ЯМР спектроскопии, позволяют заявить, что все исследованные пептиды при обеих концентрациях оказывают влияние на структурные свойства мембраны, следовательно, во всех случаях происходит взаимодействие Протегринов с бислоем.
2. Выявлено существенное различие во влиянии на степень упорядоченности гидрофобной части бислоя между пептидами ПГ-1, ПГ-2, ПГ-3 и ПГ-4, ПГ-5, предположительно обусловленное различием в конфигурации 0-изгиба между этими пептидами.
3. При молярной концентрации пептидов ПГ-1, ПГ-2 в 4% наблюдается образование изотропной фазы и упорядочение ацильных цепей липида в фазе геля - предположительно происходит встраивание димерных пептидных структур в бислой.
4. Протегрин-1 в концентрации в 4 % активирует процесс разрушения интегральной структуры мембраны, предположительно происходящий благодаря образованию олигомеров из нескольких димерных структур пептидных молекул, которые встраиваются в бислой.
5. Протегрин-5 наиболее сильно разупорядочивает ацильные цепи и меняет конфигурацию гидрофильной части бислоя среди всех пептидов, не нарушая целостности мембраны.
1. Papagianni, M. Ribosomally synthesized peptides with antimicrobial properties: biosynthesis, structure, function, and applications [Text] / M. Papagianni // Biotechnology Advances. - 2003. - V. 21. - P. 465 - 499.
2. Hancock, R. E. W. Peptide Antibiotics [Text] / R. E. W. Hancock, D. S. Chapple // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. - 1999. - V. 43. - P. 1317-1323.
3. Hancock, R. E. Antimicrobial and host-defense peptides as new anti-infective therapeutic strategies [Text] / R. E. Hancock, H. G. Sahl // Nature biotechnology. - 2006. - V. 24 (12). - P. 1551-1557.
4. Powers, J. P. S. The relationship between peptide structure and antibacterial activity [Text] / J. P. S. Powers, R. E. W. Hancock // Peptides. - 2003. - V. 24.
- №. 11. - P. 1681-1691.
5. Hancock, R. E. W. The role of antimicrobial peptides in animal defenses [Text] / R. E. W. Hancock, M. G. Scott // PNAS. - 2000. - V. 97. - P. 8856 - 8861.
6. Haney, E. F. Solution NMR Studies of Amphibian Antimicrobial Peptides: Linking Structure to function? [Text] / E. F. Haney, H. N. Hunter, K. Matsuzaki, H. J. Vogel // Biochimica et Biophysica Acta - Biomembranes. - 2009. - V. 1788. - P. - 1639 - 1655.
7. Brogden K. Antimicrobial peptides: Pore formers or metabolic inhibitors in bacteria? [Text] / K. Brogden // Nature Reviews Microbiology - 2005. - V. 3.
- P. 238-250.
8. Aumelas, A. Synthesis and Solution Structure of the Antimicrobial Peptide Protegrin-1 [Text] / A. Aumelas, M. Mangoni, C. Roumestand, L. Chiche, E. Despaux, G. Grassy, A. Chavanieu // European Journal of Biochemistry. -
1996. - V. 237 (3). - P. 575-583.
9. Fahrner, R. L. Solution structure of protegrin-1, a broad-spectrum antimicrobial peptide from porcine leukocytes [Text] / R. L. Fahrner, T.
Dieckmann, , S. S. Harwig, R. I. Lehrer, D. Eisenberg, J. Feigon // Chemistry & biology. - 1996 - V. 3 (7). - P. 543-550.
10. Usachev, K. S. High-resolution NMR structure of the antimicrobial peptide protegrin-2 in the presence of DPC micelles [Text] / K. S. Usachev, S. V. Efimov, O. A. Kolosova, A.V. Filippov, V. V. Klochkov // Journal of biomolecular NMR. -2015. - V. 61(3-4). - P. 227-234.
11. Usachev, K. S. Antimicrobial peptide protegrin-3 adopt an antiparallel dimer in the presence of DPC micelles: a high-resolution NMR study [Text] / K. S. Usachev, S. V. Efimov, O. A. Kolosova, E. A. Klochkova, A. V. Aganov, V. V. Klochkov // Journal of biomolecular NMR - 2015. - V. 62(1). - P. 71-79.
