Введение 5
1 Обзор литературы 7
1.1 Полигидроксиалканоаты как альтернатива синтетическим полимерам. 7
1.2 Производство и стоимость ПГА на мировом рынке 8
1.3 Характеристика полигидроксиалканоатов 11
1.4 Методы экстракции полигидроксиалканоатов 17
1.4.1 Предварительная обработка бактериальной биомассы 18
1.4.2 Экстракция растворителями 19
1.4.2.1 Применение галогенсодержащих растворителей 20
1.4.2.2 Использование не галогенных растворителей 20
1.4.3 Химическое расщепление 23
1.4.4 Ферментативное расщепление 25
1.4.5 Механическое разрушение 25
1.4.6 Гомогенизация под высоким давлением 26
1.4.7 Сверхкритичные флюиды 27
1.4.8 Биологическое извлечение ПГА 27
2 Объект и методы исследования 29
2.1 Биосинтез бактерий Cupriavidus eutrophus B10646 29
2.1.1 Получение инокулята 29
2.1.2 Биосинтез бактерий в ферментере-инокуляторе 29
2.1.3 Сгущение и центрифугирование 30
2.1.4 Сублимационная сушка 30
2.2 Объект исследования 31
2.3 Методы исследования 31
2.3.1 Измельчение бактериальной биомассы 31
2.3.2 Фракционирование бактериальной биомассы 31
2.3.3 Определение влажности фракций бактериальной биомассы 32
2.3.4 Исследование минерального состава фракций бактериальной
биомассы 33
2.3.5 Исследование состава жирных кислот липидов бактерий
Cupriavidus eutrophus B10646 34
2.3.6 Определение количества экстрактивных веществ во фракциях в
бактериальной биомассе 35
2.3.7 Выделение ПГА из фракций бактериальной биомассы 35
2.3.8 Термический анализ образцов полимера, выделенных из фракций
бактериальной биомассы 36
2.3.9 Исследование молекулярно-массовых характеристики образцов
полимера, выделенных из фракций бактериальной биомассы 36
2.3.10 Статистическая обработка результатов 36
Заключения 53
Список использованных источников 54
Экологическим проблемам развития человеческого общества в настоящее время уделяется большое внимание такими организациями, как ООН, ЮНЕСКО, Российским обществом защиты прав потребителя и др. Одной из важнейших экологических проблем является утилизация твердых синтетических полимерных отходов, которые считаются наиболее токсичными, а, следовательно, экологически опасными. Синтетические пластмассовые отходы чрезвычайно медленно разлагаются и ассимилируются в естественных условиях (до 80 лет), являясь серьезным фактором загрязнения окружающей среды. Особую опасность представляет пластмассовая тара разового использования, сельскохозяйственные пленки различного назначения и упаковочные материалы, которые обычно не попадают в общую систему сбора, составляя так называемый пластмассовый мусор [21].
В общей сложности объем мирового производства пластмассы резко увеличился с 1,5 млн. тонн в 1950 году до 245 млн. тонн в 2008 году, ежегодный прирост составлял 9%. Из-за их универсальных свойств очень сложно сократить потребление пластмассовых изделий, но можно заменить пластмассы на основе нефти альтернативными материалами, которые имеют свойства, подобные полимерам, но разрушаемые после их выброса [32].
В этом плане, активно изучаемыми в настоящее время, в связи с их биоразрушаемостью, являются полигидроксиалканоаты (ПГА) - полиэфиры, синтезируемые микроорганизмами при лимитировании роста элементами конструктивного метаболизма [3].
Однако, сравнение ПГА с другими эквивалентными коммерциализированными материалами (например, синтетические полимеры или нефтехимические пластики) показывает, что ПГА достаточно дорогие материалы [11].
