ВВЕДЕНИЕ 5
1 ХАРАКТЕРИСТИКА РОДА LARIX MILL 8
1.1 Морфологическая характеристика 8
1.2 Систематика рода Larix 9
1.3 Экология и ареал обитания 10
1.4 Экономическое значение и использование 12
1.5 Краткая характеристика лиственницы сибирской Larix sibirica Ledeb. 13
2 ГЕНЕТИЧЕСКИЕ МАРКЕРЫ В ПОПУЛЯЦИЯХ И ФИЛОГЕНЕТИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЯХ 16
2.1 Основные понятия и критерии оценки молекулярного маркера 17
2.2 Основные классы молекулярных маркеров 18
3 МИКРОСАТЕЛЛИТНЫЕ МАРКЕРЫ ДЛЯ ИЗУЧЕНИЯ ГЕНЕТИЧЕСКОГО РАЗНООБРАЗИЯ РАСТЕНИЙ 20
3.1 Определение и свойства 20
3.2 Микросателлиты в генетике растений 21
3.3 Разработка и применение микросателлитных маркеров в
популяционно-генетических исследованиях рода Larix 23
4 МЕТОДИКА РАЗРАБОТКИ МИКРОСАТЕЛЛИТНЫХ МАРКЕРОВ И
ПРОВЕДЕНИЕ SSR АНАЛИЗА 26
4.1 NGS-технологии в разработке микросателлитных маркеров 27
4.2 Идентификация тандемных повторов и подбор праймеров для
микросателлитных локусов 28
4.3 Оптимизация условий ПЦР и применение гель-электрофореза для
идентификации SSR локусов 28
5 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ 31
5.1 Идентификация повторов и дизайн праймеров 31
5.2 Отбор полиморфных маркеров 32
5.3 Отработка полиморфных маркеров на нескольких популяциях L.
sibirica, L. gmeliniи L. cajanderi 35
5.4 Оценка показателей генетического разнообразия 35
6 РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЯ 38
6.1 Отбор повторов и дизайн праймеров 38
ВЫВОДЫ 40
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ 42
Лиственница сибирская является листопадных хвойным деревом из семейства Сосновых. Это одна из преобладающих бореальных пород в Евразии, и наиболее распространенный вид в Сибири [1], где суровые климатические условия ограничивают нормальный рост других древесных видов. Лиственница сибирская имеет большой адаптивный потенциал, как на индивидуальном, так и на популяционном уровне [2, 3]. Благодаря своей прочности, долговечности и устойчивости к гниению она используется в судостроении и гидротехнических сооружениях, для получения целлюлозы, этилового спирта, эфирного масла.
Генетическая структура определяет адаптивный потенциал и устойчивость популяции к неблагоприятным факторам. Следовательно, знание основных популяционно-генетических характеристик, таких как гетерозиготность, аллельная частота и уровень внутри- и межпопуляционной изменчивости становится необходимым для разработки эффективных стратегий сохранения и поддержания лесных ресурсов [4].
Молекулярные маркеры уже долгое время являются признанным инструментом для оценки популяционной изменчивости и идентификации видов. В частности, SSR-маркеры, или микросателлитные повторы, широко используются для анализа генетической структуры популяций и определения родства. Они представляют собой повторяющиеся участки ДНК, в которых мотив (обычно от 2 до 9 п.н.) повторяется тандемно, образуя повтор длиной до тысячи нуклеотидов. Ввиду высокой скорости мутирования, кодоминантного характера наследования, равномерного распределения по геному и высокой воспроизводимости, в сравнении с RAPD-маркерами и аллозимами [5], микросателлитные маркеры получили обширное применение в изучении растений [6, 7]. Было показано, что SSR-маркеры могут быть использованы для различения между видами одного рода, а также для определения происхождения деревьев [8-10]. К недостаткам SSR-анализа можно отнести тот факт, что микросателлитные маркеры, разработанные для одного вида часто плохо амплифицируются в других, даже родственных видах. Для конкретного вида самые надежные результаты показывают видоспецифичные маркеры, специально разработанные для этого вида, что в случае с немодельными организмами часто является дорогостоящей процедурой. Учитывая большие размеры генома (от 10 до 30 млрд. п.н), для хвойных данная задача становится особенно сложной. Однако развитие методов секвенирования нового поколения позволила значительно облегчить процесс, сделав его более быстрым и дешевым.