12. Miyasaki, K. T. Sensitivity of periodontal pathogens to the bactericidal activity of synthetic protegrins, antibiotic peptides derived from porcine leukocytes [Text] / K. T. Miyasaki, R. lofel, R. I. Lehrer //Journal of dental research. -
1997. - V. 76. - №. 8. - P. 1453-1459.
13. Yamaguchi S. et al. Solid-state NMR investigations of peptide-lipid interaction and orientation of a 0-sheet antimicrobial peptide, protegrin [Text] / S. Yamaguchi, T. Hong, A. Waring, R. I. Lehrer, M. Hong // Biochemistry. - 2002. - V. 41. - №. 31. - P. 9852-9862.
14. Gidalevitz, D., Interaction of antimicrobial peptide protegrin with biomembranes [Text] / D. Gidalevitz, Y. Ishitsuka, A. S. Muresan, O. Konovalov, A. J. Waring, R. I. Lehrer, K. Y. C. Lee // Proceedings of the National Academy of Sciences. - 2003. - V. 100 (11). - P. 6302-6307.
15. Рубин А. Б. Биофизика [Текст] / А. Б. Рубин // Ульяновск: ГУП ИПК «Ульяновский Дом Печати», 2000. - 468 с.
16. Геннис, Р. Биомембраны. [Текст] / Р. Геннис // М: Мир, 1997.-624 с.
17. Ивков, В.Г. Липидный бислой биологических мембран. [Текст] / В.Г. Ивков, Г.Н. Берестовский// Издательство «Наука». - 1982. - 224 c.
18. Ивков, В.Г. Динамическая структура липидного бислоя. [Текст] / В.Г. Ивков, Г.Н. Берестовский// Издательство «Наука». - 1981. - 296 c.
19. Chapman, D. Physical studies of phospholipids: thermotropic
lyotropicmesomorphism of some 1,2- diacylphosphatidylcholines (lecithins) [Text] / D. Chapman, R.M. Williams, and B.D. Ladbrooke // Chem. and Phys. Lipids.- 1967. - V. 1. - P.45-475.
20. Брагина, Н. А. Мембранология: Учебно-методическое пособие [Текст] / Н. А. Брагина, А. Ф. Миронов // Москва: Издательско-полиграфический центр МИТХТ им. М. В. Ломоносова, 2002. - 98с.
21. Aussenac F. Detailed structure and dynamics of bicelle phospholipids using selectively deuterated and perdeuterated labels. 2H NMR and molecular mechanics study [Text] / F. Aussenac, M. Laguerre, J.M. Schmitter, EJ. Dufourc // Langmuir. - 2003. - V. 19. - P. 10468 -10479.
22. Guard-Friar, D. Deuterium isotope effect on the stability of molecules: phospholipids [Text] / D. Guard-Friar, C. H. Chen, A. S. Engle //The Journal of Physical Chemistry. - 1985. - V. 89 (9). - P. 1810-1813.
23. Marsh, D. Molecular motion in phospholipid bilayers in the gel phase: Long axis rotation [Text] / D. Marsh // Biochemistry. - 1980. - V. 19. - P. 1632¬1637.
24. Andersen, O. S. Bilayer Thickness and Membrane Protein Function: An Energetic Perspective [Text] / O.S. Andersen, R. E Koeppe, II // Annual Review of Biophysics and Biomolecular Structure. - 2007. - V. 36 (1). - P. 107-130.
25. Gutte B. Peptides: Synthesis, Structures, and Applications [Text] / B. Gutte // Academic Press. - 1995. - 511 p.
26. Jenssen H. Peptide antimicrobial agents [Text] / H. Jenssen P. Hamill, R. E. W Hancock // Clinical microbiology reviews. - 2006. - V. 19. - №. 3. - С. 491-511.
27. Payne J.W. Peptides and micro-organisms [Text] / J.W. Payne // Advances in Microbial Physiology. - 1976. - V. 13. - P. 55-113.
28. Heller W. T. Membrane Thinning Effect of the 0-Sheet Antimicrobial Protegrin [Text] / W. T. Heller, A. J. Waring, R. I Lehrer, T. A. Harroun, T.
M. Weiss, L. Yang, H. W. Huang // Biochemistry. - 2000. - V. 39. - P. 139-145.
29. Brahmachary M. ANTIMIC: a database of antimicrobial sequences [Text] / M. Brahmachary, S. P. T. Krishnan, J. L. Y. Koh, A. M. Khan, S. H. Seah, T. W. Tan, V. Brusic, V. B. Bajic // Nucleic Acids Res. - 2004. - V. 32 (1). - P. 586-589.
