Применение метода анализа полиморфизма длин рестрикционных
фрагментов для исследования различий в нуклеотидных
последовательностях ампликонов гена 16S рРНК бактерий
ВВЕДЕНИЕ 3
1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 5
1.1 Генетическая система бактерий 5
1.2 Идентификация бактерий 7
1.3 Ген 16S-рибосомальной РНК 8
1.4 Полимеразная цепная реакция 9
1.5 Рестрикция ДНК 12
1.6 Электрофорез ДНК 15
1.7 Анализ полиморфизма длин рестрикционных фрагментов 20
1.8 Анализ insilico 22
1.9 Используемые образцы бактерии 22
2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ 24
2.1 Методика выделения ДНК 24
2.2 Проведение полимеразной цепной реакции 24
2.3 Проведение реакции рестрикции 26
2.4 Проведение электрофореза 27
2.5 Методика очистки ДНК ампликонов 28
3 РЕЗУЛЬТАТЫ 29
3.1 Выделение ДНК из образцов бактерий 29
3.2 Получение ампликонов гена 16S-pPHK 30
3.3 Проведение рестрикции ампликонов 500L - 1350R 33
3.4 Проведения анализа insilico 34
3.5 Сравнение теоретических и экспериментальных данных 35
ЗАКЛЮЧЕНИЕ 38
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ 39
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ 40
Актуальность работы
Исследование микроорганизмов невозможно без распознавания их принадлежности к тем или иным биологическим родам и видам. Процесс идентификации является важным этапом проведения биологических исследований.
Ранее работы по классификации бактерий основывались на морфологических и физиологических признаках чистых культур. В последние 30 лет возможности для идентификации бактерий расширились в связи с использованием молекулярно-генетических методов [1].
Наибольший прогресс в филогении микроорганизмов был достигнут благодаря секвенированию генов. В частности, секвенирование генов 16S- рРНК и 23S-рРНК, а также анализ полиморфизма длин рестрикционных фрагментовмаркерных ампликонов других генов позволили пересмотреть родственные взаимоотношения между разными бактериями [2,3].
Применение молекулярно-генетического подхода для идентификации микроорганизмов выявило его преимущества по сравнению с традиционным подходом: оно открыло возможность определять некультивируемые организмы. Возникла возможность с помощью единой методологии осуществлять построение филогенетических древ [4].
Метод анализа полиморфизма длин рестрикционных фрагментов маркерных ампликонов является одним из наиболее простых методов идентификации бактерий. Для идентификации некоторых микроорганизмов требуется несколько суток, а то и недель. Используя метод анализа ПДРФ результат можно получить в течении дня.
В представленной работе показана применимость метода анализа ПДРФ для идентификации почвенных бактерий.
Цель работы: Используя метод анализа ПДРФ, выявить различия в нуклеотидных последовательность яхапликонов гена 16S-рРНК почвенных бактерий и сделать вывод о видовой принадлежности бактерий.
Исходя из данной цели, были поставлены следующие задачи:
1. Из биомассы почвенных бактерий выделить ДНК и получить ампликоны гена 16S-pPHK используя пары праймеров 500L - 1350R.
2. Для полученных ампликонов провести реакции рестрикции используя следующий набор рестриктаз:TaqI, HhaI, BspFNI, AfaI, BstHHI.
3. Провести электрофорез продуктов гидролиза и проанализировать полученные электрофореграммы.
4. Провести изучениен^Нсо ампликонов гена 500L - 1350R 16S- рРНК методом анализа ПДРФ с использованием данных GenBank, и построить теоретические электрофореграммы.
5. Сравнить теоретические и практические электрофореграммы и сделать вывод о видовой принадлежности бактерий.
Работа выполнена на кафедре Медицинской биологии Института Фундаментальной Биологии и Биотехнологии.
Методом анализа ПДРФ была определена видовая принадлежность 10 образцов почвенных бактерий. В процессе работы была выделена высококачественная ДНК бактерий и проведена ее очистка. Используя полимеразную цепную реакцию были получены ампликоны размером около 900 п.о. гена 16S-рРHК. Был проведен рестрикционный анализ исследуемых ампликонов. Полученные данные были сверены с результатами анализа insilico базы данных нуклеотидных последовательностей ДНК (GenBank). По результатам сравнения исследуемые бактерии оказались представителями видов: Arthrobacter globiformis, Agrobacterium tumefaciens, Achromobacter xylosoxidans, Micrococcus luteus, Pseudomonas fluorescen, Klebsiella pneumoniae, Bacilluscereus, Bacilluspumilus, Bacillusamyloliquefaciens.
