🔍 Поиск готовых работ

🔍 Поиск работ

РЕАКЦИИ ВРОЖДЕННОГО И ПРИОБРЕТЕННОГО ИММУНИТЕТА У РЫБ В ЕСТЕСТВЕННЫХ И ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ УСЛОВИЯХ

Работа №28741

Тип работы

Диссертации (РГБ)

Предмет

биология

Объем работы186
Год сдачи2002
Стоимость500 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
764
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


Введение 5
2. Обзор литературы 12
2.1. Органы и ткани иммунной системы рыб 12
2.1.1. Почка 12
2.1.2. Тимус
2.1.3. Селезенка
2.1.5. Ткань эпикарда 20
2.1.6. Краниальный гемопоэтический орган 20
2.1.7. Периферическая кровь 22
2.2. Клетки иммунной системы рыб 23
2.2.1. Гранулоциты 23
2.2.2. Макрофаги 24
2.2.3. Неспецифические цитотоксические клетки 25
2.2.4. Лимфоциты 26
2.3. Факторы гуморального иммунитета рыб 28
2.3.1. Факторы врожденного иммунитета 28
2.3.2. Факторы приобретенного иммунитета 34
2.4. Развитие иммунного ответа 39
2.4.1. Первичный и вторичный иммунный ответ, формирование специфической памяти 39
2.4.2. Трансплантационные реакции 43
2.4.3. Реакции гиперчувствительности 44
2.4.4. Противоопухолевая активность 45
2.5. Регуляция иммунной системы 45
2.6. Болезни рыб 54
2.6.1. Краткая характеристика болезней рыб 54
2.6.1.1. Инфекционные заболевания 55
2.6.1.2. Инвазионные заболевания 57
2.6.1.3. Болезни смешанного типа 58
2.6.2. Методы профилактики и лечения заболеваний рыб 59
2.6.2.1. Использование химиотерапевтических препаратов 59
2.6.2.2. Вакцинация 62
2.6.2.3. Пассивная иммунизация 64
2.6.2.4. Повышение иммунитета путем селекции 64
3. Цель и задачи исследования 66
4. Объекты и методы исследования 67
4.1. Объекты 67
4.1.1. Радужная форель Salmo gairdneri (Richardson, 1836) 67
4.1.2. Северная навага Eleginus navaga (Pallas, 1811) 67
4.1.3. Беломорская треска Gadus morhua maris-albi (Derjugin, 1920) 67
Отлов и содержание морских рыб Клинический осмотр рыб Вскрытие рыб и осмотр при вскрытии Бактериологическое исследование Паразитологическое исследование Взятие крови и получение сыворотки Подсчет форменных элементов крови Определение скорости оседания эритроцитов Определение концентрации гемоглобина в крови Определение цветного показателя крови
1. Введение 5
2. Обзор литературы 12
2.1. Органы и ткани иммунной системы рыб 12
2.1.1. Почка 12
2.1.2. Тимус
2.1.3. Селезенка
2.1.5. Ткань эпикарда 20
2.1.6. Краниальный гемопоэтический орган 20
2.1.7. Периферическая кровь 22
2.2. Клетки иммунной системы рыб 23
2.2.1. Гранулоциты 23
2.2.2. Макрофаги 24
2.2.3. Неспецифические цитотоксические клетки 25
2.2.4. Лимфоциты 26
2.3. Факторы гуморального иммунитета рыб 28
2.3.1. Факторы врожденного иммунитета 28
2.3.2. Факторы приобретенного иммунитета 34
2.4. Развитие иммунного ответа 39
2.4.1. Первичный и вторичный иммунный ответ, формирование специфической памяти 39
2.4.2. Трансплантационные реакции 43
2.4.3. Реакции гиперчувствительности 44
2.4.4. Противоопухолевая активность 45
2.5. Регуляция иммунной системы 45
2.6. Болезни рыб 54
2.6.1. Краткая характеристика болезней рыб 54
2.6.1.1. Инфекционные заболевания 55
2.6.1.2. Инвазионные заболевания 57
2.6.1.3. Болезни смешанного типа 58
2.6.2. Методы профилактики и лечения заболеваний рыб 59
2.6.2.1. Использование химиотерапевтических препаратов 59
2.6.2.2. Вакцинация 62
2.6.2.3. Пассивная иммунизация 64
2.6.2.4. Повышение иммунитета путем селекции 64
3. Цель и задачи исследования 66
4. Объекты и методы исследования 67
4.1. Объекты 67
4.1.1. Радужная форель Salmo gairdneri (Richardson, 1836) 67
4.1.2. Северная навага Eleginus navaga (Pallas, 1811) 67
4.1.3. Беломорская треска Gadus morhua maris-albi (Derjugin, 1920) 67
4.2. Методы 67
4.2.15. Определение концентрации белка по методу Бредфорд 74
4.2.16. Спектрофотометрическое определение концентрации белка 75
4.2.17. Получение антисыворотки 75
4.2.18. Получение разрушенных клеток бактерий 75
4.2.19. Твердофазный иммуноферментный анализ 76
4.2.19.1. Непрямой твердофазный ИФА для тестирования антисыворотки кролика к
иммуноглобулинам рыб 76
4.2.19.2. Прямой твердофазный ИФА для стандартизации рабочего разведения конъюгата 78
4.2.19.3. Непрямой твердофазный ИФА для стандартизации рабочей концентрации
иммуноглобулинов кролика 78
4.2.19.4. Непрямой твердофазный ИФА для стандартизации рабочего разведения клеток бактерий 78
4.2.19.5. Непрямой твердофазный ИФА для стандартизации рабочей концентрации разрушенных
ультразвуком клеток бактерий 78
4.2.19.6. Непрямой твердофазный ИФА для определения взаимодействия сывороток рыб с
поверхностными антигенами бактерий 79
4.2.19.7. Непрямой твердофазный ИФА для определения взаимодействия сывороток рыб с
антигенами разрушенных ультразвуком клеток бактерий 79
4.2.19.8. Получение данных с помощью компьютера 79
4.2.20. Статистическая обработка данных 80
5. Экспериментальные результаты и их обсуждение 81
5.1. Исследование параметров врожденного иммунитета радужной форели, наваги и трески в
зависимости от инфекции и зараженности паразитами 82
5.1.1. Изучение иммунологических и гематологических показателей радужной форели при энтерите
и исследование действия лекарственных препаратов 83
5.1.1.1. Клинический осмотр и патологоанатомическое исследование 86
5.1.1.2. Бактериологический анализ 89
5.1.1.3. Паразитологический анализ 89
5.1.1.4. Изучение гематологических показателей 89
5.1.1.5. Сравнение электрофореграмм сывороток рыб 92
5.1.1.6. Определение концентрации лизоцима в сыворотках рыб 94
5.1.2. Исследование зависимости иммунологических и гематологических показателей наваги и
трески Белого моря от зараженности паразитами 97
5.1.2.1. Морфологические параметры рыб 99
5.1.2.2. Показатели зараженности рыб скребнем Echinorhynchus gadi 102
5.1.2.3. Бактериологический анализ 104
5.1.2.4. Изучение гематологических показателей 104
5.1.2.5. Определение концентрации белка в сыворотках рыб 110
5.1.2.6. Сравнение электрофореграмм сывороток рыб 112
5.1.2.7. Определение концентрации лизоцима в сыворотках рыб 112
5.2. Исследование специфического иммунитета радужной форели 118
5.2.1. Оптимизация метода твердофазного иммуноферментного анализа и экспериментальная
разработка тест-системы для изучения специфического взаимодействия сывороток рыб с возбудителями заболеваний 120
5.2.1.1. Выделение иммуноглобулинов из сыворотки рыб 121
5.2.1.2. Получение поликлональной антисыворотки и поликлональных антител кролика к
иммуноглобулинам рыб 123
5.2.1.3. Подбор условий для проведения твердофазного ИФА 125
5.2.2. Применение метода твердофазного иммуноферментного анализа для определения
специфического взаимодействия сывороток рыб с возбудителями энтерита радужной форели 133
6. Заключение 137
7. Выводы 142
Литература 144


Изучение иммунной системы рыб внесло существенный вклад в развитие сравнительной и эволюционной иммунологии. Галактионов указывает: «на эволюцию специфического иммунитета не следует смотреть только как на самостоятельное явление исторического развития; скорее, ее следует оценивать как такой процесс, который обеспечил прогресс в мире животных по линии увеличения абсолютного количества соматических клеток» [Галактионов, 1998, с. 391]. Первые исследования, связанные со строением органов иммунной системы рыб, относятся к 1920-м - 1940-м годам: например, труд Г.Н. Калашникова (1939) посвящен клеточному составу крови рыб, работа А.К. Скворцова (1947)— строению селезенки костистых рыб. Позднее появились труды Zapata о структуре лимфоидных органов рыб [Zapata, 1979; 1980] и Ellis, посвященные функционированию лейкоцитов рыб [Ellis, 1977; 1980; 1986]. В 1990-х годах в связи с разработкой новых методов, таких как иммунохимические методы, гибридомная технология, анализ ДНК и генно-инженерные технологии, ученые стали уделять большое внимание молекулярным механизмам иммунитета [Cadwell et al., 1990; Bengten et al., 1991; Abelli et al., 1996; 1997; 1999; Scapigliati et al., 1999a; Secombes et al., 1999]. Исследования иммунной системы прояснили эволюционное положение рыб и внесли вклад в понимание структурного и функционального становления системы иммунитета млекопитающих. Так, было показано, что рыбы наряду с врожденным иммунитетом, свойственным и низкоорганизованным животным, обладают всеми основными элементами специфической иммунной системы высших позвоночных, но различные регуляторные механизмы иммунного ответа у рыб менее развиты.
Однако до сих пор нет целостной картины организации и функционирования иммунной системы рыб. Основной причиной недостаточности знаний является противоречивость накопленных данных, обусловленная, прежде всего, большими различиями между классами и группами рыб: ДНК хрящевых и костистых рыб отличаются по степени гибридизации больше, чем ДНК птиц и млекопитающих [Медников и др., 1973].
2. Исследования, связанные с промышленным разведением рыб
При разведении рыб в аквакультуре условия их содержания должны благоприятствовать оптимальной активности врожденного иммунитета. В этом направлении были проведены исследования влияния условий содержания на параметры иммунитета рыб. Было показано, что иммунитет рыб в значительной мере зависит от внешних воздействий, и условия среды обитания представляют собой активные регуляторы иммунореактивности рыб.
Современное рыбоводство является неотъемлемым звеном экономического развития России. В последние годы научная база рыбоводства существенно расширилась, однако до сих пор заболевания рыб и способы их лечения изучены недостаточно, и рыбные хозяйства несут большие экономические потери от смертности рыб вследствие болезни. Наиболее эффективным методом контроля заболеваний рыб, вызываемых характерными для аквакультуры патогенами, является вакцинация рыб. Применяют также различные лекарственные препараты, но нет данных о сравнительной эффективности этих средств. Существуют ограничения для успешного применения этих методов, поскольку использование лекарств связано с риском загрязнения ими среды обитания, а вакцина дает защиту только от специфического инфекционного агента, в случае появления новых болезней требуется разработка новых вакцин. Поэтому проводятся исследования, с одной стороны, вирулентности и патогенности бактерий, характерных для рыб, содержащихся в рыбных хозяйствах, изучение этиологии и биологии паразитов рыб, а с другой стороны — факторов, влияющих на иммунный ответ рыб и усиливающих его. Изучаются возможности применения иммуностимулянтов — эволюционно консервативных веществ, свойственных микроорганизмам и стимулирующих реакции врожденного иммунитета у животных. Кроме того, изучаются возможности селективного разведения устойчивых к заболеваниям рыб. Наконец, перспективными представляются разработка и производство простых в применении, надежных и высокочувствительных тест-систем для диагностики болезней рыб.
