ВВЕДЕНИЕ 4
ЦЕЛЬ И ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ 6
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 7
1.1 Сероводород, структура, физико-химические свойства 7
1.2. Эндогенный синтез сероводорода 8
1.З. Оксид азота, структура, физико-химические свойства 10
1.4. Механизм действия и физиологические функции оксида азота 12
1.5. Физиологическая роль сероводорода в желудочно-кишечном тракте 15
1.5.1. Механизмы сократимости и регуляции двигательной активности гладко
- мышечных клеток в желудочно-кишечном тракте 15
1.5.2. Влияние H2S на функционирование желудочно-кишечного тракта 27
2. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ 31
2.1. Объект и методы исследования 31
2.1.1. Объект исследования и растворы 31
2.1.2. Метод тензометрии и анализ данных 32
2.1.3. Статистическая обработка экспериментальных данных 35
3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ 36
3.1. Влияние донора сероводорода на спонтанную сократительную
активность тощей кишки крысы 36
3.2. Влияние NaHS на вызванные карбахолином сокращения тощей кишки. 39
3.3. Роль блокатора NO-синтазы, донора N0 в эффектах сероводорода на
вызванные карбахолином сокращения 41
3.4. Роль циклических нуклеотидов в эффектах сероводорода на вызванные
сокращения тощей кишки 44
3.5. Влияние внутриклеточной концентрации кальция на фоне NaHS на
вызванные сокращения карбахолином 49
ЗАКЛЮЧЕНИЕ 53
ВЫВОДЫ 55
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ 56
Сероводород (H2S) и оксид азота (N0) в конце прошлого века были определены как новый вид посредников — газомедиаторов, вместе с монооксидом углерода [Wang, 2002; Boehning, 2003; Ситдикова, Зефиров, 2006; Magierowski, 2013]. Газообразные посредники представляют собой небольшие молекулы, которые могут легко диффундировать через клеточные мембраны, образуются в нейронах в ответ на вход ионов Са2+. Они выделяются из любой части клетки, а также не хранятся в везикулах и не высвобождаются экзоцитозом. Для газовых медиаторов на постсинаптической мембране нет рецепторов, они связываются с «ферментным рецептором». В отличие от классических медиаторов, газы обычно участвуют в передаче ретроградного сигнала от постсинаптического к пресинаптическому нейрону и также могут продуцироваться в глиальных клетках. Эти газы эндогенно синтезируются с помощью ферментов, их синтез является регулируемым [Wang, 2002; Ситдикова, 2006; Ситдикова, 2010; Boehning, 2003].
NO является одним из самых маленьких молекул в природе [Nitin I., 2011]. Является свободным радикалом, играет роль универсального регулятора многих физиологических процессов в организме. Оксид азота образуется в тканях из L-аргинина с помощью синтазы оксида азота (NOS) в присутствии 02 и НАДФН [Nitin I., 2011]. Многие клетки млекопитающих способны синтезировать N0. В последние годы были проведены многочисленные исследования для определения роли N0 в качестве эндогенного модулятора в многочисленных физиологических функциях. В ЖЕСТ N0 участвует в обеспечении двигательной функции, регуляции перистальтики кишечника, опорожнении желудка [Nitin I., 2011]. Кроме того, N0 следует классифицировать как один из наиболее важных факторов, защищающих слизистую оболочку желудка, что проявляется в способности противостоять воздействию агрессии на нее, появлению и заживлении эрозий и язв [Hofman J., 2000].
Как и другие газообразные посредники, H2S оказывает расслабляющее действие на гладкие мышцы в сердечно - сосудистой системе, желудочно- кишечном тракте (ЖКТ), репродуктивной системе [Xu et al., 2008; Lowiska, Beltowski, 2007]. Данные о влиянии H2S на двигательную активность неоднозначны, был выявлен расслабляющий эффект этого газомедиатора в различных отделах ЖКТ у разных видов животных [Hosoki et al., 1997; Teague et al., 2002; Dhaese et al., 2010; Nagao et al., 2012; Kasparek, 2012]. Однако есть данные и о двойственной роли H2S в регуляции двигательной активности ЖКТ в зависимости от концентрации [Zhao et al., 2009; Габитова, 2017].