Исследование нуклеотидного разнообразия и работы по разработке SSR-маркеров за последние несколько лет были проведены для нескольких видов хвойных: Pinus massoniana Lamb. [11], Pseudolarix amabilis Rehd. [12], Abies firma Sieb. et Zucc. [13], Pinus sibirica Du Tour. [14]. Из видов рода Larix на сегодняшний день микросателлитные маркеры были разработаны для лиственницы японской [15, 16], лиственницы европейской [17], лиственницы Гмелина [18], лиственницы Лайэля и лиственницы западной [19; 20]. Для лиственницы сибирской был разработан набор из 11 динуклеотидных локусов [21], однако для работы с данными маркерами необходимо применение капиллярного электрофореза с использованием секвенатора, что является преградой для многих лабораторий, ввиду отсутствия необходимого оборудования.
Несмотря на то, что лиственница сибирская является чрезвычайно важным лесообразующим видом, разработка и использование микросателлитных маркеров для ее исследования до сих пор остаются ограниченными. Стоит так же отметить, что благодаря своей ценной древесине лиственница сибирская подвержена незаконной вырубке, что, в свою очередь, вызывает серьезные экономические и экологические проблемы, и несет угрозу лесному биоразнообразию. Существует объективная потребность в разработке генетических маркеров, которые можно использовать для оценки популяционно-генетических характеристик и идентификации происхождения деревьев.
Цель настоящей работы — разработка полиморфных ядерных микросателлитных (SSR) маркеров для лиственницы сибирской и их апробация.
В связи с этим были поставлены следующие задачи:
— поиск тандемно повторяющихся последовательностей с заданными параметрами и дизайн праймеров для отобранных повторов;
— проверка праймеров на однократную встречаемость в геноме;
— отбор полиморфных маркеров и оценка уровня аллельного разнообразия;
— тестирование отобранных маркеров на популяциях трех видов лиственницы.
Автор выражает искреннюю благодарность научному руководителю Орешковой Н.В. за неоценимую помощь на всех этапах работы, руководителю лаборатории лесной геномики Крутовскому К.В., Садовскому М.Г. и Путинцевой Ю.А. за обсуждение результатов и ценные комментарии, Кузьмину Д.А. и Шарову В.В. за ассемблирование генома. Так же автор благодарен сотрудникам отдела мониторинга состояния лесных генетических ресурсов ЦЗЛ г. Красноярска за предоставленные образцы лиственницы сибирской.
Магистерская диссертация выполнена в лаборатории лесной геномики СФУ и базовой кафедры защиты и современных технологий мониторинга лесов (зав. каф. д.б.н. И. Е. Ямских) в рамках проекта «Геномные исследования основных бореальных лесообразующих хвойных видов и их наиболее опасных патогенов в Российской Федерации», руководимого проф. К. В. Крутовским и финансируемого Правительством РФ (договор №14.Y26.31.0004).
1. В полногеномной сборке L. sibiricaбыло выявлено 1015 тандемных повторов с длиной мотива от 3 до 6 нуклеотидов и минимальным числом повторов: от 7 для шестинуклеотидных мотивов до 15 для трёхнуклеотидных мотивов. После отбора тандемных повторов по минимальному числу повторения мотивов и положению в контиге при помощи WebSat был выполнен дизайн праймеров для 222 локусов.
2. Было отобрано 60 пар праймеров для дальнейшего тестирования в лаборатории после проверки последовательностей на встречаемость в геноме лиственницы сибирской.
3. 14 наиболее перспективных микросателлитных локусов (Ls_980491,Ls_2672894, Ls_4040657, Ls_1008427, Ls_417667, Ls_840190, Ls_954234, Ls_752897, Ls_2552367, Ls_1247092(2), Ls_3765334, Ls_611965, Ls_3952800 Ls_305132),демонстрирующих средне- и высоко-полиморфные спектры для лиственниц сибирской, Гмелина и Каяндера предложены нами для дальнейших популяционно-генетических исследований этих видов.
4. Результаты первичного популяционно-генетического анализа, проведенного с использованием разработанных SSR-маркеров, позволили получить оценки уровня генетического разнообразия и дифференциации четырех выборок из популяций лиственниц сибирской, Гмелина и Каяндера.
5. Для 14 проанализированных локусов было выявлено 86 аллельных вариантов, 28 (32,5%) из которых оказались общими. Видоспецифичными для L. sibiricaоказались 11 аллелей, для L. gmeliniiи L. cajanderi — 7 и 5 соответственно.