3. Изучение показателей иммунитета рыб как биоиндикация состояния водной среды обитания
В последнее время в связи с ростом техногенного воздействия на среду обитания и возникновением угрозы для выживания и здоровья живых организмов параметры иммунитета рыб используются как показатели загрязнения воды в реках, концентрация лизоцима, антител и лейкоцитов в крови рыб, а также тесты функциональной активности комплемента, макрофагов и лимфоцитов. Поллютанты не только оказывают вредное воздействие на животных, но и нарушают естественное развитие экосистемных процессов. Поллютанты могут подавлять функции иммунной системы рыб или приводить к развитию реакций гиперчувствительности и аутоиммунных реакций из-за дисфункции механизмов регуляции иммунной системы, тем самым участвуя в нарушении гомеостаза организма рыб [Cossarini-Dunier et al., 1990; Hart et al., 1997; Baumann, 1998; O’Halloran et al., 1998; Aaltonen et al., 2000; Dethloff et al., 2001; Regala et al., 2001]. В результате наблюдается увеличение количества заболевших рыб, возрастание интенсивности и экстенсивности зараженности рыб паразитами, изменение восприимчивости рыб к условно-патогенным симбионтам микрофлоры кишечника. Кроме того, загрязняющие вещества могут действовать как канцерогены [Grizzle et al., 1981; Baumann, 1998]. Оценка параметров иммунной системы морских и пресноводных рыб позволяет получать достоверную информацию о состоянии животных в естественных условиях обитания и о качестве среды, а также проводить биотестирование и биомониторинг техногенного воздействия на среду обитания диких видов. Кроме того, учет симбионтов рыб (паразитов, бактерий) позволяет оценивать биоразнообразие в экосистемах и прогнозировать развитие протекающих в экосистемах динамических процессов. Влияние токсических веществ и других промышленных отходов на иммунную систему рыб стало предметом иммунотоксикологии.
Как известно, иммунная система представляет собой защитную систему, в результате действия которой поддерживается постоянство внутренней биологической среды организма, то есть развивается иммунитет к чужеродным агентам молекулярной, надмолекулярной и клеточной организации, уничтожаются собственные измененные клетки и нейтрализуются продукты их жизнедеятельности. В иммунной системе позвоночных животных выделяют две основных составляющих — врожденную и приобретенную, каждая из них представлена клеточными элементами и продуцируемыми ими веществами — гуморальными факторами иммунитета [Ярилин, 1999].
Врожденная составляющая иммунной системы позвоночных формируется в процессе естественного развития организма, и механизмы, относящиеся к этой части иммунной системы, называют также естественными. Они начинают действовать сразу после любого воздействия, которое нарушает целостность внутренней среды организма, то есть являются неспецифическими. Действие врожденных механизмов иммунитета кратковременно и неизбирательно, то есть не зависит от уникальных особенностей активизировавшего защитные реакции чужеродного агента. При повторной встрече с чужеродным агентом клетки и гуморальные факторы естественного иммунитета не «узнают» его и реагируют на него так же, как и при первом контакте, то есть не происходит формирования иммунологической памяти. Это звено иммунитета позвоночных животных имеет много общих черт с защитными реакциями беспозвоночных [Фонталин, 1998].
Приобретенная составляющая иммунной системы позвоночных, или антигенраспознающая система, уникальна тем, что формирование этой системы происходит в течение всей жизни организма в результате контакта с различными агентами — чужеродными или измененными собственными субстанциями, вызывающими в организме развитие специфических иммунных реакций. Эти реакции направлены только против агента, который активировал каскад иммунного ответа, поэтому приобретенную составляющую иммунной системы называют еще адаптивной. Основой ее являются лимфоциты, несущие на своей поверхности уникальные рецепторы, распознающие антиген и способные взаимодействовать с другими молекулами и клетками иммунной системы. Разнообразие этих рецепторов создается в результате действия генетических и отборочных механизмов, максимизирующих репертуар рецепторов, распознающих антиген, и одновременно минимизирующих риск реагирования на собственные нормальные антигены организма. Система приобретенного иммунитета позвоночных животных способна узнать чужеродный агент или собственные измененные клетки и макромолекулы, избирательно уничтожить их или нейтрализовать. Одновременно осуществляется запоминание этого агента, формируется специфическая иммунологическая память, и при повторном контакте с ним адаптивные механизмы реагируют более быстро, эффективно и продолжительно.
При развитии иммунного ответа составляющие иммунной системы позвоночных животных— клетки и гуморальные факторы естественного иммунитета и антигенраспознающей системы — действуют взаимосвязанно.
Организация иммунной системы большинства рыб уже во многом предвосхищает организацию иммунной системы высших позвоночных, и рыбы способны к проявлению всех форм иммунного ответа, свойственных изменению внешних условий. С одной стороны, это приводит к тому, что в неблагоприятных условиях у рыб снижается устойчивость к условно-патогенным и непатогенным симбионтам и появляется риск заболевания инфекционными и инвазионными болезнями, вызванными этими организмами [Бауер и др., 1981; Юнчис, 2000]. С другой стороны, такая чувствительность иммунной системы рыб дает возможность разработки новых, более точных, быстрых и недорогих методов определения состояния среды обитания водных животных, воздействия техногенных факторов на живые организмы и характера их ответа [Криксунов и др., 1999; Смуров, 2000]. Иммунная система как система защиты организма от чужеродного воздействия является чрезвычайно чувствительной к токсическому действию химических веществ, присутствующих в очень низких концентрациях, которые не приводят к привычному «очевидно» вредному эффекту. Сегодня в результате экспансии человеческой деятельности практически на все природные зоны и нерационального отношения человека к окружающей природе многие иммунологические параметры рыб стали использоваться как биомаркеры для мониторинга иммунотоксичности химических загрязнителей сред обитания диких видов и для предсказания токсикологического риска, связанного с загрязнением водных сред. Таким образом, исследование показателей иммунной системы рыб не только представляет материал для выявления новых филогенетических связей между различными группами животных, но и служит решению практических задач, таких как эффективное промышленное разведение рыб, экологическое моделирование и достоверное предсказание изменений экологической обстановки биогеоценозов.

Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!
ДИПЛОМНЫЕ МАГИСТЕРСКИЕ ДИССЕРТАЦИИ
КУРСОВЫЕ СТАТЬИ ВКР

Современные данные об иммунитете рыб подтверждают присутствие у рыб, как и у высших позвоночных, развитой иммунной системы, способной адекватно реагировать на нарушение гомеостаза организма рыб и противостоять внешней агрессии и внутренним нарушениям на молекулярном, надмолекулярном и клеточном уровне. Однако противоречивость накопленных данных, обусловленная значительными различиями между классами и группами рыб, лабильностью их иммунитета и его чувствительностью к изменениям условий среды обитания, а также отсутствием системного подхода к изучению иммунных механизмов рыб, не позволяет создать целостную картину организации и функционирования иммунной системы этих животных. Необходимы дальнейшие исследования, которые могли бы дополнить имеющиеся данные. Полученные в работе результаты показывают участие врожденной составляющей иммунной системы в противоинфекционных и противоинваз ионных реакциях организма рыб и наличие специфического иммунного ответа на условно-патогенную микрофлору кишечника, вызвавшую заболевание рыб в стрессовой ситуации.
В первой части диссертационной работы предпринято исследование показателей врожденного иммунитета рыб в зависимости от инфекции и зараженности паразитами. Иммунные реакции при бактериальной инфекции изучены у радужной форели, содержавшейся в условиях прудового хозяйства. Согласно данным литературы, промышленно разводимые рыбы характеризуются низкой зараженностью паразитами, но у них часты бактериальные инфекции. Исследуемые рыбы содержались при повышенной температуре и недостаточности рыбного хозяйства в другое. У них был ослаблен иммунитет, в кишечнике размножились условно-патогенные сапрофитные микроорганизмы (Alcaligenes sp.и Citrobacter freundii),и рыбы, в обычных условиях устойчивые к этим симбионтам, заболели энтеритом. Инфицирование вызвало активацию механизмов врожденного иммунитета: изменился белковый состав сыворотки крови заболевших рыб, повысилась концентрация лизоцима. Возросла скорость оседания эритроцитов, в крови уменьшилась концентрация гемоглобина. При лечении использовали четыре лекарственных препарата различных классов. Показано, что терапия приводит к улучшению состояния рыб (нормализации внешнего вида, кишечника, печени, уменьшению количества возбудителей заболевания или их исчезновению, улучшению биохимических показателей сыворотки крови), однако эффективность терапевтических агентов различна: наибольший положительный эффект при лечении энтерита рыб проявили комплексный препарат нифулин и антибиотик тетрациклинового ряда биовит-80.
Врожденную иммунореактивность при паразитарной инвазии наблюдали у морских рыб в естественных условия обитания (наваги и трески Белого моря). В этом случае инфекционные заболевания редки, однако паразиты являются характерными симбионтами морских рыб. Исследуемые рыбы являются основными дефинитивными хозяевами скребня Echinorhynchus gadi.Обнаружено, что у зараженных скребнем рыб уменьшилось содержание в крови форменных элементов, гемоглобина, снизилась скорость оседания эритроцитов. Установлено, что у зараженных паразитами наваги и трески в естественных условиях обитания изменились показатели врожденного гуморального иммунитета: на
Сравнение комплексных данных, полученных в первой части работы, показало, что факторы врожденного иммунитета являются надежными и достоверными показателями состояния иммунитета рыб. Нарушение целостности внутренней среды организма рыб вследствие внешней агрессии стимулирует повышение концентрации белка, лизоцима в сыворотке крови рыб и появление новых белков. Отклонение этих показателей от нормы свидетельствует о патологическом состоянии животных. Увеличение содержания лизоцима при паразитарной инвазии позволяет предположить существование новых, неизученных свойств этого белка.
Во второй части работы экспериментально разработана тест-система на основе метода твердофазного ИФА, позволяющая определить наличие специфических антител в сыворотках рыб и диагностировать возбудителя заболевания. Тест-система апробирована для обнаружения специфических антител у радужной форели, заболевшей энтеритом, вызванной условно-патогенными сапрофитными бактериями Alcaligenes sp.и Citrobacter freundii.Из литературы известно, что не всегда в ходе иммунного ответа вырабатываются специфические антитела, однако полученные в работе результаты показывают, что в сыворотке радужной форели присутствуют антитела, специфические к возбудителям заболеваний.
Таким образом, в работе охарактеризованы параметры врожденного и приобретенного иммунитета радужной форели. Эти данные, а также обсуждаемые в зависимости от условий среды обитания позволяют предложить схему использования показателей иммунной системы рыб (содержание в сыворотке белковых фракций, лизоцима, антител) как в естественных условиях обитания, так и в аквакультуре, в качестве биомаркеров для определения состояния здоровья животных и диагностирования заболевания, а также для оценки на основе этих данных качества среды обитания, проведения биотестирования и биомониторинга техногенного воздействия на среду обитания диких видов, разработки рекомендаций для рыбоводческих хозяйств (рис. 21


1. Антибиотики, сульфаниламиды и нитрофураны в ветеринарии. Справочник / Сост.: В.Ф. Ковалев, И.Б. Волков, Б.В. Виолин и др. М.: Агропромиздат, 1989.
2. Балахнин И.А. 1986. Частота встречаемости естественных антител у карпа и определение иммунологической зрелости сеголетков. Доклады АН УССР, серия Б, 6:62-64.
