ВВЕДЕНИЕ 4
1 Обзор литературы 6
1.1 Актуальность исследования митохондриальных геномов грибов 6
1.1.2 Митохондриальные геномы грибов 6
1.1.3 Интроны I группы 7
1.1.4 Интегрированные в геном плазмидные последовательности 9
1.2 Подходы к аннотации геномов 10
1.2.1 Идентификация повторов 10
1.2.2 Выравнивание 11
1.2.3 Анализ белковых последовательностей 13
1.2.4 Анализ транслированных последовательностей 13
1.2.5 Предсказание кодирующих областей и функциональная аннотация 14
1.3 Методы построения филогении 15
1.3.1 Метод матрицы расстояний (distance matrix) 15
1.3.2 Метод максимальной экономии 16
1.3.3 Методы, основанные на моделях эволюции 17
1.3.4 Подходы «супердерева» и «суперматрицы» 19
2 Материалы и методы 22
2.1 Аннотация митохондриальных геномов 22
2.2 Анализ митохондриальных интронов и геномных перестроек 23
2.3 Филогеномный анализ 23
3 Результаты и обсуждение 25
ЗАКЛЮЧЕНИЕ 31
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ 32
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ 33
ПРИЛОЖЕНИЕ 41
Виды грибов рода Опёнок (Armillaria) являются одними из наиболее важных компонентов экосистем бореальных и умеренных лесов, выполняют важнейшие экологические функции разложения мертвой древесины, но при этом нередко становятся серьёзными патогенами.
МтДНК наследуются от одного родительского организма и присутствуют в виде многих копий в каждой клетке. Благодаря этим качествам, митохондриальные гены широко используются для популяционных и видовых исследований.
В лаборатории лесной геномики Сибирского федерального университета были секвенированы и собраны митохондриальные геномы A. borealis и A. sinapina, представленные кольцевыми ДНК. Для исследования был также был использован митохондриальный геном североамериканского изолята A. solidipes, который по состоянию на 31.04.2018 был представлен в базе данных DOE JGI (The U.S. Department of Energy Joint Genome Institute, Walnut Creek, California) неаннотированной версией. Маркировку генов и других элементов в нуклеотидной последовательности в биоинформатике называют аннотацией. Таким образом, целью данной работы является аннотация и сравнительный анализ митохондриальных геномов близкородственных видов грибов A. borealis, A. sinapina и A. solidipes.
Для достижения цели были поставлены следующие задачи:
• Поиск кодирующих участков (аннотация);
• Сравнительный анализ аннотированных геномов;
• Филогеномный анализ.
Результаты работы были представлены на следующих международных и Всероссийских конференциях:
- Четвертый съезд микологов России, г. Москва;
- «Исследования компонентов лесных экосистем Сибири», г. Красноярск;
- 55-я Международная научная студенческая конференция, г. Новосибирск;
- 7th European Conference on Prokaryotic and Fungal Genomics, Gottingen, Germany;
- 56-я Международная научная студенческая конференция, г. Новосибирск.
Выпускная квалификационная работа выполнена в лаборатории лесной геномики СФУ в рамках проекта «Геномные исследования основных бореальных лесообразующих хвойных видов и их наиболее опасных патогенов в Российской Федерации», руководимого проф. К. В. Крутовским и финансируемого Правительством РФ (договор №14.Y26.31.0004). Автор работы выражает искреннюю благодарность И.Н. Павлову за предоставленные образцы грибов, Орешковой Н.В. за пробоподготовку и секвенирование, Путинцевой Ю. А. и Садовскому М. Г. за руководство, а также всем членам лаборатории за участие в обсуждении результатов работы и ценные советы.
В ходе данной работы были выполнены все задачи и поставленная цель была полностью достигнута:
1. Во всех геномах были аннотированны все 14 генов, участвующих в окислительном фосфорилировании. Так же, были найдены рибосомальные гены rns, rnl и rps3 и наборы генов тРНК.