30. Pellegrini, A. Isolation and identification of three bactericidal domains in the bovine a-lactalbumin molecule [Text] / A. Pellegrini, U. Thomas, N. Bramaz, P. Hunziker, R. von Fellenberg // Biochim. Biophys. Acta. - 1999. - V. 1426 (3). - P. 439-448.
31. Hancock, R. E. Clinical development of cationic antimicrobial peptides: from natural to novel antibiotics [Text] / R. E. Hancock, A. Patrzykat // Current Drug Targets - Infectious Disorders. - 1999. - V. 2. - P. 79-83.
32. Brogden, K. A. Detection of anionic antimicrobial peptides in ovine bronchoalveolar lavage fluid and respiratory epithelium [Text] /K. A. Brogden, M. Ackermann, K. M. Huttner // Infect. Immun. - 1999. - V. 66. - P. 5948-5954.
33. Tossi, A. Amphipathic, a-helical antimicrobial peptides [Text] / Tossi, A., Sandri, L. & Giangaspero, A. // Biopolymers - 2000. - V. 55. - P. 4-30.
34.Otvos, L., Jr. The short proline-rich antibacterial peptide family [Text] / L. Otvos, Jr. // Cellular and Molecular Life Sciences - 2002. -V. 59. - P. 1138-1150.
35. Gottler, L. M. Structure, membrane orientation, mechanism, and function of pexiganan - A highly potent antimicrobial peptide designed from magainin [Text] / L. M. Gottler, A. Ramamoorthy // Biochimica et Biophysica Acta - Biomembranes. - 2009. - V. 1788. - P. - 1680 - 1686.
36. Wi, S. Pore Structure, Thinning Effect, and Lateral Diffusive Dynamics of Oriented Lipid Membranes Interacting with Antimicrobial Peptide Protegrin- 1: 31P and 2H Solid-State NMR Study [Text] / S. Wi, C. Kim // Journal Phys. Chem. - 2008 - V. 112. - P. - 11402 - 11414.
37. Zasloff M.Antimicrobial peptides of multicellular organisms [Text] / M. Zasloff // Nature. - 2002. - V.415. - P.- 389-395.
38. Mani, R. Membrane-dependent oligomeric structure and pore formation of a P-hairpin antimicrobial peptide in lipid bilayers from solid-state NMR [Text] / R. Mani, S. D. Cady, M. Tang, A. J. Waring, R. I. Lehrer, M. Hong // Proceedings of the National Academy of Sciences. - 2006. - V. 103(44). - P. 16242-16247.
39. Tang, M. Structure and mechanism of P-hairpin antimicrobial peptides in lipid bilayers from solid-state NMR spectroscopy [Text] / M. Tang, M. Hong // Molecular BioSystems. - 2009. - V. 5(4). - P. 317-322.
40.Shai Y. Mode of action of membrane active antimicrobial peptides [Text] //Peptide Science. - 2002. - V. 66 (4). - V. 236-248.
41. Bolintineanu D. S. Computational studies of protegrin antimicrobial peptides: A review [Text] / D.S. Bolintineanu, Y.N. Kaznessis //Peptides. - 2011. - V. 32. -P. 188-201.
42. Kokryakov, V.N. Protegrins : leukocyte antimicrobial peptides that combine features of corticostatic defensins and tachyplesins [Text] / S. S. L. Harwig, E. A. Panyutich. A. A. Shevchenko, G. M. Aleshina, O. V. Shamova, H. A. Korneva, R. I. Lehrer // FEBS Letters - 1993. - V. 327 (2). - P. 231-236.
43. Zhao. C. The structure of porcine protegrin genes [Text] / C. Zhao, T. Ganz, R. I. Lehrer// FEBS Letters - 1995. - V. 368 (2). - P. 197-202.
44. Kandasamy, S. K. Binding modes of protegrin-1, a beta-strand antimicrobial peptide, in lipid bilayers [Text] / S. K. Kandasamy, R. G. Larson // Molecular Simulation - 2007. - V. 33 9 (10). - P. 799-807.
45. Zhao, C. Identification of a new member of the protegrin family by cDNA cloning [Text] / C. Zhao, L. Liu, R. I. Lehrer // FEBS letters. - 1994. - V. 346. - №. 2. - P. 285-288.
46. Lazaridis T. Membrane Interactions and Pore Formation by the Antimicrobial Peptide Protegrin [Text] / T. Lazaridis, Y. He, L. Prieto // Biophysical Journal - 2013. - V. 104 (3). - P. 633-642.