3. Балахнин И.А., Томиленко В.Г., Темниханов Ю.Д., Козиненко И.И., Литвиненко В.В., Мазъяр М.И., Компанеец Э.В. 1989. Иммунологические и биологические характеристики украинских линий Cyprinus carpio.Вопросы ихтиологии, 29:650-655.
4. Балахнин И.А., Лукьяненко В.И. 1991. Активация неспецифических факторов защиты рыб углеводами. Доклады АН СССР, 318:1254-1256.
5. Балахнин И.А., Неборачин И.С. 1991. Трансплантационные реакции у рыб. Критический анализ. Доклады АН СССР, 318:62-66.
6. Балахнин И.А. 1992. Дискуссионные вопросы иммунологии рыб. 8-я научная конференция по экологической физиологии и биохимии рыб, 30 сент.-З окт. 1992 г. Тезисы докладов, 1:16-17.
7. Бауер О.Н., Мусселиус В.А., Стрелков Ю.А. 1981. Болезни прудовых рыб / Изд. 2-е, переработанное и дополненное. М.: Легкая и пищевая промышленность.
8. Безгачина Т.В., Шумилов К.В., Бондаренко В.З. 1995. Идентификация возбудителей «тепловодного» и «холодноводного» вибриоза у стальноголового лосося, культивируемого в Черноморском регионе на побережье Северного Кавказа в условиях ухудшения экологической среды. Тезисы докладов Международного симпозиума по морекультуре в г. Краснодаре в п. Небуг, 15-16.
Безгачина Т.В. 2000. Международный ихтиопатологический рейс судна «Вальтер Хервиг III» в Балтийском море. Паразиты и болезни рыб: сборник научных трудов. М: ВНИРО, с. 16-19.
Быховская-Павловская И.Е. 1985. Паразиты рыб. Руководство по изучению. Л.: Наука.
Васильков Г.В. 1999. Паразитарные болезни рыб и санитарная оценка рыбной продукции. М: ВНИРО.
Вихман А.А. 1984. Иммунопрофилактика болезней рыб. Биологические ресурсы гидросферы и их использование. Биологические основы рыбоводства: паразиты и болезни рыб. М.: Наука.
Галактионов В.Г. 1998. Иммунология. М.: МГУ.
Гиченок Л.А. 1996. Паразитарная система Echinorhynchus gadiв условиях беломорской сублиторали. Тезисы IV Всероссийского симпозиума по популяционной биологии паразитов, 27-28.
Говядинова А.А. 1998. Исследование локализации и особенностей строения кроветворной ткани у осетровых рыб. Автореф. дис. ... канд. биол. н. М., 24 с.
Говядинова А.А., Ланге М.А., Хрущов Н.Г. 2000. Гемопоэтические органы уникальной локализации у осетровых рыб. Онтогенез, 31:440-445.
146 Гревати А.Д. 1991. Электронномикроскопическое исследование клеток крови и кроветворных органов зеркального карпа. Автореф. дис. ... канд. биол. н. М., 24 с.
Добринская Л.А. 1973. Иммунологическая дифференциация видов и популяций рыб. Труды Ин-та экологии растений и животных Уральского филиала АН СССР, 86:95-106.
Егоров Н.С. 1994. Основы учения об антибиотиках. М: МГУ.
Золотова Т.Е. 1989. Экспериментальное исследование кроветворения у рыб. Автореф. дис. ... канд. биол. н. М., 24 с.
Иванова Н.Т. 1983. Атлас клеток крови рыб. М.: Легкая и пищевая промышленность.
Исаева Н.М., Козиненко И.И. 1992. Влияние химических соединений на иммунный статус рыб в аквакультуре. Вопросы ихтиологии, 32:157-167.
Исаева Н.М., Козиненко И.И., Балахнин И.А. 1992. Перспективные способы оздоравливания рыб в аквакультуре: обзор. Вопросы ихтиологии, 32:140-147.
Калашников Г.Н. 1939. Состав крови рыб. Уч. зап. МГУ, сер. гидробиол., вып.33.
Калашникова З.М. 1976. О классификации морфологических элементов крови рыб. Вопросы ихтиологии, 16:510-525.
Киташова А.А., Кондратьева И.А., Наумова А.Ю. 1997. Исследование белков сыворотки крови рыб в норме и при патологии с помощью ИФА. Межведомственная ихтиологическая комиссия, РАСХН, Итоги научно-практических работ в ихтиопатологии (информационный бюллетень). М., с. 61-63.
Клаус Дж. (ред.) 1990. Лимфоциты: методы. М.: Мир.
Кокряков В.Н. 1999. Биология антибиотиков животного происхождения. С.-П.: Наука.
Компанеец Э.В., Темниханов Ю.Д., Просяная В.В. 1990. Иммунологические показатели у карпа при экспериментальном вирусном и бактериальном заражении. Рыбное хозяйство, 44:61-64.
Кондратьева И.А., Воробьева Н.В., Буракова О.В., Фрезе К.В., Егорова С.Г., Мойсенович М.М., Киркин А.Ф., Пинегин Б.В., Симонова А.В., Киташов А.В., Рокк Ф. Практикум по иммунологии / Под ред. И.А. Кондратьевой, В.Д. Самуилова. М.: МГУ, 2001.
Кондратьева И.А., Киташова А.А., Наумова А.Ю. 2002. Действие лекарственных препаратов на молодь радужной форели Oncorhynchus mykiss Richardson. Вопросы рыболовства, №5 (9), т. 3 (в печати).
Криксунов Е.А., Павлов Д.С., Бобырев А.Е., Полонский Ю.М. 1999. Проблемы научно-методического обеспечения оценок ущербов рыбному хозяйству от разработки нефтегазовых месторождений на морском шельфе. Сборник материалов международного семинара 27-29 апреля 1999 г. М., с. 62-70.
Кулинич Н.Н., Галатюк А.Е. 1986. Определение Т- и В-лимфоцитов в периферической крови карпа. Ветеринария, 11:28-29.
Купер Э. 1980. Сравнительная иммунология. М.: Мир.
Лабинская А.С. 1978. Микробиология с техникой микробиологических исследований. М.: Медицина.
Лакин Г.Ф. 1990. Биометрия / Изд. 4-е, переработанное и дополненное. М.: Высш. шк.
Ланге М.А., Потапина Н.В., Хрущов Н.Г. 1987. Морфологическое и авторадиографическое исследование крови личинки ручьевой миноги (пескоройки) Lampetra planeri Bloch, в норме и в условиях воспалительного процесса. Ж. Общ. Биол., 48:411-416.
Ланге М.А., Потапина Н.В., Хрущов Н.Г. 1990. Морфологическое и авторадиографическое исследование кроветворных органов личинок ручьевой миноги (Lampetraplaneri)разного возраста. Ж. Общ. Биол., 51:796-808.
Лукьяненко В.И. 1989. Иммунобиология рыб. Врожденный иммунитет. 2-е изд., перераб и доп. М.: Агропромиздат.
Медников Б.М., Попов Л.С., Антонов А.С. 1973. Характеристики первичной структуры ДНК как критерии для построения естественной системы рыб. Ж. Общ. Биол., 34:516-529.
Микитюк П.В. 1984. Справочник по болезням прудовых рыб. М.: Урожай.
Наумова А.М., Стрелков Ю.А., Шестаковская Е.В., Ширшов В.Я., Кондратьева И.А. 1997. Диагностика и профилактика новых, малоизученных и ассоциативных болезней карпа и форели в рыбоводных хозяйствах. Межведомственная ихтиологическая комиссия, РАСХН, Итоги научно-
149 практических работ в ихтиопатологии (информационный бюллетень). М., с. 81-83.
Определитель бактерий Берджи. В 2 т. / Дж. Хоулт, Н. Криг. М.: Мир, 1997.
Сильченко Г.Ф., Попов А.А. 1992. Влияние экологических факторов на распространение лигулеза леща Куйбышевского водохранилища. Экология, 6:51-56.
Скворцов А.К. 1947. О строении селезенки костистых рыб. ДАН СССР, 58:1159-1162.
Смуров А.В. 2000. Экологическая диагностика. Сер. Экологическая безопасность России. М., с. 391-404.
Соколов В.Д., Рабинович М.И., Горшков Г.И. и др. 2000. Фармакология / Под ред. В.Д. Соколова. 2-е изд., испр. и доп. М.: Колос.
Солдатов А.А. 1988. Эритропоэз и гемоглобиновая система у бычка Gobius batrachocephalusпри температурной адаптации. Ж. эвол. биох. и физиол., 4:601-603.
Строев Е.А., Макарова В.Г. 1986. Практикум по биологической химии. М.: Высшая школа.
Суворов Е.К. 1948. Основы ихтиологии. Государственное издательство «Советская наука».
Фонталин Л.Н. 1988. Проблема происхождения иммунной системы позвоночных животных. Иммунология, 3:5-20.
Фонталин Л.Н. 1998. Происхождение антигенраспознающей иммунной системы позвоночных. Молекулярно-биологические и иммунологические аспекты. Иммунология, 5:33-44.
Хрущов Н.Г., Ланге М.А., Золотова Т.Е., Бессонов А.В. 1993. Характеристика клеток эритроидного ростка у зеркального карпа (перспективы использования при оценке физиологического состояния рыб). Изв. АН, серия биол., 1:83-87.
Шульман С.С., Шульман-Альбова Р.Е. 1953. Паразиты рыб Белого моря. М.-Л.: АН СССР.
Юнчис О.Н. 2000. Паразиты как индикаторы состояния среды. Паразиты и болезни рыб: сборник научных трудов. М: ВНИРО, с. 146-152.
Ярилин А.А. 1999. Основы иммунологии. М.: Медицина.
Aaltonen T.V., Jokinen E.I., Salo Н.М., Markkula S.E., Lammi R. 2000. Modulation of immune parameters of roach, Rutilus rutilus, exposed to untreated ECF and TCF bleached pulp effluents. Aquat. Toxicol., 47:277-289.
Abelli L., Picchietti S., Romano N., Mastrola L., Scapigliati G. 1996. Immunocytochemical detection of thymocyte antigenic determinants in developing lymphoid organs of sea bass Dicentrarchus labrax (L.). Fish Shellfish Immunol., 6:493-505.
Abelli L., Picchietti S., Romano N., Mastrola L., Scapigliati G. 1997. Immunohistochemistry of gut-associated lymphoid tissue of the sea bass Dicentrarchus labrax (L.). Fish Shellfish Immunol., 7:235-246.
Abelli L., Baldassini M.R., Mastrolia L., Scapigliati G 1999. Immunodetection of lymphocyte subpopulations involved in allograft rejection in a teleost, Dicentrarchus labrax (L.). Cell. Immunol., 191:152-160.
Acton R.T., Weinheimer P.F., Hall S.J., Niedermeier W., Shelton E., Bennett J.C.
1971. Tetrameric immune macroglobulins in three orders of bony fishes. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 68:107-111.
Acton R.T., Niedermeier W., Weinheimer P.F., Clem L.W., Leslie GA., Bennett J.C.
1972. The carbohydrate composition of immunoglobulins from diverse species of vertebrates. J. Immunol., 109:371-381.
Agius C. 1981. Preliminary study on the ontogeny of the melano-macrophages of teleost haematopoietic tissues and age-related changes. Dev. Comp. Immunol., 5:597-606.
Alexander J.B., Ingram G.A. 1992. Noncellular nonspecific defense mechanisms of fish. Annu. Rev. Fish Dis., 2:249-279.
Al-Harbi A.H., Austin B. 1992. The immune response of turbot, Scophthalmus maximus (L.), to lipopolysaccharide from a fish-pathogenic Cytophaga-Wkc bacterium. J. Fish Dis., 15:449-452.