Была создана база данных для идентификации различных видов бактерий, которая пригодится в определении вида других бактерий в дальнейших исследованиях.
Метод анализа полиморфизма длин рестрикционных фрагментов в совокупности с использованием генетической базы данных секвенированных последовательностей ДНК (GenBank) может служить достаточно простым способом идентификации микроорганизмов. Метод анализа ПДРФ можно использовать для быстрого и малозатратного определения видов микроорганизмов. Он проще определения вида бактерий с использованием других методов идентификации.
1. Горохова,С.С. Основы микробиологии, производственной санитарии и гигиены: Учебное пособие / С.С. Горохова, Н.А. Прокопенко, Н.В. Косолапова. - 4-e изд. стер. - Москва: Академия, 2013 - 64с.
2. Frajman, B. PhylogeneticrelationshipsofAtocionandViscaria(Sileneae,
Caryophyllaceae) inferredfromchloroplast, nuclearribosomal, andlow-
copygeneDNAsequences/ B. Frajman, N. Heidari, B. Oxelman // Taxon. - 2009. - Vol.58, № 3. - p.811-824
3. Rautenberg,A. GeographicandphylogeneticpatternsinSilenesectionMelandrium (Caryophyllaceae) asinferredfromchloroplastandnuclearDNAsequences/ A. Rautenberg, L. Hathaway, B. Oxelman, H.C. Prentice// MolecularPhylogeneticsandEvolution - 2010. - Vol.57,№ 3. - p.978(14)
4. Турова, Т.П. Применение методов геносистематики для решения вопросов таксономии и изучения биоразнообразия прокариот:дис. .д-ра биол. наук: 03.00.07 / Турова Татьяна Павловна. - Москва, 2009. - 86с.
5. Лысак, В.В. Л88 Микробиология: учеб. пособие / В. В. Лысак. - Минск: БГУ, 2007. - 000 с.: ил. ISBN 985-485-709-3.
6. Гусев, М.В. Микробиология / М. В. Гусев, Л. А. Минеева. — Москва: Изд-во МГУ, 2004. — 448с.
7. Прунтова, О.В. Курс лекций по общей микробиологии и основам вирусологии. В 2 ч. Ч. 1 / О. В. Прунтова, О. Н. Сахно, М. А. Мазиров; Владим. гос. ун-т. - Владимир: Изд-во Владим. гос. ун-та, 2006. - 192с.
8. Попова, Н.А. Введение в биологию. учеб. пособие / Н. А. Попова. - Новосибирск: Новосиб. гос. университет. - 2012. - 271 с.
9. Квитко, К.В., Захаров И.А. Генетика микроорганизмов: уч. пособие / К.В.Квитко, И.А. Захаров под ред. А.В. Пиневича. - 2-е изд. - Санкт- Петербург: Изд. дом СПб. ун-та, 2012. - 268с.
10. Шестаков, С.В. Как происходит и чем лимитируется гори-зонтальный перенос генов у бактерий / С.В. Шестаков // Экол. генетика. 2007. Т. 5,№ 2. - С. 12-24.
11. Тихонович, И.А., Проворов Н.А. Сельскохозяйственная микробиология как основа экологически устойчивого агропроизводства: фундаментальные и прикладные аспекты / И.А. Тихонович, Н.А. Проворов // С.-х. биология. - 2011. - Т. 3. - С. 3-9.
12. Шейбак, В.М. Микробиом кишечника человека и его влияние на метаболизм / В.М. Шейбак // Журнал Гродненского государственного медицинского университета. - 2015. - №.2 с.50.
13. Ефимочкина, Н.Р. Новые бактериальные патогены в пищевых продуктах: экспериментальное обоснование и разработка системы контроля с применением методов микробиологического и молекулярно-генетического анализа: автореф. дис. .канд. биол. наук: 14.02.01 / Ефимочкина Наталья Рамозановна. - Москва, 2010. - С .28.