Механизмы действия H2S по данным разных авторов неоднозначны и могут быть связаны как с активацией К-каналов [Gallego et al., 2008, Zhao et al., 2009; Ситдикова, 2010; Габитова, 2017], взаимодействием с системой NO [Gallego et al., 2008], так и влиянием на внутриклеточные ферменты, которые регулируют сократимость [Nagao et al., 2012; Ситдикова, 2011]. Таким образом, несмотря на свидетельства того, что H2S и N0 проявляют разнообразные эффекты в ЖКТ, механизмы взаимодействия газов достаточно не изучены.
ЦЕЛЬ И ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ
Целью работы было изучение взаимодействия H2S и N0 в регуляции карбахолин индуцированных сокращений тощей кишки крысы.
В соответствии с целью были поставлены следующие задачи:
1. Изучить действие донора H2S - NaHS на спонтанные и вызванные карбахолином сокращения гладких мышц тощего кишечника крысы.
2. Исследовать роль NO-синтазы, донора N0 в эффектах H2S на вызванные карбахолином сокращения.
3. Исследовать роль циклических нуклеотидов в эффектах H2S.
4. Выявить роль вне- и внутриклеточного кальция в эффектах H2S на вызванные карбахолином сокращения.
В результате проведенных экспериментов нами было показано, что донор H2S NaHS оказывает дозозависимое угнетение спонтанной сократительной активности сегмента тощей кишки крысы. При этом NaHS также вызывает угнетение вызванного карбахолином сокращения, что свидетельствует об участии сигнальных механизмов, запускаемых активаций мускариновых ХР в эффектах H2S. Известно, что активация М3-ХР приводит преимущественно к активации белка Gq и, как следствие, к активации фосфолипазы С, гидролизу фосфоинозитидов и высвобождению Са из внутриклеточных депо, в свою очередь, Са2+ вызывает ряд внутриклеточных реакций — либо сам по себе, либо через фосфорилирование эффекторных белков.
Анализ роли системы N0 показал, что эффекты NaHS снижаются при блокировании синтеза N0 или увеличение концентрации N0 в тканях. Поскольку эффекты N0 опосредуются изменением концентрации циклических нуклеотидов, нами были проведены исследования с повышением уровня цАМФ и цГМФ в клетке с использованием мембранопроникающих аналогов. Оказалось, что повышение уровня цАМФ и цГМФ не оказывает достоверного влияния на эффекты NaHS, однако, блокирование гуанилатциклазы уменьшало эффекты NaHS. Таким образом, система N0 - гуанилатциклаза работает в угнетающем действии H2S на вызванные КХ сокращения.
Изменение уровня кальция является ключевым фактором в регуляции сократительной активности. Поэтому мы провели исследование с изменением вне- и внутриклеточного уровня в клетках. Уменьшение ионов Са во внеклеточном растворе не изменяло эффектов H2S, при этом ингибирование освобождения Са2+ из внутриклеточных депо приводило к уменьшению эффектов NaHS.
Таким образом, можно предположить, что при активации М-ХР происходит увеличение уровня внутриклеточного Са2+ за счет входа через потенциалзависимые Са-каналы и выброса из СПР, а кроме того, и усиление синтеза N0, и повышение уровня цГМФ. Одной из важных мишеней N0 является внутриклеточная растворимая ГЦ. Активация этого энзима сопровождается образованием цГМФ. Повышение уровня цГМФ приводит к снижению уровня ионов кальция в цитозоле клеток и ослаблению связи между миозином и актином, под влиянием которого происходит релаксация гладких мышц.
1. Ашмарин, И. И. Нейрохимия [Текст] / И. П. Атттмарин, П. В. Стукалова // М.: Изд. Института биомедицинской химии РАМН. - 1996. - С. 470.