Anderson D.P., Dixon O.W. 1989. Suppression of antibody-producing cells in rainbow trout spleen sections exposed to copper in vitro. J. Aquat. Anim. Health,
1:57-61.
152 Anderson D.P., Jeney G 1992. Immunostimulants added to injected Aeromonas salmonicida bacterin enhance the defense mechanism and protection in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Vet. Immunol. Immunopathol., 34:379-389.
Angelidis P., Baudin-Laurencin F., Youinou P. 1991. Drug-indused modulation of immune function in the rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Int. J. Immunopathol. Pharmacol., 4:163-171.
Avtalion R.R., Shahrabani R. 1975. Studies on phagocytosis in fish: in vitro uptake and killing of living Staphylococcus aureus by peripheral leucocytes of carp (Cyprinus carpio L.). Immunology, 29:1181-1187.
Baumann P.C. 1998. Epizootics of cancer in fish associated with genotoxins in sediment and water. Mutation Res., 411:227-233.
Baunly M.O.D., Quentel C., Fournier V, Lamour F., Gouvello, R.L. 1996. Effect of long-term oral administration of 0-glucan as an immunostimulant or an adjuvant on some non-specific parameters of the immune response of turbot Scophthalmus maximus. Dis. Aquat. Org., 26:139-147.
Beacham T.D., Evelyn T.P.T. 1992. Population variation in resisatance of pink salmon to vibriosis and furunculosis. J. Aquat. Anim. Health, 4:168-173.
Belov K., Harrison G.A., Miller R.D., Cooper D.W. 2001. Characterisation of the kappa light chain of the brushtail possum (Trichosurus vulpecula). Vet. Immunol. Immunopathol., 78:317-324.
Bengten E., Leanderson T., Pilstrom L. 1991. Immunoglobulin heavy chain cDNA from the teleost Atlantic cod (Gadus morhua L.): nucleotide sequences of secretory
153 and membrane form show un unusual splicing pattern. Eur. J. Immunol., 21:3027- 3033.
Biggar W.D., Sturgess J.M. 1977. Role of lysozyme in the microbicidal activity of rat alveolar macrophages. Infect. Immun., 16:974-982.
Blazer V.S. 1992. Nutrition and disease resistance in fish. Annu. Rev. Fish Dis., 2:309-323.
Bloom W., Fawsett D.W. 1986. A text book of Histology. 11th ed., W.B. Saunders Company.
Bly J.E., Clem L.W. 1991. Temperature-mediated processes in teleost immunity: In vitro immunosuppression induced by in vivo low temperature in channel catfish. Vet. Immunol. Immunopathol., 28:365-377.
Bly J.E., Clem L.W. 1992. Temperature and teleost immune functions. Fish Shellfish Immunol., 2:159-172.
Botham J.W., Manning M.J. 1981. The histogenesis of the lymphoid organs in the carp Cyprinus carpio L. and the ontogenetic development of allograft reactivity. J. Fish Biol., 19:403-414.
Bowden T.J., Butler R., Bricknell I.R., Ellis A.E. 1997. Serum trypsin-inhibitory activity in five species of farmed fish. Fish Shellfish Immunol., 7:377-385.
Bower S.M., Evelyn T.P.T. 1988. Acquired and innate resistance to the haemoflagellate Cryptobia salmosifica in sockeye salmon (Oncorhynchus nerka). Dev. Comp. Immunol., 12:749-760.
154 Bradford М.М. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal. Biochem., 72:248-254.
Brubacher J.L., Secombes C.J., Zou J., Bols N.C. 2000. Constitutive and LPS- induced gene expression in a macrophage-like cell line from the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Dev. Comp. Immunol., 24:565-574.
Bucke D., Dixon P.F., Feist S.W., Law R.J. 1989. The measurement of disease susceptibility in dab, Limanda limanda L., following long-term exposure to contaminated sediments: Preliminary studies. Resp. Mar. Org. Pollutants, 28:363- 367.
Buchmann K., Oestergaard L., Glammann J. 1992. Affinity purification of antigen¬specific serum immunoglobulin from the European eel (Anguilla anguilla). Scand. J. Immunol., 36:89-97.
Buchmann K., Sigh J., Nielsen C.V., Dalgaard M. 2001. Host responses against the fish parasitizing ciliate Ichthyophthirius multifiliis. Vet. Parasitol., 100:105-116.
Buentello J.A., Gatlin D.M. III. 1999. Nitric oxide production in activated macrophages from channel catfish (Ictalurus punctatus)'. influence of dietary arginine and culture media. Aquaculture, 179:513-521.
Cadwell C.A., Hinshaw J.M., Kattesh H.G. 1990. Validation of a solid-phase enzyme immunoassay technique for the measure of plasma cortisol in rainbow trout.
J. Aquat. Anim. Health, 2:228-230.
155 Caspi R.R., Avtalion R.R. 1984. Evidence for the existence of an IL-2 like lymphocyte growth promoting factor in a bony fish Cyprinus carpio. Dev. Comp. Immunol., 8:51-60.
Chilmonczyk S. 1983. The thymus of the rainbow trout (Sal mo gairdneri) light and electron microscopic study. Dev. Comp. Immunol., 7:59-68.
Clem L.W., Sizemoro R.C., Ellsaesser C.F., Miller N.W. 1985. Monocytes as accessory cells in fish immune responses. Dev. Comp. Immunol., 9:803-809.
Clerton P., Troutaud D., Verlhac V., Gabaudan J., Deschaux P. 2001. Dietary vitamin E and rainbow trout (Oncorhynchus my kiss') phagocyte functions: effect on gut and on head kidney leucocytes. Fish Shellfish Immunol., 11:1-13.
Cossarini-Dunier M., Demael A., Siwicki A.K. 1990. In vivo effect of the organophosphorus insecticide trichlorphon on the immune response of carp (Cypronus carpio)’. Effect of contamination on antibody production in relation to residue level in organs. Ecotoxicol. Environ. Safi, 19:93-98.
Dethloff G.M., Bailey H.C., Maier K.J. 2001. Effects of dissolved copper on select hematological, biochemical, and immunological parameters of wild rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Arch. Environ. Contam. Toxicol., 40:371-380.
Dixon B., Shum B.P., Adams E.J., Magor K.E., Parham P. 1997. Isolation of a beta- chemokine like cDNA from rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Dev. Comp. Immunol., 21:187.
Dos Santos N.M.S., Taveme-Thiele J.J., Barnes A.C., van Muiswinkel W.B., Ellis
A. E., Rombout J.H.W.M. 2001a. The gill is a major organ for antibody secreting cell
156 production following direct immersion of sea bass (Dicentrarchus labrax, L.) in a Photobacterium damselae ssp. piccicida bacterin: an ontogenetic study. Fish Shellfish Immunol., 11:65-74.
99. Dos Santos N.M.S., Taveme-Thiele J.J., Barnes A.C., Ellis A.E., Rombout J.H.W.M. 2001b. Kinetics of juvenile sea bass (Dicentrarchus labrax L.) systemic and mucosal antibody secreting cell response to different antigenes (Photobacterium damselae ssp. piccicida, Vibrio anguillarum and DPN). Fish Shellfish Immunol., 11:317-331.
100. Douglas S.E., Gallant J.W., Gong Z., Hew C. 2001. Cloning and developmental expression of a family of pleurocidin-like antimicrobial peptides from winter flounder, Pleuronectes americanus (Walbaum). Dev. Comp. Immunol., 25:137-147.
101. Dustin L.B., Shea C.M., Soberman R.J., Lu C.Y. 1990. Docosahexaenoic acid, a constituent of rodent fetal serum and fish oil diets, inhibits acquisition of macrophage tumoricidal function. J. Immunol., 144:4888-4897.
102. Ellis A.E. 1977. The leucocytes of fish: a review. J. Fish Biol., 11:435-491.
103. Ellis A.E. 1980. Antigen trapping in the spleen and kidney of the plaice Pleuronectesplatessa L. J. Fish Dis., 3:413-426.
104. Ellis A.E. 1986. The function of teleost fish lymphocytes in relation to inflammation. Int. J. Tissue React., 8:263-270.
105. Ellis A.E. 1987. Inhibition of the Aeromonas salmonicida extracellular protease by a2-macroglobulin in the serum of rainbow trout. Microb. Pathog., 3:167-177.
106. Erdal J.I., Evensen O.E., Kaurstad O.K., Lillehaug A., Solbakken R., Thorud K.
1991. Relationship between diet and immune response in Atlantic salmon (Salmo salar L.) after feeding various levels of ascorbic acid and omega-3 fatty acids. Aquaculture, 98:363-379.
107. Espelid S., Lokken G.B., Steiro K., Bogwald J. 1996. Effects of cortisol and stress on the immune system in Atlantic salmon (Salmo salar L.). Fish Shellfish Immunol., 6:95-110.
108. Estepa A., Frias D., Coll J.M. 1992. Susceptibility of trout kidney macrophages to viral haemorrhagic septicemia virus. Viral Immunol., 5:283-292.
109. Estevez J., Leiro J., Santamarina M.T., Ubeira F.M. 1995. A sandwich immunoassay to quantify low levels of turbot (Scophthalmus maximus) immunoglobulins. Vet. Immunol. ImmunopathoL, 45:165-174.
110. Evans D.L., Jaso-Friedmann L. 1992. Nonspecific cytotoxic cells as effectors of immunity in fish. Annu. Rev. Fish Dis., 2:109-121.
111. Faisal M., Huggett R.J. 1993. Effects of polycyclic aromatic hydrocarbons on the activity of lymphocytes of the spot Leiostomus xanthurus. Mar. Environ. Res., 35:121-124.
112. Fange R. 1986. Lymphoid organs in sturgeons (Acipenseridae). Vet. Immunol. ImmunopathoL, 12:153-161.
113. FichteliusK.E., Finstad J., Good R.A. 1968. Bursa equivalent of bursaless vertebrates. Lab. Invest., 19:339-351.
114. Flajnik M.F., Ohta Y., Nam ikawa-Yamada C., Nonaka M. 1999. Insight into the primordial MHC from studies in ectothermic vertebrates. Immunol. Rev., 167:59-67.
A .
115. Fletcher T.C., White A. 1973. Antibody production in the plaice Pleuronectes platessa, after oral and parenteral immunization with Vibrio anguillarum antigens. Aquaculture, 1:417-428.
116. Fletcher T.C., White A. 1973. Lysozyme activity in plaice (Pleuronectes platessa
L. ). Experientia, 29:1283-1285.
117. Fock W.L., Chen C.L., Lam T.J., Sin Y.M. 2001. Roles of an endogenous serum lectin in the immune protection of blue gourami, Trichogaster trichopterus (Pallus) against Aeromonas hydrophila. Fish Shellfish Immunol., 11:101-113.
118. Fonge R., Lundblad G., Lind J. 1976. Lysozyme and chitinase in blood and lymphomyeloid tissues of marine fish. Marine Biol., 36:277-282.
119. Ford L.A., Thune R.L. 1992. Immunisation of channel catfish with a crude, acid- extracted preparation of motile aeromonad S-layer protein. Biomed. Lett., 47:355- 362.
120. Francis C.H., Ellis A.E. 1994. Production of a lymphokine (macrophage activating factor) by salmon (Salmo salar) leukocytes stimulated with outer membrane protein antigens of Aeromonas salmonicida. Fish Shellfish Immunol., 4:489-497.
121. Glynn P.J., Pulsford A.L. 1993. Tryptic digestion of serum immunoglobulin of the flounder, Platichthys flesus. J. Mar. Biol. Assoc. UK, 73:425-436.
