Тип работы:
 Предмет:
 Язык работы:


МИКРОБНЫЕ СООБЩЕСТВА ЩЕЛОЧНЫХ ГИДРОТЕРМ.(03.00.07.)

Работа №4172

Тип работы

Диссертации (РГБ)

Предмет

биология

Объем работы151стр.
Год сдачи2003
Стоимость700 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
1133
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


ВВЕДЕНИЕ 5
ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 9
1.1. Характеристика основных типов щелочных гидротерм 9
1.1.1. Основные типы щелочных гидротерм 9
1.1.2. Свойства щелочных термальных вод 13 1.2. Распространение и состав микробных сообществ в зависимости
от физико-химических факторов среды 16
1.2.1. Микробные сообщества щелочных гидротерм 16
1.2.2. Микробные сообщества нейтральных гидротерм 19 1.3. Активности продукционных и терминальных деструкционных
процессов в фототрофных и хемотрофных микробных сообществах гидротерм 24
1.3.1 Микробные сообщества щелочных гидротерм 24
1.3.2. Микробные сообщества нейтральных гидротерм 25
1.4. Экофизиология термофильных микроорганизмов щелочных гидротерм 30
1.4.1. Температурные и рН границы развития микроорганизмов 30
1.4.2. Микроорганизмы - первичные продуценты 31
1.4.3. Микроорганизмы - деструкторы 35
1.5. Участие микробного сообщества щелочных гидротерм в
минералообразовании 37
ЗАКЛЮЧЕНИЕ ПО ОБЗОРУ ЛИТЕРАТУРЫ. Задачи работы 41
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ 43
2. Объекты и методы исследования 43
2.1. Объекты исследования 43
2.2. Методы полевых исследований 46
2.3. Методы лабораторных исследований 47
2.3.1. Методы культивирования и изучения роста бактерий в
зависимости от физико-химических факторов 47
2.3.2. Методы электронной микроскопии 49
2.3.3. Методы гено- и хемосистематики 49
2.3.4. Методы определения скорости микробных процессов 50
2.3.5. Методы определения содержания пигментов в микробных матах РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ 52
3. Исследование микробных сообществ щелочных гидротерм 52
3.1. Гаргинский источник 52
2

3.1.1. Распространение и видовой состав микробных сообществ
в связи с изменением физико-химических условий среды 52
3.1.2. Биогеохимическая активность. 57
3.2. Уринский источник 61
3.2.1. Распространение и видовой состав микробных сообществ
в связи с изменением физико-химических условий среды 61
3.2.2. Биогеохимическая активность. 66
3.3. Сеюйский источник 70
3.3.1. Распространение и видовой состав микробных сообществ
в связи с изменением физико-химических условий среды 70
3.3.2. Биогеохимическая активность 74
3.4. Аллинский источник 78
3.4.1. Распространение и видовой состав микробных сообществ
в связи с изменением физико-химических условий среды 78
3.4.2. Биогеохимическая активность. 82
3.5. Большереченский источник 85
3.5.1. Распространение и видовой состав микробных сообществ
в связи с изменением физико-химических условий среды 85
3.5.2. Биогеохимическая активность. 91
3.5.3. Влияние температуры и рН на микробное сообщество 95
3.6. Источник “Паоха” (Моно Лейк) 98
3.6.1. Распространение и видовой состав микробных сообществ
в связи с изменением физико-химических условий среды 98
3.6.2. Биогеохимическая активность. 98
3.7. Биогенное минералообразование в микробных матах
щелочных термальных источников 101 4. Исследование чистых культур, выделенных из микробных
сообществ щелочных гидротерм 103
4.1 Термофильная аноксигенная фототрофная бактерия
Chloroflexus aurantiacus 103
4.1.1 Морфология и ультраструктура. 103
4.1.2. Пигменты. 103
4.1.3. Физиология. 106
4.1.4. Генотипические свойства и филогенетическое положение. 107
3

4.2. Органотрофная аэробная термофильная бактерия 109
4.3 Термофильные сульфатредуцирующие бактерии 111
4.4. Алкалотермофильная органотрофная бактерия “Anaerobranca californiensis” 113
4.4.1. Морфология и ультраструктура 113
4.4.2. Физиологические характеристики. 113
4.4.3. Генотипические свойства и филогенетическое положение. 118
4.4.4. Диагноз вида Anaerobranca californiensis 120 ЗАКЛЮЧЕНИЕ 121 ВЫВОДЫ 129 СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ 130
4



Актуальность проблемы. Системные исследования мезофильных алкалофильных сообществ начались сравнительно недавно (Заварзин, 1993). Однако до последнего времени очень мало внимания уделялось изучению организмов, способных существовать при высоких температурах и высоких значениях рН (Wiegel, 1998).
Традиционными объектами исследования микробиологов являлись гидротермы областей активного современного вулканизма и молодого четвертичного вулканизма, с реакцией среды, близкой к нейтральной. Термальные воды с рН>8.5 и температурой выше 45°С широко распространены в природе (Басков, Суриков, 1989; Соломин, Крайнов, 1998). Физико-химические параметры щелочных термальных вод сильно отличаются от нейтральных и кислых вод, что создает особые условия для существования экстремофильных микроорганизмов. (Крайнов, Швец, 1980; Garrels, Christ, 1959; Belkin et al., 1985). Микробные сообщества этих экосистем и факторы определяющие их разнообразие изучены слабо. Сведения о видовом составе щелочных гидротерм были разрознены (Компанцева, Горленко, 1988; Юрков и др., 1991; Бонч- Осмоловская и др., 1999; Brock et al., 1971, Grant, Tindall, 1986; Duckworth et al., 1996; Marteinsson et al., 2001; Krienitz et al., 2003). Отсутствовали данные об интенсивностях продукционных и деструкционных процессов
В настоящей работе впервые выполнено сравнительное исследование видового состава и геохимической деятельности микроорганизмов щелочных гидротерм с различной минерализацией и различным химическим составом.
Целью настоящей работы являлось сравнительное исследование микробных сообществ щелочных слабоминерализованых гидротерм Байкальской рифтовой зоны (Б.р.з.) и щелочных минерализованых гидротерм озера Моно-Лейк на острове Паоха.
Основные задачи исследования состояли в следующем:
1. Изучение состава микробных сообществ щелочных термальных источников в связи с изменением физико-химических условий.
2. Изучение активности продукционных и терминальных деструкционных процессов в фототрофных и хемотрофных микробных сообществах в разных экологических зонах источников.
5

3. Исследование экофизиологических особенностей термофильных микроорганизмов участвующих в циклах углерода и серы в сообществах.
4. Изучение участия микробных сообществ щелочных гидротерм в минералообразовании.
Научная новизна и практическая значимость. Впервые исследованы микробные сообщества щелочных азотных гидротерм Б.р.з. и минерализованного щелочного источника на острове Паоха озера Моно-Лейк (Калифорния). Показано, что щелочные условия в комбинации с другими факторами среды ограничивают распространение фототрофных сообществ, в минерализованных щелочных источниках отсутствует термофильный цианобактериальный мат. В фототрофных сообществах щелочных низкоминерализованных термальных источниках доминируют цианобактерии, приспособленные к росту в щелочных условиях. Алкалотолерантные аноксигенные фототрофные бактерии Chloroflexus aurantiacus обнаружены только в низкоминерализованных гидротермах при температурах от 65 до 35°С. Показано, что микробные сообщества щелочных гидротерм обладают высокой продуктивностью, сравнимой с микробными сообществами нейтральных гидротерм.
В щелочных минерализованных гидротермах рост фототрофных сообществ начинается при температуре ниже 47°С. Термофильных оксигенных и аноксигенных фототрофов в них не обнаружено. Из высокотемпературной зоны источника (от 90 до 50°С) был выделен новый вид анаэробной алкалотермофильной ферментирующей бактерии Anaerobranca californiensis и показана ее способность к восстановлению серы, тиосульфата, полисульфида, Fe(III), Se(VI). Показано участие термофильных фототрофных сообществ в травертинообразовании. В лабораторных экспериментах установлено, что термофильная аноксигенная фототрофная бактерия Chloroflexus aurantiacus образует чехлы накапливающие окисное железо в аэробных темновых условиях. Использование закисного железа в качестве донора электронов при фотоавтотрофном росте этого микроорганизма не наблюдалось. Полученные результаты принципиально важны для развития представлений о функционировании циклов кальция, серы, железа, селена в щелочных гидротермах.
Выделенные микроорганизмы могут быть использованы при очистке горячих вод от неорганических соединений. Результаты диссертации имеют значение для бальнеологической характеристики гидротерм Байкальской рифтовой зоны.
6

Апробация работы. Результаты исследований доложены автором на: Международной конференции “Thermophiles'98” 6-11 сентября 1998 г., Брест, Франция; Научной конференции “Проблемы экологии и физиологии микроорганизмов: к 110-летию со дня рождения профессора Е.Е. Успенского”, 21 декабря 1999 г., Москва; Школе- конференции “Горизонты физико-химической биологии”, 28 мая-2 июня 2000 г., Пущино; Международной конференции “Central Asian ecosystems - 2000”, 5-7 сентября 2000 г., Улан-Батор, Монголия; Международной конференции “Экология Сибири, Дальнего Востока и Арктики”, 5-8 сентября 2001, Томск; Региональной конференции “Природные ресурсы Забайкалья и проблемы природопользования”, 10-15 сентября 2001, Чита; ASM-meeting, май 2002, США; I международном симпозиуме “Биокосные взаимодействия: Жизнь и камень”, 25-27 июня 2002 г., Санкт-Петербург; International Geobiology Course, 12 июня - 26 июля 2003 г., Каталина, Калифорния; Всероссийской конференции “Биоразнообразие и функционирование микробных сообществ водных и наземных систем Центральной Азии”, 21-29 июля 2003 г., Улан-Удэ.
Публикации. По теме диссертации опубликовано 13 работ и 1 статья находится в печати.
Объем и структура диссертации. Материалы диссертации изложены на 151 страницах, включая 21 таблицы и 30 рисунок. Диссертация состоит из разделов “Введение”, “Обзор литературы”, “Экспериментальная часть” (включающая главы “Объекты и методы исследований”, “Результаты и обсуждение”), “Заключение”, “Выводы” и “Список литературы” (269 наименований).
Благодарности. Автор выражает глубокую признательность научному руководителю д.б.н., проф. В.М. Горленко и сотрудникам Лаборатории экологии и геохимической деятельности микроорганизмов ИНМИ РАН, д.б.н., проф. Б.Б. Намсараеву и сотрудникам Лаборатории микробиологии ИОЭБ СО РАН, проф. К. Nealson и сотрудникам Geobiology Laboratory University of Southern California, сотрудникам Института микробиологии РАН, родным и близким.
Исследование генотипических свойств проводилось к.б.н. А.М. Лысенко (ИНМИ РАН). Анализ 16S рРНК выполнила к.б.н. Т.П.Турова (ИНМИ РАН). Определение интенсивностей микробных процессов проводилось совместно с В.И. Качалкиным (ИНМИ РАН) и к.б.н. С П. Бурюхаевым (ИОЭБ СО РАН). Определение видовой
7