6. Выборки лиственниц Гмелина (NA= 4,429, NE= 2,316) и Каяндера (NA = 4,357, NE= 2,217) продемонстрировали наиболее высокое аллельное разнообразие. Однако гораздо больший уровень изменчивости был выявлен в выборках лиственницы сибирской по уровням наблюдаемой и ожидаемой гетерозиготности (HO= 0,436, HE= 0,466).
7. Анализ популяционной структуры лиственниц с помощью F-статистик Райта показал, что около 14% от всей наблюдаемой изменчивости (FST= 0,137) приходится на межпопуляционную. Внутри популяций сосредоточено
86,3 % всего генетического разнообразия.
8. Расчет уровня генетической дифференциации показал, что значения генетического расстояния DNмежду популяциями лиственницы варьируют в достаточно широких пределах (от 0,079 до 0,311), составляя в среднем 0,210. Наиболее генетически удалёнными друг от друга являются выборки лиственницы Каяндера из Якутии и лиственницы сибирской из Хакасии (DN = 0,311), а наименьшее значение генетического расстояния наблюдается между выборками одного вида — лиственницы сибирской (DN= 0,079). Полученные невысокие значения расстояния Нея (DN= 0,085) между выборками из лиственниц Гмелина и Каяндера служат подтверждением существующей в литературе гипотезы, что они являются расами одного вида.
9. Разработанные нами маркеры могут успешно применяться для изучения не только лиственницы сибирской, но также лиственниц Гмелина и Каяндера. Дальнейший анализ уровней изменчивости природных и искусственных популяций лиственницы с помощью предложенных маркеров позволит получить количественные оценки их генетической структуры, таких как внутрипопуляционное аллельное и генное разнообразие, генетическая подразделенность и дифференциация на разных иерархических уровнях, степень инбридинга и др.
1. Биоразнообразие лиственниц Азиатской России / А. П. Абаимов [и др.]. — Новосибирск : ГЕО, 2010. — 160 с.
2. Santos-del-Blanco, L. Plasticity in reproduction and growth among 52 range¬wide populations of a Mediterranean conifer: adaptive responses to environmental stress / L. Santos-del-Blanco, et al.// Journal of Evolutionary Biology. — 2013. — V. 26. — I. 9. — P. 1912-1924. — doi: 10.1111/jeb.12187
3. Hamrick, J. L. Response of forest trees to global environmental changes / J. L. Hamrick // Forest Ecology and Management. — 2004. — V. 197. — I. 1-3. — P. 323-335. — doi: 10.1016/j.foreco.2004.05.023
4. Nechaeva, Yu. S. Nucleotide polymorphisms of candidate genes of adaptive significance in the ural populations of Larix sibirica Ledeb / Yu. S. Nechaeva,
A. A. Julanov, S. V. Boronnikova, Ya. V. Prishnivskaya // Russian Journal of Genetics. — V. 53. — I. 5. — P. 587-595.
5. Venkateswarlu, M. A first genetic linkage map of mulberry (Morus spp.) using RAPD, ISSR, and SSR markers and pseudotestcross mapping strategy / M. Venkateswarlu, et al. // Tree Genet Genomes. — 2006. — V.3. — I. 1. — P. 15¬
24.
6. Taheri, S. Mining and Development of Novel SSR Markers Using Next Generation Sequencing (NGS) Data in Plants / S. Taheri, et al. // Molecules. — 2018. — V. 23. — I. 2. — doi: 10.3390/molecules23020399
7. Varshney, R. K. Exciting journey of 10 years from genomes to fields and markets: Some success stories of genomics-assisted breeding in chickpea, pigeonpea and groundnut / R. K. Varshney // Plant Sci. — 2016. — V. 242. — P. 98-107. — doi: 10.1016/j.plantsci.2015.09.00
8. Tereba, A. Analysis of DNA profiles of ash (Fraxinus excelsior L.) to provide evidence of illegal logging / A. Tereba, et al. // Wood Science and Technology. — 2017. — V. 51. — I. 6. — P. 1377-1387.
9. Ng, K. K. S. Forensic timber identification: a case study of a CITES listed
species, Gonystylus bancanus (Thymelaeaceae) / K. K. S. Ng, et al. // Forensic Sci Int Genet. — 2016. — V. 23. — P. 197-209. — doi:10.1016/j.fsigen.2016.05.002.