122. Graham S., Secombes C.J. 1990. Cellular requirements for lymphokine secretion by rainbow trout, Salmo gairdnery. Dev. Comp. Immunol., 5:75-83.
123. Graves S.S., Evans D.L., Cobb D., Dawe D.L. 1984. Nonspecific cytotoxic cells in fish (Ictalurus punctatus). I. Optimum requirements for target cell lysis. Dev. Comp. Immunol., 8:293-302.
124. Graves S.S., Evans D.L., Dawe D.L. 1985. Antiprotozoan activity of nonspecific cytotoxic cells (NCC) from the channel catfish (Ictalurus punctatus). J. Immunol., 134:78-85.
125. Grinde B. 1989. Lysozyme from rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson, as an antibacterial agent against fish pathogens. J. Fish Dis., 12:95-104.
126. Grinde B., Lie O., Poppe T., Salte R. 1988. Species and individual variation in lysozyme activity in fish of interest in aquaculture. Aquaculture, 68:299-304.
127. Grizzle J.M., Schweldler A.L., Scott A.L. 1981. Papillomas of black bullheads, Ictalurus melas (Rafinesque), living in a chlorinated sewage pond. J. Fish Dis., 4:345-351.
128. Haas R. 1982. Transplantation reactions in the African lungfish, Protopterus amphibius. Transplantation, 33:249-253.
129. Hajji N., Sugita H., Ishii S., Takahashi J., Deguchi Y. 1989. Serum bactericidal activity of natural and cultured carp (Cyprinus carpio). In: Program of the First IMBC’89, p. 45.
130. Hardie L.J., Fletcher T.C., Secombes C.J. 1990. The effects of vitamin E on the immune response of Atlantic salmon (Salmo salar). Aquaculture, 87:1-13.
131. Hardie L.J., Fletcher T.C., Secombes C.J. 1991. The effects of dietary vitamin C on the immune response of Atlantic salmon (Salmo salar). Aquaculture, 95:201-214.
132. Hardie L.J., Laing К.J., Daniels G.D., Grabowski P.S., Cunningham C., Secombes
C. J. 1998. Isolation of the first piscine transforming growth factor-beta gene: analysis reveals tissue specific expression and a potential regulatory sequence in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Cytokine, 10:555-563.
133. Hart L.J., Smith S.A., Smith B.J., Robertson J.L., Holladay S.D. 1997. Exposure of tilapian fish to the pesticide lindane results in hypocellularity of the primary hematopoietic organ (prone fros) and the spleen without altering activity of phagocutic cells in these organs. Toxicology, 118(2-3):211-221.
134. Hart S., WrathmellA.B., Harris J.E., Grayson Т.Н. 1998. Gut immunology in fish: a review. Dev. Comp. Immunol., 12:453-480.
135. Hashimoto K., Nakanishi T., Kurosawa Y. 1990. Isolation of carp genes encoding major histocompatibility complex antigenes. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 87:6863- 6867.
136. Hastings T.S., Ellis A.E. 1990. Detection of antibodies indused in rainbow trout by different Aeromonas salmonicida vaccine preparations. J. Aquat. Anim. Health, 2:135-140.
137. Hj elmeland K. 1983. Proteinase inhibitors in the muscle and serum of cod (Gadus morhua). Isolation and characterization. Comp. Biochem. Physiol., 76B:365-372.
138. Hjeltnes B., Andersen K., Ellingsen H.M. 1989. Vaccination against Vibrio salmoncida. The effect of different routes of administration and of revaccination. Aquaculture, 83:1-6.
139. Hoeglund J., Thuvander A. 1990. Indications of non-specific protective mechanisms in rainbow trout Oncorhynchus mykiss with diplostomosis. Dis. Aquat. Org., 8:91-97.
140. Hoeglund J., Andersson J., Haerdig J. 1992. Haematological responses in the European eel, Anguilla anguilla L., to sublethal infestation by Anguillicola crassus in a thermal effluent of the Swedish Baltic. J. Fish Dis., 15:507-514.
141. Holladay S.D., Smith S.A., El-Habback H., Caceci C. 1996. The influence of chlorpyrifos, an organophosphate insecticide, on the immune system of tilapia (Oreochromis niloticus). J. Aquat. Anim. Health, 8:104-110.
142. Hordvik I., Voie A.M., Glette J., Male R., Endresen C. 1992. Cloning and sequence analysis of two isotypic IgM heavy chain genes from Atlantic salmon, Salmo salar
L. Eur. J. Immunol., 22:2957-2962.
143. Houghton G., Matthews R.A. 1990. Immunosuppression in juvenile carp, Cyprinus carpio L.: The effects of the corticosteroids triamcinolone acetonide and hydrocortisone 21-hemisuccinate (cortisol) on acquired immunity and the humoral antibody response to Ichthyophthirius multifiliis Fouquet. J. Fish Dis., 13:269-280.
144. Houghton G., Wiergertjes G.F., Groeneveld A., Van Muiswinkel W.B. 1991. Differences in resistance of carp, Cyprinus carpio L., to atipical Aeromonas salmonicida. Bact. Dis. Fish, 14:333-341.
145. Houghton G., Healey L.J., Matthews T.-(R.A.). 1992. The cellular proliferative response, humoral antibody response, and cross reactivity studies of Tetrahymena pyriformis with Ichthyophthirius multifiliis in juvenile carp (Cyprinus carpio L.). Dev. Comp. Immunol., 16:301-312.
146. Hutchinson Т.Н., Manning M.J. 1996. Seasonal trends in serum lysozyme activity and total protein concentration in dab (Limanda limanda L.) sampled from Lyme
Bay, UK. Fish Shellfish Immunol., 6:473-482.
147. Irwin M.J., Kaattari S.L. 1986. Salmonid В lymphocytes demonstrate organ dependent functional heterogeneity. Vet. Immunol. Immunopathol., 12:39-45.
148. Ishiguro H., Kobayashi K., Suzuki M., Titani K., Tomonaga S., Kurosawa Y. 1992. Isolation of a hagfish gene that encodes a complement component. EMBO J., 11:829-837.
149. Islam A.K.M.N., Woo P.T.K. 1991. Trypanosoma danilewskyi in Carassius auratus The nature of protective immunity in recovered goldfish. J. Parasitol., 77:258-262.
150. Johansen L.H., Sommer A.I. 2001. Infectious pancreatic necrosis virus infection in Atlantic salmon Salmo salar post-smolts affects the outcome of secondary infections with infectious salmon anaemia virus or Vibrio salmonicida. Dis. Aquat. Organ., 47:109-117.
151. Jokinen E.I., Salo H.M., Markkula S.E., Aaltonen T.M., Immonen A.K. 2000. Effects of ultraviolet light on immune parameters of the roach. Toxicol. Lett., 112- 113:303-310.
152. Jokinen E.I., Salo H.M., Markkula S.E., Immonen A.K., Aaltonen T.M. 2001. Ultraviolet В irradiation modulates the immune system of fish (Rutilus rutilus, Cyprinidae). Part III: Lymphocytes. Photochem. Photobiol., 73:505-512.
153. Jolies P., Jolies J. 1984. What’s new in lysozyme research? Mol. Cell. Biochem.,
63:165-189.
154. Jones S.R. 2001. The occurrence and mechanisms of innate immunity against parasites in fish. Dev. Comp. Immunol., 25:841-852.
155. Jorgensen J.B., Sharp G.J.E., Secombes C.J., Robertsen B. 1993. Effect of yeast-cell-wall glucan on the bactericidal activity of rainbow trout macrophages. Fish Shellfish Immunol., 3:51-58.
156. Jorgensen J.B., Johansen A., Stenersen B., Sommer A.I. 2001. CpG oligodeoxynucleotides and plasmid DNA stimulate Atlantic salmon (Salmo salar L.) leucocytes to produce supernatants with antiviral activity. Dev. Comp. Immunol., 25:313-321.
157. Junqueira L.C., Cameiro J., Kelley R.O. 1995. Basic Histology. Appleton & Lange, Stamford, Connecticut.
158. Kajita Y., Sakai M., Atsuta S., Kobayashi M. 1990. The immunomodulatory effects of levamisole on rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Fish Pathol., 25:93-98.
159. Karunasagar I., Rosalind G., Karunasagar I. 1991. Immunological response of the Indian major carps to Aeromonas hydrophila vaccine. Bact. Dis. Fish, 14:413-417.
160. Kasahara M., Vazquez M., Sato K., McKinney E.C., Flajnik M.F. 1992. Evolution of the major histocompatibility complex: isolation of class II A cDNA clones from the cartilaginous fish. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 89:6688-6692.
161. Kitao T., Eshima T, Yoshida T. 1991. Analysis of protective mechanisms in cultured ayu, Plecoglossus altivelis Temminck and Schlegel, administered Vibrio vaccine by the immersion method. Bact. Dis. Fish, 14:372-381.
162. Kobayashi К., Hara A., Takano K., Hirai H. 1982. Studies on subunit components of immunoglobulin M from a bony fish, the chum salmon (Oncorhynchus keta). Mol. Immunol., 19:95-103.
163. Kobayashi K., Tomonaga S., Hadiwara K. 1985. Isolation and characterization of immunoglobulin of hagfish, Eptatretus burgeri, a primitive vertebrate. Mol. Immunol., 22:1091-1097.
164. Kobayashi K., Tomonaga S. 1988. The second immunoglobulin class is commonly present in cartilaginous fish belonging to the order rajiformes. Mol. Immunol., 25:115-120.
165. Kodama H., Yamada F., Murai T., Nakanishi J., Mikami T., Izava H. 1989. Activation of trout macrophages and production of CRP after immunization with Vibrio anguillarum. Dev. Comp. Immunol., 13:123-132.
166. Kokoshis P.L., Di Luzio N.R. 1979. Serum lysozyme: an index of macrophage function. J. Reticuloendothelial Society, 25:85-99.
167. Kondratieva I. A., Naumova A.Ju., Kaigorodov V.A., Bolshakova A.A., Lashenkova
N.N., Naumova A.M. 1994. The immunoreactivity stimulation in Cyprinus carpio and Salmo gairdneri by nonspecific agents. 12th European Immunology Meeting. Spain, Barcelona, June, 14-17, 1994. Abst. W47/31.
168. Kondratieva I.A., Bolshakova A.A., Naumova A.V., Chernousova L.N., Naumova
A. A. 1995. Modulation of lysozyme activity in fishes by extracellular bacteria infection and by treatment with drugs. 9th Intemat. Congr. Immunol. USA, San- Francisco, July, 1995. Abst. W-7/04.
169. Koumans-van Diepen J.C.E., Taveme-Thiele J.J., van Rens B.T.T.M., Rombout
J.H.W.M. 1994a. Immunocytochemical and flow cytometric analysis of В cells and
plasma cells in carp (Cyprinus carpio L.): an ontogenic study. Fish Shellfish Immunol., 4:19-28.
170. Koumans-van Diepen J.C.E., van de Lisdonk Taveme-Thiele A.J.L.,
Verburg-van-Kemenade B.M., Rombout J.H.W.M. 1994b. Characterization of immunoglobulin-binding leukocytes in carp (Cyprinus carpio L.). Dev. Comp. Immunol., 18:45-56.
171. Koumans-van Diepen J.C.E., Egberts E., Peixoto B.R., Taveme N., Rombout
J.H.W.M. 1995. В cell and immunoglobulin heterogeneity in carp (Cyprinus carpio L.): an immuno(cyto)chemical study. Dev. Comp. Immunol., 19:97-108.