принадлежности цианобактерий проводилось совместно с к.б.н. А.В. Брянской (ИОЭБ СО РАН). Исследования тонкого строения клеток проводили совместно с Л.Л. Митюшиной (ИНМИ РАН). Пробы керна Гаргинского травертина были предоставлены д.г.-м.н. А.М. Плюсниным (ИГ СО РАН). Автор приносит искреннюю благодарность всем упомянутым участникам работы.


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!
ДИПЛОМНЫЕ МАГИСТЕРСКИЕ ДИССЕРТАЦИИ
КУРСОВЫЕ СТАТЬИ ВКР

Главным физико-химическим фактором среды, оказывающим влияние на состав и распространение микробных сообществ в гидротермах, является температура (Горленко и др., 1985, Горленко, Бонч-Осмоловская, 1989; Brock, 1967). С уменьшением температуры по изливу исследованных нами источников разнообразие микроорганизмов расширяется.
В щелочных гидротермах микробные сообщества кроме высокой температуры подвергаются комбинированному воздействию и других экстремальных факторов: высокого рН и, в ряде случаев, высокого содержания сульфида и минерализации. В исследованных гидротермах фототрофные сообщества появляются при более низкой температуре чем в слабощелочных и нейтральных гидротермах. Для сравнения, в
120

Уринском источнике с рН 8.8 цианобактериальный мат начинается с температуры 64°С, тогда как в слабощелочном Октопус спринг с 73°С (Brock, 1967). При этом, наблюдается обратная зависимость между верхним температурным пределом распространения микробного мата и содержанием сульфида в источнике (рис. 27). Чем выше содержание сульфида, тем ниже максимальная температура распространения микробного мата по изливу источника. Также было обнаружено, что термофильная цианобактерия Mastigocladus laminosus, широко распространенная в нейтральных гидротермах, практически не встречается в микробных матах щелочных источников. Вместо нее в широком диапазоне условий среды доминируют цианобактерии Phormidium spp. и Anabaena spp., являющиеся более толерантными к высоким значениям рН.
Важной особенностью щелочных гидротерм является доминирование цианобактерий в составе микробных матов при содержании сульфида в воде более 1 мг/л. Ранее считалось, что при такой концентрации сульфида в составе микробного мата обязательно доминируют аноксигенные фототрофные бактерии (АФБ) (Castenholz, 1976, 1977; Ward et al., 1989). Наши исследования показали, что это правило не может быть применено к щелочным гидротермам. Так, на диаграмме рН-Т, построенной с помощью литературных и собственных данных, указаны области распространения различных типов сообществ при содержании сульфида более 1 мг/л (рис. 28). АФБ доминируют в слабокислых и нейтральных условиях, но в щелочных условиях, как было показано нами, доминируют цианобактерии.
Это явление может быть объяснено снижением токсичности сероводорода при повышении рН (Заварзин, 1972; Howsley, Pearson, 1979). На диаграмме рН-S2- показано, как происходит последовательная смена типов сообществ с повышением рН в сульфидсодержащих гидротермах при температуре около 60°С (рис. 29). При рН менее
7 большинство молекул сероводорода находится в недиссоциированном состоянии и способно легко проникать через клеточную стенку. В составе сообщества доминирует Chloroflexus aurantiacus. При рН более 7 начинает доминировать менее токсичный гидросульфид-ион, и в составе микробного мата появляются цианобактерии. Они располагаются под слоем Chloroflexus aurantiacus, который защищает цианобактерии от воздействия высоких концентраций растворенного в воде сульфида. При рН более 8.5 весь сероводород переходит в гидросульфид-ион и, как было показано нами, в составе мата доминируют цианобактерии. Сравнение оптимумов рН цианобактерий, АФБ и хемотрофных бактерий выделенных из Большереченского источника указывает на то,
121

что доминирующие в микробном мате цианобактерии более приспособлены к высоким рН, чем АФБ. Цианобактерии, подщелачивающие среду в ходе оксигенного фотосинтеза являются алкалофилами, тогда как АФБ и хемотрофные бактерии являются нейтрофилами и алкалотолерантами (рис. 13).
Нами был обнаружен аноксигенный мат с доминированием Chloroflexus aurantiacus в Аллинском источнике, но необходимо учитывать, что его развитие происходило в области смешения сульфидсодержащих щелочных термальных вод с рН 9.0-9.9 и речных вод с рН 8.3, что опять же подтверждает предположение о контроле распространения микробных сообществ различными формами сульфида. Повышение устойчивости гидросульфид-иона при щелочной реакции среды также может быть причиной отсутствия массового развития термофильных серобактерий при температуре около 70°С.
Минерализация также является фактором среды, ограничивающим распространение микробных матов и оказывающим влияние на видовой состав сообщества. В минерализованном источнике Паоха комбинированное воздействие факторов среды исключает развитие термофильного цианобактериального мата и термофильной АФБ Chloroflexus aurantiacus. Цианобактериальный мат обнаружен при температурах ниже 47°С и доминируют в нем цианобактерии родов Phormidium, Oscillatoria и мезофильная галоалкалофильная пурпурная бактерия Ectothiorhodospira shaposhnikovii.
ВЫВОДЫ
1. Высокие значения рН, температуры и содержания сульфида ограничивают распространение фототрофных микробных матов, которые в щелочных гидротермах развиваются при более низкой температуре, чем в нейтральных.
2. Особенностью щелочных сульфидсодержащих гидротерм, в отличие от нейтральных гидротерм, является отсутствие образования аноксигенных микробных матов. В составе микробных матов щелочных гидротерм доминируют алкалофильные цианобактерии Phormidium spp.
3. Микробные сообщества пресных и минерализованных щелочных гидротерм отличаются по видовому составу. Термофильная аноксигенная фототрофная бактерия Chloroflexus aurantiacus достигает значительной численности в микробных матах пресных щелочных гидротерм, но отсутствует в минерализованных щелочных
128

гидротермах. В составе сообщества минерализованных гидротерм значительной численности достигает галоалкалофильная аноксигенная фототрофная бактерия Ectothiorhodospira shaposhnikovii.
4. Продуктивность микробных сообществ щелочных гидротерм сравнима с продуктивностью нейтральных гидротерм. Наиболее продуктивными являются сообщества, развивающиеся в температурном диапазоне 35-50°С. Доминирующим процессом терминальной деструкции является сульфатредукция, роль метаногенеза в деструкции органического вещества незначительна.
5. Показана экофизиологическая приспособленность термофильной аноксигенной фототрофной бактерии Chloroflexus aurantiacus к условиям местообитаний в различных источниках и их экологических зонах.
6. Показано, что чистые культуры аноксигенной фототрофной бактерии Chloroflexus aurantiacus могут откладывать окисное железо на поверхности клетки в ходе аэробного темнового роста. Восстановленное железо не является донором электронов для фотоавтотрофного роста у исследованных штаммов.
7. Выделен новый вид алкалотермофильной бактерии с бродильным метаболизмом Anaerobranca californiensis, способной к неспецифическому восстановлению широкого ряда неорганических соединений: тиосульфата, элементной серы, полисульфида, железа, селена.
8. Показано, что цианобактериальный мат играет вважную роль в образовании карбонатно-кальциевого травертина в Гаргинском источнике. Исследование керна травертина показало, что с глубиной в травертине количество микрофоссилий уменьшается.




1. Аверкин Ю.А. Динамика отложения компонентов из гидротермального раствора при выкипании СО2 // Геохимия. 1987. № 11. С.1580-1585.
2. Барабанов Л.Н., Дислер В.Н. Азотные термы СССР/ Отв. Ред. Д.г-м.н. В.В.Иванов.
- М: Геоминвод ЦНИИ КиФ, 1968.-120с.
3. Басков Е.А., Суриков С.Н. Гидротермы Земли. - Л.: Недра, 1989. - 245 с.: ил.
4. Бильдушкинов С.С., Некрасова В.К., Герасименко Л.М. Роль фотосинтезирующих микроорганизмов в газовом обмене цианобактериального сообщества // Микробиология, 1985. Т.54. с.517-512.
129