10. Degen, B. Verifying the geographic origin of mahogany (Swietenia macrophylla King) with DNA-fingerprints / B. Degen, et al. // Forensic Science International: Genetics. — V. 7. — I. 1. — 2013. — P. 55-62.
11. Feng, Y. H. Development and characterization of SSR markers from Pinus massoniana and their transferability / Y. H. Feng, et al. // Genetics and Molecular Research. — 2014. — V.13. — I. 1. — P. 1508-1513. — doi.org/10.4238/2014.March.12.2.
12. Geng, Q. F. Development and Characterization of Polymorphic Microsatellite Markers (SSRs) for an Endemic Plant, Pseudolarix amabilis (Nelson) Rehd. (Pinaceae) / Q. F. Geng, J. Liu, L. Sun, H. Liu // Molecules. — 2015. — V. 20. — P. 2685-2692. — doi:10.3390/molecules20022685.
13. Uchiyama, K. Development of 32 EST-SSR markers for Abies firma (Pinaceae) and their transferability to related species / K. Uchiyama, et al. // Applications in Plant Sciences. — 2013. — V. 1. — I. 2. — doi:10.3732/apps.1200464.
14. Белоконь, М. М. Разработка микросателлитных маркёров сосны кедровой сибирской (Pinus sibirica Du Tour) по результатам полногеномного de novo секвенирования / М. М. Белоконь, и др. // Генетика. — 2016. — Т. 52. — №
12. — С. 1-10.
15. Chen, X. B. Yun-Hui Xie, Xiao-Mei Sun. Development and Characterization of Polymorphic Genic-SSR Markers in Larix kaempferi/ X. B. Chen, Y. H. Xie, X.
M. Sun // Molecules. — 2015. — V. 20. — P. 6060-6067. — doi:10.3390/molecules20046060.
16. Isoda, K. Isolation and Characterization of Microsatellite Loci from Larix kaempferi/ K. Isoda, and A. Watanabe // Mol. Ecol. — 2006. — V. 6. — P. 664-666.
17. Wagner, S. Two highly informative dinucleotide SSR multiplexes for the conifer Larix decidua (European larch) / S. Wagner, S. Gerber, R. J. Petit // Molecular Ecology Resources. — 2012. — V. 12. I. 4. — P. 717-725. — doi: 10.1111/j.1755-0998.2012.03139.x.
18. Zhang, G. Development and Characterization of Novel EST-SSRs from Larix gmelinii and Their Cross-Species Transferability / G. Zhang, et al. // Molecules.
— 2015. — V. 20. — P. 12469-12480. — doi:10.3390/molecules200712469.
19. Chen, C. Development and Characterization of Microsatellite Loci in Western Larch (Larix occidentalis Nutt.) / C. Chen, et al. // Mol. Ecol. Resour. — 2009. — V. 9. — P. 843-845.
20. Khasa, D. P. Isolation, Characterization, and Inheritance of Microsatellite Loci in Alpine Larch and Western Larch / D. P. Khasa, et al.// Genome. — 2000.— V. 43. — I. 3. — P. 439-448.
21. Орешкова, Н. В. Разработка микросателлитных маркеров лиственницы сибирской (Larix sibirica Ledeb.) на основе полногеномного de novo секвенирования / Н. В. Орешкова, и др. // Генетика. — 2017. — Т. 53. — №
11. — С. 1278-1284. — doi: 10.7868/S0016675817110091
22. Дылис, Н. В. Лиственница. / Н. В. Дылис — Москва: Леей. пром-сть, 1981. — 96 с.
23. Абаимов, В. Ф. Дендрология: учеб. пособие для студ. высш. учеб. заведений / В. Ф. Абаимов. — 3-е изд., перераб. — Москва : Издательский центр «Академия», 2009. —368 с.
24. Кашин В. И., Лиственничные леса Европейского севера России / В. И. Кашин, А. С. Козобродов. — Архангельск : Изд-во АФРГО РАН, 1994. — 215 с.
25. Крюссман, Г. Хвойные породы / Г. Крюссман ; пер. с нем. Н. Н. Непомнящего; под ред. Н. Б. Гроздовой. — Москва : Лесная промышленность, 1986. — 256 с.
26. Бобров, Е. Г. Лесообразующие хвойные СССР / Е. Г. Бобров. — Л.: Наука, 1987. — 189 с.