172. Kuby J. 1992. Immunology. W.H. Freeman & Company, New York.
173. Laing K.J., Wang T., Zou J., Holland J., Hong S., Bols N., Hirono I., Aoki T, Secombes C.J. 2001. Cloning and expression analysis of rainbow trout Oncorhynchus mykiss tumour necrosis factor-alpha. Eur. J. Biochem., 268:1315- 1322.
174. Larners C.H.J., De Haas M.J.H., Van Muiswinkel W.B. 1985. Humoral response and memory formation in Carp after injection of Aeromonas hydrophila bacterin. Dev. Comp. Immunol., 9:65-75.
175. Larners C.H.J., Parmentier H.K. 1985. The fate of intraperitoneally injected carbon particles in cyprinid fish. Cell Tissue Res., 242:499-503.
176. Landolt M.L. 1989. The relationship between diet and the immune response of fish. Aquaculture, 79:193-206.
177. Lavelle E.C., Harris J.E. 1997. The processing of an orally administered protein in the digestive tract of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Comp. Biochem. Physiol., 117A:263-275.
178. Law W.Y., Chen W.H., Song Y.L., Dufour S., Chang C.F. 2001. Differential in vitro suppressive effects of steroids on leukocyte phagocytosis in two teleosts, tilapia and common carp. Gen. Comp. Endocrinol., 121:163-172.
179. Lehrer R.I., Ganz T. 1996. Endogenous vertebrate antibiotics. Defensins, protegrins and other cysteine-rich antimicrobial peptides. Ann. N.-Y. Acad. Sci., 797:228-239.
180. Lie O., Evensen O., Sorensen A., Froysadal E. 1989. Study on lysozyme activity in some fish species. Dis. Aquat. Org., 6:1-5.
181. Lillehaug A. 1989a. A survey on different procedures used for vaccinating salmonids against vibriosis in Norwegian fish-farming. Aquaculture, 83:217-226.
182. Lillehaug A. 1989b. A cost-effectiveness study of three different methods of vaccinating against vibriosis in salmonids. Aquaculture, 83:227-236.
183. Lillehaug A., Sevatdal S., Endal T. 1996. Passive transfer of specific maternal immunity does not protect Atlantic salmon (Salmo salar L.) fry against yersiniosis. Fish Shellfish Immunol., 6:521-535.
184. Lobb C.J., Clem L.W. 1981a. Phylogeny of immunoglobulin structure and function XI. Secretory immunoglobulins in the cutaneous mucus of the sheepshead Archos argus probatocephalus. Dev. Comp. Immunol., 5:587-596.
185. Lobb C.J., Clem L.W. 1981b. Phylogeny of immunoglobulin structure and function XII. Secretory immunoglobulins in the bile of the marine teleost Archosargus
probatocephalus. Mol. Immunol., 18:615-619.
186. Lobb C.J., Olson M.O.J., Clem L.W. 1984. Immunoglobulin light chain classes in a teleost fish. J. Immunol., 132:1917-1923.
187. Lobb C.J., Olson M.O.J. 1988. Immunoglobulin heavy H chain isotypes in a teleost fish. J. Immunol., 141:1236-1245.
188. Logtenberg T. 1990. Properties of polyreactive natural antibodies to self and foreign antigenes. J. Clin. Immunol., 10:137-140.
189. Lumsden J.S., Ostland V.E., Byrne P.J., Ferguson H.W. 1993. Detection of a distinct gill-surface antibody response following horizontal infection and bath challenge od brook trout Salvelinus fontinalis with Flavobacterium branchiophilum, the causative agent of bacterial gill disease. Dis. Aquat. Org., 16:21-27.
190. Lumsden J.S., Ostland V.E., MacPhee D.D., Ferguson H.W. 1995. Production of gill-associated and serum antibody by rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) following immersion immunization with acetone-killed Flavobacterium branchiophilum and the relationship to protection from experimental challenges. Fish Shellfish Immunol., 5:151-165.
191. Lund V., Olafsen J.A. 1998. A comparative study of pentraxin-like proteins in different fish species. Dev. Comp. Immunol., 22:185-194.
192. Lunden T., Miettinen S., Lonnstrom L.G., Lilius E.-M., Bylund G. 1998. Influence of oxytetracycline and oxolinic acid on the immune response of rainbow trout
(Oncorhynchus mykiss). Fish Shellfish Immunol., 3:217-230.
193. Macouzet M., Simpson B.K., Lee B.H. 1999. Cloning of fish enzymes and other fish protein genes. Crit. Rev. Biotechnol., 19:179-196.
194. Magnadottir B. 1990. Purification of immunoglobulin from the serum of Atlantic salmon (Salmo salar L.). Buvisindi. Icel. Agr. Sci., 4:49-54.
195. Magnadottir B., Gudmundsdottir B.K. 1992. A comparison of total and specific immunoglobulin levels in healthy Atlantic salmon (Salmo salar L.) and in salmon naturally infected with Aeromonas salmonicida subsp. achromogenes. Vet. Immunol. Immunopathol., 32:179-189.
196. Magnadottir B. 1998. Comparison of immunoglobulin (IgM) from four fish species. Buvisindi, Icel. Agr. Sci., 12:51-63.
197. Magnadottir B. 1999. Humoral immune parameters of teleost fish. Ph.D. Thesis. Keldur, Iceland.
198. Magnadottir B., Jonsdottir H., Helgason S., Bjomsson B., Jorgensen T.O., Solem
S.T., Pilstrom L. 1999a. Humoral immune parameters in Atlantic cod (Gadus morhua L.). I. The effects of environmental temperature. Comp. Biochem. Physiol. PartB, 122:173-180.
199. Magnadottir B., Jonsdottir H., Helgason S., Bjomsson B., Jorgensen T.O., Solem
S.T., Pilstrom L. 1999b. Humoral immune parameters in Atlantic cod (Gadus
169 morhua L.). I. The effects of size and gender under different environmental conditions. Comp. Biochem. Physiol. Part B, 122:181-188.
200. Magnadottir B., Jonsdottir H., Helgason S., Bjornsson B., Solem S.T., Pilstrom L.
2001. Immune parameters of immunised cod (Gadus morhua L.). Fish Shellfish Immunol., 11:75-89.
201. Mahajan C.L., Dheer T.R. 1982. Regenerative capacity of the spleen in a splenectomized fish, Channa punctatus Bloch., with related investigations into changes in peripheral blood and haematopoietic tissues. J. Fish Biol., 20:657-666.
202. Marchalons J.J. 1971. Isolation and partial characterization of immunoglobulins of goldfish (Carassius auratus) and carp (Cyprinus carpio). J. Immunol., 20:161-174.
203. Marchalonis J.J., Schluter S.F., Yang H.Y., McGee K., Yeaton L. 1992. Antigenic cross-reactions among immunoglobulin of diverse vertebrates (elasmobranchs to man) detected using xenoantisera. Comp. Biochem. Physiol., 101A:675-687.
204. Matsunaga T, Rahman A. 1998. What brought the adaptive immune system to vertebrates? — The jaw hypothesis and the seahorse. Immunol. Rev., 166:177-186.
205. Matsunaga T, Rahman A. 2001. In search of the origin of the thymus: the thymus and GALT may be evolutionary related. Scand. J. Immunol., 53:1-6.
206. Maule A.G., Schreck C.B., Sharpe C. 1993. Seasonal changes in cortisol sensitivity and glucocorticoid receptor affinity and number in leukocytes of coho salmon. Fish Physiol. Biochem., 10:497-506.
207. Melingen G.O., Steffanson S.O., Berg A., Wergeland h.I. 1995. Changes in serum protein and IgM concentration during smoking and early post-smolt period in
170 vaccinated and unvaccinated Atlantic salmon (Salmo salar L.). Fish Shellfish Immunol., 5:211-221.
208. Miller N.W., Sizemore R.C., Clem L.W. 1985. Phylogeny of lymphocyte heterogenity: the cellular requirements for in vitro antibody responses of channel catfish leucocytes. J. Immunol., 134:2884-2888.
209. Miller N.W., Bly J.E., van Ginkel F., Ellsaesser F., Clem L.W. 1987. Phylogeny of lymphocyte heterogeneity: identification and separation of functionally distinct subpopulations of channel catfish lymphocytes with monoclonal antibodies. Dev. Comp. Immunol., 11:739-748.
210. Moody C.E., Serreze D.V., Reno P.W. 1985. Non-specific cytotoxic activity of teleost leukocytes. Dev. Comp. Immunol., 9:51-64.
211. Moore A.A., Eimers M.E., Cardella M.A. 1990. Attempt to control Flexibacter columnaris epizootics in pond-reared channel catfish by vaccination. J. Aquat. Anim. Health, 2:109-111.
212. Moore J.D., Ototake M., Nakanishi T. 1998. Particulate antigen uptake during immersion immunization of fish: the effectiveness of prolonged exposure and the roles of skin and gill. Fish Shellfish Immunol., 8:393-407.
213. Mor A., Avtalion A.A. 1990. Transfer of antibody activity from immunized mother to embrio in tilapias. J. Fish Biol., 37:249-255.
214. Morita N., Sano T. 1990. Regression effect of carp, Cyprinus carpio L., peripheral blood lymphocytes on CHV-induced carp papilloma. J. Fish Biol., 13:505-511.
215. Моупег К., Roed К.Н., Sevatdal S., heum M. 1993. Changes in non-specific immune parameters in Atlantic salmon, Salmo salar L., induced by Aeromonas
>. •
salmonicida infection. Fish Shellfish Immunol., 3:253-265.
216. Murai T., Kodama H., Naiki M., Mikami T., Izawa H. 1990. Isolation and characterization of rainbow trout C-reactive protein. Dev. Comp. Immunol., 14:49-
58.
217. Nakanishi T., Aoyagi K., Xia C., Dijkstra J.M., Ototake M. 1999. Specific cell- mediated immunity in fish. Vet. Immunol. Immunopathol., 72:101-109.
218. Nakanishi T., Ototake M. 1999. The grafi-versus-host reaction (GVHR) in the ginbuna crucian carp, Carassius auratus langsdorfii. Dev. Comp. Immunol., 23:15-
26.
219. Nakao M., Yano T. 1998. Structural and functional identification of complement components of the bony fish, carp (Cyprinus carpio). Immunol. Rev., 166:27-38.
220. Navarre O., Halver J.E. 1989. Disease resistance and humoral antibody production in rainbow trout fed high levels of vitamin C. Aquaculture, 79:207-221.
221. Neumann N.F., Fagan D., Belosevic M. 1995. Macrophage activating factor(s) secreted by mitogen stimulated goldfish kidney leukocytes synergies with bacterial lypopolysaccharide to induce nitric oxide production in teleost macrophages. Dev. Comp. Immunol., 19:475-482.
222. Niki L., Albright L.J., Evelyn T.P.T. 1991. Influence of seven immunostimulants on the immune response of coho salmon to Aeromonas salmonicida. Dis. Aquat. Org., 12:7-12.
223. Nonaka M., Yamaguchi N., Natsume-Sakai S., Takahashi M. 1981a. The complement system of rainbow trout (Salmo gairdnery). I. Identification of the
> *
serum lytic system homologous to mammalian complement. J. Immunol., 126:1489- 1494.
224. Nonaka M., Natsume-Sakai S., Takahashi M. 1981b. The complement system of rainbow trout (Salmo gairdnery). II. Purification and characterization of the fifth component (C5). J. Immunol., 126:1495-1498.
225. Nonaka M., Fujii T., Kaidoh T., Natsume-Sakai S., Nonaka M., Yamaguchi N., Takahashi M. 1984. Purification of lamprey complement protein homologous to the third component of the mammalian complement system. J. Immunol., 133:3242- 3249.