14. Куйбагаров, М.А. Генетическая идентификация бактерий коллекционных штаммов на основе проведения анализа нуклеотидной последовательности 16s rRNA гена / М.А. Куйбагаров, А.Б. Шевцов, А.Х.Жумалин, Т.Б. Карибаев, Ж.Ж.Аканова, Е.С. Шевцова // Вестник науки Казахского агротехнического университета им. С. Сейфуллина. - 2013. - №2 (77). - C.14-21.
15. Guttel, R. Lessons from an evolving rRNA:16S and 23S rRNA structures from a comparative perpective / R. Guttel, N. Larsen, C. Woese // Microbiological review, 1994. - T 8, № 1. - P.10-24.
16. Tanabe, A.S. Comparative study of the validity of three regions of the 18S-rRNA gene for massively parallel sequencing-based monitoring of the planktonic eukaryote community / A.S. Tanabe, S. Nagai, K. Hida, M. Yasuike, A. Fujiwara, Y. Nakamura, Y. Takano, S. Katakura // Molecular Ecology Resources, 2016. - Vol. 16 - P. 402-414.
17. Ефимова, К.В. Молекулярная идентификация и особенности генетического разнообразия цианобактерий и одноклеточных водорослей акватории японского моря: дис. . канд. биол. наук: 03.02.07 / Ефимова Ксения Владимировна. - Владивосток, 2016. - 184с.
18. Chen, L. Rapid Sanger sequencing of the 16S rRNA gene for identification of some common pathogens / L. Chen, Y. Cai, G. Zhou, X. Shi, J. Su, G. Chen, K. Lin // PloS one. - 2014. - Т.9, №. 2. - С. e8888.
19. Кадников, В.В Молекулярный анализ микробных сообществ мест залегания углеводородов на дне озера Байкал: автореф. дис. кандидата биологических наук: 03.01.03 / Кадников Виталий Валерьевич. - Москва, 2014. - 48с.
20. Ботина, С.Г. Идентификация промышленных штаммов молочнокислых бактерий методами молекулярно-генетического / С.Г. Ботина// Генетика. - 2006. - Т.42, № 12. - С. 1621-1635.
21. Точилина, А.Г. Индикация и идентификация бактерий рода Lactobacillus с использованием полимеразной цепной реакции / Г.А. Точилина // Микробиология, эпидемиология и иммунобиология. - 2008. - № 3. - С. 69-73.
22. NationalCenterforBiotechnologyInformation - [электронный ресурс]: режим доступа http://www.ncbi.nlm.nih.gov(Дата обращения 15.10.2015).
23. Паренков, А.Д. Пособие к практическим занятиям по молекулярной биологии. Часть 2. Методы молекулярной диагностики: учебно-методическое пособие / А.Д. Перенков [и др.]. - Нижний Новгород: Нижегородский госуниверситет им. И.Н. Лобачевского, 2015. - 44с.
24. Александров, А.А. Применение полимеразной цепной реакции для диагностики и оценки эффективности химиотерапии туберкулеза: автореф. дис. . канд. мед. наук: 03.00.07 / Александров Андрей Александрович. - Москва. - 94с.
25. Лопухов, Л.В., М.В. Эйдельштейн. Полимеразная цепная реакция в клинической микробиологической диагностике / Л. В.Лопухов, М. В.
Эйдельштейн // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. - 2000. - Т.2,№ 3. - С. 96 - 106.
26. Патрушев, Л.И. Искусственные генетические системы / Л. И. Патрушев. — Москва: Наука, 2005. - в 2 т. - 276c.
27. Оберемок, В.В. Методические рекомендации к применению ПЦР- метода / В.В. Оберемок: методические указания. - Симферополь, 2008. - 35с.
28. Гринев, В.В. Введение в технику полимеразной цепной реакции: метод. пособие к лабораторным занятиям по специальному практикуму для студентов биол. фак. / В.В.Гринев. - Минск: БГУ, 2008. - 48с.
29. Pingoud,, A. etal. Type II restrictionendonucleases: structureandmechanism / A. Pingoudetal. //Cellularandmolecularlifesciences. - 2005. - Т. 62, №. 6. - С. 685-707.
30. Чмуж, Е.В. и др. Новая эндонуклеаза рестрикции Bisl из Bacillussubtilis ТЗО узнает метилированную последовательность ДНК 5'-G (m5C)> l'NGC-3' / Е. В. Чмуж и др. // Биотехнология. - 2005. - №. 3. - С. 22 - 26.