27. Козубов, Г. М. Современные голосеменные / Г. М. Козубов, E. H. Муратова. — Л. : Наука, 1986. — 192 с.
28. Милютин, Л. И. Биоразнообразие лиственниц России / Л. И. Милютин // Хвойные бореальной зоны. — 2003. — № 1. — С. 6-9.
29. Коропачинский, И. Ю. Древесные растения Азиатской России / И. Ю. Коропачинский, Т. Н. Встовская. — Новосибирск : Изд-во СО РАН «Гео», 2002. — 707 с.
30. Semerikov, V. L. Intra and Interspecific Allozyme Variability in Eurasian Larix Mil. L. species / V. L. Semerikov, L. F. Semerikov, M. Lascoux // Heredity. — 1999. — V. 82. — I. 2. — P. 193-204.
31. Gros-Louis, M. C. Species-diagnostic markers in Larix spp. based on RAPDs and nuclear, cpDNA, and mtDNA gene sequences, and their phylogenetic implications / M. C. Gros-Louis, et al. // Tree Genetics &Genomes. — 2005. — V. 1. — I. 2. — doi: 10.1007/s11295-005-0007-z.
32. Лесная энциклопедия / Гл. ред. Г. И. Воробьёв. — М.: Сов. энциклопедия, 1986. — Т. 2. — 631 с.
33. Кищенко, И. Т. Лиственница сибирская на западной границе ареала / И. Т. Кишенко // Принципы экологии. — 2015. — № 2. — С. 55-65. — doi: 10.15393/j1.art.2015.4142.
34. Тихомиров, Б. Н. Лиственничные леса Сибири и Дальнего Востока / Б. Н. Тихомиров, И. Ю. Коропачинский, Э. Н. Фалалеев. — М.; Л.: Гослесбумиздат, 1961. — 162 с.
35. Губанов, И. А. Дикорастущие полезные растения СССР / И. А. Губанов, И. Л. Крылова, В. Л. Тихонова ; отв. ред. Т. А. Работнов. — Москва : Мысль, 1976. — 360 с.
36. Лучник, 3. И. Интродукция деревьев и кустарников в Алтайском крае / 3. И. Лучник. — М.: Колос, 1970. — С. 68-70.
37. Уханов, В. В. Деревья и кустарники СССР. Дикорастущие, культивируемые и перспективные для интродукции / В. В. Уханов; ред. тома С. Я. Соколов и Б. К. Шишкин. — М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1949. — Т. I. Голосеменные. — 464 с.
38. Хлесткина, Е. К. Молекулярные маркеры в генетических исследованиях и в селекции / Е. К. Хлесткина // Вавиловский журнал генетики и селекции. — 2013. — Т. 17, № 4/2. — С. 1044-1054.
39. Матвеева, Т. В. Молекулярные маркеры для видоидентификации и филогенетики растений / Т. В. Матвеева [и др.] // Экол. генетика. — 2011. — Т. IX. — С. 32-43.
40. Калько Г. В. ДНК-маркеры для оценки генетических ресурсов ели и сосны / Г. В. Калько // Труды Санкт-Петербургского научно-исследовательского института лесного хозяйства. — 2015. — № 4. — С. 19-34.
41. Kaur, S. Simple Sequence Repeat Markers in Genetic Divergence and Marker- Assisted Selection of Rice Cultivars: A Review / S. Kaur, P. S. Panesar, M. B. Bera, V. Kaur // Critical Reviews in Food Science and Nutrition. — 2015. — V. 55. —I. 1. — P. 41-49. — doi:10.1080/10408398.2011.646363
42. Katti, M. V. Differential distribution of simple sequence repeats in eukaryotic genome sequences / M. V. Katti, P. K. Ranjekar, V. S. Gupta // Mol Biol Evol.
— 2001. — V. 18: — P. 1161-1167.
43. Rose, О. A threshold size for microsatellite expansion / O. Rose, D. Falush // Mol Biol Evol. — 1998. — V. 15. — P. 613-615.
44. Xu, X. The direction of microsatellite mutations is dependent upon allele length / X. Xu, M. Peng, Z. Fang // Nat Genet. — 2000. — V. 24: — P. 396-399.
45. Wang, X. R. Molecular Markers in Population Genetics of Forest Trees / X. R. Wang, A. E. Szmidt // Scandinavian Journal of Forest Research. — 2001. — V.