226. Obach A., Laurencin F.B. 1991. Vaccination of rainbow trout Oncorynchus mykiss against the visceral form of coldwater disease. Dis. Aquat. Org., 12:13-15.
227. Obach A., Laurencin F.B. 1992. Effects of dietary oxidized fish oil and deficiency of anti-oxidants on the immune response of turbot, Scophthalamus maximus. PAMAQ IV: 4th Int. Colloquium on Patology in Marine Aquaculture, 107:221-228.
228. Obach A., Quentel C., Laurencin F.B. 1993. Effects of alfa-tocopherol and dietary oxidized fish oil on the immune response of sea bass Dicentrarchus labrax. Dis. Aquat. Org., 15:175-185.
229. O'Halloran K., Ahokas J.T., Wright P.F.A. 1998. Response of fish immune cells to in vitro organotin exposures. Aquat. Toxicol., 40:141-156.
230. Ortuno J., Cuesta A., Angeles Esteban M., Meseguer J. 2001a. Effect of oral administration of high vitamin C and E dosages on the gilthead seabream (Sparus
> *
aurata L.) innate immune system. Vet. Immunol. ImmunopathoL, 79:167-180.
231. Ortuno J., Esteban M.A., Meseguer J. 2001b. Effects of short-term crowding stress on the gilthead seabream (Sparus aurata L) innate immune response. Fish Shellfish Immunol., 11:187-197.
232. Ototake M., Iwama G.K., Nakanishi T. 1996. The uptake of bovine serum albumin by the skin of bath-immunized trout Oncorhynchus mykiss. Fish Shellfish Immunol., 6:321-333.
233. Ottaviani E. 1991. Tissue distribution and levels of natural and induced serum lysozyme immunoreactive molecules in a freshwater snail. Tiss.Cell, 23:317-324.
234. Ourth D.D. 1980. Secretory IgM, lysozyme and lymphocytes in the skin mucus of the channel catfish, Ictaluruspunctatus. Dev. Comp. Immunol., 4:65-74.
235. Ourth D.D., Ratts V.D., Parker N.C. 1991. Bactericidal complement activity and concentration of immunoglobulin M, transferrin, and protein at different ages of channel catfish. J. Aquat. Anim. Health, 3:274-280.
236. Park I.Y., Park C.B., Kim M.S., Kim S.C. 1998. Parasin I, an antimicrobial peptide derived from histone H2A in the catfish, Parasilurus asotus. FEBS Letters, 437:258-262.
237. Partula S., de Guerra A., Fellah J.S., Charlemagne J. 1995. Structure and diversity of the T cell antigen receptor P-chain in a teleost fish. J. Immunol., 155:699-706.
238. Paulsen S.M. 2000. Expression of lysozyme in Atlantic salmon (Salmo salar L.) — in vivo and in vitro studies. Ph.D. Thesis. Tromso, Norway.
239. Paulsen S.M., Engstad R.F., Robertsen B. 2000. Enhanced lysozyme production in Atlantic salmon (Salmo salar L.) macrophages treated with yeast 0-glucan and bacterial lipopolysaccharide. Fish Shellfish Immunol., 11:23-37.
240. Pellegrini A., Thomas U., von Fellenberg R., Wild P. 1992. Bactericidal activities of lysozyme and aprotinin against Gram-negative and Gram-positive bacteris related to their basic character. J. Applied Bacteriol., 72:180-187.
241. Piacentini S.C., Rohovec J.S., Fryer J.L. 1991. Epizootiology of erythrocytic inclusion body syndrome. J. Aquat. Anim. Health, 1:173-179.
242. Picchietti S., Terribili F.R., Mastrola L., Scapigliati G. Abelli L. 1997. Expression of lymphocyte antigenic determinants in developing gut-associated lymphoid tissue of the sea bass Dicentrarchus labrax (L.). Anat. Embryol., 196:457-463.
243. Plumb J.A., Areechon N. 1990. Effects of malathion on humoral immune response of channel catfish. Dev. Com. Immunol., 14:355-358.
244. Rast J.P., Haire R.N., Litman R.T., Pross S., Litman G.W. 1995. Identification and characterization of T-cell antigen receptor-related genes in phylogenetically diverse vertebrate species. Immunogenetics, 42:204-212.
245. Regala R.P., Rice C.D., Schwedler T.E., Dorociak I.R. 2001. The effects of tributyltin (TBT) and 3,3',4,4',5-pentachlorobiphenyl (PCB-126) mixtures on antibody responses and phagocyte oxidative burst activity in channel catfish, Ictaluruspunctatus. Arch. Environ. Contam. Toxicol., 40:386-391.
246. Rehulka J. 1993. Erythrodermatitis of carp, Cyprinus carpio (L.): an electrophoretic study of blood serum protein fraction levels. Acta vet. Brno, 60:187-197.
247. Ristow S.S., Deavila J.M., LaPatra S.E., Lauda K. 1993. Detection and characterization of rainbow trout antibody against infectious hematopoietic necrosis virus. Dis. Aquat. Org., 15:109-114.
248. Ristow S.S., Deavila J.M., Baldwin T.J., Wheeler P.A., Thorgaard G.H. 1996. Acceptance of skin grafts by isogenic rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Am. J. Vet. Res., 57:1576-1579.
249. Roberts M.L., Davies S.J., Pulsford A.L. 1995. The influence of ascorbic acid (vitamin C) on non-specific immunity in the turbot (Scophthalmus maximus L.). Fish Shellfish Immunol., 5:27-38.
250. Rockey D.D., Shook L.A., Fryer J.L., Rohovec J.S. 1989. Salmonid serum inhibits haemolytic of the secreted haemolysin of Aeromonas salmonicida. J. Aquat. Anim. Health., 1:263-268.
251. Rodgers C.J. 1991. The usage of vaccination and antimicrobial agents for control of Yersinia ruckeri. Bact. Dis. Fish, 14:291-301.
252. Roed K.H., Brun E., Larsen H.J., Refstie T. 1990. The genetic influence on serum haemolytic activity in rainbow trout. Genetics in Aquaculture-III, 85:109-117.
253. Roed K.H., Dehli A.K., Flengsrud R., Midthjell L., Rorvik K.A. 1995. Immunoassay and partial characterization of serum transferrin from Atlantic salmon (Salmo salar L.). Fish Shellfish Immunol., 5:71-80.
254. Romano N., Taveme-Thiele J.J., Maanen J.C., Rombout J.H.W.M. 1997a. Distribution of leukocyte subpopulations in developing carp (Cyprinus carpio L.): immunocytochemical studies. Fish Shellfish Immunol., 7:439-453.
255. Romano N., Abelli L., Mastrola L., Scapigliati G. 1997b. Immunocytochemical detection and cytomorphology of lymphocyte subpopulations in a teleost fish Dicentrarchus labrax (L.). Cell. Tissue Res., 289:163-171.
256. Rombout J.H.W.M., Van-den Berg A.A., Van-den Berg C.T.G.A., Witte P., Egberts E. 1989. Immunological importance of the second gut segment of carp. 3. Systemic and/or mucosal immune responses after immunization with soluble or particulate antigen. J. Fish Biol., 35:179-186.
257. Rombout J.H.W.M., Taveme N., Van-De-Camp M., Taveme-Thiele A.J. 1993a. Differences in mucus and serum immunoglobulin of carp (Cyprinus carpio L.). Dev. Comp. Immunol., 17:309-317.
258. Rombout J.H.W.M., Taveme-Thiele J.J., Villena M.I. 1993b. The gut-associated lymphoid tissue (GALT) of carp (Cyprinus carpio L.): an immunocytochemical study. Dev. Comp. Immunol., 17:55-66.
259. Rombout J.H.W.M., Van de Wai J.W., Companjen A., Taveme N., Taveme-Thiele
J.J. 1997. Characterization of a T cell lineage marker in carp Cyprinus carpio L. Dev. Comp. Immunol., 21:35-46.
260. Rombout J.H.W.M., Joosten P.H.M., Engelsma M.Y., Vos N., Taveme N., Taveme- Thiele J.J. 1998. Indication of a distinct putative T cell population in mucosal tissue of carp. Dev. Comp. Immunol., 22:63-77.
261. Roubal F.R. 1986. Blood and other possible inflammatory cells in the sparid Acanthopagrus australis (Gunter). J. Fish Biol., 28:573-593.
262. Rumfelt L.L., Avila D., Diaz M., Bartl S., McKinney E.C., Flajnik M.F. 2001. A shark antibody heavy chain encoded by a nonsomatically rearranged VDJ is preferentially expressed in early development and is convergent with mammalian IgG. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 98:1775-1780.
263. Sakai M., Kamiya H., Ishii S., Atsuta S., Kobayashi M. 1992. The immunostimulating effects of chitin in rainbow trout, Oncorhynchus myliss. In: Shariff M., Subasighe R.P., Arthur J.R. (Eds.). Diseases in Asian Aquaculture. V. 1. Fish Health Section, Asian Fisheries Society, Manila, Philippines, pp. 413-417.
264. Sakai M. 1999. Current research status of fish immunostimulants. Aquaculture, 172:63-92.
265. Sanchez C., Dominguez J. 1991. Trout immunoglobulin populations differing in light chains revealed by monoclonal antibodies. Mol. Immunol., 28:1271-1277.
266. Sanchez C., Lopez-Fierro P., Zapata A., Dominguez J. 1993. Characterization of monoclonal antibodies against heavy and light chains of trout immunoglobulins. Fish Shellfish Immunol., 3:237-251.
267. Sanchez C., Alvarez A., Castillo A., Zapata A., Villena A., Dominguez J. 1995. Two different subpopulations of Ig-bearing cells in lymphoid organs of rainbow trout. Dev. Comp. Immunol., 19:79-86.
268. Santos Y., Bandin I., Nunez S., Gravningen K., Toranzo A.E. 1991. Protection of turbot, Scophthalamus maximus (L.), and rainbow trout, Oncorhynchus mykiss
178 (Richardson), against vibriosis using two different vaccines. Bact. Dis. Fish, 14:407- 411.
269. Scapigliati G., Mazzini M., Mastrolia L., Romano N., Abelli L. 1995. Production and characterization of a monoclonal antibody against the thymocytes of the sea bass Dicentr archus labrax (L.) (Teleostea, Percicthydae). Fish Shellfish Immunol., 5:393-405.
270. Scapigliati G., Romano N., Abelli L. 1999a. Monoclonal antibodies in fish immunology: identification, ontogeny and activity of T- and B-lymphocytes. Aquaculture, 172:3-28.
271. Scapigliati G., Scalia D., Marras A., Meloni S., Mazzini M. 1999b. Immunoglobulin levels in the teleost sea bass Dicentrarchus labrax (L.) in relation to age, season, and water oxygenation. Aquaculture, 174:207-212.
272. Schreck C.B., Maule, A.G., Slater, C.H. 1991. Stress affects the immune response and health of fish in aquacultural systems. In: Program and Abstracts of the Second IMBC’91, p. 58.
273. Schwaiger J., Bucher F., Ferling H., Kalbfus W., Negele R. 1992. A prolonged toxicity study on the effects of sublethal concentration of bis(tri-n-butyltin)oxide (TBTO): histopathological and histochemical findings in the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquat. Toxicol., 23:31-48.
274. Sealey W.M., Lim C., Klesius P.H. 1997. Influence of the dietary level of iron from iron methionine and iron sulfate on immune response and resistance of channel catfish to Edwardsiella ictaluri. J. World Aquat. Soc. 28:142-149.
275. Secombes C.J., Manning M.J., Ellis A.E. 1982. The effect of primary and secondary immunization of the lymphoid tissues of the carp, Cyprinus carpio L. J. Exp. Zool., 220:277-287.