2. Сравнительный анализ показал высокую вариацию размеров геномов. Это объясняется разным количеством и длиной интронов и мобильных элементов.
3. Некоторые интроны гомологичных генов в трех видах Armillaria имеют различное происхождение, и предположительно были приобретены путем горизонтального переноса.
4. В A. sinapina были найдены множественные генные перестройки в отношении геномов A. borealis и A. solidipes, которые могут быть ассоциированы со встраиванием мобильных плазмидных последовательностей.
5. Во всех мтДНК были найдены укороченные генные дупликации, которые так же могут быть результатом вставок мобильных генетических элементов.
6. Филогеномный анализ показал, что семейство Физалакриевых является монофилетической группой, формирующей кладу с хорошей бутстрэп- поддержкой (100%).
1. Basse C. W. Mitochondrial inheritance in fungi //Current opinion in microbiology. - 2010. - Т. 13. - №. 6. - С. 712-719.
2. Thrash J. C. et al. Phylogenomic evidence for a common ancestor of mitochondria and the SAR11 clade //Scientific reports. - 2011. - T. 1. - C. 13.
3. Palmer J. D. et al. Dynamic evolution of plant mitochondrial genomes: mobile genes and introns and highly variable mutation rates //Proceedings of the National Academy of Sciences. - 2000. - T. 97. - №. 13. - C. 6960-6966.
4. Aguileta G. et al. High variability of mitochondrial gene order among fungi //Genome biology and evolution. - 2014. - T. 6. - №. 2. - C. 451-465.
5. Lang B. F., Laforest M. J., Burger G. Mitochondrial introns: a critical view //Trends in Genetics. - 2007. - T. 23. - №. 3. - C. 119-125.
6. Kouvelis V. N., Sialakouma A., Typas M. A. Mitochondrial gene sequences alone or combined with ITS region sequences provide firm molecular criteria for the classification of Lecanicillium species //Mycological research. - 2008. - T. 112. - №. 7. - C. 829-844.
7. Pantou M. P., Kouvelis V. N., Typas M. A. The complete mitochondrial genome of the vascular wilt fungus Verticillium dahliae: a novel gene order for Verticillium and a diagnostic tool for species identification //Current genetics. - 2006. - T. 50. - №. 2. - C. 125-136.
8. Bullerwell C. E., Lang B. F. Fungal evolution: the case of the vanishing mitochondrion //Current opinion in microbiology. - 2005. - T. 8. - №. 4. - C. 362-369.
9. Pramateftaki P. V. et al. The mitochondrial genome of the wine yeast Hanseniaspora uvarum: a unique genome organization among yeast/fungal counterparts //FEMS yeast research. - 2006. - T. 6. - №. 1. - C. 77-90.
10. Losada L. et al. Mobile elements and mitochondrial genome expansion in the soil fungus and potato pathogen Rhizoctonia solani AG-3 //FEMS microbiology letters. - 2014. - T. 352. - №. 2. - C. 165-173.
11. Burger G., Gray M. W., Lang B. F. Mitochondrial genomes: anything goes //Trends in genetics. - 2003. - T. 19. - №. 12. - C. 709-716.
12. Salavirta H. et al. Mitochondrial genome of Phlebia radiata is the second largest (156 kbp) among fungi and features signs of genome flexibility and recent recombination events //PloS one. - 2014. - T. 9. - №. 5. - C. e97141.
13. Paquin B. et al. The fungal mitochondrial genome project: evolution of fungal mitochondrial genomes and their gene expression //Current genetics. - 1997. - T. 31. - №. 5. - C. 380-395.
14. Stoddard B. L. Homing endonucleases from mobile group I introns: discovery to genome engineering //Mobile DNA. - 2014. - T. 5. - №. 1. - C. 7.
15. Beaudet D. et al. Rapid mitochondrial genome evolution through invasion of mobile elements in two closely related species of arbuscular mycorrhizal fungi //PloS one. - 2013. - T. 8. - №. 4. - C. e60768.