5. Бонч-Осмоловская Е.А., Горленко В.М., Карпов Г. А., Старынин Д. А. Анаэробная деструкция органического вещества в цианобактериальных матах ист. Термофильного // Микробиология. 1987. Т. 56. № 6. С. 1022-1028.
6. Бонч-Осмоловская Е.А., Заварзин Г.А. Термофильные бактерии, восстанавливающие серу, и формирование ими геохимического барьера // Кальдерные микроорганизмы. М.: Наука. 1989.
7. Бонч-Осмоловская Е.А., Мирошниченко М.Л., Пикута Е.В., Сорокин Д.Ю., Намсараев Б.Б. Бактериальная сероредукция в мелководных гидротермах Юго¬Западной части Тихого океана // Микробиология. 1993. Т.62. С.564-573.
8. Бонч-Осмоловская Е.А., Мирошниченко М.Л., Слободкин А.И., Соколова Т.Г., Карпов Г.А., Кострикина Н.А., Заварзина Д.Г., Прокофьева М.И., Русанов И.И., Пименов Н.В. Биоразнообразие анаэробных литотрофных прокариот в наземных гидротермах Камчатки // Микробиология. 1999. Т.68. С.398-406.
9. Бонч-Осмоловская Е. А. Термофильные микроорганизмы в морских гидротермальных системах. С. 131-140.// Биология гидротермальных систем. Под ред. А.В. Гебрук, К.Н. Несис, А.П. Кузнецов, А.М. Сагалевич. М., КМК Press, 2002, 543 с.
10. Борисенко И.М., Замана Л.В. Минеральные воды Бурятской АССР. - Улан-Удэ: Бурятское книжное изд-во, 1978. -162 с.
11. Борисенко И.М., Очиров Ю.Ч., Сусленкова Р.М. Состав травертинов из отложений некоторых минеральных источников Забайкалья. Труды геологического института БФ СО АН СССР, Улан-Удэ, 1976, Выпуск 7 (15), с.36-52.
12. Брянцева И. А., Горленко В.М., Турова Т.П., Кузнецов Б.Б., Лысенко А.М., Быкова С.А., Гальченко В.Ф., Митюшина Л.Л., Осипов Г.А. Heliobacterium sulfidophilum sp. nov. и Heliobacterium undosum sp. nov.: сульфидокисляющие гелиобактерии из термальных сероводородных источников // Микробиология. 2000. Т. 69. №3. С.396-406.
13. Венецкая С.Л., Герасименко Л.М., Миллер Ю.М. Роль Chloroflexus aurantiacus в газовом обмене термофильного цианобактериального сообщества // Микробиология. 1987. Т.56. С.865-871.
14. Весталл Ф., Велш М. Ископаемые бактерии и бактериальные биопленки. С. 68-83. // Бактериальная палеонтология. ПИН РАН, МГУ. Под ред. А.Ю. Розанова. - М.: ПИН РАН, 2002. - 188 с.
130

15. Гальченко В.Ф. Микроорганизмы в гидротермальных сообществах. С. 113-130. // Биология гидротермальных систем. Под ред. А.В. Гебрук, К.Н. Несис, А.П. Кузнецов, А.М. Сагалевич. М., КМК Press, 2002, 543 с.
16. Гебрук А.В., Галкин С.В. Гидротермальный биотоп и гидротермальная фауна: общие положения. С. 13-24. // Биология гидротермальных систем. Под ред. А.В. Гебрук, К.Н. Несис, А.П. Кузнецов, А.М. Сагалевич. М., КМК Press, 2002, 543 с.
17. Герасименко Л.М., Заварзин Г. А. Обмен Н2, СО2, О2, СН% в цианобактериальных сооществах // Микробиология. 1982. Т.51. С.718-722.
18. Герасименко Л.М., Карпов Г.А., Орлеанский В.К., Заварзин Г.А. Роль циано¬бактериального фильтра в трансформации газовых компонентов гидротерм на примере кальдеры Узон на Камчатке // Журн. Общ. Биол. 1983. №6. с.842-851.
19. Герасименко Л.М., Крылов И.Н. Посмертные изменения цианобактерий в водорослево-бактериальных пленках термальных источников Камчатки // Докл. АН СССР. 1983. Т.272. №1. С.201-202.
20. Герасименко Л.М., Миллер Ю.М., Капустин О.А., Заварзин Г.А. Потребление водорода термофильной цианобактерией Mastigocladus laminosus // Микробиология. 1987. Т.56. С.553-558.
21. Герасименко Л.М. Актуалистическая палеонтология цианобактериальных сообществ // Автореферат диссертации. 2002. ИНМИ РАН. Москва.
22. Герхардт Ф. и др. (под ред.). Методы общей бактериологии. В 3 т. М.: Мир. 1983.
23. Головенок В.К. Докембрийские кремневые конкреции: морфология, генезис, значение для познания древнего органического мира // Конкреции докембрия. Л., Наука. 1989. С.94-102.
24. Голубев В. А. Тепловые и химические характеристики гидротермальных систем Байкальской рифтовой зоны // Сов. геология. 1982. №10. С.100-108.
25. Голлербах М.М., Косинская Е.К., В.И. Полянский. Определитель пресноводных водорослей СССР. Вып. 2. Синезеленые водоросли. - М.: Советская наука, 1953.
26. Го Окамото, Окура Т., Гото К. Свойства кремнезема в воде // Геохимия литогенеза. - М.: Иностранная литература. 1963. - 459 с.
27. Горленко В. М. Биология пурпурных и зеленых бактерий и их роль в круговороте углерода и серы. Дис. ... д-ра биол. наук. М.: ИНМИ АН СССР, 1981. С. 696.
28. Горленко В.М., Бонч-Осмоловская Е.А. Формирование микробных матов в горячих источниках и активность продукционных и деструкционных процессов // Кальдерные микроорганизмы. М: Наука. 1989.
131

29. Горленко В.М., Дубинина Г.А., Кузнецов С.И. Экология водных микроорганизмов. М.: Наука, 1977.
30. Горленко В.М., Кикина О.Г. Определение оптимальных условий роста микроорганизмов с помощью 14С-бикарбоната // Микробиология. 1979. Т. 48. В.
3. С. 430-433.
31. Горленко В.М., Компанцева Е.И., Пучкова Н.Н. Влияние температуры на распространение фототрофных бактерий в термальных источниках // Микробиология. 1985. Т. 54. №5. С. 848-853.
32. Горленко В.М., Старынин Д. А., Бонч-Осмоловская Е.А., Качалкин В.И. Продукционные процессы в микробных сообществах горячего источника Термофильного // Микробиология. 1987. Т. 56. С. 872-878.
33. Горшков А.И., Дриц В.А., Дубинина Г.А., Богданова О.А., Сивцов А.В. Роль бактериальной деятельности в формировании гидротермальных Fe-Mn- образований северной части бассейна Лау (юго-западная часть Тихого океана) // Изв. Акад. Наук. Сер. геол. 1992. №9. с.84-93.
34. Дубинина Г.А. Биология железобактерий и их геохимическая деятельность. Дис. ... д-ра. Биол. наук. М.: ИНМИ АН СССР, 1977.
35. Заварзин Г. А. Бактерии и состав атмосферы. М.: Наука. 1972. (а)
36. Заварзин Г. А. Литотрофные микроорганизмы - М.: Наука, 1972. (б)
37. Заварзин Г. А. Эпиконтинентальные содовые водоемы как предполагаемые реликтовые биотопы формирования наземной биоты // Микробиология. 1993. Т.62. Вып.5. с.789-800.
38. Заварзин Г. А. Становление биосферы // Микробиология. 1997. Т.66. с.725-734.
39. Заварзин Г.А. Биоразнообразие как часть биосферно-геосферной системы возникновения порядка из хаоса // Методология биологии: новые идеи (синергетика, семиотика, коэволюция). Отв. Ред. О.Е.Баксанский. - М.: Эдиториал УРСС, 2001.
40. Заварзин Г. А. Микробный геохимический цикл кальция // Микробиология. 2002. Т.71. с.5-22.
41. Заварзин Г.А., Колотилова Н.Н. Введение в природоведческую микробиологию: Учебное пособие. - М.: Книжный дом “Университет”, 2001. -256 с.
42. Замана Л.В. О происхождении сульфатного состава азотных терм Байкальской рифтовой зоны // Доклады АН. 2000. Т.372. №3. С.361-363.(а)
132

43. Замана Л.В. Петрогенная геохимическая модель азотных терм Байкальской рифтовой зоны // Фундаментальные проблемы воды и водных ресурсов на рубеже третьего тысячелетия: Материалы Международной научной конференции. 3-7 сентября 2000 г.- Томск: Изд-во НТЛ, 2000. с.199-203. (б)
44. Иванов М.В. Применение изотопов для изучения интенсивности процесса редукции сульфатов в озере Беловодь // Микробиология. 1956. Т. 25. №3. С. 305¬309.
45. Илялетдинов А.Н. Микробиологические превращения металлов. - Алма-Ата. Наука. 1984.
46. Кеппен О.И., Красильникова Е.Н. Рост Chloroflexus aurantiacus в фотоавтотрофных условиях. /Микробиология. 1986. Т.55.Вып.5. С.879-882.
47. Кирюхин В.К., Крайнов С.Р., Швец В.М. Гидрогеохимическое значение и методы изучения органических форм миграции элементов. С. 33-38. В сборнике “Гидрогеохимические методы поисков рудных месторождений”. - Новосибирск: Наука, 1982.
48. Компанцева Е.И., Горленко. В.М. Фототрофные сообщества в некоторых термальных источниках озера Байкал // Микробиология. 1988. Т. 57. №5. С. 841¬846.
49. Кондратьева Е.Н., Красильникова Е.Н. Использование тиосульфата Chloroflexus aurantiacus // Микробиология. 1988. Т.57. Вып. 3. С.357-360.
50. Крайнов С.Р., Швец В.М. Основы геохимии подземных вод. - М.: Недра, 1980.
51. Крайча Я. Газы в подземных водах. - М.: “Недра”, 1980.
52. Красильникова Е.Н., Кеппен О.И., Горленко В.М., Кондратьева Е.Н. Рост Chloroflexus aurantiacus на средах с разными органическими соединениями и пути их метаболизма // Микробиология. 1986. Т.55. Вып.3. С.425-429.
53. Красильникова Е.Н., Кондратьева Е.Н. Рост Chloroflexus aurantiacus в анаэробных условиях в темноте и метаболизм органических субстратов // Микробиология.
1987. Т.56.Вып.3. С.357-360.
54. Красильникова Е.Н., Кондратьева Е.Н. Использование Chloroflexus aurantiacus разных соединений серы // Микробиология. 1988. Т.57.Вып.3. С.507-508.
55. Крылов И.Н., Тихомирова Н.С. К образованию кремнистых микрофоссилий // Палеонтол. журнал. 1988. №3. С.3-9.
56. Кузнецов С.И., Романенко В.И. Микробиологическое изучение внутренних водоемов. - Л.: Изд-во АН СССР, 1963. - 129 с.
133