Отчетные экономические анализы для различных систем промышленного производства показывали, что стоимость ПГА составляла от 2,65 до 5 долл США/кг, а получаемые из нефтехимического сырья пластмассы стоят около 1,57-1,67 долл/кг. Это несоответствие в расходах в значительной степени объясняется затратами на источник углерода для бактерий и последующую обработку. Так, по подсчетам, затраты на экстракцию и очистку ПГА составляют до 50 % от общих затрат на все технологические процессы [58]. На протяжении многих лет было разработано множество методов восстановления ПГА, но ни один из этих методов не привел к значительным экономическим улучшениям [70]. Кроме того, в настоящий момент нет обоснованной методики подготовки биомассы к стадии экстракции, которая позволила бы не только увеличить выход полимера, но и осуществить возможность эффективного использования всей бактериальной биомассы.
Цель работы: Интенсификация процесса экстракции биомассы бактерий Cupriavidus eutrophus B10646 путем измельчения и фракционирования.
Для достижения цели, поставлены следующие задачи:
1. Провести биосинтез бактерий Cupriavidus eutrophus B10646 и получить образцы биомассы для дальнейших исследований;
2. Исследовать процесс измельчения высушенной биомассы бактерий, получить фракции биомассы и установить их физико-химических свойства;
3. На основании полученных результатов исследований, предложить способ интенсификации процесса экстракции на производстве ПГА.
1. Освоена технология культивирования бактерий Cupriavidus eutrophus B10646 на опытном производстве ПГА и получены образцы бактериальной биомассы для дальнейших исследований.
2. Исследован процесс измельчения лиофильно высушенной биомассы бактерий. Показано, что до измельчении биомасса в основном представлена крупными частицами от 2,0 до 0,2 мм, а после измельчения основной размер частиц составил менее 0,2 мм.
3. Получено 10 фракций биомассы, исследованы их физико-химические свойства. Выявлены существенные различия во влажности, выходе экстрактивных веществ, выходе полимера, в молекулярно-массовых характеристиках полимеров, степени кристаллизации и минеральном составе как между фракциями, так и в сравнении с исходной биомассой. Полученные результаты показывают, что в результате измельчения биомассы в установках дезинтеграторного типа возможно получить не только материал с развитой активной поверхностью, но и при дальнейшем рассеве - фракции частиц биомассы различного размера, обладающие различным химическим составом, индивидуальной динамикой процессов экстракции липидов и полимера, а также в совокупности определяющие усредненные характеристики исходной биомассы.
4. Проведена оценка использования фракционирования биомассы перед стадией экстракции. Установлено, что исключение из технологического процесса 5% биомассы с низким выходом полимера, позволит интенсифицировать процесс экстракции и обеспечит увеличение выхода ПГА на 9%.
1. Барановский С. В. Культивирование микроорганизмов в ферментере BioFlo115 (7,5л.) [Электронный ресурс] : методические указания к лабораторному практикуму / С. В. Барановский, А. В. Демиденко, Е. Г. Киселев. - Красноярск: СФУ, 2016. - Режим доступа : http://publishing.sfu-
kras.ru/content/uchebno-metodicheskoe-posobie-1615
2. Бояндин А. Н. Получение и исследование полимерных смесей на основе поли-3-гидроксибутирата /А. Н. Бояндин, Е. Д. Николаева, А. В. Шабанов, А. Д. Васильев // Журнал Сибирского Федерального Университета. Сер. 2. Биология. - 2014. - №7. - С. 174 - 185.
3. Виноградова О. Н. Биосинтез и свойства ПГА, содержащих мономеры 3-гидрокси-4-метилвалерата / О. Н. Виноградова, Т. Г. Волова // Журнал Сибирского федерального университета. Сер. 2. Биология. - 2016. - №9. - С. 145-152.
4. Воинов Н. И. Полигидроксиалканоаты - биоразрушаемые полимеры гидроксипроизводственых алкановых кислот: синтез, свойства, области применения [Электронный ресурс] / Н. И. Воинов, Т. Г. Волова // Медицинский сайт MedBe.ru- 2013. - Режим доступа: http://medbe.ru/materials/problemy-i- metody-biotekhnologii/poligidroksialkanoaty-biorazrushaemye-polimery-gidroksipro izvodstn ykh-alkanovykh-kislot-sintez-svoys/
5. Волова Т. Г. Синтез биорезорбируемых полимеров. Структура и свойства / Т. Г. Волова // Известия высший учебных заведений. Физика. - 2013. - Т. 56, № 12(3). - С. 27-32.
