Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Влияние в-амилоида на развитие инсулинорезистентности нейронов головного мозга

Работа №24621

Тип работы

Главы к дипломным работам

Предмет

физика

Объем работы46
Год сдачи2018
Стоимость7300 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
231
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


Введение 4
1 Обзор литературы 6
1.1 Болезнь Альцгеймера и ее патогенез 6
1.1.1 Роль в-амилоида 7
1.1.2 Роль тау-белка 10
1.1.3 Синаптическая дисфункция и кальциевый гомеостаз 11
1.2 Инсулинорезистентность при болезни Альцгеймера 13
1.2.1 Пути передачи инсулинового сигнала 13
1.2.2 Роль инсулина в головном мозге 16
1.2.3 Роль инсулинорезистентности в патогенезе болезни Альцгеймера 18
1.3 Инфламмасомы и нейровоспаление при болезни Альцгеймера 20
2 Материалы и методы 23
2.1 Изготовление переживающих срезов 23
2.2 Запись локальных полевых возбуждающих постсинаптических
потенциалов 25
4 Заключение 28
Список сокращений 29
Список использованных источников 31
ПРИЛОЖЕНИЕ А 39
ПРИЛОЖЕНИЕ Б

Болезнь Альцгеймера (первичная дегенеративная деменция альцгеймеровского типа, БА) — наиболее распространенная форма деменций позднего возраста с постепенным началом в пресенильном или старческом возрасте, неуклонным прогрессированием расстройств памяти и сознания вплоть до полного распада личности[1]. К деменциям относят целый ряд нейродегенеративных заболеваний, характеризующиеся нарушением высших когнитивных функций.
НейропатологическиБА характеризуется наличием двух типов белковых агрегатов в нервных тканях больных: амилоидных бляшек и нейрофибриллярных клубков. Амилоидные бляшки - компактные сферические внеклеточные отложения, состоящие из небольшого белка (~4 кДа), называемого в-амилоидным пептидом (Ав). Эти внеклеточные включения обычно обнаруживаются в отделах лимбической системы мозга, таких как гиппокамп, а так же в корковых и подкорковых отделах[2]. Нейрофибриллярные клубки - это внутриклеточные агрегаты, основным компонентом которых являются агрегированные формы гиперфосфорилированного белка тау. Эти нитевидные включения встречаются как в аксонах, так и в телах нейронов.
Наличие белковых агрегатов в мозге пациентов с БА сочетается с дополнительными патологическими изменениями: синаптической дисфункцией, атрофией мозгового вещества, выборочным истощением нейромедиаторных систем и присутствием патогистологических структур других типов[2]. За последнее десятилетие накопилось большое количество данных, показывающих, что важную роль в развитии и прогрессировании БА играют локальная инсулинорезистентность и нейровоспаление [3-8]. Сейчас активно исследуется их молекулярная взаимосвязь. Например, известны некоторые молекулярные механизмы, опосредующие влияние Авкак на нейровоспаление, так и на развитие инсулинорезистентности. Так, растворимые олигомеры Ар внутри нейронов инициируют сборку NLRP3 инфламмасом, с последующим каспаза-1-опосредованым процессингом и пироптозом клеток.В периферических тканях уровень экспрессии инфламмасом данного типа тесно коррелирует с толерантностью клеток к инсулину[9]. Кроме того, в экспериментах на клеточных культурах нейронов гиппокампа было показано, что Ар может оказывать существенное влияние на развитие инсулинорезистентности [10, 11]. Однако мало известно о влиянии Ар в одной зоне мозга на развитие инсулинорезистентности других связанных с ней зон. Так же не известно, вовлекаются лиNLRP3 инфламмасомыв развитие инсулинорезистентности в головном мозге.
Таким образом, цель данной работы заключается в определении влияния Ар на развитие инсулинорезистентности нейронов нескольких взаимосвязанных областей мозга и оценки вовлеченности NLRP3 инфламмасом в этот процесс. В работе использовались мыши нокаутные по гену Nlrp3, кодирующему данный тип инфламмасом. Локальное нейровоспаление моделировалось при помощи стереотаксического введения Ар в гиппокамп и мозжечок. Электрическая активность нейронов регистрировалась при помощи записи полевых возбуждающих постсинаптических потенциалов (пВПСП). Для выполнения поставленных целей необходимо было выполнить следующие задачи:
1. Определить влияние нокаутированияпо гену Nlrp3на базовые электрофизиологические характеристики нейронов исследуемых зон;
2. Определить влияние инсулина на нейроны латерального ядра
миндалины у мышей дикого типа и нокаутных по гену Nlrp3;
3. Определить влияние инсулина на нейроны латерального ядра
миндалины у мышей дикого типа и нокаутных по гену МтрЗпри инъекции Арв гиппокамп;
4. Определить влияние инсулина на нейроны СА1 зоны гиппокампа у мышей дикого типа;
5. Определить влияние инсулина на нейроны СА1 зоны гиппокампа у мышей дикого типа при инъекции Авв кору мозжечка.

Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


По результатам выполненной работы можно сделать следующие выводы.
1. Нокаутирование по гену Nlrp3 оказывает различное влияние на электрофизиологические характеристики нейронов в зависимости от исследуемой зоны.
2. Инсулин вызывает кратковременное и незначительное уменьшение амплитуды пВПСП нейронов латерального ядра миндалины у мышей дикого типа. У мышей нокаутных по гену Nlrp3,напротив, наблюдается увеличение амплитуды пВПСП.
3. При интрагиппокампальной инъекции Ap, инсулин не вызывает никаких изменений ни у дикого типа, ни у нокаутных мышей. Таким образом можно заключить, что у нейронов латерального ядра миндалины развивается инсулинорезистентность.
4. В нейронах СА1 зоны гиппокампа инсулин вызывает ДВД у мышей дикого типа. Полученные результаты согласуются с литературными данными.
5. Наличие Ap в мозжечке приводит к развитию инсулинорезистентности нейронов СА1 зоны гиппокампа. Таким образом, присутствие Ap в одной зоне мозга способно вызывать патологические изменения в других связанных с ней областях.



1. Tam J.H.K. Alzheimer's Disease / J.H.K. Tam, S.H. Pasternak // The Cerebral Cortex in Neurodegenerative and Neuropsychiatric Disorders / eds. D.F. Cechetto, N. Weishaupt. - London: Elsevier Inc., 2017. - P. 83-118.
2. Нейродегенеративные заболевания: от генома до целостного организма. В 2-х томах. Том 1 / Под ред. М.В. Угрюмова. - Москва: Научный мир, 2014. - 580 p.
3. Bedse G. Aberrant insulin signaling in Alzheimer's disease: Current knowledge / G. Bedse et al. // Frontiers in Neuroscience. - 2015. - Vol. 9. - № 204. - P. 1-13.
4. Verdile G. Inflammation and Oxidative Stress: The Molecular Connectivity between Insulin Resistance, Obesity, and Alzheimer's Disease / G. Verdile et al. // Mediators of Inflammation. - 2015. - Vol. 2015.
5. Freeman L.C. The pathogenic role of the inflammasome in neurodegenerative diseases / L.C. Freeman, J.P.Y. Ting // Journal of Neurochemistry.- 2016. - Vol. 136. - P. 29-38.
6. Kandimalla R. Is Alzheimer's disease a Type 3 Diabetes? A critical appraisal. Vol. 1863 / R. Kandimalla, V. Thirumala, P.H. Reddy. - 2017.
7. Heneka M.T. Neuroinflammation in Alzheimer's disease / M.T. Heneka et al. // The Lancet Neurology. - 2015. - Vol. 14. - № 4. - P. 388-405.
8. Skaper S.D. An Inflammation-Centric View of Neurological Disease: Beyond the Neuron / S.D. Skaper et al. // Frontiers in Cellular Neuroscience. - 2018.- Vol. 12. - P. 72.
9. Vandanmagsar B. The NLRP3 inflammasome instigates obesity-induced inflammation and insulin resistance. / B. Vandanmagsar et al. // Nature medicine. - 2011. - Vol. 17. - № 2. - P. 179-88.
10. Felice F.G. De. Protection of synapses against Alzheimer's-linked toxins: Insulin signaling prevents the pathogenic binding of Aв oligomers / F.G. De Felice et
al. // Proceedings of the National Academy of Sciences. - 2009. - Vol. 106. - № 6. - P. 1971-1976.
11. Zhao W.-Q. Amyloid beta oligomers induce impairment of neuronal insulin receptors / W.-Q. Zhao et al. // The FASEB Journal. - 2007. - Vol. 22. - № 1. - P. 246-260.
12. Bertram L. Chapter 3 - The Genetics of Alzheimer's Disease / L. Bertram, R.E. Tanzi // Progress in Molecular Biology and Translational Science. - 2012. - Vol. 107. - P. 79-100.
