📄Работа №197773

Тема: Поиск генов ферментов, участвующих в биодеградации фракций нефти (аренов и алканов) и органических загрязнителей (нитрофенол, полихлорбифенил) в штаммах консорциума микроорганизмов «Абориген»

📝
Тип работы Магистерская диссертация
📚
Предмет биология
📄
Объем: 65 листов
📅
Год: 2023
👁️
Просмотров: 33
Не подходит эта работа?
Закажите новую по вашим требованиям
Узнать цену на написание
ℹ️ Настоящий учебно-методический информационный материал размещён в ознакомительных и исследовательских целях и представляет собой пример учебного исследования. Не является готовым научным трудом и требует самостоятельной переработки.

📋 Содержание

ВВЕДЕНИЕ 5
1 Обзор литературы 7
1.1 Источники загрязнений почв и водоёмов 7
1.1.1 Нефть: основные фракции и их состав 7
1.1.2 Нефть как органический загрязнитель 8
1.1.3 Органические загрязнители почв и водоемов, сопутствующие
деятельности человека 9
1.2 Использование потенциала микроорганизмов для очистки почв и водоёмов ....
10
1.2.1 Деградация алканов микроорганизмами 12
1.2.2 Деградация нафтенов микроорганизмами 15
1.2.3 Деградация аренов микроорганизмами 17
1.2.4 Деградация ПАУ микроорганизмами 23
1.2.5 Деградация фенантрена и антрацена микроорганизмами 26
1.2.6 Деградация бензпирена микроорганизмами 27
1.3 Гены ферментов, участвующих в деградации различных соединений нефти ....
28
1.3.1 Гены ферментов, участвующих в деградации алканов 29
1.3.2 Гены ферментов, участвующих в деградации моноароматических
соединений 32
1.3.3 Гены ферментов, участвующих в деградации ПАУ 35
1.4 Применение штаммов микроорганизмов для ремедиации почвы 37
2 Материалы и методы 39
2.1 Получение образцов плазмидной ДНК 39
2.2 Получение образцов хромосомной ДНК 39
2.3 Выделение образцов хромосомной ДНК из геля 39
2.4 ПЦР-анализ штаммов на наличие генов биодеградации углеводородов
нефти 40
2.5 Электрофорез образцов ДНК 40
3 Результаты и их обсуждение 41
3.1 Получение чистых фракций штаммов 41
3.2 Поиск ферментов для анализа деградации фракций нефти 42
3.3 Поиск генов ферментов, участвующих в деградации органических
загрязнителей в штаммах консорциума «Абориген» 46
ВЫВОДЫ 52
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ 53