6. Волова Т. Г. Физико-химические свойства полигидроксиалканоатов различного химического строения / Т. Г. Волова, Н. О. Жила, Е. И. Шишацкая, П. В. Миронов, А. Д. Васильев, А. Г. Суковатый, A. J. Sinskey // Высокомолекулярные соединения. Серия А. - 2013. - № 7. - С. 775-786.
7. Волова Т. Г. «Водородные» биотехнологии [Электронный ресурс] // Т. Г. Волова // Наука из первых рук. - 2010. - Т. 32, №2. - Режим доступа : https://scfh.ru/papers/vodorodnyie-biotehnologii/
8. Волова Т. Г. Биосинтез многокомпонентных полигидроксиалканоатов бактериями Wautersia eutropha / Т. Г. Волова, Г. С. Калачева, II. В. Кожевников, А. Штайнбюхель // Микробиология. - 2007. - Т. 76, № 6. - С. 797-804.
9. Волова Т. Г. Современные биоматериалы: мировые тренды, место и роль микробных полигидроксиалканоатов / Т. Г. Волова // Журнал Сибирского Федерального Университета. Сер. 2. Биология. - 2014. - № 7 — С. 103-132.
10. Гончаров Д. Б. Биосинтез полигидроксиалканоатов : влияние химического состава на свойства на полимеров и характеристики нетканных материалов, полученных электростатическим формированием : дис. ... канд. биол. наук : 03.01.06 / Гончаров Дмитрий Борисович. - Красноярск, 2017. - 154 с.
11. Жила, Н.О. Характеристика культуры Cupriavidus eutrophusВ-10646, синтезирующей полигидроксиалканоаты при росте на сахарах и липидных субстратах / Н. О. Жила, Т. Г. Волова, Г. С. Калачева // Журнал Сибирского Федерального Университета. Сер. 2. Биология. - 2014. - № 2. - С.161-173.
12. Жила, Н. О. К вопросу о внутриклеточной деградации полигидроксибутирата / Н. О. Жила, Г. С. Калачева, Т. Г. Волова // Журнал Сибирского Федерального Университета. Сер. 2. Биология. - 2015. - №8. - С. 220-235.
13. Замышляева О. Г. Методы исследования современных полимерных материалов : учебно-метод. Пособие / О. Г. Замышляева. - Нижний Новгород: Нижегородский госуниверситет, 2012. - 90 с.
14. Калачева Г. С. Состав жирных кислот липидов Wautersia eutrophaв условиях активного синтеза полигидроксиалканоатов / Г. С. Калачева, Т. Г. Волова // Микробиология. - 2007. - Т. 76, №5. - С. 608-614.
15. Киселев Е. Г. Сравнительное исследование методов экстракции полигидроксиалканоатов из биомассы бактерий / Е. Г. Киселев, А. В. Демиденко // Журнал Сибирского Федерального Университета. Сер. 2. Биологи. - 2014. - №
2. - С.148-160.
16. Киселев Е. Г. Масштабирование технологии синтеза биодеградируемых полигидроксиалканоатов в условиях опытного производства / Е. Г. Киселе, А. В. Демиденко, С. В. Барановский,Т. Г. Волова // Журнал Сибирского Федерального Университета. Сер. 2. Биология. - 2014. - № 7 — С. 134-147.
17. Киселев Е. Г. Разрушаемые биопластики в качестве альтернативы неразрушаемым полиолефинам / Е. Г. Киселев, О. Н. Шишацкий // Химия в интересах устойчивого развития. - 2012. - №20. - С. 727-730.
18. Киселев Е. Г. Технико-технологические основы биосинтеза резервных полигидроксиалканоатов водородными бактериями : автореф. дис. ... канд. биол. наук : 03.01.06 / Киселев Евгений Геннадьевич. - Красноярск, 2012. - 20 с.