13. Galzitskaya O. V. Studies of the Process of Amyloid Formation by Ap Peptide / O. V Galzitskaya, E.I. Galushko, O.M. Selivanova // Biochemistry (Moscow). - 2018. - Vol. 83. - № S1. - P. S62-S80.
14. Dawkins E. Insights into the physiological function of the p-amyloid precursor protein: beyond Alzheimer's disease. / E. Dawkins, D.H. Small // Journal of neurochemistry. - 2014. - Vol. 129. - № 5. - P. 756-69.
15. Heber S. Mice with Combined Gene Knock-outs Reveal Essential and Partially Redundant Functions of Amyloid Precursor Protein Family Members / S. Heber et al. // The Journal of Neuroscience. - 2000. - Vol. 20. - № 21. - P. 7951¬7963.
16. Haass C. Trafficking and proteolytic processing of APP / C. Haass et al. // Cold Spring Harbor Perspectives in Medicine. - 2012. - Vol. 2. - № 5. - P. 1-25.
17. Demuro A. Calcium signaling and amyloid toxicity in Alzheimer disease / A. Demuro, I. Parker, G.E. Stutzmann // Journal of Biological Chemistry. - 2010. - Vol. 285. - № 17. - P. 12463-12468.
18. LaFerla F.M. Alzheimer's disease: Ab, tau and synaptic dysfunction / F.M. LaFerla, S. Oddo // Trends in Molecular Medicine. - 2005. - Vol. 11. - № 4. - P. 170-176.
19. Selkoe D.J. The amyloid hypothesis of Alzheimer's disease at 25 years / D.J. Selkoe, J. Hardy // EMBO Molecular Medicine. - 2016. - Vol. 8. - № 6. - P. 595-608.
20. Lane C.A. Alzheimer's disease / C.A. Lane, J. Hardy, J.M. Schott // European Journal of Neurology. - 2018. - Vol. 25. - № 1. - P. 59-70.
21. Klunk W.E. Amyloid and neurodegeneration: converging and diverging paths. / W.E. Klunk, D. Perani // Neurology. - 2013. - Vol. 81. - № 20. - P. 1728-9.
22. Stoothoff W.H. Tau phosphorylation: Physiological and pathological consequences / W.H. Stoothoff, G.V.W. Johnson // Biochimica et Biophysica Acta - Molecular Basis of Disease. - 2005. - Vol. 1739. - № 2. - P. 280-297.
23. Allen B. Abundant tau filaments and nonapoptotic neurodegeneration in transgenic mice expressing human P301S tau protein. / B. Allen et al. // The Journal of neuroscience: the official journal of the Society for Neuroscience. - 2002. - Vol. 22. - № 21. - P. 9340-9351.
24. Oddo S. Aв immunotherapy leads to clearance of early, but not late, hyperphosphorylated tau aggregates via the proteasome / S. Oddo et al. // Neuron. - 2004. - Vol. 43. - № 3. - P. 321-332.
25. Tokutake T. Hyperphosphorylation of Tau induced by naturally secreted amyloid-в at nanomolar concentrations is modulated by insulin-dependent Akt- GSK3в signaling pathway / T. Tokutake et al. // Journal of Biological Chemistry. -2012.- Vol. 287. - № 42. - P. 35222-35233.
26. Lambert M.P. Diffusible, nonfibrillar ligands derived from Abeta1-42 are potent central nervous system neurotoxins. / M.P. Lambert et al. // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 1998. - Vol. 95. - № 11. - P. 6448-53.
27. Molnar Z. Enhancement of NMDA responses by beta-amyloid peptides in the hippocampus in vivo. / Z. Molnar et al. // Neuroreport. - 2004. - Vol. 15. - № 10. - P. 1649-52.
28. Sokolow S. Isolation of synaptic terminals from Alzheimer's disease cortex / S. Sokolow et al. // Cytometry Part A. - 2012. - Vol. 81A. - № 3. - P. 248-254.
29. Puzzo D. Picomolar Amyloid- Positively Modulates Synaptic Plasticity and Memory in Hippocampus / D. Puzzo et al. // Journal of Neuroscience. - 2008. - Vol. 28. - № 53. - P. 14537-14545.