16. Ferandon C. et al. The Agaricus bisporus cox1 gene: the longest mitochondrial gene and the largest reservoir of mitochondrial group I introns //PLoS One. - 2010. - T. 5. - №. 11. - C. e14048.
17. Kanzi A. M. et al. Intron Derived Size Polymorphism in the Mitochondrial Genomes of Closely Related Chrysoporthe Species //PloS one. - 2016. - T. 11. - №. 6. - C. e0156104.
18. Joardar V. et al. Sequencing of mitochondrial genomes of nine Aspergillus and Penicillium species identifies mobile introns and accessory genes as main sources of genome size variability //BMC genomics. - 2012. - T. 13. - №. 1. - C. 698.
19. Vaughn J. C. et al. Fungal origin by horizontal transfer of a plant mitochondrial group I intron in the chimeric coxI gene of Peperomia //Journal of Molecular Evolution. - 1995. - T. 41. - №. 5. - C. 563-572.
20. Gonzalez P., Barroso G., Labarere J. Molecular analysis of the split cox1 gene from the Basidiomycota Agrocybe aegerita: relationship of its introns with homologous Ascomycota introns and divergence levels from common ancestral copies //Gene. - 1998. - T. 220. - №. 1. - C. 45-53.
21. Ferandon C., Xu J., Barroso G. The 135 kbp mitochondrial genome of Agaricus bisporus is the largest known eukaryotic reservoir of group I introns and plasmid-related sequences //Fungal genetics and biology. - 2013. - T. 55. - C. 85-91.
22. Goddard M. R., Burt A. Recurrent invasion and extinction of a selfish gene //Proceedings of the National Academy of Sciences. - 1999. - T. 96. - №. 24. -C. 13880-13885.
23. Cusimano N., Zhang L. B., Renner S. S. Reevaluation of the cox1 group I intron in Araceae and angiosperms indicates a history dominated by loss rather than horizontal transfer //Molecular biology and evolution. - 2007. - T. 25. - №. 2. - C. 265-276.
24. Sanchez-Puerta M. V. et al. Frequent, phylogenetically local horizontal transfer of the cox1 group I intron in flowering plant mitochondria //Molecular biology and evolution. - 2008. - T. 25. - №. 8. - C. 1762-1777.
25. Sanchez-Puerta M. V. et al. Multiple recent horizontal transfers of the cox1 intron in Solanaceae and extended co-conversion of flanking exons //BMC evolutionary biology. - 2011. - T. 11. - №. 1. - C. 277.
26. Griffiths A. J. Natural plasmids of filamentous fungi //Microbiological reviews. - 1995. - T. 59. - №. 4. - C. 673-685.
27. Hanfler J. et al. Circular extrachromosomal DNA codes for a surface protein in the (+) mating type of the zygomycete Absidia glauca //Current genetics.
- 1992. - T. 22. - №. 4. - C. 319-325.
28. Chan B. S. S. et al. The kalilo linear senescence-inducing plasmid of Neurospora is an invertron and encodes DNA and RNA polymerases //Current genetics. - 1991. - T. 20. - №. 3. - C. 225-237.
29. Bertrand H. et al. Genetic organization and structural features of maranhar, a senescence-inducing linear mitochondrial plasmid of Neurospora crassa //Current genetics. - 1992. - T. 22. - №. 5. - C. 385-397.
30. Sakaguchi K. Invertrons, a class of structurally and functionally related genetic elements that includes linear DNA plasmids, transposable elements, and genomes of adeno-type viruses //Microbiological reviews. - 1990. - T. 54. - №. 1.
- C. 66-74.
31. Akins R. A., Kelley R. L., Lambowitz A. M. Mitochondrial plasmids of Neurospora: integration into mitochondrial DNA and evidence for reverse transcription in mitochondria //Cell. - 1986. - T. 47. - №. 4. - C. 505-516.