📖 Введение

Экологический ущерб от загрязнения почв углеводородами весьма велик - от снижения качества и продуктивности почв до вывода земель из сельскохозяйственного оборота. Создаётся опасность загрязнения подземных и поверхностных вод в результате попадания нефтепродуктов в водоносные горизонты, реки и водоёмы. Нефть и продукты ее переработки, многие из которых чрезвычайно токсичны, канцерогенны и персистентны, то есть разрушаются крайне медленно, в частности, в Сибири с ее холодным климатом. Известно, что биодеградация нефти и нефтепродуктов в почве происходит при активном участии почвенных микроорганизмов, способных использовать соединения нефти в качестве источника энергии. Тем не менее, когда концентрация загрязнителя в почве относительно высока, как происходит при разливах, естественной микрофлоре необходимо время для адаптации к ксенобиотику. Ауторемедиация нефтезагрязненных почв может длиться до 30 лет, в северных регионах период декструкции составляет 50 и более лет, а токсические свойства нефти исчезают через 10-12 лет после рекультивационных работ [Неустроев, 2015]. Чтобы ускорить время биоремедиации и/или улучшить её качество, т.е. достигнуть более низких значений остаточной концентрации загрязнителя применяют различные методы биоремедиации, в том числе микробные препараты содержащие как отдельные штаммы нефтедеструкторов, так и целые консорциумы, выделенные из естественной среды. Одним из таких препаратов является «Абориген» производства «ООО Дарвин» содержащий штаммы микроорганизмов, выделенных из природных естественных ландшафтов с застарелыми разливами на нефтяных месторождениях Ханты-Мансийского и Ямало-Ненецкого автономного округа. На базе Национального Исследовательского Томского Государственного университета и научно-производственной лаборатории компании Дарвин проведены лабораторные исследования, подтвердившие высокую эффективность биопрепарата. Однако пока неизвестно какие именно ферменты и кодирующие их гены ответственны за эту способность в штаммах консорциума «Абориген». Выделение генов, ассоциированы^ с деградацией различных соединений нефти и других органических загрязнителей может помочь в улучшении состава микробного препарата путем получения одного или двух многофункциональных генноинженерных штаммов с множественной активностью.
Целью данной магистерской диссертации является поиск генов ферментов, участвующих в биодеградации фракций нефти (аренов и алканов) и органических загрязнителей (нитрофенол, полихлорбифенил) в штаммах консорциума микроорганизмов «Абориген».
Для выполнения поставленной цели были выделены следующие задачи:
1. Наработка клеточной массы штаммов Pseudomonas sp. 2Н, Bacillus subtiles B10, Acinetobacter calcoaceticus B1318 консорциума «Абориген», ответственных за биодеградацию нефти для получения чистой хромосомной и плазмидной ДНК.
2. Выделение чистой хромосомной и плазмидной ДНК из штаммов конорциума «Абориген».
3. На основе литературных данных подбор оптимальных праймеров для поиска генов ферментов, участвующих в деградации аренов и алканов, а также органических загрязнителей.
4. Анализ наличия нуклеотидной последовательности ферментов участвующих в деградации аренов и алканов CatA, NahH, AlkBв хромосомной и плазмидной ДНК, выделенных из штаммов консорциума «Абориген» Pseudomonas sp. 2Н, Bacillus subtiles B10, Acinetobacter calcoaceticus B1318.
5. Анализ наличия нуклеотидной последовательности ферментов участвующих в биодеградации органических загрязнителей NpcB, BphA4в хромосомной и плазмидной ДНК, из штаммов консорциума «Абориген» Pseudomonas sp. 2Н, Bacillus subtiles B10, Acinetobacter calcoaceticus B1318.

Возникли сложности?

Нужна качественная помощь преподавателя?

👨‍🎓 Помощь в написании

✅ Заключение

1. В результате культивирования штаммов биодеградации углеводородов на селективной среде и последующих методов выделения ДНК и очистки с помощью гель- электрофореза получены чистые фракции хромосомной и плазмидной ДНК штаммов Pseudomonas sp. 2Н, Bacillus subtiles B10, Acinetobacter calcoaceticus B1318 консорциума «Абориген».
2. Методом ПЦР выявлены гены ферментов, участвующих в деградации нефти (аренов и алканов) у штаммов 2Н, B10, B1318 консорциума «Абориген». Ген деградации алифатических углеводородов (AlkB)обнаружен в хромосомной ДНК всех исследуемых штаммов. В плазмидной ДНК штаммов B10, 2H и В1318 AlkBне выявлен. Ген деградации ароматических соединений по орто-механизму расщепления кольца (катехол-1,2- диоксигеназа) обнаружен как в плазмидной, так и в хромосомной ДНК всех трёх штаммов. Ген деградации ароматических соединений по мета-механизму расщепления кольца (катехол-2,3-диоксигеназа) обнаружен в штаммах В1318 и В10, только в хромосомной ДНК.
3. Выявлены гены ферментов, участвующих в деградации органических загрязнителей в штаммах 2Н, B10, B1318 консорциума «Абориген» . Во всех исследуемых штаммах обнаружен ген окисления п-нитрофенола. Ген бифенил-2,3-диоксигеназы (BphA4)по результатам ПЦР найден в хромосомной ДНК штаммов B10 и 2H и плазмидной ДНК штаммов B1318 и В10.