47. Jang, H. Conformational study of the protegrin-1 (PG-1) dimer interaction with lipid bilayers and its effect [Text] / H. Jang, B. Ma, R. Nussinov // BMC structural biology. - 2007. - V. 7. - №. 1. - P. 7-21.
48. Vivcharuk, V. “Dimerization of Protegrin-1 in Different Environments [Text] / V. Vivcharuk, Y. N. Kaznessis // International Journal of Molecular Sciences. - 2010. - V. 11 (9). - P. 3177-3194.
49.Steinberg D. A. Protegrin-1: a broad-spectrum, rapidly microbicidal peptide with in vivo activity [Text] / D. A. Steinberg, M. A. Hurst, C. A. Fujii, A. H. C. Kung, J. F. Ho, F.-C. Cheng, D. J. Loury, J. C. Fiddes //Antimicrobial agents and chemotherapy. - 1997. - V. 41 (8). - P. 1738-1742.
50. Mani, R. Solid-state NMR Investigation of the Selective Disruption of Lipid Membranes by Protegrin-1 [Text] / R. Mani, J.J. Buffy, A.J. Waring, R.I. Lehrer, M. Hong // Biochemistry. - 2004. - V. 43. - P. 13839-13848.
51. Cho, Y. Activity of Protegrins against Yeast-PhaseCandida albicans [Text] / Y. Cho, J. S. Turner, N.-N. Dinh, R. I. Lehrer // Infection and immunity. -
1998. - V. 66 (6). - P. 2486-2493.
52. Wender, P. A.; The design, synthesis, and evaluation of molecules that enable or enhance cellular uptake: peptoid molecular transporters [Text] / P. A. Wender, D. J. Mitchell, K. Pattabiraman, E. T. Pelkey, L. Steinman, J. B. Rothbard // PNAS - 2000. - V. 97. - P. 13003-13008.
53. Boman, H. G. Peptide antibiotics and their role in innate immunity [Text] / H.
G. Boman // Annual Review of Immunology - 1995. - V. 13. - P. 61-92.
54. Zasloff, M. Magainins, a class of antimicrobial peptides from Xenopus skin: isolation, characterization of two active forms, and partial cDNA sequence of a precursor [Text] / M. Zasloff // PNAS - 1987. - V. 84. - P. 5449-5453.
55. Boman, H. G. Mechanisms of action on Escherichia coli of cecropin P1 and PR-39, two antibacterial peptides from pig intestine [Text] / H. G. Boman, B. Agerberth, A. Boman // Infection and Immunity - 1993. - V. 61. - P. 2978¬2984.
56. Matsuzaki, K. Kinetics of pore formation by an antimicrobial peptide, magainin 2, in phospholipid bilayers [Text] / K. Matsuzaki, O. Murase, K. Miyajima // Biochemistry -1995. - V. 34. - P. 12553-12559.
57. Heller, W. T. Multiple states of 0-sheet peptide protegrin in lipid bilayers [Text] / W. T. Heller, A J. Waring, R. I. Lehrer, H. W. Huang // Biochemistry - 1998. - V. 37. - P. 17331-17338.
58. Huang, H. W. Action of antimicrobial peptides: two-state model [Text] / H. W. Huang // Biochemistry - 2000. - V. 39. -P. 8347-8352.
59. Teixeira, V. Role of lipids in the interaction of antimicrobial peptides with membranes / V. Teixeira, M. J. Feio, M. Bastos // Progress in lipid research. - 2012. - V. 51 (2). - P. 149-177.
60. Yang, L. Barrel-stave model or toroidal model? A case study on melittin pores [Text] / L. Yang, T. A. Harroun, T. M. Weiss, L. Ding, H. W. Huang // Biophysical Journal - 2001. - V. 81. - P. 1475-1485.
61. Pouny, Y., Interaction of antimicrobial dermaseptin and its fluorescently labeled analogues with phospholipid membranes [Text] / Y. Pouny, D. Rapaport, A. Mor, P. Nicolas, Y. Shai // Biochemistry - 1992. - V. 31. - P. 12416-12423.
62. Ladokhin, A. S. & White, S. H. ‘Detergent-like’ permeabilization of anionic lipid vesicles by melittin [Text] / A. S. Ladokhin, S. H. White // Biochim. Biophys. Acta - 2001. - V. 1514. - P. 253-260.