2. Ванин, А.Ф. Депонирование оксида азота в кровеносных сосудах in vivo [Текст] / Ванин А.Ф., Манухина Е.Б., Малышев И.Ю., Покидышев Д. А., Смирин Б.В. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 1999. - N6.-С. 629-632.
3. Васильев, В. Ю. Циклический аденозинмонофосфат — биологическая роль и механизм действия [Текст] / В. Ю.Васильев, Н. Н.Гуляев, Е.
С.Северин // «Журнал Всесоюзного химического общества им. Д. И. Менделеева». - 1975. - Т. 20, № 3.
4. Габитова, Д. М. Роль циклических нуклеотидов в действии сероводорода на сокращения тощей кишки крысы [Текст] / Д. М. Еабитова, И. Ф. Шайдуллов, Е. И. Сабируллина, М. У. Шафигуллин, Ф. Е. Ситдиков, Е. Ф. Ситдикова // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2017. -Т. 163. -№1. - С. 18-22.
5. Зарипова, Р. И. Изменение содержания оксида азота в тканях крыс при гипокинезии различной длительности [Текст] : дис. ... канд. биол. наук
03.03.1. Защищена 25.12.2012 / Р. И. Зарипова ; Казанский (Приволжский) федеральный ун-т. - Казань, 2012. - 131 л.
6. Зефиров, А. Л. Эффекты экзогенного оксида азота на секрецию медиаторв и ионные токи двигательного нервного окончания / А. Л. Зефиров,
Р. Р. Халиуллина, А.А. Анучин // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 1999. - Т. 128, №8. - С. 144-147.
7. Ковалев, И. В. Исследование механизмов N0 - зависимого расслабления гладких мышц аорты крысы с помощью нитросоединений [Текст] / И. В. Ковалев, А. А. Панов, А. Е. Попов // Экспер. и клин, фармакол., 64 (3). - 2001. - С. 33 - 36.
56
8. Крутецкая, З.И. Механизмы внутриклеточной сигнализации [Текст] / 3. И. Крутецкая, О. Е. Лебедев, Л. С. Курилова // Монография. - Спб.: Изд- во С. Петер. Ун-та. - 2003. - С. 208.
9. Лакин, Г.Ф. Биометрия [Текст] / Г.Ф. Лакин // М.: Наука. - 1984. - С. 351
10. Реутов, В. П. Циклические превращения оксида азота в организме млекопитающих [Текст] / Реутов В.П., Сорокина Е.Г., Охотин В.Е., Косицын Н.С.//М.: Наука, 1998.
11. Ситдикова, Г. Ф. Еазообразные посредники в нервной системе [Текст] / Е. Ф. Ситдикова, А. Л. Зефиров // Рос. Физиол. Журнал. - 2006. - Т. 92, №
7. -С. 872-882.
12. Ситдикова, Г. Ф. Сероводород: от канализаций Парижа к сигнальной молекуле [Текст] / Е.Ф. Ситдикова, А.Л.Зефиров // Природа 2010 № 9 С. 29- 37.
13. Ситдикова Г. Ф. Исследование роли кальциевых и калиевых каналов в эффектах сероводорода на сократимость миокарда лягушки [Текст] / Е. Ф. Ситдикова, Н. Н. Хаертдинов, А. Л. Зефиров // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2011. - Т. 151, № 2, С. 124-128.
14. Солнцева, Е. И. Циклический ЕМФ имитирует потенциирующий эффект ноотрона винпоцетина на высокопороговый А-ток нейронов моллюска [Текст] / Е. И. Солнцева, Ю. В. Буканова // Российсий физиол. ж-л им. И. М. Сеченова 84(8). - 1998. - С. 741-746.
15. Туракулов, Я.Х. Циклические нуклеотиды и регуляция клеточного метаболизма [Текст] / Я. X. Туракулов, Т. С. Саатов, С. К. Халиков, Э. И. Исаев, М. X. Еайнутдинова // Издательство «Фан». - 1983. - С. 240.