276. Secombes C.J., Hardie L.J., Daniels G.D. 1996. Cytokines in fish: an update. Fish Shellfish Immunol., 6:291-304.
277. Secombes C.J., Zou J., Hardie L.J., Laing K.J., Daniels G.D., Cunningham C. 1997. Rainbow trout cytokine genes. Dev. Comp. Immunol., 21:138.
278. Secombes C.J., Zou J., Laing K., Daniels G.D., Cunningham C. 1999. Cytokine genes in fish. Aquaculture, 172:93-102.
279. Seeley K.R., Weeks-Perkins B.A. 1991. Altered phagocytic activity of macrophages in oyster toadfish from a higly polluted subestuary. J. Aquat. Anim. Health, 3:224- 227.
280. Sharp G.J.E., Pike A.W., Secombes C.J. 1992. Sequential development of the immune response in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss (Walbaum, 1792)) to experimental plerocercoid infections of Diphyllobothrium dendriticum (Nitzsch, 1824). Parasitology, 104:169-178.
281. Sheldon W.M.Jr., Blazer V.S.TI. 1991. Influence of dietary lipid and temperature on bactericidal activity of channel catfish macrophages. J. Aquat. Anim. Health, 3:87-
93.
282. Shelton E., Smith M. 1970. The ultrastructure of carp (Cyprinus carpio) immunoglobulin: a tetrameric macroglobulin. J. Mol. Biol., 54:615-617.
283. Sin Y.M., Ling K.H., Lam T.J. 1994. Passive transfer of protective immunity against ichthyopthiriasis from vaccinated mother to fry in tilapias, Oreochromas aureus. Aquaculture, 120:229-237.
284. Siwicki A.K. 1989. Immunostimulating influence of levamisole on nonspecific immunity in carp (Cyprinus carpio). Dev. Comp. Immunol., 13:87-91.
285. Siwicki A.K., Cossarini-Dunier M., Studnicka M., Demael A. 1990. In vivo effect of the organophosphorus insecticide trichlorphon on immune response of carp (Cyprinus carpio): Effect of high doses of trichlorphon on nonspecific immune response. Ecotoxicol. Environ. Safi, 19:99-105.
286. Siwicki A.K., Anderson D.P., Rumsey G.L. 1994. Dietary intake of immunostimulants by rainbow trout affects non-specific immunity and protection against furunculosis. Vet. Immunol. ImmunopathoL, 41:125-139.
287. Smith S.A., Gebhard D.H., Housman J.M., Levy M.G., Noga E.J. 1993. Isolation, purification, and molecular-weight determination of serum immunoglobulin from Oreochromis aureus. J. Aquat. Anim. Health, 5:23-25.
288. Somamoto T., Nakanishi T., Okamoto N. 2000. Specific cell-mediated cytotoxicity against a virus-infected syngeneic cell line in isogeneic ginbuna crucian carp. Dev. Comp. Immunol., 24:633-640.
289. Sonzogni W., Maack L., Gibson T., Degenhardt D., Anderson H., Fiore B. 1991. Polychlorinated biphenil congeners in blood of Wisconsin sport fish consumers. Arch. Environ. Contam. Toxicol., 20:56-60.
290. Starkey P.M., Barrett A.J. 1982. Evolution of a2-macroglobulin. The structure of a protein homologous with human a2-macroglobulin from plaice (Pleuronectes platessa L.) plasma. Biochem. J., 205:105-115.
291. Stave J.W., Roberson B.S. 1985. Hydrocortisone suppresses the chemiluminescent response of striped bass phagocytes. Dev. Comp. Immunol., 9:77-84.
292. Steine N.O., Melingen G.O., Wergeland H.I. 2001. Antibodies against Vibrio salmonicida lipopolysaccharide (LPS) and whole bacteria in sera from Atlantic salmon (Salmo salar L.) vaccinated during the smoking and early post-smolt period. Fish Shellfish Immunol., 11:39-52.
293. Stevens A., Lowe J. 1993. Histology. Mosby, London, England.
294. Stevenson R.M. 1997. Immunization with bacterial antigens: yersiniosis. Dev. Biol. Stand., 90:117-124.
295. Stuge T.B., Wilson M.R., Zhou H., Barker K.S., Bengten E., Chinchar G., Miller
N.W., Clem L.W. 2000. Development and analysis of various clonal alloantigen- dependent cytotoxic cell lines from channel catfish. J. Immunol., 164:2971-2977.
296. Sunyer, J.O., Tort L. 1995. Natural hemolytic and bactericidal activities of sea bream Sparus aurata serum are effected by the alternative complement pathway. Vet. Immunol. Immunopathol., 45:333-345.
297. Sunyer, J.O., Tort L., Lambris J.D. 1997. Diversity of the third form of complement, C3, in fish: functional characterization of five forms of C3 in the diploid fish Sparus aurata. Biochem. J., 326:877-881.
298. Sunyer J.O., Zarkadis I.K., Lambris J.D. 1998. Complement diversity: a mechanism for generating immune diversity? Immunol. Today, 19:519-523.
299. Szalai A.J., Norcum M.T., Bly J.E., Clem L.W. 1992. Isolation of an acute-phase phosphorylcholine-reactive pentraxin from channel catfish (Ictalurus punctatus). Comp. Biochem. Physiol., 102B.535-543.
300. Takada K., Ohno N., Yadomae T. 1994. Detoxification of lipopolysaccharide (LPS) by egg white lysozyme. FEMS Immunol. Medical Microbiol., 9:255-263.
301. Tate H., Kodama H., Izawa H. 1990. Immunosuppressive effect of infectious pancreatic necrosis virus on rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Jap. J. Vet. Sci., 52:931-937.
302. Tatner M.F. 1985. The migration of labelled thymocytes to the peripheral lymphoid organs in the rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson. Dev. Comp. Immunol., 9:85-91.
303. Tatner M.F. 1986. The ontogeny of humoral immunity in rainbow trout, Salmo gairdneri. Vet. Immunol. ImmunopathoL, 12:93-105.
304. Tatner M.F. 1990. Quantitative and qualitative differences in antibodies produced by immunosuppressed rainbow trout, Oncorhynchus mykiss, to Aeromonas salmonicida. Aquaculture, 88:205-211.
305. Thiry M., Dheur I., Xhonneux F., Margineanu I., Dommes J., Vanderheijden N., Rossius M., Kinkelin P., Renard A. 1991. Vaccination against fish rhabdovirus: Recent advances. 2nd Int. Mar. Biotechnol. Conference IMBC’91, 56.
306. Thomas P.T., Woo P.T.K. 1990. Dietary modulation of humoral immune response and anaemia in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum), infected with Cryptobia salmositica Katz, 1951. J. Fish Dis., 13:435-446.
307. Thuvander A. 1989. Cadmium exposure of rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson: Effects on immune functions. J. Fish Biol., 35:521-529.
308. Tsuda T., Nakanishi H., Aoki S., Takebayashi J. 1988. Bioconcentration and metabolism of butyltin compounds in carp. Water Res., 22:647-651.
309. Vallejo A.N., Miller N.W., Clem L.W. 1992. Antigen processing and presentation in teleost immune responses. Ann. Rev. Fish Dis., 2:73-89.
310. Van Ginkel F.W., Pascual D.W., Clem L.W. 1991. Proteolytic fragmentation of channel catfish antibodies. Dev. Comp. Immunol., 15:41-51.
311. Van Muiswinkel W.B., Larners C.H.J., Rombout J.H.W.M. 1991. Structural and functional aspects of the spleen in bony fish. Res. Immunol., 142:362-366.
312. Velji M.I., Albright L.J., Evelyn T.P.T. 1990. Protective immunity in juvenile coho salmon Oncorhynchus kisutch following immunisation with Vibrio ordalii lipopolysacchride or from exposure to live V. ordalii cells. Dis. Aquat. Org., 9:25-
29.
313. Velji M.I., Evelyn T.P.T., Albright L.J. 1991. Nature of immune response in coho salmon Oncorhynchus kisutch following vaccination with Vibrio ordalii lipopolysacchride by two different routes. Dis. Aquat. Org., 11:79-84.
314. Verburg-van Kemenade Groeneveld A., Van Rens B.T.T.M., Rombout
J.H.W.M. 1994. Characterization of macrophages and neutrophilic granulocytes from the pronephros of carp (Cyprinus carpio). J. Exp. Biol., 187:143-158.
315. Verburg-van Kemenade L.B.M., Weyts F.A.A., Debets R., Flik G. 1995. Carp macrophages and neutrophilic granulocytes secrete an interleukin-1-like factor. Dev. Comp. Immunol., 19:59-70.
316. Vinitnantharat S., Plumb J.A. 1992. Kinetics of the immune response of channel catfish to Edwardsiella ictaluri. J. Aquat. Anim. Health, 4:207-214.
317. Vinitnantharat S., Plumb J.A. 1993. Protection of channel catfish Ictalurus punctatus following natural exposure to Edwardsiella ictaluri and effects of feeding antigen on antibody titer. Dis. Aquat. Org., 15:31-34.
318. Voss E.W., Groberg W.J., Fryer J.L. 1980. Metabolism of Coho salmon Ig. Catabolic rate of Coho salmon tetrameric Ig in seru,. Mol. Immunol., 17:445-452.
319. Waterstrat P.R., Ainsworth A.J., Capley G. 1991. In vitro responses of channel catfish, Ictalurus punctatus, neutrophils to Edwardsiella ictaluri. Dev. Comp. Immunol., 15:53-63.
320. Wilson R.P., Fowlkes P.L. 1976. Activity of glutamine synthetase in channel catfish tissues determined by an improved tissue assay method. Comp. Biochem. Physiol., 54B:365-368.
321. Wilson M., Bengten E., Miller N.W., Clem L.W., Du Pasquier L., Warr G.W. 1997. A novel chimeric Ig heavy chain from teleost fish shares similarities to IgD. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 94:4593-4597.
1998. T-cell receptors in channel catfish: structure and expression of TCR a and 0 genes. Mol. Immunol., 25:545-557.
323. Woo P.T.K., Li Sen. 1990. In vitro attenuation of Cryptobia salmositica and its use as a live vaccine against cryptobiosis in Oncorhynchus mykiss. J. Parasitol., 76:750- 755.
324. Yada T., Azuma T., Takagi Y. 2001. Stimulation of non-specific immune functions in seawater-acclimated rainbow trout, Oncorhynchus mykiss, with reference to the role of growth hormone. Comp. Biochem. Physiol.: В Biochem. Mol. Biol., 129:695- 701.
325. Yamamoto K., Mukamoto M., Watarai S., Kodama H., Nakayasu C., Okamoto N.
2001. Induction of specific cytotoxic T-cell activity against xenogeneic target cells in carp (Cyprinus carpio). Am. J. Vet. Res., 62:599-603.
326. Yano T., Matsuyama H., Mangindaan R.E.P. 1991. Polysaccharide-indused protection of carp, Cyprinus carpio L., against bacteria injection. J. Fish Dis., 14:577-582.
327. Zapata A. 1979. Ultrastructural study of the teleost fish kidney. Dev. Comp. Immunol., 3:55-65.
328. Zapata A. 1980. Ultrastructure of Elasmobranch lymphoid tissue. I. Thymus and spleen. Dev. Comp. Immunol., 4:459-472.
329. Zelicoff JT., Raymond A., Carlson E., Li Y., Beaman J.R., Anderson M. 2000. Biomarkers of immunotoxicity in fish: from the lab to the ocean. Toxicol. Lett., 112- 113:325-331.

Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ
.