63. Bechinger, B. The structure, dynamics and orientation of antimicrobial peptides in membranes by multidimensional solid-state NMR spectroscopy [Text] / B. Bechinger // Biochim. Biophys. Acta - 1999. - V. 1462. - P. 157-183.
64. Matsuzaki, K. An antimicrobial peptide, magainin 2, induced rapid flip-flop of phospholipids coupled with pore formation and peptide translocation [Text] / O. Murase, N. Fujii, K. Miyajima // Biochemistry - 1996. - V. 35. - P. 11361-11368.
65. Almeida, P. F. Interactions of antimicrobial peptides with lipid bilayers [Text] / P. F. Almeida, A. Pokorny // Elsevier Inc. - 2012. - 34 p.
66.Silvestro, L. Membrane-induced folding of cecropin A [Text] / L. Silvestro, P.
H. Axelsen // Biophysical Journal - 2000. - V. 79. - P. 1465-1477.
67. Yandek, L. E. Mechanism of the cell-penetrating peptide transportan 10 permeation of lipid bilayers [Text] / L. E. Yandek, A. Pokorny, A. Floren, K Knoelke, U. Langel, P. F. F. Almeida // Biophysical Journal - 2007. - V. 92.
- P. 2434-2444.
68. Pokorny, A. Kinetics of dye efflux and lipid flip-flop induced by d-lysin in phosphatidylcholine vesicles and the mechanism of graded release by amphipathic, a-helical peptides [Text] / A. Pokorny, P .F. F. Almeida // Biochemistry - 2004. - V. 43. - P. 8846-8857.
69. Pokorny, A. Mechanism and kinetics of d-lysin interaction with phospholipid vesicles [Text] / A. Pokorny, T. H. Birkbeck, P. F. F Almeida // Biochemistry
- 2002. - V. 41. - P. 11044-11056.
70. Dathe, M. Structural features of helical antimicrobial peptides: their potential to modulate activity on model membranes and biological cells [Text] / M. Dathe, T. Wieprecht // Biochim. Biophys. Acta - 1999. - V. 1462. - P. 71-87.
71. Lehrer, R. I. Interaction of human defensins with Escherichia coli. Mechanism of bactericidal activity [Text] / R. I. Lehrer, A. Barton, K. A. Daher, S. S. Harwig, T. Ganz, M. E. Selsted // The Journal of Clinical Investigation - 1989. - V. 84. - P. 553-561.
72. Dathe, M. General aspects of peptide selectivity towards lipid bilayers and cell membranes studied by variation of the structural parameters of amphipathic helical model peptides[Text] / M. Dathe, J. Meyer, M. Beyermann, B. Maul, C. Hoischen, M. Bienert // Biochim. Biophys. Acta - 2002. - V.1558. - P. 171 - 186.
73. Маклаков, А.И. Самодиффузия в растворах и расплавах полимеров. [Текст] / А.И. Маклаков, В.Д. Скирда, Н.Ф. Фаткуллин // Издательство Казанского университета, 1987. - 256 с.
74. Чижик, В.И. Ядерная магнитная релаксация [Текст]/ В.И. Чижик. - Издательство С.-Петербургского университета, 2004. - 388 с.
75. Сликтер, Ч. Основы магнетизма [Текст] / Ч. Сликтер - М.: Мир, 1987. - 448 с.
76. De Graaf, R. A. In vivo NMR Spectroscopy. Principles and Techniques / R. A. De Graaf // John Wiley & Sons - 2007. - 592 p.
77. Evans, J. N. S. Biomolecular NMR Spectroscopy / J. N. S. Evans // Oxford University Press - 1995. - 464 p.
78. Berger, S. NMR Spectroscopy of the Non-metallic Elements / S. Berger. S. Braun, H. O. Kalinowski // Wiley - 1997. - 304 p.
79.Schiller J. 31P NMR Spectroscopy of Phospholipids: From Micelles to Membranes [Text] /J. Schiller, M. Muller, B. Fuchs, K. Arnold and D.Huster // Current Analytical Chemistry. - 2007. - V.3. - P. - 283-301.
80.Seelig, J. Lipid conformation in model membranes and biological membranes [Text] / J. Seeling, A. Seeling // Q. Rev. Biophys. - 1980. - V. 13. - P. 19-61.
81. Levitt, M. H. Spin Dynamics: Basics of Nuclear Magnetic Resonance, 2nd Edition / M. H. Levitt // John Wiley & Sons - 2007. - 740 p.