Нужна своя уникальная работа?
Срочная разработка под ваши требования
Рассчитать стоимость
ИЛИ

📕 Список литературы

1. Auger R. L. Effect of nonionic surfactant addition on bacterial metabolism of naphthalene: Assessment of toxicity and overflow metabolism potential/ R. L.Auger, A. M.Jacobson, M. M.Domach //Journal of hazardous materials. - 1995. - Т. 43. - №. 3. - С. 263¬272.
2. Baboshin M. Conversion of polycyclic aromatic hydrocarbons by Sphingomonas sp. VKM B-2434. / M. Baboshin, V. Akimov, B. Baskunov, T.L. Born, S.U. Khan, L. Golovleva // Biodegradation - 2008 - V.4 - p.567-576.
3. Balashova N.V. Purification and characterization of a salicylate hydroxylase involved in 1-hydroxy-2-naphthoic acid hydroxylation from the naphthalene and phenanthrene-degrading bacterial strain Pseudomonas putida BS202-P1/ N.V. Balashova, A. Stolz, H.J. Knackmuss, I.A. Kosheleva, A.V. Naumov, A.M. Boronin // Biodegradation. - 2001 - V.3 - p.179-188.
4. Baptist J.N. Hydrocarbon oxidation by a bacterial enzyme system. I. Products of octane oxidation. / J.N.Baptist, R.K.Gholston, M. J.Coon // Biochim Biophys Acta. - 1963 - V.69-p.40-47.
5. Barbe V. Unique features revealed by the genome sequence of Acinetobacter sp. ADP1, a versatile and naturally transformation competent bacterium / V. Barbe, D. Vallenet, N. Fonknechten, A. Kreimeyer, S. Oztas, L. Labarre, S. Cruveiller, C. Robert, S. Duprat, P. Wincker, L.N. Ornston, J. Weissenbach, P. Marliere, G.N. Cohen, C.Mddigue // Nucleic Acids Res. - 2004 - V19-p.5766-5779.
6. Bidja Abena M.T. Microbial diversity changes and enrichment of potential petroleum hydrocarbon degraders in crude oil-, diesel-, and gasoline-contaminated soil / M.T. Bidja Abena, G. Chen, Z. Chen, X. Zheng , S. Li , T. Li, W. Zhong. // Biotech. - 2020 -V.2- p.42.
7. Cao B. Biodegradation of aromatic compounds: current status and opportunities for biomolecular approaches/ B. Cao, K. Nagarajan, K.C. Loh // Appl Microbiol Biotechnol. - 2009 - V.85 - p.207-228.
8. Cdbron A. Real-Time PCR quantification of PAH-ring hydroxylating dioxygenase (PAH-RHDalpha) genes from Gram positive and Gram negative bacteria in soil and sediment samples/ A. Cdbron, M.P. Norini, T. Beguiristain, C.Leyval // J Microbiol Methods. - 2008 - V.73 - p.148-59.
9. Cheng Q. Genetic analysis of a gene cluster for cyclohexanol oxidation in Acinetobacter sp. Strain SE19 by in vitro transposition / Q. Cheng, S.M.Thomas, K. Kostichka,
J.R. Valentine, V. Nagarajan // J Bacteriol. - 2000. - V.182.-p.4744-4751.
10. Copley SD. Evolution of a metabolic pathway for degradation of a toxic xenobiotic: the patchwork approach / S.D. Copley // Trends Biochem Sci. - 2000 - V.25-p.261- 265.
11. Dean-Ross D. Metabolism of anthracene by a Rhodococcus species / D.Dean- Ross, J.D. Moody, J.P. Freeman, D.R. Doerge, C.E. Cerniglia // FEMS Microbiol Lett. - 2001 - V.204-p.205-211.
12. Dennis J. J. Complete sequence and genetic organization of pDTG1, the 83 kilobase naphthalene degradation plasmid from Pseudomonas putida strain NCIB 9816-4/ J.
J. Dennis, G. J. Zylstra //Journal of molecular biology. - 2004. - V. 341. - №. 3. - С. 753-768.