31. Классификация, номенклатура и характеристика рестриктаз
[электронный ресурс] - режим доступа:
http://www.biotechnolog.ru/ge/ge3_2.htm(Дата обращения 5.10.2015)
32. Oller, A.R., VandenBroek W., Conrad M., Topal M.D. Biochemistry, 1991, Vol.30, P. 543—549.
33. Абрамова, З.И. Введениевгенетическуюинженерию:
Учебноепособиедлясамостоятельнойвнеаудиторнойработыстудентовпокурсу «Геннаяинженерия» /З.И.Абрамова. - Казань: Казанскийуниверситет, 2008.¬169с.
34. Чернухин, В.А. Сравнительный рестрикционный анализ хромосомной днк крысы invitro и insilico / и др. В.А. Чернухин, М.А. Абдурашитов, В.Н. Томилов, Д.А. Гончар, С.Х. Дягтярев // Вестник биотехнологии. - 2006. - Т.2, №. 3. - С. 39.
35. Белова, Е. Г. Герпесвирусы 6, 7, 8-го типов / Е. Г Белова, Т. К. Кускова // Лечащий врач. - 2006. - Т.2. - С. 76 - 79.
36. Кравец, А.П. Изменения профиля метилирования ДНК растений пшеницы при хроническом у облучении семян / А. П. Кравец , T. A. Мюссе, А. В. Литвинчук , Ш. Остермиллер , Г. С. Венгжен , Д. М. Гродзинский // Цитология и генетика. 2010. - № 5. - С. 18 - 22.
37. Зернов, Ю.П. Использование рестрикционного анализа амплифицированного гена 16S РНК для идентификации микроорганизмов на примере бактериальных продуцентов термолабильной щелочной фосфатазы / Ю. П. Зернов, М. Л.Абдурашитов, С. Х.Дегтярев //Биотехнология. - 2005. - № 6. - С. 3 - 11.
38. Абдурашитов, М.А. Метод рестрикционного анализа геномов млекопитающих insilico / М.А. Абдурашитов, В.Н. Томилов, В.А. Чернухин, Д.А. Гончар, С.Х. Дегтярев // Вестник биотехнологии и физико-химической биологии имени Ю.А. Овчиннико: Москва, 2006. - Т.2, № 3 - С. 29 - 39.
39. Гусейнов, О.А. Методы биохимических исследований: учеб.-метод. пособие к лаб. занятиям / Сиб. федерал. ун-т; сост. О. А. Гусейнов. - Красноярск: СФУ, 2012. - 46с.
40. Лагодич, А.В. Методы анализа нуклеиновых кислот: учеб.-метод. пособие для студентов биол. фак. / А. В. Лагодич, О.В. Лагодич. - Минск: БГУ, 2013. - 47с
41. Васильева, Л.Г. Выделение плазмидной ДНК и ее анализ методом горизонтального электрофореза в агарозном геле: методическое руководство для школы молодых ученых / Л. Г. Васильева. - Москва: Пущино, 2016. - 6 с.
42. Сомма, М. Анализ образцов пищевых продуктов на присутствие генетически модифицированных организмов. Сессия 5. Электрофорез в агарозном геле / М. Сомма, М. Кверчи // Всемирная организация здравоохранения. Европейское бюро. - 13с.
43. Lucotte, G. IntroductiontoMolecularCloningTechniques / G. Lucotte; F. Baneyx //Wiley-Blackwell. - 1993. - P.41.
44. Шлык-Кернер, О.В. Основы генетической иженерии: лабораторный практикум / О.В. Шлык-Кернер Ижевск: Удмуртский университет, 2012. - 56с.
45. Rasmussen, H.B. Restrictionfragmentlengthpolymorphismanalysisof
PCR-amplifiedfragments (PCR-RFLP) andgelelectrophoresis-
valuabletoolforgenotypingandgeneticfingerprinting / Rasmussen H.B. // InTech, 2012.
46. RFLP Method -
RestrictionFragmentLengthPolymorphism[электронный ресурс] - режим доступа: http://www.bio.davidson.edu/courses/genomics/method/RFLP.html
(Дата обращения 17.10.2015)
47. Пономарева, Н.С. Применение расстояний редактирования при биоинформационном анализе геномов для задач оценки состояния репродуктивной системы / Н.С. Пономарева, Г.Н. Реброва, Е.А. Колина // Фундаментальные исследования. - 2015. - №7. - С. 774 - 777.