82. Kohler, S. J. Orientation and dynamics of phospholipid head groups in bilayers and membranes determined from phosphorus-31 nuclear magnetic resonance chemical shielding tensors [Text] / S. J. Kohler, M. P. Klein // Biochemistry -1977. - V. 16 (3). - P. 519-526.
83. Filippov A. V. 31P NMR Studies of Phospholipids [Text] / A. V. Filippov, A. M. Khakimov, B. V. Munavirov // Annual Reports on NMR Spectroscopy. - 2015. - V. 85. - P. 27-92.
84. Ulminus, J. Deuteron nuclear magnetic resonance studies of phase equilibriums in a lecithin-water system [Text] / J. Ulminus, H. Wennerstrom, G. Lindblom, G. Arvidson // Biochemistry - 1977. - V. 16 (26). - P. 5742-5745
85. Persson, S. Molecular ordering of interfacially localized tryptophan analogs in ester- and ether-lipid bilayers studied by 2H-NMR [Text] / S. Persson, A. Killian, G. Lindbom // Biophysical Journal. - 1998. - V. 75. - P. 1365 - 1371.
86. Bachem - Peptide Calculator [Электронный ресурс] //
http://www.bachem.com/service-support/peptide-calculator/
87.Snider, C. MPEx: a tool for exploring membrane proteins [Text] / C. Snider, S. Jayasinghe, K. Hristova, S. H. White //Protein Science. 2009. - V. 18 (12). P. 2624-2628.
88. Potrzebowski, M.J. Phosphorus-31 NMR Spectroscopy of condensed matter [Text] / M.J. Potrzebowski, S. Kazmierski, H. Kassassir // Annual Reports on NMR Spectroscopy. - 2010. - V. 70. - P. 35-114.
89. Bechinger B. Detergent-like properties of magainin antibiotic peptides: A 31P solid-state NMR spectroscopy study [Text] / B. Bechinger //Biochimica et Biophysica Acta. - 2005. - V. 1712. - P. 101-108.
90. Picard, F. 31P NMR first spectral moment study of the partial magnetic orientation of phospholipid membranes [Text] / F. Picard, M.-J. Paquet, J. Levesque, A. Belanger, M. Auger //Biophysical journal. - 1999. - V. 77 (2).
- P. 888-902.
91.Smith, I. C. P. Phosphorus-31 NMR of phospholipids in membranes [Text] /
I. C.P Smith, I.H. Ekiel // Phosphorus-31 NMR: Principles and applications. Academic Press Inc. - 1984. - P. 447-475.
92.Sokolov, Y. Membrane channel formation by antimicrobial protegrins [Text] / Y. Sokolov, T. Mirzabekov, D. W. Martin, R. I. Lehrer, B. L. Kagan //Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Biomembranes. - 1999. - V. 1420(1).
- P. 23-29.
93. Usachev, K. S. NMR structure of the Arctic mutation of the Alzheimer’s A0 (1-40) peptide docked to SDS micelles [Text] / K. S. Usachev, A. V. Filippov, B. I. Khairutdinov, O. N. Antzutkin, V. V. Klochkov //Journal of Molecular Structure. - 2014. - V. 1076. - P. 518-523.
94. Auger, M. Slow motions in lipid bilayers. Direct detection by two-dimensional solid-state deuterium nuclear magnetic resonance [Text] / M. Auger, I. C. Smith, H. C. Jarrell // Biophysical Journal. - 1991. - V. 59. - P. - 31 - 38.
95.Ouellet, M. Insights on the Interactions of Synthetic Amphipathic Peptides with Model Membranes as Revealed by 31P and 2H Solid-State NMR and Infrared Spectroscopies [Text] / M. Ouellet, G. Bernard, N. Voyer and M. Auger // Biophysical Journal. - 2006. - V. 90. - P. 4071-4084.
96. Davis, J.H. The description of membrane lipid conformation, order and dynamics by 2H-NMR [Text] / J. H. Davis // Biochim. Biophys. Acta - 1983. - V. 737 - P. 117-171.
97. Buffy, J. J., (2003). Solid-state NMR investigation of the depth of insertion of protegrin-1 in lipid bilayers using paramagnetic Mn 2+ [Text] / J. J. Buffy, T. Hong, S. Yamaguchi, A. J. Waring, R. I. Lehrer, M. Hong //Biophysical journal. - 2003. -V. 85 (4). - P. 2363-2373.