13. Denome S.A. Metabolism of dibenzothiophene and naphthalene in Pseudomonas strains: complete DNA sequence of an upper naphthalene catabolic pathway/ S.A. Denome, D.C. Stanley, E.S. Olson, K.D. Young // J Bacteriol. - 1993 -V.175-p.6890-6901.
14. Ecker S. et al. Catabolism of 2, 6-dinitrophenol by Alcaligenes eutrophus JMP 134 and JMP 222 //Archives of microbiology. - 1992. - V. 158. - p. 149-154.
15. Feng, L. Genome and proteome of long-chain alkane degrading Geobacillus thermodenitrificans NG80-2 isolated from a deep-subsurface oil reservoir / L. Feng, W.Wang, J. Cheng, Y. Ren, G. Zhao, C. Gao et al. // Proc Natl Acad Sci USA - 2007 - V.104 - p.5602¬5607.
16. Fuenmayor S.L. A gene cluster encoding steps in conversion of naphthalene to gentisate in Pseudomonas sp. strain U2/ S.L. Fuenmayor, M. Wild, A.L. Boyes, P.A. Williams - J Bacteriol. - 1998 - V180-p.2522-2530.
17. Funhoff E.G. CYP153A6, a soluble P450 oxygenase catalyzing terminal-alkane- hydroxylation / E.G. Funhoff, U. Bauer, I. Garcia-Rubio, B. Witholt, J.B, van Beilen // J Bacteriol - 2006 - V.188 - p.5220-5227.
18. Furukawa K. Cloning of a gene cluster encoding biphenyl and chlorobiphenyl degradation in Pseudomonas pseudoalcaligenes/ K. Furukawa, T. Miyazaki // J Bacteriol. - 1986 - V.166-p.392-398.
19. Furukawa K. Microbial degradation of polychlorinated biphenyls: biochemical and molecular features/ K. Furukawa, H. Fujihara // J Biosci Bioeng. - 2008 - V.105-p.433-449.
20. George, K. W. Bacterial Strategies for Growth on Aromatic Compounds / George,
K. W // Advances in Applied Microbiology - 2011 - V. 74 - p.1-33.
21. Gianfreda L. Laccases: a useful group of oxidoreductive enzymes/ L.Gianfreda, F.Xu, J. M. Bollag //Bioremediation journal. - 1999. - V. 3. - №. 1. - p. 1-26.
22. Gibson D.T. Formation of (+)-cis-2,3-dihydroxy-1-methylcyclohexa-4,6-diene from toluene by Pseudomonas putida / D.T. Gibson, M. Hensley, H.Yoshioka, T.J. Mabry// Biochemistry - 1970 - V.9-p.1626-1630.
23. Gibson, D.T. Microbial Degradation of Aromatic Hydrocarbons / D.T. Gibson, and V.Subramanian // Marcel Dekker - 1984 - New York - p.181-252.
24. Goyal A.K. Genetics of naphthalene and phenanthrene degradation by Comamonas testosterone/ A.K. Goyal, G.J. Zylstra // J Ind Microbiol Biotechnol - 1997 - V.19- p.401-407.
25. Goyal A.K. Molecular cloning of novel genes for polycyclic aromatic hydrocarbon degradation from Comamonas testosteroni GZ39. / A.K. Goyal, G.J. Zylstra //Appl Environ Microbiol. - 1996 - V.62-p.230-236.
26. Groenewegen P.E. Novel degradative pathway of 4-nitrobenzoate in Comamonas acidovorans NBA-10 / P.E.Groenewegen, P. Breeuwer, J.M. van Helvoort, A.A. Langenhoff, F.P. de Vries, J.A. de Bont // J Gen Microbiol. - 1992 - V.138-p.1599-1605.
27. Habe H. Genetics of polycyclic aromatic hydrocarbon metabolism in diverse aerobic bacteria / H.Habe, T.Omori //Bioscience, biotechnology, and biochemistry. - 2003. - V. 67. - №. 2. - p. 225-243.
28. Haigler B. E. Degradation of 1, 2-dichlorobenzene by a Pseudomonas sp./ B.E. Haigler, S. F. Nishino, J. C. Spain //Applied and Environmental Microbiology. - 1988. - V. 54. - №. 2. - p. 294-301.