57. Лауринавичус К.С., Беляев С.С. Определение интенсивности микробиологического образования метана радиоизотопным методом // Микробиология. 1978. Т. 47. №6. С.1115-1117.
58. Леин А. Ю., Пименов Н. В. Роль бактериальной продукции на активных гидротермальных полях в общем балансе органического углерода в океане. С. 320¬328. // Биология гидротермальных систем. Под ред. А.В. Гебрук, К.Н. Несис, А.П. Кузнецов, А.М. Сагалевич. М., КМК Press, 2002, 543 с.
59. Ломоносов И. С. Геохимия и формирование современных гидротерм Байкальской рифтовой зоны. - Новосибирск.: Наука, 1974.
60. Мартынов П. И. Некоторые данные о горячих источниках Баргузинского заповедника.// Тр. Баргузинского гос. заповедника. 1960. Вып.2. С. 147-154.
61. Намсараев Б.Б., Дубинина Г. А., Бонч-Осмоловская Е.А., Старынин Д. А., Грабович М.Ю., Качалкин В.М., Нестеров А.И., Горленко В.М. 1991. Участие бактерий круговорота углерода, серы и железа в деструкции органического вещества в бентосных сообществах бухты Кратерной. Мелководные газогидротермы и экосистема бухты Кратерной (вулкан Ушишир, Курильские о-ва). Кн. 1. Функциональные характеристики. Ч. 1. (ред. А.В. Жирмунский, В.Г. Тарасов), с.154-171. Владивосток, ДВО РАН.
62. Намсараев Б.Б., Бонч-Осмоловская Е.А., Мирошниченко М.Л., Пикута Е.В., Качалкин В.И., Миллер Ю.М., Пропп Л.И., Тарасов В.Г. Микробиологические процессы круговорота углерода в мелководных гидротермах Западной окраины Тихого океана // Микробиология. 1994. Т.63. с.100-111.
63. Орлеанский В.К., Герасименко Л.М. Лабораторное моделирование термофильного циано-бактериального сообщества // Микробиология. 1982. Т.51. №4. С.538-542.
64. Перельман А.И. Геохимия ландшафтов. М.: “Высшая школа”. 1966.
65. Перельман А.И. Геохимия элементов в зоне гипергенеза. М., “Недра”, 1972, 288 с.
66. Перельман А.И. Геохимия природных вод. М.: “Наука”. 1982.
67. Пиневич А.В., Аверина С.Г. Оксигенная фототрофия: Руководство по эволюционной клеточной биологии. СПб.: Изд-во С.-Петерб. Ун-та, 2002. 236 с.
68. Плюснин А.М., Суздальницкий А.П., Адушинов А. А., Миронов А.Г. Особенности формирования травертинов из углекислых и азотных термальных вод в зоне Байкальского рифта // Геология и геофизика. 2000. Т.41. №4. С.564-570.
69. Посохов Е.В. Общая гидрогеохимия. Л., “Недра”, 1975. 208 с.
134

70. Резников А.А., Муликовская Е.П., Соколов И.Ю. Методы анализа природных вод. 3-е изд. - М.: Недра, 1970.
71. Семихатов М.А., Раабен М.Е., Сергеев В.Н., Вейс А.Ф., Артемова О.В. Биотические события и положительная изотопная аномалия карбонатного углерода 2.3-2.06 млрд. лет назад // Стратиграфия. Геол. корреляция. 1999. Т.7. №5. с.3-27.
72. Сергеев В.Н. Окремненные микрофоссилии докембрия и кембрия Урала и Средней Азии. Тр. ГИН РАН; Вып. 474. - М.: Наука, 1992. - 139 с.
73. Соломин Г.А., Крайнов С.Р. Щелочные составляющие природных и сточных щелочных вод, геохимические процессы их нейтрализации кислыми и околонейтральными подземными водами // Геохимия. 1998. №2. С.183-201.
74. Стащук М.Ф. Проблема окислительно-восстановитеьного потенциала в геологии.
- М.: Недра. 1968.
75. Храпцова Г.И., Цаплина И.А., Серегина Л.М., Логинова Л.Г. Термофильные бактерии горячих источников Бурятии // Микробиология. 1984. Т.53. Вып.1. с. 137-141.
76. Шпейзер Г.М., Васильева Ю.К., Гановичева Г.М., Минеева Л.М., Родионова В. А., Ломоносов И.С., Ванг Янсинь. Органические вещества в минеральных водах горноскладчатых областей Центральной Азии // Геохимия. 1999. №3. с. 302-311.
77. Юрков В.В., Горленко В.М. Применение электронной сканирующей микроскопии для анализа вертикальной структуры микробных сообществ альгобактериальных матов на стеклах обрастания // Микробиология 1989. Т. 58. Вып. 4. С. 676-678.
78. Юрков В.В., Горленко В.М. Новый вид пресноводных аэробных бактерий Erythrobacter sibiricus sp. nov., содержащих бактериохлорофилл а // Микробиология. 1990. Т. 59. №1. С. 120-125.
79. Юрков В.В., Горленко В.М. Новый род пресноводных аэробных бактерий Roseococcus gen.nov., содержащих бактериохлорофилл а // Микробиология. 1991. Т 60. №5. С. 902-907.
80. Юрков В.В., Горленко В.М. Новый штамм RB-5 пурпурной несерной бактерии Rhodopseudomonas blastica, выделенный из сульфидного щелочного источника // Микробиология. 1992. Т. 61. №1. С. 103-108.
81. Юрков В.В., Горленко В.М., Митюшина Л.Л., Старынин Д.А. Влияние лимитирующих факторов на структуру фототрофных сообществ в
135

Большереченских термальных источниках // Микробиология. 1991. Т. 60. №6. С.129-138.
82. A manual on methods for measuring primary production in aquatic environments. IBP Handbook No. 12. // Ed. Richard A. Vollenweider. Oxford etc.: Blackwell. 1969.
83. Anderson K.L., Tayne T.A., Ward D.M. Formation and fate of fermentation products in hot spring cyanobacterial mats // Appl. Environ. Microbiol. 1987. V.53. p.2343-2352.
84. Barns S.M., Fundyaga R.E., Jeffries M.W., Pace N.R. Remarkable archaeal diversuty detected in a Yellowstone national park hot spring environment //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. V.91. p.1609-1613.
85. Barns S.M., Delwiche C.F., Palmer J.D., Pace N.R. Perspectives on archaeal diversity, thermophily and monophyly from environmental rRNA sequences // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1996. V. 93. p. 9188-9193.
86. Baross J.A., Hoffman S.E. Submarine hydrothermal vents and associated gradient environments as sites for the origin and evolution of life // Origins of life. 1985. V. 15. p. 327-345.
87. Barret E.L., Clark M.A. Tetrationate reduction and production of hydrogen sulfide from thiosulfate //
Microbiological reviews. June 1987. p.192-205.
88. Bateson M.M., Wiegel J., Ward D.M. Comparative analysis of 16S ribosomal RNA sequences of thermophilic fermentative bacteria isolated from hot spring cyanobacterial mats // Syst. Appl. Microbiol. 1989. V.12. p.1-7.
89. Bauld J. Microbial mats in marginal marine environments: Shark Bay, Western Australia, and Spencer Gulf, South Australia // Eds. Cohen Y., Castenholz R.W., Halvorson H.O. MBL lectures in biology. V.3. Microbial mats: Stromatolites. Alan R. Liss, Inc. NewYork. 1984, p. 39-58.
90. Bauld J., Brock T.D. Ecological studies of Chloroflexus, a gliding photosynthetic bacterium // Arch. Microbiol. 1973. V.92. p.267-284.
91. Bauld J., Brock T.D. Algal excretion and bacterial assimilation in hot spring algal mats // J. Phycol. 1974. V.10. p.101-106.
92. Belkin S., Wirsen C.O., Jannasch H.W. Biological and abiological sulfur reduction at high temperatures // Appl. Environ. Microbiol. 1985. V.49. p.1057-1061.
93. Ben-Bassat A., Zeikus J.G. Thermobacteroides acetoethylicus gen. nov. and spec. Nov., a new chemoorganotrophic, anaerobic thermophilic bacterium // Arch. Microbiol. 1981. V.128. p.365-370.
136

94. Bender J., Rodriguez-Eaton S., Ekanemesang U.M., Philips P. Characterization of metal- binding bioflocculants produced by the cyanobacterial component of mixed microbial mats // Appl. Environ. Microbiol. 1994. V.60. p.2311-2315.
95. Bergey’s manual of systematic bacteriology. V. 3 // Ed. James T. Staley. Baltimore etc.: Williams&Wilkins. 1989
96. Bergey’s manual of systematic bacteriology / D.R. Boone, R.W. Castenholz (eds) v.1; G.M. Garrity, editor-in-chief. - 2nd ed. 2001. Springer-Verlag. New York, Berlin, Heidelberg.
97. Blank C.E., Cady S.L., Pace N.R. Microbial composition of near-boiling silica- depositing thermal springs throughout Yellowstone National Park // Appl. Environ. Microbiol. 2002. V.68. p.5123-5135.
98. B^chl E., Rachel R., Burggraf S., Hafenbradl D., Jannsch H.W., Stetter K.O. Pyrolobus fumarii, gen. and sp. nov., represents a novel group of archaea, extending the upper temperature limit for life to 113eC // Extrmophiles. 1999. V.1. p.14-21.
99. Blotevogel K.H., Fisher U., Mocha M., Janssen S. Methanobacterium thermoalcaliphilum spec. Nov., a new moderately alkaliphilic and thermophilic autotrophic methanogen // Arch. Microbiol. 1986. V.142. p.211-217.
100. Bogdanov Y.A., Lisitzin A.P., Binns R.A., Gorshkov A.I., Gurvich E.G., Dritz V.A., Dubinina G.A., Bogdanova O.Y., Sivkov A.V., Kuptsov V.M. Low-temperature hydrothermal deposits of Franklin Seamount, Woodlark Basin, Papua New Guinea // Mar. Geol. 1997. V.142. p.99-117.
101. Brock T.D. Micro-organisms adapted to high temperatures // Nature. 1967. V. 214. P.882-885. (a)
102. Brock T.D. Relationship between standing crop and primary productivity along a hot spring thermal gradient // Ecology. 1967. V. 48. P. 566-571. (б)
103. Brock, T. D. Thermophilic microorganisms and life at high temperatures. Springer- Verlag, New York, N.Y. 1978.
104. Brock T.D., Brock M.L. The measurement of chlorofill, primary productivity, photophosphorylation, and macromolecules in benthic algal mats // Limnology and Oceanography. 1967. V.12. p.600-605.
105. Brock T.D., Brock M.L. Effect of light intensity on photosynthesis by thermal algae adapted to natural and reduced sunlight // Limnol. Oceanogr. 1969. V.14. p.334-341.
106. Brock T.D., Brock M.L., Bott T.L., Edwards M.R. Microbial life at 90°C: the sulfur bacteria of Boulder spring // J. Bacteriol. 1971. V.107. p.303-314.
137