19. Киселев Е. Г. Технико-технологические основы производства разрушаемых полигидроксиалканоатов / Е. Г. Киселев, О. Н. Шишацкий, Э. Дж. Сински // Журнал Сибирского Федерального Университета. Сер. 3. Биология. - 2012. - № 5 — С. 300-310.
20. Кулезнев А. В. Химия и физика полимеров : учебники и учеб. пособия для студентов высшю учеб. заведений / А. В. Кулезнев, В. А. Шершнев; ред. Л. И. Галицкая. -2-е изд., перераб. и доп. - Москва : «КолосС», 2007. - 367 с.
21. Ольхов А. А. Структура и механические свойства экструзионных смесевых пленок на основе полиэтилена и полигидроксибутирата / А. А. Ольхов, В. С. Маркин, Р. Ю. Косенко, М. А. Гольдштрах, Г. Е. Заиков, С. В. Власов, А. Л. Иорданский // Вестник Казанского технологического университета. - 2015. - №3. - Т.18. - С. 121-125
22. Статьи по медицине [Электронный ресурс] : химический состав бактерий // Информационный проект по медицине «MFM-med”. - Режим доступа : http://www.mfm.nnov.ru/khimicheskijj-sostav-bakterijj.html
23. Султыгова А. К. Синтез биодеградируемых полимеров на основе полиэфиров А. К. Султыгова, М. Б. Бекбузаров, Б. А. Темирханов, З. Х. Султыгова // Органическая, биоорганическая и фармацевтическая химия. - 2014. - № 2. С. 158-161.
24. Сырвачева Д. А. Микробиологический синтез и характеристика полигидроксиалканоатов, содержащих мономеры среднецепочечного 3- гидроксигексаноата : дис. . канд. биол. наук : 03.02.03 / Сырвачева Дарья Анатольевна. - Красноярск, 2016. - 138 с.
25. Akaraonye E. Production of polyhydroxyalkanoates: the future green materials of choice / E. Akaraonye, T. Keshavarz, I. Roy // Journal of Chemical Technology and Biotechnology. - 2010. - № 85. - Р. 732-743.
26. Alarfaj A. A. Extraction and characterization of polyhydroxybutyrates (PHB) from Bacillus thuringiensis KSADL127 isolated from mangrove environments of Saudi Arabia / A. A. Alarfaj, M. Arshad, E. N. Sholkamy, M. A Munusamy // Brazilian Archives of Biology and Technology. - 2015. - Vol.5, №58. - Р. 781-788.
27. Anderson A. J. Occurrence, metabolism, metabolic role, and industrial uses of bacterial polyhydroxyalkanoates / Anderson A. J., Dawes E. A. // Microbiological Reviews. - 1990. - № 54. Р. 450 - 472.
28. Anis S. N. S. Increased recovery and improved purity of PHA from recombinant Cupriavidus necator / Siti Nor Syairah Anis, Nurhezreen Md Iqbal, Sudesh Kumar &Amirul Al-Ashraf // Bioengineered. - 2013. - №4(2). - P. 1 1 5 -118.
29. Bugnicourt E. Polyhydroxyalkanoate (PHA): review of synthesis, characteristics, processing and potential applications in packaging / E. Bugnicourt, P. Cinelli, A. Lazzeri, V. Alvarez // Express Polym. Lett.. - 2014. - № 11. - P. 791-808.
30. Bury D. Disruption of Lactobacillus delbrueckii ssp. bulgaricus11842 cells for lactose hydrolysis in dairy products: A comparison of sonication, high-pressure homogenization and bead milling / D. Bury, P. Jelen, M. Kalab // Innovative Food Science and Emerging Technologies. - 2001. - № 2. - P. 23-29.