29. Hara A. Cloning and functional analysis of AlkB genes in Alcanivorax borkumensis SK2/ A.Hara, S.H.Baik, K.Syutsubo, N.Misawa, T.H.Smits, J.B. van Beilen, S.Harayama //Environ Microbiol. - 2004 - V.3-p.191-197.
30. Harayama S. Characterization of five genes in the upper-pathway operon of TOL plasmid pWW0 from Pseudomonasputida and identification of the gene products/ S.Harayama, M. Rekik, M. Wubbolts, K. Rose, R.A. Leppik, K.N. Timmis // J Bacteriol. - 1989 - V.171- p.5048-5055.
31. Harwood, C. S. The P-ketoadipate pathway and the biology of self-identity / C. S. Harwood, R. E. Parales // Annual Review of Microbiology - 1996 - V.50 - p.553-590.
32. Hirose J. Biphenyl/PCB Degrading bph Genes of Ten Bacterial Strains Isolated from Biphenyl-Contaminated Soil in Kitakyushu, Japan: Comparative and Dynamic Features as Integrative Conjugative Elements (ICEs)/ J. Hirose, H. Fujihara, T. Watanabe, N. Kimura, H. Suenaga, T. Futagami, M. Goto, A. Suyama, K.Furukawa // Genes - 2019 - V.10 - p. 404.
33. Jakoncic J. The catalytic pocket of the ring-hydroxylating dioxygenase from Sphingomonas CHY-1/ J. Jakoncic, Y. Jouanneau, C. Meyer, V. Stojanoff // Biochem Biophys Res Commun. - 2007 - V.352-p.861-866.
34. Jouanneau Y. Purification and characterization of a three-component salicylate 1- hydroxylase from Sphingomonas sp. strain CHY-1 / Y. Jouanneau, J. Micoud, C. Meyer // Appl Environ Microbiol. - 2007 - V.73-p.7515-7521.
35. Kim S.I. Proteome analysis of Pseudomonas sp. K82 biodegradation pathways/ S.I. Kim, J.Y. Kim, S.-H. Yun, J.H. Kim, S.-H. Leem, C.-H. Lee// Proteomics - 2004 - V4 - p.3610-3621.
36. Kim Y.H. Analysis of aromatic catabolic pathways in Pseudomonas putida KT 2440 using a combined proteomic approach: 2-DE/MS and cleavable isotope-coded affinity tag analysis / Y.H. Kim, K .Cho, S.H. Yun, J.Y. Kim, K.H. Kwon, J.S. Yoo, S.I. Kim // Proteomics - 2006 - V.6-p.1301-1318.
37. Kitagawa W. A novel p-nitrophenol degradation gene cluster from a gram¬positive bacterium, Rhodococcus opacus SAO101/ W. Kitagawa, N. Kimura, Y. Kamagata// J Bacteriol - 2004 - V.186-p.4894-4902.
38. Kiyohara H. Cloning and characterization of a chromosomal gene cluster, pah, that encodes the upper pathway for phenanthrene and naphthalene utilization by Pseudomonas putida OUS82/ H. Kiyohara, S.Torigoe, N. Kaida, T. Asaki, T. Iida, H. Hayashi, N.Takizawa // J Bacteriol. - 1994 - V.176-p.2439-2443.
39. Laczi K. New Frontiers of Anaerobic Hydrocarbon Biodegradation in the Multi- Omics Era/ K.Laczi, A. Erdeind Kis, A. Szilagyi, N. Bounedjoum, A. Bodor, G.E. Vincze, T. Kovacs, G. Rakhely, K. Perei// Front. Microbiol. - 2020 - V16.-p.590-595.
40. Lenke H. Initial hydrogenation during catabolism of picric acid by Rhodococcus erythropolis HL 24-2 / H.Lenke, H. J. Knackmuss //Applied and Environmental Microbiology. - 1992. - V. 58. - №. 9. - p. 2933-2937.
41. Li, L. Crystal structure of long-chain alkane monooxygenase (LadA) in complex with coenzyme FMN: unveiling the long-chain alkane hydroxylase/ L.Li, X. Liu, W. Yang, F. Xu, W. Wang, L. Feng et al.// J Mol Biol - 2008 - V.376 - p.453-465.