107. Caldwell D.E., Caldwell S.J., Laycock J.P. Thermotrix thioparus gen. Et sp. nov. A facultatively anaerobic facultative chemolithotroph living at neutral pH and high temperature // Can. J. Microbiol. 1976. V.22. p.1509-1517.
108. Castenholz R.W. Thermophilic blue-green algae and the thermal environment // Bacteriol. Rewiews. 1969. V. 33. No 4. P. 476-504.
109. Castenholz R.W. The effect of sulfide on the blue-green algae pf hot springs. I. New Zealand and Iceland // J.Phycol. 1976. V.12. p.54-68.
110. Castenholz R.W. The effect of sulfide on the blue-green algae pf hot springs. II. Yellowstone National Park // Microbial Ecology. 1977. V.3. p.79-105.
111. Castenholz R.W. Composition of hot spring microbial mats: a summary // In Cohen, Castenholz and Halvorson (Eds), Microbial Mats: Stromatolites. 1984. Alan R. Liss, New York. P.101-119.
112. Castenholz R.W., Utkilen H.C. Physiology of sulfide tolerance in a thermophilic Oscillatoria // Arch. Microbiol. 1984. V. 138. P. 299-305.
113. Castenholz R.W., Bauld J., Jorgenson B.B. Anoxygenic microbial mats of hot springs: thermophilic Chlorobium sp. // FEMS Microbiology Ecology. 1990. V.74. P. 325-336.
114. Castenholz R.W., Pierson B.K. Ecology of thermophilic anoxygenic phototrophs // In Blankenship, Madigan, Bauer (eds): Anoxygenic photosynthetic bacteria. 1995. Kluwer Academic publishers. Netherlands. P.87-103.
115. Chafetz H.S., Folk R.L. Travertines: depositional morphology and the bacterially constructed constituents // Journ. Sedim. Petrol. 1984. V.54. p.289-316.
116. Chafetz H.S., Rush P.F., Utech N.M. Microenvironmental controls on mineralogy and habit of CaCO3 precipitates: an example from an active travertine system // Sedimentology. 1991. V.38. p.107-126.
117. Chrisostomos S, Patel B.K., Dwivedi P.P., Denman S.E. Caloramator indicus sp. nov., a new thermophilic anaerobic bacterium isolated from the deep-seated nonvolcanicaly heated waters of an Indian artesian aquifer // Int. J. Syst. Bacteriol. 1996. V.46. p.497- 501.
118. Chung A.P., Rainey F., Nobre M.F., Burghardt J., da Costa M.S. Meiothermus cerbereus sp. nov., a new slightly thermophilic species with high levels of 3-hydroxy fatty acids // Int. J. Syst. Bacteriol. 1997. V.47. p.1225-1230.
119. Cohen Y., Padan E., Shilo M. Facultative anoxygenic photosynthesis in the cyanobacterium Oscillatoria limnetica // J. Bacteriol. 1975. V. 123. P. 855-861.
138

120. Cohen Y., Jorgensen B.B., Revsbech N.P. Poplawski R. Adaptation to hydrogen sulfide of oxygenic and anoxygenic photosynthesis among cyanobacteria // Appl. Environ. Microbiol. 1986. V.51, p. 398-407.
121. Cohen Y. The Solar lake cyanobacterial mats: strategies of photosynthetic life under sulfide // In Cohen, Castenholz and Halvorson (Eds), Microbial Mats: Stromatolites, Alan R. Liss, New York. 1984. P.133-148.
122. Cohen Y., Gorlenko V.M., Bonch-Osmolovskaya E.A. Interaction of sulphur and carbon cycles in microbial mats. In: Evolution of the global biogeochemical sulphur cycle. Brimblecombe P., Lein A. Yu. (eds.). SCOPE Published by John Wiley & Sons Ltd. 1989. P. 191-238.
123. Cook T.L., Stackes D.S. Biogeological mineralization in deep-sea hydrothermal deposits // Science. 1995. V.267. p.1975-1979.
124. De Ley J., Cattoir H., Reynaerts A. The quantitative measurement of DNA hybridization from renaturation rates // Eur. J. Biochem. 1970. V.12. p.133-142.
125. Dismukes G.C., Klimov V.V., Baranov S.V., Kozlov Yu.N., DasGupta J., Tyryshkin A. The origin of atmospheric oxygen on Earth: The innovation of oxygenic photosynthesis // Proc. Nac. Acad. Sci. 2001. V.98. p.2170-2175.
126. Dobbin P.S., Warren L.H., Cook n.J., McEwan A.G., Powell A.K., Richardson D.J. Dissimilatory iron (III) reduction by Rhodobacter capsulatus // Microbiology. 1996. V.142. p.765-774.
127. Doemel W.N., Brock T.D. Structure, growth and decomposition of laminated algal- bacterial mats in alkaline hot springs // Appl. Environ. Microbiol. 1977, 34: 433-452.
128. Duckworth A.W., Grant W.D., Jones B.E., van Steenbergen R. Phylogenetic diversity of soda lake alkaliphiles // FEMS Microbiol. Ecol. 1996. V.19. p.181-191.
129. Duhig N.C., Davidson G.J., Stolz J. Microbial involvement in the formation of Cambrian sea-floor silica-iron oxide deposits, Australia // Geology. 1992. V.20. p.511- 514.
130. Ehrenreich A., Widdel F. Anaerobic oxidation of ferrous iron by purple bacteria, a new type of phototrophic metabolism // Appl. Environ. Microbiol. 1994. V.60. p.4517-4526.
131. Ehrlih H.L. Geomicrobiology. Marcell Dekker, Inc., 1981. New York, N.Y.
132. Ehrlih H.L. Microbes as geologic agents: their role in mineral formation // Geomicrobiol. J. 1999. V.16. P.135-154.
139

133. Emerson D., Moyer C.L. Neutrophilic Fe-oxidizing bacteria are abundant at the Loihi Seamount hydrothermal vents and play a major role in Fe oxide deposition // Appl. Environ. Microbiol. 2002. V.68. p.3085-3093.
134. Elsgaard L., Prieur D., Mukwaya G.M., Jorgensen B.B. Thermophilic sulfate reduction in hydrothermal sediment of lake Tanganyika, East Africa // Appl. Environ. Microbiol. 1994. V.60. p.1473-1480.
135. Engle M., Li Y., Woese C., Wiegel J. Isolation and characterization of a novel alkalitolerant thermophile, Anaerobranca horikoshii gen. nov., sp. nov. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1995. V.45. p.454-461.
136. Ferris, F. G., Beveridge T. J., Fyfe W. S. Iron-silica crystallite nucleation by bacteria in a geothermal sediment. Nature. 1986. V.320. p. 609-611.
137. Ferris M.J., Ruff-Roberts A.L., Kopczynski E.D., Bateson M.M., Ward D.M. Enrichment culture and microscopy conceal diverse thermophilic Synechococcus populations in a single hot spring microbial mat habitat // Appl. Environ. Microbiol. 1996. V.62. p.1045-1050.
138. Ferris M.J., Nold S.C., Revsbech N.P., Ward D.M. Population structure and physiological changes within a hot spring microbial mat community following disturbance // Appl. Environ. Microbiol. 1997. V.63. p.1367-1374.
139. Fortin D., Ferris F.G. Precipitation of iron, silica, and sulfate on bacterial cell surfaces // Geomicrobiol. J. 1998. V.15. #4. P.309-324.
140. Fouke B.W., Farmer J.D., Des Marais D.J., Pratt L., Sturchio N.C., Burns P.C., Discipulo M.K. Depositional facies and aqueous-solid geochemistry of travertine depositing hot springs (Angel terrace, Mammoth hot springs, Yellowstone national park, U.S.A.) // J. Sedimentary Research. 2000. V.70. p.565-585.
141. Garrels R.M., Christ C.L. Solutions, minerals and equilibria. Harper&Row, New York. 1965.
142. Gerdes G., Krumbein W.E., Holtkamp E. Salinity and water activity related zonation of microbial communities and potential stromatolites of the Gavish Sabkha // Eds. Friedman G.M., Krumbein W.E. Ecological studies. V.53. Hypersaline ecosystems: The Gavish Sabkha. Berlin etc. Springer-Verlag.1985. P. 238-266.
143. Giovannoni S.J., Revsbech N.P., Ward D.M., Castenholz R.W. Obligately phototrophic Chloroflexus: primary production in anaerobic hot spring microbial mats // Arch. Microbiol. 1987. V.147. p.80-87.
140