16. — № 3. — P. 199-220. — doi:10.1080/02827580118146
46. Wheeler, G. L. A review of the prevalence, utility, and caveats of using chloroplast simple sequence repeats for studies of plant biology / G. L. Wheeler, et al // Applications in Plant Sciences. — 2014. — V. 2. — I. 12. — doi:10.3732/apps.1400059
47. Захаров-Гезехус, И. А. Цитоплазматическая наследственность / И. А. Захаров-Гезехус // Вавиловский журнал генетики и селекции. — 2014. — Т. 18, № 1. — С. 93-102
48. Семериков, В. Л. Нуклеотидное разнообразие и неравновесие по сцеплению потенциально адаптивно-значимых генов Larix sibirica/ В. Л. Семериков, С. А. Семерикова, М. А. Полежаева // Генетика. — 2013. — Т.
49. — № 9. — С. 1055-1064
49. Semerikov, V. L. Southern montane populations did not contribute to the recolonization of West Siberian Plain by Siberian larch (Larix sibirica): a range-wide analysis of cytoplasmic markers / V. L. Semerikov, et al. / Mol Ecol. —
2013. — V. 22. — I. 19. — P.4958-71. — doi:10.1111/mec.12433
50. Polezhaeva, M. A. Cytoplasmic DNA variation and biogeography of Larix Mill. in northeast Asia / M. A. Polezhaeva, et al. // Mol Ecol. — 2010. — V. 19. — I.
6. — P. 1239-52. — doi:10.1111/j.1365-294X.2010.04552.x
51. Oreshkova, N. V. Genetic Diversity, Population Structure, and Differentiation of Siberian Larch, Gmelin Larch, and Cajander Larch on SSR-Marker Data / N. V. Oreshkova, M. M. Belokon, S. Jamiyansuren // Russian Journal of Genetics. — 2013. — V. 49. — N. 2. — P. 178-186
52. Babushkinaa, E. A. The effect of individual genetic heterozygosity on general homeostasis, heterosis and resilience in Siberian larch (Larix sibirica Ledeb.) using dendrochronology and microsatellite loci genotyping / E. A. Babushkinaa, et al. // Dendrochronologia. — 2016. — V. 38. — P. 26-37.
53. Rassman, K. Isolation of simple sequence loci for use in polymerase chain reaction-based DNA fingerprinting / K. Rassman, C. Schlotterer, D. Tautz // Electrophoresis. — 1991. — V. 12. — P. 113-118.
54. Glenn, T. C. Isolating microsatellite DNA loci / T. C. Glenn, N. A. Schable // Method Enzymol. — 2005. — V. 395. — P.202-222.
55. Kalia, R. K. Microsatellite markers: an overview of the recent progress in plants / R. K. Kalia, et al. // Euphytica. — 2011. — V. 177. — P.309-334.
56. Senan, S. Methods for development of microsatellite markers: an overview / S. Senan, D. Kizhakayil, B. Sasikumar, T. E. Sheeja. // Not Sci Biol. — 2014. —V.
6. — P.1-13.
57. Holmen, J. Cross-species amplification of 36 cyprinid microsatellite loci in Phoxinus phoxinus (L.) and Scardinius erythrophthalmus (L.) / J. Holmen, L. A. Vollestad K. S. Jakobsen, C. R. Primmer // BMC Res Notes. — 2009. — V. 2. — P. 248.
58. Karam, M. J. Genomic exploration and molecular marker development in a large and complex conifer genome using RADseq and mRNAseq / M. J. Karam et. al. // Mol Ecol Resour. — 2015 — V.15. — I. 3. — P. 601-12. — doi: 10.1111/1755-0998.12329
59. Delmas, C. E. Isolation and characterization of microsatellite loci in Rhododendron ferrugineum (Ericaceae) using pyrosequencing technology / C. E. Delmas, E. Lhuillier, A. Pornon, N. Escaravage // American Journal of Botany. — 2011 — V. 98. — I 5. — P. 120-2. — doi: 10.3732/ajb.1000533
60. Zalapa, J. E. Using next-generation sequencing approaches to isolate simple sequence repeat (SSR) loci in the plant sciences/ J. E. Zalapa, et al. // American Journal of Botany. — 2012. — V. 99. — I. 2. — P. 193-208. — doi:10.3732/ajb.1100394
61. Benson, G. Tandem repeats finder: a program to analyze DNA sequences / G. Benson // Nucleic Acids Res. — 1999. — V. 27. — P. 573-580.