30. Li S. Soluble Aв oligomers inhibit long-term potentiation through a mechanism involving excessive activation of extrasynaptic NR2B-containing NMDA receptors. / S. Li et al. // The Journal of neuroscience: the official journal of the Society for Neuroscience. - 2011. - Vol. 31. - № 18. - P. 6627-38.
31. Sperling R.A. Functional alterations in memory networks in early alzheimer's disease / R.A. Sperling et al. // NeuroMolecular Medicine. - 2010. - Vol. 12. - № 1. - P. 27-43.
32. Magi S. Intracellular Calcium Dysregulation: Implications for Alzheimer's Disease / S. Magi et al. // BioMed Research International. - 2016. - Vol. 2016.
33. Zhang Z. A novel acetylcholinesterase inhibitor and calcium channel blocker SCR-1693 improves Abeta-impaired mouse cognitive function / Z. Zhang et al. // Psychopharmacology (Berl). - 2015.
34. Rani A. Protective effect of a calcium channel blocker “diltiazem” on aluminum chloride-induced dementia in mice / A. Rani et al. // Naunyn- Schmiedeberg's Archives of Pharmacology. - 2015. - Vol. 388. - № 11. - P. 1151¬1161.
35. Wang X. Exendin-4 antagonizes Aei-42-induced suppression of long-term potentiation by regulating intracellular calcium homeostasis in rat hippocampal neurons / X. Wang et al. // Brain Research. - 2015. - Vol. 1627. - P. 101-108.
36. Ferreiro E. Involvement of endoplasmic reticulum Ca2+ release through ryanodine and inositol 1,4,5-triphosphate receptors in the neurotoxic effects induced by the amyloid-в peptide / E. Ferreiro, C.R. Oliveira, C.M.F. Pereira // Journal of Neuroscience Research. - 2004. - Vol. 76. - № 6. - P. 872-880.
37. Ferreiro E. An endoplasmic-reticulum-specific apoptotic pathway is involved in prion and amyloid-beta peptides neurotoxicity / E. Ferreiro et al. // Neurobiology of Disease. - 2006. - Vol. 23. - № 3. - P. 669-678.
38. Jensen L.E. Alzheimer's disease-associated peptide Ae42 mobilizes ER Ca2+ via InsP3R-dependent and -independent mechanisms / L.E. Jensen et al. // Frontiers in Molecular Neuroscience. - 2013. - Vol. 6.
39. Fonseca A.C.R.G. Amyloid-Beta Disrupts Calcium and Redox Homeostasis in Brain Endothelial Cells / A.C.R.G. Fonseca et al. // Molecular Neurobiology. - 2015. - Vol. 51. - № 2. - P. 610-622.
40. Brawek B. Network-wide dysregulation of calcium homeostasis in Alzheimer's disease / B. Brawek, O. Garaschuk // Cell and Tissue Research. - 2014. - Vol. 357. - № 2. - P. 427-438.
41. Dal Pra I. Do astrocytes collaborate with neurons in spreading the “infectious” Aв and Tau drivers of Alzheimer's disease? / I. Dal Pra et al. // Neuroscientist. - 2015. - Vol. 21. - № 1. - P. 9-29.
42. Freiherr J. Intranasal insulin as a treatment for alzheimer's disease: A review of basic research and clinical evidence / J. Freiherr et al. // CNS Drugs. -2013.- Vol. 27. - № 7. - P. 505-514.
43. Kim B. Insulin resistance in the nervous system / B. Kim, E.L. Feldman // Trends in Endocrinology and Metabolism. - 2012. - Vol. 23. - № 3. - P. 133-141.
44. Asano T. Role of phosphatidylinositol 3-kinase activation on insulin action and its alteration in diabetic conditions. / T. Asano et al. // Biological & pharmaceutical bulletin. - 2007. - Vol. 30. - № 9. - P. 1610-6.
45. Sesti G. Pathophysiology of insulin resistance / G. Sesti // Best Practice and Research: Clinical Endocrinology and Metabolism. - 2006. - Vol. 20. - № 4. - P. 665-679.