144. Godfroy A., Meunier J.R., Guezennee J., Lesongeur F., Raguenes G., Rembault A., Barbier G. Thermococcus fumicolans sp. nov., a new hyperthermophilic archaeon isolated from a deep-sea hydrothermal vent in the north Fiji Basin // Int. J. Syst. Bacteriol. 1996. V.46. p.1113-1119.
145. Golubic S. Organisms that build stromatolites // In Stromatolites, Developments in sedimentology. 1976. V.20. M.R.Walter (ed.) Elsevier. Amsterdam-Oxford-New-York. P.113-126.
146. Grant W.D., Tindall B.J. The alkaline saline environment // In: Halophilic Bacteria (Rodriguez, Valera F.,Ed.) p. 31-67. CRC Press. USA. 1986.
147. Guerrero R., Mas J. Multilayered microbial communities in aquatic ecosystems: growth and loss factors // In Microbial mats: phisiological ecology of benthic microbial communities. 1989. ASM. Washington
148. Hanada S., Hiraishi A., Shimada K., Matsuura K. Isolation of Chloroflexus aurantiacus species and related thermophilic phototrophic bacteria from Japanese hot springs using an improved isolation procedure // J. Gen. Appl. Microbiol. 1995. V. 41. P. 119-130. (a)
149. Hanada S., Hiraishi A., Shimada K., Matsuura K. Chloroflexus aggregans sp. nov., a filamentous phototrophic bacterium which forms dense cell aggregates by active gliding movement // Int. J. Syst. Bacteriol. 1995. V.45. p.676-681 (b)
150. Hanada S., Takaichi S., Matsuura K., Nakamura K. Roseiflexus castenholzii gen. nov., sp. nov., a thermophilic, filamentous, photosynthetic bacterium that lacks chlorosomes // Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2002. V.52, p.187-193.
151. Heda G.D., Madigan M.T. Utilization of amino acids and lack of diazotrophy in the thermophilic anoxygenic phototroph Chloroflexus aurantiacus // J. Gen. Microbiol. 1986. V.132. p.2469-2473.
152. Hiraishi A., Umezawa T., Yamamoto H., Kato K., Maki Y. Changes in quinone profiles of hot spring microbial mats with a thermal gradient // Appl. Environ. Microbiol. 1999. V.65. p.198-205.
153. Holm-Hansen O. Ecology, physiology, and biochemistry of blue-green algae // Annu. Rev. Microbiol. 1968. V.22. p.47-70.
154. Horikoshi K. Microorganisms in alkaline environments. 1990. Kodansha. Tokyo.
155. Howsley R, Pearson H.W. pH dependent sulfide toxicity to oxygenic photosynthesis in cyanobacteria // FEMS Micro. Letters. 1979. V.6. p. 287-292.
156. Huber R., Eder W., Heldwein S., Wanner G., Huber H., Rachel R., Stetter K.O. Thermocrinis ruber gen.nov., sp.nov., a pink-filament-forming hyperthermophilic
141

bacterium isolated from Yellowstone national park // Appl. Envir. Microbiol. 1998. V.64. p.3576-3583.
157. Hugenholtz P., Pitulle C., Hershberger K.L., Pace N.R. Novel division level bacterial diversity in a Yellowstone hot spring // J. Bacteriol. 1998. V.180. p.366-376.
158. Iizasa K., Kawasaki K., Maeda K., Matsumoto T., Saito N., Hirai K. Hydrothermal sulfide-bearing Fe-Si oxyhydroxide deposits from the Coriolis Troughs, Vanuatu backarc, southwestern Paciffic // Mar. Geol. 1998. V.145. p.1-21.
159. Inagaki F., Motomura Y., Ogata S. Microbial silica deposition in geothermal hot waters // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2003. V.60. p.605-611.
160. Jannasch H.W., Mottl M.J. Geomicrobiology of deep-sea hydrothermal vents // Science.
1985. V.229. p.717-725.
161. Jones B., Renaut R.W. Influence of thermophilic bacteria on calcite and silica precipitation in hot springs with water temperature above 90°C: evidence from Kenya and New Zealand // Can. J. Earth Sci. 1996. V.33. p.72-83.
162. Jones, B., Renaut R. W. Formation of silica oncoids around geysers and hot springs at El Tatio, northern Chile // Sedimentology. 1997. V.44. p.287-304.
163. Jones, B., Renaut R. W., Rosen M. R. Vertical zonation of biota in microstromatolites associated with Hot Springs, North Island, New Zealand // Palaios 1997. V.12. p.220-
236. (а)
164. Jones, B., Renaut R. W., Rosen M. R. Biogenicity of silica precipitation around geysers and hot-spring vents, North Island, New Zealand // J. Sediment. Res. 1997. V.67. p.88-
104.(б)
165. Jorgensen B.B., Nelson D.C. Bacterial zonation, photosynthesis and spectral light distribution in hot spring microbial mats of Iceland // Microb. Ecol. 1988. V.16. p. 133¬148.
166. Jorgensen B.B., Zawacki L.X., Jannsch H.W. Thermophilic bacterial sulfate reduction in deep-sea sediments at the Guaymas Basin hydrothermal vent site (Gulf of California) // Deep-Sea Res. 1990. V.37. p.695-710.
167. Juniper S.K., Fouquet Y. Filamentous iron-silica deposits from modern and ancient hydrothermal sites // Can. Mineral. 1988. V.26. p.859-869.
168. Karl D.M., Wirsen C.O., Jannasch H.W. Deep-sea primary production at the Galapagos hydrothermal vents // Science. 1980. V.207. p.1345-1347.
169. Kashefi K., Holmes D.E., Reysenbach A., Lovley D.R. Use of Fe(III) as an electron acceptor to recover previously uncultured hyperthermophiles: isolation and
142

characterization of Geothermobacterium ferrireducens gen. nov., sp. nov. // Appl. Environ. Microbiol. 2002. V.68. p.1735-1742.
170. Kashefi K., Lovley D.R. Reduction of Fe(III) Mn(IV) and toxic metals at 100°C by Pyrobaculum islandicum // Appl. Environ. Microbiol. 2000. V.66. p.1050-1056.
171. Keller M., Brown F.-J., Dirmeier R., Hafenbradl D., Burggraf S., Rachel R., Stetter K.O. Thermococcus alkaliphilus sp. nov., a new hyperthermophilic archaeum growing on polysulfide at alkaline pH // Arch. Microbiol. 1995. V.164. p.390 - 395.
172. Kieft T.L., Fredrickson J.K., Onstott T.C., Gorby Y.A., Kostandarites H.M., Bailey T.J., Kennedy D.W., Li S.W., Plymale A.E., Spadoni C.M., Gray M.S. Dissimilatory reduction of Fe(III) and other electrone acceptors by a Thermus isolate // Appl. Environ. Microbiol. 1999. V.65. p.1224-1221.
173. Knoll A.H., Golubic S. Anatomy and taphonomy of a Precambrian algal stromatolite // Precambr. Res. 1979. V. 10. #1/2. P. 115-151.
174. Knoll A.H. The distribution and evolution of microbial life in the late Proterozoic era // Ann. Rev. Microbiol. 1985. V.39. p. 391-417.
175. Knoll A.H. Archean and Proterozoic paleontology // In: Jansonius J.&McGregor D.C. (eds.), Palynology: principles and applications; American association of stratigraphic palynologists foundation. 1996. V.1. p.51-80.
176. Konhauser K.O., Ferris F.G. Diversity of iron and silica precipitation by microbial mats in hydrothermal waters, Iceland: implications for Precambrian iron formations // Geology. 1996. V.24. p.323-326.
177. Konhauser K.O., Phoenix V.R., Bottrell S.H., Adams D.G., Head I.M. Microbial-silica interactions in Icelandic hot spring sinter: possible analogues for some Precambrian siliceous stromatolites // Sedimentology. 2001. V.48. p.415-433.
178. Konopka A. Accumulation and utilization of polysaccharide by hot-spring phototrophs during a light-dark transition // FEMS Microb. Ecol. 1992. V. 102. P.27-32.
179. Kotelnikova S.V., Obraztsova A.Y., Gongadze G.M., Laurinavichius K.S. Methanobacterium thermoflexum sp. nov. and Methanobacterium defluvii sp. nov., thermophilic rod-shaped methanogens isolated from anaerobic digestor sludge // Syst. Appl. Microbiol. 1993. V.16. p.427-434.
180. Krienitz L., Ballot A., Kotut K., Wiegand C., Putz S., Metcalf J.S., Codd G.A., Pflugmacher S. Contribution of hot spring cyanobacteria to the mysterious deaths of Lesser Flamingos at Lake Bogoria, Kenya // FEMS Microbiol. Ecol. 2003. V.43. p.141-
148.
143

181. Krulwich T.A., Guffanti A.A. Alkalophilic bacteria // Annu. Rev. Microbiol. 1989. V.43. p.435-463.
182. Li Y., Mandelco L., Wiegel J. Isolation and characterization of moderately thermophilic anaerobic alkaliphile Clostridium paradoxum sp. nov. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1993. V.43. p.450 - 460.
183. Li Y, Engle M., Mandelco L., Wiegel J. Clostridium thermoalkaliphilum sp. nov., an anaerobic and termotolerant facultative alkaliphile // Int. J. Syst. Bacteriol. 1994. V.44. p.111 - 118.
184. Little C.T.S., Herrington R.J., Heymon R.M., Danelian T.D. Early Jurrasic hydrothermal vent community from the Franciscan Complex, San Rafael Mountains, California // Geology. 1999. V.27. p.167-170.
185. Madigan M.T., Brock T.D. Photosynthetic sulfide oxidation by Chloroflexus aurantiacus, a filamentous, photosynthetic, gliding bacterium // J. Bacteriol. 1975. V.122. p.782-784.
186. Madigan M.T., Takigiku R., Lee R.G., Gest R., Hayes J.M. Carbon isotope fractionation by thermophilic phototrophic sulfur bacteria: evidence for autotrophic growth in natural populations // Appl. Environ. Microbiol. 1989. V.55. p.639-644.
187. Marmur J. A procedure for the isolation DNA from microorganisms // J. Molecular. Biol. 1961. V.3. p.208-218.
188. Marteinsson V.T., Kristjansson J.K., Kristmannsdottir H., Dahlkvist M., Saemundsson K., Hannington M., Petursdottir S.K., Geptner A., Stoffers P. Discovery and description of giant submarine smectite cones on the seafloor in Eyjafjordur, Northern Iceland, and a novel thermal microbial habitat // Appl. Environ. Microbiol. 2001. V.67. p.827-833.
189. Mathrani I.M., Boone D.R., Mah R.A., Fox G.E., Lau P.P. Methanohalophilus zhilinae sp. nov., an alkaliphilic, halophilic, methylotrophic methanogen // Int. J. Syst. Bacteriol.
1988. V.38. p.139-142.
190. Moezelaar R., Bijvank S.M., Stal L.J. Fermentation and sulfur reduction in the mat- building cyanobacterium Microcoleus chtonoplastes // Appl. Environ. Microbiol. 1996. V.62. p.1752-1758.
191. Moody M.D., Dailey H.A. Ferric iron reductase of Rhodopseudomonas sphaeroides // J. Bacteriol. 1985. V.163. p.1120-1125.
192. Moyer C.L., Dobbs F.C., Karl D.M. Phylogenetic diversity of the bacterial community from a microbial mat at an active, hydrothermal vent system, Loihi seamount, Hawaii // Appl. Environ. Microbiol. 1995. V.61. p.1555-1562.
144