16. Шафигуллин, М. У. Эффекты донора сероводорода на спонтанную сократительную активность желудка и тощей кишки крысы [Текст] / М. У. Шафигуллин, Р. А. Зефиров, Е. И. Сабируллина, А. Л. Зефиров, Е. Ф. Ситдикова // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2014. Т. 157, №3, С. 275-280.
17. Abe, К. The possible role of hydrogen sulfide as an endogenous neuromodulator [Text] / K. Abe, H. Kimura // J. Neurosci.- 1996. - Vol.16. - P.1066-1071.
18. Albina, J. E. Nitric-oxide-Mediated apoptosis in murine peritoneal macrophages [Text] / J. E. Albina // J. Immunol. - 1997. - P: 5080-5085.
19. Ali, MY. Regulation of vascular nitrogen oxide in vitro and in vivo; A new role for endogenous hydrogen sulfide? [Text] / MY. Ali, CY. Ping, YY. Mok, L. Ling, M. Whiteman, M. Bhatia, PK. Moore // Br. J. Pharmacol 2006. - P. 625- 634.
20. Alioua, A. The large conductance, voltage - dependent, and calcium - sensitive K+ channel, Hslo, is target of cGMP - dependent protein kinase phosphorylation in vivo [Text] / A. Alioua, Y. Yoshio Tanaka, L. Toro et al //
J.Biol. Chemistry. - 1998. - V.273. - № 49. - P. 32950-56.
21. Andreopoulos, S. Molecular aspects of soluble guanylyl cyclase regulation [Text] / S. Andreopoulos, A. Papapertropoulos // General Pharmacology. - 2000. - V. 34.-P. 147 - 157.
22. Ashman, G Isolation of adenosine 3, 5 - monophosphate and guanosine 3.5 - monophosphate from rat urine [Text] / G. Ashman, R. Lipton, M. Melicow, T. Price // Biochem. Biophys. Res. Commun. - 1963. - V. 11. - P. 330 - 334.
23. Beauchamp, R.O. A critical review of the literature on hydrogen sulfide toxicity [Text] / R.O. Beauchamp, J.S. Bus, J.A. Popp, C.J. Boreiko, D.A. Andjelkovich // Critical Reviews in Toxicology.- 1984,- V.13.- P. 25-97.
24. Boehning, D. Novel neural modulators [Text] / D.Boehning, S.H.Snyder // Annu. Rev. Neurosci. - 2003. - V.26. - P. 105-131.
25. Brown, J. F. Nitric oxide generators and cGMP stimulate mucus secretion by rat gastric mucosal cells [Text] / J. F. Brown, A.C. Keates // J. Physiol. - 1993. -P: 418-422.
26. Buldring E. Smooth muscle[Text] / E. Buldring E, A. F. Broding, A. W. Jones, T. Tomita // London, Edward Arnold. - 1970. - 85-87
27. Caulfield M. P. International Union of Pharmacology. XVII. Classification of muscarinic acetylcholine receptors [Text] / M. P. Caulfield., N.J. Birdsall // Pharmacol. Rev., 1998. - V. 50. - №2. - P. 279-290.
28. Charles, W. Leffler. Carbon monoxide and hydrogen sulfide: Gaseous messengers in cerebrovascular circulation[Text] / Charles W. Leffler, Helena Parfenova, J. H. Jaggar, Rui Wang // J. Appl. Physiol. - 2006. - 100. - P. 1065- 1076.
29. Cook, D.I. Handbook of Physiology. The Gastrointestinal System. Salivary, Pancreatic, Gastric and Hepatobiliary Secretion [Text] / Young, J.A., Cook, D.I.,
J.G. Forte // American Physiological Society. - 1989. - V. 3. - P. 1-23.
30. Denninger, JW. Guanylate cyclase and the NO/cGMP signaling pathway [Text] / JW. Denninger, MA. Marietta // Biochimica et Biophysica Acta. - 1999. - V. 1411.-P. 334-350.