62. Thiel, T. Exploiting EST databases for the development and characterization of gene-derived SSR-markers in barley (Hordeum vulgare L.) / T. Thiel, W. Michalek, R. Varshney, A. Graner // Theor. Appl. Genet. — 2003. — V. 106. — P. 411-422. — doi:10.1007/s00122-002-1031-0.
63. Kofler, R. SciRoKo: a new tool for whole genome microsatellite search and investigation / R. Kofler, C. Schlotterer, T. Lelley // Bioinformatics. — 2007. — V. 23. — P. 1683-1685. — doi: 10.1093/bioinformatics/btm157.
64. da Maia, L. C. SSR locator: tool for simple sequence repeat discovery integrated with primer design and PCR simulation / L. C. da Maia, et al. // Int. J. Plant Genomics. — 2008. —P. 412-696. — doi: 10.1155/2008/412696.
65. Duran, C. Predicting polymorphic EST-SSRs in silico/ C. Duran, et al. // Mol. Ecol. Resour. — 2013. — V.13. — P. 538-545. — doi: 10.1111/1755-0998.12078.
66. Wang, X. GMATo: a novel tool for the identification and analysis of microsatellites in large genomes / X. Wang, P. Lu, Z. Luo // Bioinformation. — 2013. —V. 9. — P. 541-544. — doi: 10.6026/97320630009541
67. Jewell, E. SSR primer and SSR taxonomy tree: Biome SSR discovery / E. Jewell, A. Robinson, D. Savage // Nucl. Acids Res. — 2006. — V. 34. — P. 656-659.
68. Asif, M. High resolution metaphor agarose gel electrophoresis for genotyping with microsatellite markers / M. Asif, M. Rahman, J. Mirza // Pak. J. Agri. Sci.
— 2008. — V. 45. — I. 1. — P. 75-79.
69. Devey, M. E. A Genetic Linkage Map for Pinus radiate Based on RFLP, RAPD, and Microsatellite Markers / M. E. Devey, et al. // Theor. Appl. Genet. — 1996. — V. 92. — I. 6. — P. 673-679.
70. Guries, R. P. Gene Diversity and Population Structure in Pitch Pine (Pinus ridiga Mill.) / R. P. Guries, F. T. Ledig // Evolution. — 1982. — V. 36. — P. 387-402.
71. Nei, M. Genetic Distance between Populations / M. Nei // Am. Nat. — 1972. — V. 106. — P. 283-291.
72. Peakall, R. GenAlEx 6.5: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research - an update / R. Peakall, P. Smouse // Bioinformatics.
— 2012. — V. 28. — P.2537-9.
73. Ларионова, А. Я. Генетическое разнообразие и дифференциация популяции листвненницы Гмелина в Эвенкии (Средняя Сибирь) / А. Я. Ларионова, Н. В. Яхнева (Орешкова), А. П. Абаимов // Генетика. — 2004. — Т. 40. — № 9. — С. 1370-1377.
74. Oreshkova, N. V. Genetic Diversity, Structure and Differentiation of Gmelin Larch (Larix gmelinii (Rupr.) Rupr.) Populations from Central Evenkia and Eastern Zabaikalje / N. V. Oreshkova, A. Ya. Larionova, L. I. Milyutin, A. P. Abaimov // Eurasian J. Forest Res. — 2006. — V. 9-1. — P. 1-8.
75. Knowles, P. Significant levels of self-fertilization in natural populations of tamarack / P. Knowles, G. R. Furnier, M. A. Aleksiuk, D. J. Perry // Canadian Journal of Botany. — 1987. — V. 65. — I. 6. — P: 1087-1091.
76. Яхнева (Орешкова), Н. В. Генетико-таксономический анализ популяций лиственницы Гмелина (Larix gtmelinii (Rupr.) Rupr.) : дис. ... канд. биол. наук : 03.00.05 / Яхнева (Орешкова) Наталья Викторовна. — Красноярск,
2004. — 157с.
77. Орешкова, Н. В. Генетическая и фенотипическая изменчивость лиственницы Каяндера (Larix cajanderi Mayr.) на севере российского Дальнего Востока / Н. В. Орешкова, В. П. Петрова, Н. В. Синельникова // Сибирский экологический журнал. — 2015. — № 1. — С. 13-27.