31. Castilho L. R. Production of polyhydroxyalkanoates (PHAs) from waste materialsand by-products by submerged and solid-state fermentation / L.R. Castilho, D.A. Mitchell, D.M.G. Freire // Bioresource Technology. - 2009. - № 100. -Р 5996-6009
32. Chanprateep S. Current trends in biodegradable polyhydroxyalkanoates / Suchada Chanprateep // Journal of Bioscience and Bioengineering. - 2010. - Vol. 110. - №. 6. - Р. 621-632
33. Chanprateep S. Characterization of new isolated Ralstonia eutropha strain A-04 and kinetic study of biodegradable copolyester poly(3-hydroxybutyrate-co-4- hydroxybutyrate) production / S. Chanprateep, Y. Katakura, S. Visetkoop, H. Shimizu, S. Kulpreecha, S. Shioya // Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology. - 2008. - № 35. - P. 1205 - 1215.
34. Chee J.-Y. Bacterially Produced Polyhydroxyalkanoate (PHA): Converting Renewable Resources into Bioplastics / J.-Y. Chee, S.-S. Yoga1, N.-S. Lau, S.-C. Ling, R. M. M.Abed, K.Sudesh // Current research, technology and education topics in applied microbiology and microbial biotechnology. - 2010. - P. 1395 - 1404.
35. Chen Y. Effects of cell fermentation time and biomass drying strategies on the recovery of poly-3-hydroxyalkanoates from Alcaligenes eutrophus using a surfactantchelate aqueous system / Y. Chen, Q. Xu, H. Yang, G. Gu // Process Biochemistry. - 2001. - № 36. - P. 773-779.
36. Chen G-Q. A microbial polyhydroxyalkanoates (PHA) based bio- and materials industry / G-Q Chen // Chemical Society Reviews. - 2009. - № 38. - P. 2434-2446.
37. Chiara S. Extraction of polyhydroxyalkanoates from mixed microbial cultures: impact on polymer quality and recovery / S. Chiara, F. Abbondanzi, P. Galletti, L. Giorgini, L. Mazzocchetti, C. Torri, E. Tagliavini // Bioresource Technology. - 2015. - № 189. - С.195 — 202.
38. Cruz M. V. Production of polyhydroxyalkanoates from spent coffee grounds oil obtained by supercritical fluid extraction technology / M. V. Cruz, A. Paiva, P Lisboa, F. Freitas, V D. Alves, P Simхes, S. Barreiros, M. A.M. Reis // Bioresource Technology. - 2014. - №157. - P. 360-363.
39. Divyashree M.S. Effect of gamma irradiation on cell lysis and polyhydroxyalkanoate produced by Bacillus flexus / M.S. Divyashree, T.R. Shamala // Radiation Physics and Chemistry. - 2009. Vol.78, №2. - P. 147 - 152.
40. Fiorese M. L. Recovery of polyhydroxybutyrate (PHB) from Cupriavidus necator biomass by solvent extraction with 1,2-propylene carbonate / M. L. Fiorese, F. Freitas, J. Pais, A. M. Ramos, G. M. F. de Aragao, M.A.M. Reis // Engineering in Life Sciences. - 2009. - № . Р. 454-461.
41. Ghatnekar M. S. Production and recovery of poly-3-hydroxybutyrate from Methylobacterium sp V49 / M. S. Ghatnekar, J. S. Pai, Ganesh M. // Journal of Chemical Technology and Biotechnology. - 2003. - № 77. - Р. 444 - 448.
42. Grogan D.W. Cyclopropane ring formation in membrane lipids of bacteria / D.W. Grogan, J.E. Cronan // Microbiology and Molecular Biology Reviews. - 1977. - № 61. - P. 429-441.
43. Hanson A. J. Community proteomics provides functional insight into polyhydroxyalkanoate production by a mixed microbial culture cultivated on fermented dairy manure / A. J. Hanson, N. M. Guho, A. J. Paszczynski, E. R. Coats // Applied Microbiology Biotechnology. - 2016. - № 100. — Р. 7957 - 7976.
44. Haywood G.W. The importance of PHB-synthase substrate specificity in polyhydroxyalkanoates synthesis by Alcaligenes eutrophus / G.W. Haywood, A.J. Anderson, E.A. Dawes // FEMS Microbiology Letters. - 1989. - № 57. - Р.1-6.