31. Dhaese, I. Mechanisms of action of hydrogen sulfide in relaxation of mouse distal colonic smooth muscle [Text] / I. Dhaese, I. Van Colen, R.A. Lefebvre // European Journal of Pharmacology. -2009. - V.628. - 179-186.
32. Elliott, S. N. Nitric oxide: A regulator of mucosal and injury [Text] / S. N. Elliott//Gastroenterol. - 1998. -P. 792-803.
33. Fiorucci S. The emerging roles of hydrogen sulfide in the gastrointestinal tract and liver [Text] / S. Fiorucci, E. Distrutti, G. Cirino, J. L. Wallace // Gastroenterology. -2006. - V.131. - P.259-271.
34. Gallego D. The gaseous mediator, hydrogen sulphide, inhibitsin vitro motor patterns in the human, rat and mouse colon and jejunum [Text] / D. Gallego, P. Clave, J. Donovan, R. Rahmati, D. Grundy, M. Jimenez, M. J. Beyak // Neurogastroenterology & Motility. - 2008. - V.20. - P.1306-1316.
35. Gil, V. Effects of inhibitors of hydrogen sulphide synthesis on rat colonic motility [Text] / V. Gil, D. Gallego, M. Jimenez // Br J Pharmacol 2011. - P. 485- 498.
36. Han, YF. Evidence that endogenous hydrogen sulfide exerts an excitatory effect on gastric motility in mice [Text] / YF. Han, X. Huang, X. Guo, YS. Wu, DH. Liu//Eur J Pharmacol. - 2011. P. 85-95.
37. Hardman, J. Guanylycyclase, an enzyme catalyzing the formation of guanosine 3,5 - monophosphate from guanosine triphosphate [Text] / J. Hardman,
E. Sutherland // J. Biol. Chem. - 1969. - V. 244. - P. 6363-6270.
38. Hennig, B. Actions of hydrogen sulphideon ion transport across rat distal colon [Text] / B. Hennig, M. Diener // Br J Pharmacol. - 2009. - V. 158(5). - P. 1263-75.
39. Hofmann, F. Rising behind NO: cGMP - dependent protein kinases [Text] /
F. Hofmann, A. Ammendola, J. Schlossmann // J. Cell Science. - 2000. - V.113. - P. 1671-1676.
40. Hosoki, R. The possible role of hydrogen sulfide as an endogenous smooth muscle relaxant in synergy with nitric oxide [Text] / R. Hosoki, N. Matsuki, H. Kimura // Biochem Biophys Res Commun. - 1997. - V.237. - 527-531.
41. Hourani S. M. Role of cyclic nucleotides in vasodilations of the rat thoracic aorta induced by adenosine analogues [Text] / S. M. Hourani, K. Boon, H. M. Fooks, D. J. Prentice // Nature publishing group British journal of pharmacology 133 (6).-2000. - P. 833-840.
42. Huang, X. Different regulatory effects of hydrogen sulfide and nitric oxide on gastric motility in mice [Text] / X Huang, XM Meng, DH Liu, YS Wu, X Guo, HL Lu, XY Zhuang, YC Kim, WX Xu // Eur J Pharmacol 2013. - P. 276-285.
43. Huxley, H. E. The mechanism of muscular contraction [Text] / Science.
1969. -V. 164.-P. 361
44. Huxley, H. E. Structural changes in actin and myosin containing filaments during contraction [Text] / Cold. Spr. Harb. Symp. Quant. Biol. - 1973. - V.37. - P. 361-376.
45. Ito, S. Functional gastric morphology // Raven Press. - 1981. - 517-550.
46. Johnson, L. R. Physiology of the gastrointestinal tract [Text] // Raven Press. - 1981.-V.l -P. 1109-1127.
47. Kasparek, M. S. Hydrogen sulfide modulates contractile function in rat jejunum [Text] / M. S. Kasparek, D. R. Linden, G. Farrugia, M. G. Sarr // JSurgRe- 2012. - V.175. - 234-242.