193. Nakagawa T., Fukui M. Phylogenetic characterization of microbial mats and streamers from a Japanese alkaline hot spring with a thermal gradient // J. Gen. Appl. Microbiol. 2002. V.48. p.211-222.
194. Nisbet E.G. RNA, hydrothermal systems, zeolites and the origin of life // Episodes.
1986. V. 9. p. 83-89.
195. Nold S.C., Kopczynsky E.D., Ward D.M. Cultivation of aerobic chemoorganotrophic proteobacteria and gram-positive bacteria from a hot spring microbial mat // Appl. Envir. Microbiol. 1996. V.62. N.2. p. 3917-3921.
196. Nubel U., Bateson M.M., Vandieken V., Wieland A., Kuhl M., Ward D.M. Microscopic examination of distribution and phenotypic properties of phylogenetically diverse Chlorfexaceae-related bacteria in hot spring microbial mats // Appl. Environ. Microbiol. 2002. V.68. p.4593-4603.
197. Oehler J.H., Schopf J.W. Artificial microfossils: experimental studies of permineralisation of blue-green algae in silica // Science. 1971. V.174. p.1229-1231.
198. Odintsova E., Jannasch H., Mamone J., Langworthy T. Thermotrix azorensis sp. nov., an oblogately chemolithoautotrophic, sulfur-oxidizing, thermophilic bacterium // Int. J. Syst. Bacteriol. 1996. V.46. p.422-428.
199. Okamura K., Hisada T., Hiraishi A. Isolation and characterisation of phototrophic purple nonsulfur bacteria from hot spring Chloroflexus mats // Abstracts of 11th International symposium on phototrophic prokaryotes. August 24-29, 2003. Tokyo, Japan. P. 154.
200. Oremland, R.S., Dowdle P.R., Hoeft S., Sharp J.O., Schaefer J.K., Miller L.G., Blum J.S., Smith R.L., Bloom N.S., Wallschlaeger D. Bacterial dissimilatory reduction of arsenate and sulfate in meromictic Mono lake, California // Geohim. Cosmochim. Acta. 2000. V.64. p.3073-3084.
201. Oremland, R.S., Miller L.G., Whiticar M.J. Sources and flux of natural gases from Mono Lake, California // Geohim. Cosmochim. Acta. 1987. V.51. p.2915-2929.
202. Oren, A., Shilo M. Anaerobic heterotrophic dark metabolism in the cyanobacterium Oscillatoria limnetica: sulfur respiration and lactate fermentation // Arch. Microbiol. 1979. V.122. p. 77-84.
203. Owen R.J., Hill L.R. Lapage S.P. Determination of DNA base composition from melting profiles in dilute buffers. Biopolymers. 1969. V. 7. P. 503-516.
204. Oxburgh, R., Broecker W.S., Wannikhof R.H. The carbon budget of Mono lake // Global. Biogeochem. Cycles. 1991. V.5. p.359-372.
145

205. Pentecost A. Formation of laminate travertines at Bagno Vignone, Italy // Geomicrobiol. J. 1994. V.12. P.239-252.
206. Pentecost A. Significance of the biomineralizing microniche in a Lyngbia (Cyanobacterium) travertine // Geomicrobiol. J. 1995. V.13. p.213-222.
207. Pfennig N., Lippert K. D. Uber das Vitamin B12 - Bedurfnis phototropher Schwefelbackterien // Arch. Mikrobiol 1966.V.55. p.245 - 256.
208. Pierson B.K., Castenholz R.W. A phototrophic gliding filamentous bacterium of hot springs, Chloroflexus aurantiacus gen. and sp. nov. // Arch. Microbiol. 1974. V.100. p.5-24.
209. Pierson B.K., Giovannoni S.J., Castenholz R.W. Physiological ecology of a gliding bacterium containing bacteriochlorophyll a //Appl. Environ. Microbiol. 1984. V.47. p.576-584.
210. Pierson B.K., Giovannoni S.J., Stahl D.A., Castenholz R.W. Heliothrix oregonesis, gen. nov., sp. nov., a phototrophic filamentous gliding bacterium containing bacteriochlorophill a // Arch. Microbiol. 1985. V.142. p.164-167.
211. Pierson B.K., Parenteau M.N., Griffin B.M. Phototrophs in high-iron-concentration microbial mats: Physiological ecology of phototrophs in an iron-depositing hot spring// Appl. Environ. Microbiol. 1999. V.65. p.5474-5483.
212. Pierson B.K., Parenteau M.N. Phototrophs in high iron microbial mats: microstructure of mats in iron-depositing hot springs // FEMS Microb. Ecol. 2000. v.32. p.181-196.
213. Pikuta E., Lysenko A., Suzina N., Osipov G., Kuznetsov B., Tourova T., Akimenko V., Laurinavichius K. Desulfotomaculum alkaliphilum sp. nov., a new alkaliphilic, moderately thermophilic, sulfate-reducing bacterium // Int. J. Syst. Microbiol. 2000. V.50.p.25-33.
214. Preat A., Mamet B., De Ridder C., Boulvain F., Gillan D. Iron bacterial and fungal mats, Bajocian stratotype (mid-Jurrasic, northern Normandy, France) // Sediment. Geol. 2000. V.137. p.107-126.
215. Prowe S.G., Antranikian G. Anaerobranca gottschalkii sp. nov., a novel thermoalkaliphilic bacterium that grows anaerobicaly at high pH and temperature // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2001. V.51. p.457-465.
216. Puteanus D, Glasby D.P., Soffers P., Kunzendorf H. Hydrothermal iron-rich deposits from the teahitia-mehitia and MacDonald hot-spot areas, Southwest Pacific // Mar. Geol. 1991. V.98. p.389-409.
146

217. Ramsing N.B., Ferris M.J., Ward D.M. Highly ordered vertical structure of Synechococcus populations within the one-millimeter-thick photic zone of a hot spring cyanobacterial mat // Appl. Environ. Microbiol.2000.V.66.p.1038-1049.
218. Reysenbach A.L., Wickham G.S., Pace N.R. Phylogenetic analysis of the hyperthermophilic pink filament community in Octopus spring, Yellowstone national park // Appl. Environ. Microbiol. 1994. V.60. p.2113-2119.
219. Reysenbach A.L., Ehringer M., Hershberger K. Microbial diversity at 83 degrees C in Calcite springs, Yellowstone National Park: another environment where Aquificales and “Korarchaeota” coexist // Extremophiles. 2000. V.4. p.61-67. (а)
220. Reysenbach A.-L., Longnecker K., Kirshtein J. Novel bacterial and archaeal lineages from an in situ growth chamber deployed at a Mid-Atlantic ridge hydrothermal vent // Appl. Environ. Microbiol. 2000. V.66. p.3798-3806. (б)
221. Reynolds J. The use of lead citrate of high pH as electrone opaque in electrone microscopy //J. Cell. Biol. 1963. V. 17. №1. P.208-218.
222. Revsbech N.P., Ward D.M. Microelectrode studies of interstitial water chemistry and photosynthetic activity in a hot spring microbial mat // Appl. Environ. Microbiol. 1984. V. 48. №2. P. 270-275.
223. Richardson L.L., Castenholz R.W. Enhanced survival of the cyanobacterium Oscillatoria terebriformis in darkness under anaerobic conditions // 1987. Appl. Environ. Microbiol. V. 53. P.2151-2158.
224. Roy A.B., Trudinger P.A. The biochemistry of inorganic compounds of sulphur. Cambridge University Press. 1970. Cambridge.
225. Ryter A., Kellenberger E. Etude an microscope electronique des plasmes contenant de l’acide deoxyribonucleique des nucleodes des bacteries en croissances active // Z. Naturforsch. 1958. B. 13b. S. 597-605.
226. Ruff-Roberts A.L., Kuenen J.G., Ward D.M. Distribution of cultivated and uncultivated cyanobacteria and Chloroflexus-like bacteria in hot spring microbial mats // Appl. Envir. Microbiol. 1994. V.60. p.697-704.
227. Sandbeck K.A., Ward D.M. Fate of immediate methane precursors in low-sulfate, hot- spring algal-bacterial mats // Appl. Environ. Microbiol. 1981. V.41. p.775-782.
228. Sandbeck K.A., Ward D.M. Temperature adaptations in the terminal processes of anaerobic decomposition of Yellowstone and Islandic hot spring mats. // Appl. Environ. Microbiol. 1982. V.44. P.844-851.
147