32. Griffiths A. J. F. Fungal senescence //Annual review of genetics. - 1992. -T. 26. - №. 1. - C. 351-372.
33. Hermanns J., Asseburg A., Osiewacz H. D. Evidence for a life span-prolonging effect of a linear plasmid in a longevity mutant of Podospora anserina //Molecular and General Genetics MGG. - 1994. - T. 243. - №. 3. - C. 297-307.
34. Robison M. M., Wolyn D. J. A mitochondrial plasmid and plasmid-like RNA and DNA polymerases encoded within the mitochondrial genome of carrot (Daucus carota L.) //Current genetics. - 2005. - T. 47. - №. 1. - C. 57-66.
35. Robison M. M., Royer J. C., Horgen P. A. Homology between mitochondrial DNA of Agaricus bisporus and an internal portion of a linear mitochondrial plasmid of Agaricus bitorquis //Current genetics. - 1991. - T. 19. - №. 6. - C. 495-502.
36. Griffiths A. J. F. et al. Heterokaryotic transmission of senescence plasmid DNA in Neurospora //Current genetics. - 1990. - T. 17. - №. 2. - C. 139-145.
37. Kempken F., Hermanns J., Osiewacz H. D. Evolution of linear plasmids //Journal of molecular evolution. - 1992. - T. 35. - №. 6. - C. 502-513.
38. Vegetative incompatibility in Neurospora: its effect on horizontal transfer of mitochondrial plasmids and senescence in natural populations.
39. Rosewich U. L., Kistler H. C. Role of horizontal gene transfer in the evolution of fungi //Annual review of phytopathology. - 2000. - T. 38. - №. 1. - C. 325-363.
40. Kapitonov V. V., Jurka J. A universal classification of eukaryotic transposable elements implemented in Repbase //Nature Reviews Genetics. - 2008. -T. 9. - №. 5. - C. 411-412.
41. Lander E. S. et al. Initial sequencing and analysis of the human genome //Nature. - 2001. - T. 409. - №. 6822. - C. 860-921.
42. Buisine N., Quesneville H., Colot V. Improved detection and annotation of transposable elements in sequenced genomes using multiple reference sequence sets //Genomics. - 2008. - T. 91. - №. 5. - C. 467-475.
43. Han Y., Wessler S. R. MITE-Hunter: a program for discovering miniature inverted-repeat transposable elements from genomic sequences //Nucleic acids research. - 2010. - C. 862.
44. Smit A., Hubley R. RepeatModeler-1.0.5 [Электронный ресурс] //
Institute for Systems Biology. - 2012. URL:
http://www.repeatmasker.org/RepeatModeler.html (дата обращения: 23.04.2018).
45. Korf I., Yandell M., Bedell J. An Essential Guide to the Basic Local Alignment Search Tool: BLAST. - 2003
46. Green, P. Crossmatch. A general purpose utility for comparing any two sets of DNA sequences. PHRAP [Электронный ресурс] URL: http://www.phrap.org/phredphrap/general.html (дата обращения: 23.04.2018).
47. Bao W., Kojima K. K., Kohany O. Repbase Update, a database of repetitive elements in eukaryotic genomes //Mobile DNA. - 2015. - T. 6. - №. 1. - C. 11.
48. Garber M. et al. Computational methods for transcriptome annotation and quantification using RNA-seq //Nature methods. - 2011. - T. 8. - №. 6. - C. 469-477.
49. Altschul S. F. et al. Basic local alignment search tool //Journal of molecular biology. - 1990. - T. 215. - №. 3. - C. 403-410.
50. Benson D. A. et al. GenBank //Nucleic acids research. - 2012. - T. 41. - №. D1. - C. D36-D42.
51. Stoesser G. et al. The EMBL nucleotide sequence database //Nucleic acids research. - 2002. - T. 30. - №. 1. - C. 21-26.
52. Korf I. Gene finding in novel genomes //BMC bioinformatics. - 2004. - T. 5. - №. 1. - C. 59.