48. Kimura, H. Hydrogen sulfide: its production, release and functions [Text] / H. Kimura // Amino Acids. 2011. - P. 21.
49. King, B. N. Nitrergic secretomotor neurotransmitter in the chloride secretory response to serotonin [Text] / B. N. King // Dig. Dis. Sci. - 2004. - P: 196-2014.
50. Kiss, B. Mechanism of action of vinpocetine [Text] / B. Kiss, E. Karpati // ActaPharm Hung 66: 5. - 1996. -P. 213—224.
51. Kubo, S. Hydrogen sulfide causes relaxation in mouse bronchial smooth muscle [Text] / S. Kubo, I. Doe, Y. Kurokawa, A. Kawabata // J. Pharmacol. Sci.- 2007,- V. 104. - P. 138-146, 392-396.
52. Kuhn, R. Relaxation of human ureteral smooth muscle in vitro by modulation of cyclic nucleotide- dependent pathways [Text] / R. Kuhn, S. Uckert,
C. G. Stief, M. C. Truss, B. Lietz, E. Bischoff, M. Schramm, U. Jonas // Urol Res,
28. - 2000.-P. 110-115.
53. Kwiecien, S. The role of reactive oxyden species in action of nitric oxide- donors on stress-induced gastric mucosal lesions [Text] / S. Kwiecien // J. Physiol. Pharmacol. - 2002. - P. 761-773.
54. Linden, D. R. Endogenous production of H2S in the gastrointestinal tract: still in search of a physiologic function [Text] / D. R. Linden, M. D. Levitt, G. Farrugia, J. H. Szurszewski // Antioxidants & redox signaling. - 2010. - V. 12. - 1135-1146.
55. Liu, Y. Actions of hydrogen sulfide and ATP-sensitive potassium channels on colonic hypermotility in a rat model of chronic stress [Text] / Y. Liu, H. Luo, C. Liang, H. Xia, W. Xu, J. Chen, M. Chen // PLoS One. - 2013.
56. Lowicka, E. Hydrogen sulfide (H2S) — the third gas of interest for pharmacologists [Text] / E. Lowicka, J. Beltowski // Pharmacol. Rep.- 2007,- V. 59. -P. 4-24.
57. Magierowski, M. Role of hydrogen sulfide in the physiology of gastrointestinal tract and in the mechanism of gastroprotection [Text] / M. Magierowski, K. Jasnos, S. Kwiecien, T. Brzozowski // Postepy Hig Med Dosw. -
2013. -V. 67.-P. 150-156.
58. Martin, G.R. Hydrogen sulphide synthesis in the rat and mouse gastrointestinal tract [Text] / G. R. Martin, G. W. McKnight, M. S. Dicay, C. S. Coffin, J.G.P. Ferraz, J.L. Wallace // Digestive and Liver Disease. 2010. V. 42. P. 103-109.
59. Medeiros, JV. Role of KATP channels and TRPV1 receptors in hydrogen sulfide-enhanced gastric emptying of liquid in awake mice [Text] / JV. Medeiros, VH. Bezerra, LT. Lucetti, RC. Lima-Jimior // Eur J Pharmacol 2012. - P. 57-63.
60. Meiss, R.A. Cellular aspects of smooth muscle function [Text] // Cambridge University Press. - 1997. -P. 169-209.
61. Mekki, M. Emerging role of hydrogen sulfide in colonic physiology and pathophysiology [Text] / M. Mekki, D. Collins, N. Docherty, A.W. Baird, P.R. O'Connell // Inflammatory Bowel Diseases. - 2011. - V. 17. - P. 1620-1625.
62. Murthy, K. S. G protein-dependent activation of smooth muscle eNOS
mediated by the natriuretic peptide - C receptor [Text] / K. S. Murthy, J.G. Jin, B.
Q. Teng, G. M. Makhlouf // Am J Physiol 275. - 1998.
P. 1409- 1416
63. Nagao, M. Role of hydrogen sulfide as a gasotransmitter in modulating contractile activity of circular muscle of rat jejunum [Text] / M. Nagao, J.A. Duenes, M.G. Sarr // J Gastrointest Surg - 2012. - V.16. - 334-343.