45. Heinrich D. Large scale extraction of poly(3-hydroxybutyrate) from Ralstonia eutropha H16 using sodium hypochlorite / D. Heinrich, M. H. Madkour, M. A Al-Ghamdi, I.I. Shabbaj, A. Steinbuchel // AMB Express. - 2012. - № 2. - 6 P.
46. Hejazi P. Supercritical fluid disruption of Ralstonia eutropha for poly(3- hydroxybutyrate) recovery / P. Hejazi, E. Vasheghani-Farahani, Y. Yamini // Biotechnology Progress. - 2003. - №19. - P. 1519-1523.
47. Higuchi-Takeuchi M. Synthesis of high-molecular-weight polyhydroxyalkanoates by marine photosynthetic purple bacteria M. Higuchi- Takeuchi, K. Morisaki, K. Toyooka, K. Numata // PLOS ONE. - 2016. - № 11. - P. 17
48. Hu. S. Characterization of polyhydroxybutyrate biosynthesized from crude glycerol waste using mixed microbial consortia / S.Hu, A. G. McDonald, E. R. Coats // Journal of Applied Polymer Science. - 2013. - № 10. - P. 1314-1321.
49. Inoue D. Polyhydroxyalkanoate production potential of heterotrophic bacteria in activated sludge / D. Inoue, Y. Suzuki, T. Uchida, J. Morohoshi, K. Sei // Journal of Bioscience and Bioengineering. - 2016. - Vol. 121. № 1. - Р. 47 — 51.
50. Jacquel N. Isolation and purification of bacterial poly(3- hydroxyalkanoates) / N. Jacquel, C-W. Lo, Y-H. Wei, H-S. Wu, S. S. Wang // Biochemical Engineering Journal. - 2008. - № 39. - P. 15-27.
51. Kapritchkoff F. M. Enzymatic recovery and purification of polyhydroxybutyrate produced by Ralstonia eutropha/ F.M. Kapritchkoff, P.A.Viott, R.C.P. Alli, M. Zuccolo, J.G.C Pradella, A.E. Maiorano, E. A. Miranda, A. Bonomi // Journal of biotechnology. - 2006. - Vol. 122, №. 4. - P. 453-462.
52. Koller M. Strategies for recovery and purification of poly[(R)-3- hydroxyalkanoates] (PHA) biopolyesters from surrounding biomass / Martin Koller, Horst Niebelschutz, Gerhart Braunegg // Engineering in Life Sciences. - 2013. - №
13. - P. 549-562.
53. Koller M. Extraction of short-chain-length poly-[(R)-hydroxyalkanoates] (scl-PHA) by the ‘‘anti-solvent'' acetone under elevated temperature and pressure / M. Koller, R. Bona, E. Chiellini, G. Braunegg // Biotechnology Letters. - 2013. - №35. - P. 1023-1028.
54. Koller M. Polyhydroxyalkanoates: biodegradable polymers and plastics from renewable resourses / M. Koller, A. Salerno, A. Muhr, A. Reiterer, G. Braunegg // Materiali in Tehnologije. - 2012. - №46. - Р. 23-30
55. Khan F. A. Separation of polyhydroxyalkanoates-producing bacterial strains using PHA synthase gene and their evaluation for PHA deposition / A. B.
Khan, M. I. Khattak, O. M. Tarar, F. Habib, K. Jamil, A. Yasmin, S. Parvez // Brazilian Archives of Biology and Technology. - 2013. - Vol.4, №56. - Р. 645-652.
56. Kunasundari B. Isolation and recovery of microbial polyhydroxyalkanoates / B. Kunasundari, K. Sudesh // eXPRESS Polymer Letters. -2011. - Vol.5. - №7. P.620-634
57. Lee S.Y. Poly(3-hydroxyalkanoate) production from xylose by recombinant E. coli / S.Y. Lee // Bioprocess Engineering. - 1998. - №18. - P. 397-399.