46. Zdychova J. Emerging role of Akt kinase/protein kinase B signaling in pathophysiology of diabetes and its complications. / J. Zdychova, R. Komers // Physiological research. - 2005. - Vol. 54. - № 1. - P. 1-16.
47. Blazquez E. Insulin in the brain: Its pathophysiological implications for states related with central insulin resistance, type 2 diabetes and alzheimer's disease / E. Blazquez et al. // Frontiers in Endocrinology. - 2014. - Vol. 5. - № OCT. - P. 1¬21.
48. Marks J.L. Localization of insulin receptor mRNA in rat brain by in situ hybridization / J.L. Marks et al. // Endocrinology. - 1990. - Vol. 127. - № 6. - P. 3234-3236.
49. Mameli M. Rapid synthesis and synaptic insertion of GluR2 for mGluR- LTD in the ventral tegmental area / M. Mameli et al. // Science. - 2007. - Vol. 317. -№ 5837. - P. 530-533.
50. Schulingkamp R.J. Insulin receptors and insulin action in the brain: Review and clinical implications / R.J. Schulingkamp et al. // Neuroscience and Biobehavioral Reviews. - 2000. - Vol. 24. - № 8. - P. 855-872.
51. Obici S. Decreasing hypothalamic insulin receptors causes hyperphagia and insulin resistance in rats / S. Obici et al. // Nature Neuroscience. - 2002. - Vol. 5. - № 6. - P. 566-572.
52. Arias P. Effect of insulin on LHRH release by perifused hypothalamic fragments / P. Arias et al. // Neuroendocrinology. - 1992. - Vol. 56. - № 3. - P. 415¬418.
53. Ryu B.R. Phosphatidylinositol 3-kinase-mediated regulation of neuronal apoptosis and necrosis by insulin and IGF-I / B.R. Ryu et al. // Journal of Neurobiology. - 1999. - Vol. 39. - № 4. - P. 536-546.
54. Rensink A.A. Insulin inhibits amyloid beta-induced cell death in cultured human brain pericytes / A.A. Rensink et al. // Neurobiol Aging. - 2004. - Vol. 25. - № 1. - P. 93-103.
55. Auer R.N. Insulin, blood glucose levels, and ischemic brain damage / R.N. Auer // Neurology. - 1998. - Vol. 51. - № Issue 3, Supplement 3. - P. S39-S43.
56. Labouebe G. Insulin induces long-term depression of ventral tegmental area dopamine neurons via endocannabinoids / G. Labouebe et al. // Nat Neurosci. - 2013. - Vol. 16. - № 3. - P. 300-308.
57. Ahmadian G. Tyrosine phosphorylation of GluR2 is required for insulin- stimulated AMPA receptor endocytosis and LTD / G. Ahmadian et al. // The EMBO Journal. - 2004. - Vol. 23. - № 5. - P. 1040-1050.
58. Jin Z. Insulin reduces neuronal excitability by turning on GABAA channels that generate tonic current / Z. Jin et al. // PLoS ONE. - 2011. - Vol. 6. - № 1. - P. 1¬8.
59. Gabuzda D. Inhibition of energy metabolism alters the processing of amyloid precursor protein and induces a potentially amyloidogenic derivative / D. Gabuzda et al. // Journal of Biological Chemistry. - 1994. - Vol. 269. - № 18. - P. 13623-13628.
60. Gasparini L. Stimulation of beta-amyloid precursor protein trafficking by insulin reduces intraneuronal beta-amyloid and requires mitogen-activated protein kinase signaling. / L. Gasparini et al. // The Journal of neuroscience: the official journal of the Society for Neuroscience. - 2001. - Vol. 21. - № 8. - P. 2561-2570.
61. Leissring M. a. Enhanced proteolysis of beta-amyloid in APP transgenic mice prevents plaque formation, secondary pathology, and premature death. / M. a Leissring et al. // Neuron. - 2003. - Vol. 40. - № 6. - P. 1087-93.