64. Nitin, I. Nitric Oxide and the Gastrointestinal Tract [Text] / I. Kochar Nitin, V. Chandewal Anil, L. Bakal Ravindra, N. Kochar Priya // International Journal of Pharmacology. -2011. -P. 31-39.
65. Patacchini, R. Hydrogen sulfide (H2S) stimulates capsaicin-sensitive primary afferent neurons in the rat urinary bladder [Text] / R. Patacchini, P. Santicioli, S. Giuliani, CA. Maggi // Br J Pharmacol 2004. - P. 31-34.
66. Purves D. Neuroscience [Text] / D. Purves., G. J. Augustine, D. et al. Fitzpatrick 114rd ed. Sinauer Associates., 2008. - P. 122-126.
67. Reiffenstein, R. J. Toxicology of hydrogen sulfide [Text] / R. J. Reiffenstein, C. William Hulbert, Ro. H. Sheldon // Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. - 1992. - 109-134.
68. Ruegg J. C. Smooth muscle tone [Text] / J. Ruegg // Physiol Rev., 51.201. - 1971. - P. 85-87.
69. Russo, A. Evidence that nitric oxide mechanisms regulate small intestinal motility in humans [Text] / A. Russo, R. Fraser // Gut. - 1999. - P: 72-76.
70. Schicho, R. Hydrogen Sulfide Is a Novel Prosecretory Neuromodulator in the Guinea-Pig and Human Colon [Text] / R. Schicho, D. Kmeger, F. Zeller, C. W. Von Weyhem, T. Frieling, H. Kimura, I. Ishii, R. De Giorgio, B. Campi, M. Schemann // Gastroenterology. -2006. - V.131. - P.1542-1552.
71. Sidhu, R. L-cysteine and sodium hydrosulphide inhibit spontaneous contractility in isolated pregnant rat uterine strips in vitro[Text] / R. Sidhu, M. Singh, G. Samir, R. J. Carson// Pharmacol. Toxicol. - 2001. - 88. - P. 198-203.
72. Sitdikova, G.F. Phosphorylation of BK channels modulates the sensitivity to hydrogen sulfide (H2S) [Text] / GF Sitdikova, R Fuchs, V Kainz, TM Weiger, A Hermann//Front. Physiol. 5:431. doi:10.3389/fphys.2014.00431
73. Sha, L. Effect of endogenous hydrogen sulfide on the transwall gradient of the mouse colon circular smooth muscle [Text] / L. Sha, DR. Linden, G. Farmgia // JH.J Physiol. - 2014.-P. 1077-1089.
74. Somlyo, A. P. Signal transduction and regulation in smooth muscle [Text] /
A. P. Somlyo, A. V. Somlyo //Nature 372. - 1994. -P. 231-236.
75. Stief, C. G. Phosphodiesterase (PDE) is oenzymes in human ureteral smooth muscle: identification, characterization and functional effects of various PDE inhibitors in vitro [Text] / C. G. Stief, A. Taher, M. C. Tmss, A. J. Becker, P. Schulz-Knappe, M. Meyer // Urol Int (55). - 1995. - P. 183-189.
76. Sutherland, E.W. Factionation and characterization of a cyclic adenine ribonucleotide formed by tissue particles [Text] / E. W. Sutherland, I. W. Rail // Biol. Chem. - 1958. - V. 232. - P. 1077-1059.
77. Tang Ch. Hydrogen Sulfide as a New Endogenous Gaseous Transmitter in the Cardiovascular System [Text] / Ch. Tang, X. Li, J. Du // Current Vascular Pharmacology. - 2006. - V.4. - P.17-22.
78. Teague, B. The smooth muscle relaxant effect of hydrogen sulphide in vitro: evidence for a physiological role to control intestinal contractility [Text] / B. Teague, S. Asiedu, P. K. Moore // Br. J. Pharmacol.- 2002. - V. 137. - P. 139-145.