58. Linton E. A Synthetic Biological Engineering Approach to Secretion¬Based Recovery of Polyhydroxyalkanoates and Other Cellular Products / Elisabeth Linton / Utah State University, 2010. - 161 Р.
59. Mikkili I. Isolation, Screening and Extraction of Polyhydroxybutyrate (PHB) producing bacteria from Sewage sample / I. Mikkili, A. P Karlapudi, T.C. Venkateswarulu, J. Babu D., S.B. Nath, V. P. Kodali // International Journal of PharmTech Research. - 2014. - Vol.6, №2. - P. 850-857.
60. Mohammadi M. Recovery and purification of intracellular polyhydroxyalkanoates from recombinant Cupriavidus necator using water and ethanol / M. Mohammadi, А. М. Hassan, L-Y. Phang, Н. Ariffin, Y. Shirai, Y. Ando // Biotechnology Letters. - 2012. - № 2. - P. 253-259.
61. Muruga P. A new biological recovery approach for PHA using mealworm, Tenebrio molitor /P. Murugana, L. Hann, C-Y Ganb, F. H.J. Maurerc, K. Sudesh // Journal of Biotechnology. - 2016. - №239. - P. 98-105.
62. Neves A. Use of Enzymes in Extraction of Polyhydroxyalkanoates Produced by Cupriavidus necator / A. Neves, J. Muller // Biotechnology Progress. -2012.- Vol. 28, №6. - Р. 1575-1580
63. Sudesh K. Practical Guide to Microbial Polyhydroxyalkanoates / K. Sudesh, H. Abe // Smithers Rapra, 2010.
64. Tan G-Y. A. Start a Research on Biopolymer Polyhydroxyalkanoate (PHA): A Review / Tan G-Y. A. C. Chia-Lung, L. Li , L. Ge, L. Wang, I. M. N. Razaad, Y. Li, L. Zhao, Y. Mo, J-Y. Wang // Polymers. - 2014. - № 6. - P. 706-754.
65. Verlinden, R. A. J. Bacterial synthesis of biodegradable polyhydroxyalkanoates / R. A. J. Verlinden, D. J. Hill, M. A. Kenward, C. D. Williams, I. J. Radecka // Journal of Applied Microbiology. - 2007. - № 102. - Р. 1437 — 1449.
66. Vizcaino-Caston I. Development of a rapid method to isolate polyhydroxyalkanoates from bacteria for screening studies / I. Vizcaino-Caston, C. A. Kelly, A. V. L. Fitzgerald, G. A. Leeke, M. Jenkins // Journal of Bioscience and Bioengineering. - 2016. №. 1. - P. 101-104.
67. Volova T. G. Fundamental basis of production and application of biodegradable polyhydroxyalkanoates / T. G. Volova, E. I. Shishatskaya. N. O. Zhila, E. G. Kiselev, P. V. Mironov, A. D. Vasiliev, I. V. Peterson, A. J. Sinskey // Journal of Siberian Federal University. Biology 3. - 2012. - № 5. - P. 280-299.
68. Yang Y-H. Optimization of growth media components for polyhydroxyalkanoate (PHA) production from organic acids by Ralstonia eutropha / Yung-Hun Yang, Christopher J. Brigham, Charles F. Budde, Paolo Boccazzi, Laura B. Willis, Mohd Ali Hassan, Zainal Abidin Mohd Yusof, ChoKyun Rha, Anthony J. Sinskey //Applied Microbiology and Biotechnology. - 2010. - №87. - P. 2037-2045.
69. Yasotha K. Recovery of medium-chain-length polyhydroxyalkanoates (PHAs) through enzymatic digestion treatments and ultrafiltration / K.Yasotha, M. K. Aroua, K. B. Ramachandran, I. Tan // Biochemical Engineering Journal. - 2006. - №30.- Р. 260-268.
70. Yu J. Cost-effective recovery and purification of polyhydroxyalkanoates by selective dissolution of cell mass / J. Yu, LXL Chen // Biotechnology Progress. - 2006. - № 22. - P. 547 - 553.