62. Farris W. Insulin-degrading enzyme regulates the levels of insulin, amyloid beta-protein, and the beta-amyloid precursor protein intracellular domain in vivo. / W. Farris et al. // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 2003. - Vol. 100. - № 7. - P. 4162-7.
63. Zhao L. Insulin-degrading enzyme as a downstream target of insulin receptor signaling cascade: implications for Alzheimer's disease intervention / L. Zhao et al. // J Neurosci. - 2004. - Vol. 24. - № 49. - P. 11120-11126.
64. Bomfim T.R. An anti-diabetes agent protects the mouse brain from defective insulin signaling caused by Alzheimer's disease-associated Ae oligomers / T.R. Bomfim et al. // Journal of Clinical Investigation. - 2012. - Vol. 122. - № 4. - P. 1339-1353.
65. Felice F.G. De. Alzheimer's disease and insulin resistance: translating basic science into clinical applications. / F.G. De Felice // The Journal of clinical investigation. - 2013. - Vol. 123. - № 2. - P. 531-9.
66. Son S.M. Altered APP processing in insulin-resistant conditions is mediated by autophagosome accumulation via the inhibition of mammalian target of rapamycin pathway / S.M. Son et al. // Diabetes. - 2012. - Vol. 61. - № 12. - P. 3126-3138.
67. Rodriguez-Rodriguez P. Tau hyperphosphorylation induces oligomeric insulin accumulation and insulin resistance in neurons / P. Rodriguez-Rodriguez et al. // Brain. - 2017. - Vol. 140. - № 12. - P. 3269-3285.
68. Martinon F. The inflammasomes: guardians of the body / F. Martinon, A.
Mayor, J. Tschopp // Annual review of immunology. - 2009. - Vol. 27. - P. 229-265.
69. Gay N.J. Structure and Function of Toll Receptors and Their Ligands / N.J. Gay, M. Gangloff // Annual Review of Biochemistry. - 2007. - Vol. 76. - № 1. - P. 141-165.
70. Ojala J. Expression of interleukin-18 is increased in the brains of Alzheimer's disease patients / J. Ojala et al. // Neurobiology of Aging. - 2009. - Vol. 30. - № 2. - P. 198-209.
71. Heneka M.T. NLRP3 is activated in Alzheimer's disease and contributes to pathology in APP/PS1 mice / M.T. Heneka et al. // Nature. - 2012. - Vol. 493. - № 7434. - P. 674-678.
72. Pitkanen A. Reciprocal Connections between the Amygdala and the Hippocampal Formation, Perirhinal Cortex, and Postrhinal Cortex in Rat: A Review / A. Pitkanen et al. // Annals of the New York Academy of Sciences. - 2006. - Vol. 911. - № 1. - P. 369-391.
73. Wang X. Functional Genomics of Brain Aging and Alzheimers Disease: Focus on Selective Neuronal Vulnerability / X. Wang, M. L. Michaelis, E. K. Michaelis // Current Genomics. - 2010. - Vol. 11. - № 8. - P. 618-633.
74. Arrigo A. Constrained spherical deconvolution analysis of the limbic network in human, with emphasis on a direct cerebello-limbic pathway / A. Arrigo et al. // Frontiers in Human Neuroscience. - 2014. - Vol. 8. - № December. - P. 1-11.
75. Liu W. A Direct Hippocampo-Cerebellar Projection in Chicken / W. Liu et al. // Anatomical Record. - 2012. - Vol. 295. - № 8. - P. 1311-1320.
76. Yu W. Cognitive Collaborations: Bidirectional Functional Connectivity Between the Cerebellum and the Hippocampus / W. Yu, E. Krook-Magnuson // Frontiers in Systems Neuroscience. - 2015. - Vol. 9. - № December. - P. 1-10.
77. Hoxha E. Excitability and synaptic alterations in the cerebellum of APP/PS1 mice. / E. Hoxha et al. // PloS one. - 2012. - Vol. 7. - № 4. - P. e34726.


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