229. Santegoeds C.M., Nold S.C., Ward D.M. Denaturating gradient gel electrophoresis used to monitor the enrichment culture of aerobic chemoorganotrophic bacteria from a hot spring cyanobacterial mat // Appl. Envir. Microbiol. 1996. V.62. N.11. p. 3922-3928.
230. Schauder R., Kroger A. Bacterial sulfur respiration // Arch. Microbiol. 1993. V.159. p. 491-497.
231. Schauder R., Muller E. Polysulfide as a possible substrate for sulfur-reducing bacteria // Arch Microbiol, 1993. V.160, p.377-382
232. Schink B., Zeikus J.G. Clostridium thermosulfurogenes sp. nov., a new thermophile that produces elemental sulphur from thiosulphate // J. Gen. Microbiol. 1983. V.129. p.1149- 1158.
233. Skirnisdottir S., Hreggvidsson G.O., Hjorleifsdottir S., Marteinsson V.T., Petursdottir
S.K., Holst O., Kristjansson J.K. Influence of sulfide and temperature on species composition and community structure of hot spring microbial mats // Appl. Environ. Microbiol. 2000. V.66. P. 2835-2841.
234. Skirnisdottir S., Hreggvidsson G., Holst O., Kristjansson J. Isolation and characterization of a mixotrophic sulfur-oxidizing Thermus scotoductus // Extremophiles. 2001. V. 5. P.45-51.
235. Sievert S.M., Brinkhoff T., Muyzer G., Ziebis W., Kuever J. Spatial heterogenity of bacterial populations along an environmental gradient at a shallow submarine hydrothermal vent near Milos island (Greece) // Appl. Environ. Microbiol. 1999. V.65. p.3834-3842.
236. Spiro B., Pentecost A. One day in the life of a stream - a diurnal inorganic carbon mass balance for a travertine-depositing stream (Waterfall beck, Yorkshire) // Geomicrobiol. J. 1991. V.9. #1. P.1-12.
237. Stal L. Physiological ecology of cyanobacteria in microbial mats and other communities // New Phytol. 1995. V. 131. P.1-32.
238. Stoffers P., Glasby G.P., Stuben D., Renner R.M., Pierre T.G., Webb J., Cardile C.M. Comparative mineralogy and geochemistry of hydrothermal iron-rich crusts from the Pitcairn, Teahitia-Mehetia, and MacDonald hot-spot areas of the SW Pacific // Mar. Georesour. Geotechnol. 1993. V.11. p.45-89.
239. Stookey L.L. Ferrozine - a new spectrophotometric reagent for iron // Analytical chemistry 1970. V.42. p.779-781.
240. Svetlytshni V., Rainey F., Wiegel J. Thermosyntropha lipolytica gen. nov., sp. nov., a lipolytic anaerobic organoheterotrophic alkalitolerant thermophile utilizing short- and
148

long chain fatty acids in syntrophic co-culture with a metanogen // Int. J. Syst. Bacteriol. 1996. V.46. p.1131-1137.
241. Takai K., Komatsu T., Inagaki F., Horikoshi K. Distribution of archaea in a black smoker chimney structure // Appl. Environ. Microbiol. 2001. V.67. p.3618-3629.
242. Tarasov V.G., Propp M.V., Propp L.N., Zhirmunsky A.V., Namsaraev B.B., Gorlenko V.M., Starynin D.A. Shallow-water gasohydrothermal vents of Ushishir volcano and the ecosystem of Kraternaya bight (The Kurile islands) // Marine ecology. 1990. V.11(1). p.1-23.
243. Teske A., Hinrichs K-U., Edgcomb V., Gomez A. d.V., Kysela D., Sylva S.P., Sogin M.L., Jannasch H.W. Microbial diversity of hydrothermal sediments in the Guaymas basin: evidence for anaerobic methanotrophic communities // Appl. Environ. Microbiol. 2002. V.68. p.1994-2007.
244. The Mono Basin Ecosystem. Effect of Changing Lake Level. Ed. by Mono Basin Ecosystem Study Committee Board Environmental Studies and Toxicology Commission on Physical Sciences, Mathematics, and Resources National Resources Council. National Academy Press. Washington, D.C. 1987
245. Trewin, N.H., Knoll A.H. Preservation of Devonian chemotrophic filamentous bacteria in calcite veins // Palaios. 1999. V.14. p.288-294.
246. Truper H.G., Schlegel H.G. Sulphur metabolism in Thiorhodaceae. I. Quantative measurements on growing cells of Chromatium okenii. //Antonie van Leeuwenhoek J. Microbiol. And Serol. 1964. V.30. №3. P. 225-238.
247. Van de Peer Y., De Wachter R. TREECON for Windows: a software package for the construction and drawing of evolutionary trees for the Microsoft Windows environment // Comput. Appl. Biosci. 1994. V.10. p.569-570.
248. Von Damm K.L. Controls on the chemistry and temporal variability of seafloor hydrothermal fluids // In S.Humphris, R. Zierenberg, L.Mullineaux, R. Thomson (ed.), Seafloor hydrothermal systems: physical, chemical, biological, and geological interactions. American Geophysical Union. Washington. D.C. 1995.
249. Walsh M.M. Microfossils and possilble microfossils from the Early Archean Onwervaht Group, Barberton Mountain Land, South Africa // Precambr. Res. 1992. V.54. p.271- 293.
250. Walter M.R. Archean stromatolites: evidence of the Earth’s earliest benthos. In Earth’s earliest biosphere: it’s origin and evolution / ed by J.W. Schopf. Princeton. 1983.
149

251. Walter M.R. Geyserites of Yellowstone national park: an example of abiogenic “stromatolites” // In Stromatolites, Developments in sedimentology. 1976. V.20. M.R.Walter (ed.) Elsevier. Amsterdam-Oxford-New-York. P.87-112.
252. Walter M.R., Bauld J., Brock T.D. Microbiology and morphogenesis of columnar stromatolites (Conophyton, Vacerrilla) from hot springs in Yellowstone national park // In Stromatolites, Developments in sedimentology. 1976. V.20. M.R.Walter (ed.) Elsevier. Amsterdam-Oxford-New-York. P.273-310.
253. Walter M.R., McLoughlin S., Drinnan A.N., Farmer J.D. Palaeontology of Devonian thermal spring deposits, Drummond Basin, Australia // Alcheringa. 1998. V. 22. p. 285¬314.
254. Ward D.M. Thermophilic methanogenesis in a hot spring algal-bacterial mat (71-30°C) // Appl. Environ. Microbiol. 1978. V.35. P.1019-1026.
255. Ward D.M., Beck E., Revsbech N.P., Sandbeck K.A., Winfrey M.R. Decomposition of hot spring microbial mats. // In Microbial mats: Stromatolites, 1984. P 191-214
256. Ward D.M., Ferris M.J., Nold S.C., Bateson M.M. A natural view of microbial biodiversity within hot spring cyanobacterial mat communities // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 1998. V. 62. p.1353-1370.
257. Ward D.M., Weller R., Bateson M.M. 16S rRNA sequences reveal numerous uncultured microorganisms in a natural community // Nature (London). 1990. V.344. p.63-65.
258. Ward D.M., R. Weller, J. Shiea, R.W. Castenholz and Y. Cohen. Hot spring microbial mats: anoxygenic and oxygenic mats of possible evolutionary significance // In Y. Cohen and E. Rosenberg (ed.), Microbial mats: physiological ecology of benthic microbial communities. ASM, Washington, D.C., 1989, p. 3-15.
259. Weller D., Doemel W., Brock T.D. Requirement of low oxidation-reduction potential for photosynthesis in a blue-green alga (Phormidium sp.) // Arch. Microbiol. 1975. V.104. p.7-13.
260. Weller R.M., Bateson M.M., Heimbuch B.K., Kopczynsky E.D., Ward D.M. Uncultivated cyanobacteria, Chloroflexus-like inhabitants, and spirochete-like inhabitants of a hot-spring microbial mat // Appl. Envir. Microbiol. 1992. V.58. p. 3964¬3969.
261. Westall F., Marchesini D. Fossil bacteria and biofilms from the early Archaean (3.3-3.5 b.y.) Barberton and Pilbara greenstone belts: the first extremophile life on Earth and its relevance to the search for life on Mars // Abstracts of Int. Conference “Instruments, methods and missions for astrobiology V”. Moscow. PIN RAS, May 24-25. 2002. P. 99.
150

262. Wickstrom C.E., Castenholz R.W. Dynamics of cyanobacterial and ostracod interactions in an Oregon hot spring // Ecology. 1985. V.66. p.1024-1041.
263. Widdel F., Schnell S., Heising S., Ehrenreich A., Assmus B., Schink B. Ferrous iron oxidation by anoxygenic phototrophic bacteria // Nature (London). 1993. V.362. p.834- 835.
264. Wiegel J. Anaerobic alkalithermophiles, a novel group of extremophiles // Extremophiles. 1998. V.2. P. 257-267.
265. Wiegel J., Ljungdahl L.G. Thermoanaerobacter ethanolicus gen. nov., sp. nov., a new extreme thermophilic, anaerobic bacterium // Arch. Microbiol. 1982. V.128. p.343-348.
266. Wiegel J., Ljungdahl L.G., Rawson J.R. Isolation from soil and properties of the extreme thermophile Clostridium thermohydrosulphuricum // J. Bacteriol. 1979. V.139. p.800- 810.
267. Yamamoto H., Hiraishi A., Kato K., Chiura H.X., Maki Y., Shimizu A. Phylogenetic evidence for the existence of novel thermophilic bacteria in hot-spring sulfur-turf microbial mats in Japan // Appl. Environ. Microbiol. 1998. V.64. p.1680-1687.
268. Zeikus J.G., Ben-Bassat A., Hegge P.W. Microbiology of methanogenesis in thermal, volcanic environments // J. Bacteriol. 1977. V.143. p.432-440.
269. Zeikus J.G., Wolfe R.S. Methanobacterium thermoautotrophicus sp. nov., an anaerobic, autotrophic, extreme thermophile // J. Bacteriol. 1980. V.109. p.707-713.
151

Работу высылаем на протяжении 24 часов после оплаты.




©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ
.