79. Unwin N. Refined structure of the noritinic acetylcholine receptor at 4A resolution [Text] / N. Unwin // Journal of Molecular Biology, 2005. - V. 346. - №4. - P. 967-989.
80. Vizi E. S. Synaptic and Nonsynaptic Release of Transmitters [Text] /В. Lendvai, E. S. Vizi //In: Handbook of Neurochemistry and Molecular Neurobiplogy: Neurotransmitter Systems (Eds. S Vizi, A. Lajtha), 3 Edition. Springer, 2008. -V. 465. -P. 102-111.
81. Wang, R. Two's company, three's a crowd: can H2S be the third endogenous gaseous transmitter? [Text] // FASEB J. - 2002. - V.16. - P. 1792-17928.
82. Wang, Y.F. Effects of nitric oxide and hydrogen sulfide on the relaxation of pulmonary arteries in rats [Text] / Y. F. Wang, P. Mainali, C. S. Tang, L. Shi, C. Y. Zhang, H. Yan, X. Q. Liu, J. B. Du // Chin. Med. J. - 2008. - V.121.- P. 420- 423.
83. Weiner, C.P. Induction of calcium - dependent nitric oxide synthase by sex hormones [Text] / С. P. Weiner, I. Lizasoain, S. A. Baylis et al // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 1994. - V. 91. - P. 5212 - 5216.
84. Whiteman, M. Evidence for the formation of a novel nitrosothiol from the gaseous mediators nitric oxide and hydrogen sulphide [Text] / M. Whiteman, L. Li,
I. Kostetski, SH. Chu, JL. Siau, M. Bhatia, PK. Moore // Biochem. Biophys. Res. Commun. - 2006. - P. 303-310.
85. Xu, M. Electrophysiological effects of hydrogen sulfide on pacemaker cells in sinoatrial nodes of rabbits [Text] / M. Xu, Y.M. Wu, Q. Li, X. Wang, R.R. He // ActaPhysiol Sin.- 2008,- V. 60,- P. 175-180.
86. Yang, J. Postural orthostatic tachycardia syndrome with increased erythrocytic hydrogen sulfide and response to midodrine hydrochloride [Text] / J. Yang, J Zhao, S Du, D Liu, C Fu, X Li, et al. // J Pediatr. - 2013.
87. Yamane, S. Hydrogen sulfide-mediated regulation of contractility in the mouse ileum with electrical stimulation: Roles of 1-cysteine, cystathionine [3- synthase, and K+ channels [Text] / S. Yamane, T. Kanno, H. Nakamura, H. Fujino, T. Murayama // Eur J Pharmacol. - 2014. - P. 112-120.
88. Young, J.A. Physiology of the Gastrointestinal Tract [Text] / J. A. Young,
D. I. Cook, E. W. VanLennep, M. L. Roberts, L. Johnson, J. Christensen, M. Jackson, E. Jacobson, J. Walsh // Raven Press. - 1987. - V. 2. - P. 773-815
89. Young, J.A. Gastrointestinal Physiology [Text] // University Park Press. 1979. -V. 19. -P. 1-58.
90. Zhang. F, Plasma hydrogen sulfide in differential diagnosis between vasovagal syncope and postural orthostatic tachycardia syndrome in children [Text] / F. Zhang, X. Li, C. Stella, L. Chen, Y. Liao, C. Tang, et al. // J Pediatrics.2012. -P.31.
91. Zhao P. Dual effect of exogenous hydrogen sulfide on the spontaneous contraction of gastric smooth muscle in guinea-pig [Text] / P. Zhao, X. Huang, Z. Wang, Z. Qiu, Y. Han, H. Lu, Y. Kim, W. Xu // European Journal of Pharmacology. - 2009. - V.616. - P.223-228.
92. Zhao, W. The vasorelaxant effect of H2S as a novel endogenous gaseous KATP channel opener [Text] / W. Zhao, J. Zhang, Y. Lu, R. Wang // EMBO J. 20. -2001.-P. 6008-6016.