42. Lily M.K. Degradation of Benzo [a] Pyrene by a novel strain Bacillus subtilis BMT4i (MTCC 9447)/ M.K. Lily, A. Bahuguna, K. Dangwal, V.Garg // Braz J Microbiol. - 2009- V.40-p.884-892.
43. Lloyd-Jones, G. Analysis of catabolic genes for naphthalene and phenanthrene degradation in contaminated New Zealand soils/ G.Lloyd-Jones, A. D.Laurie, D. W.Hunter, & R. Fraser// FEMS Microbiology Ecology - 1999 - V.29 - p.69-79.
44. Lu, X. Biodegradation of naphthalene by enriched marine denitrifying bacteria/
X. Lu , T.Zhang, H. H. P. Fang, K. M.Leung, & G.Zhang, // International Biodeterioration & Biodegradation - 2011 - V.65 - p.204-211.
45. Maeng, J.H. Diversity of dioxygenases that catalyze the first step of oxidation of long-chain n-alkanes in Acinetobacter sp. strain M-1 / J.H Maeng, Y. Sakai , T. Ishige, Y.Tani and N. Kato // FEMS Microbiol Lett - 1996 - V. 141 - p.177-182.
46. Marchant R. The degradation of n-hexadecane in soil by thermophilic geobacilli / R. Marchant, F.H. Sharkey, I.M. Banat, T.J. Rahman, A. Perfumo //FEMS Microbiol Ecol. - 2006 - V.56-p.44-54.
47. McKew B. A. Determining the identity and roles of oil-metabolizing marine bacteria from the Thames estuary / B. A. McKew; F.Coulon; A. M.Osborn; K.N. Timmis; T. J. McGenity// UK. Environ Microbiol. - 2007 - V.9-p.165-176.
48. Moody J.D. Degradation of phenanthrene and anthracene by cell suspensions of Mycobacterium sp. strain PYR-1. / J.D. Moody, J.P. Freeman, D.R. Doerge, C.E. Cerniglia //Appl Environ Microbiol. - 2001 - V.67-p.1476-1483.
49. Nakai C. Cloning, DNA sequencing, and amino acid sequencing of catechol 1,2- dioxygenases (pyrocatechase) from Pseudomonas putida mt-2 and Pseudomonas arvilla C-1/ C. Nakai, H. Uyeyama, H. Kagamiyama, T. Nakazawa, S. Inouye, F. Kishi, A. Nakazawa, M. Nozaki //Arch Biochem Biophys. - 1995 - V.321-p.353-362.
50. Nie Y. Diverse alkane hydroxylase genes in microorganisms and environments/
Y. Nie, C.Q. Chi, H. Fang, J.L. Liang, S.L. Lu, G.L. Lai, Y.Q. Tang, X.L. Wu //Sci Rep. - 2014 - V.15-p.4968.
51. Nie Y. Two novel alkane hydroxylase-rubredoxin fusion genes isolated from a Dietzia bacterium and the functions of fused rubredoxin domains in long-chain n-alkane degradation/ Y. Nie, J. Liang, H. Fang, Y.Q. Tang, X.L. Wu //Appl Environ Microbiol - 2011 - V.77-p.7279-7288.
52. Ohtsubo Y. Conjugal transfer of polychlorinated biphenyl/biphenyl degradation genes in Acidovorax sp. strain KKS102, which are located on an integrative and conjugative element/ Y. Ohtsubo, Y. Ishibashi, H. Naganawa, S. Hirokawa, S. Atobe, Y. Nagata, M.Tsuda //J Bacteriol. - 2012 - V.192-p.4237-4248.
53. Olsen R.H. A novel toluene-3-monooxygenase pathway cloned from Pseudomonas pickettii PKO1/ R.H. Olsen, J.J.Kukor, B. Kaphammer //Bacteriol. - 1994 - V.176-p.3749-3756.
54. Ostrem Loss E.M. Bioremediation and microbial metabolism of benzo(a)pyrene /Ostrem Loss E.M. and Yu J.-H. // Molecular Microbiology - 2018 - V.109 - p.433-444.
55. Parales R.E. Aspartate 205 in the catalytic domain of naphthalene dioxygenase is essential for activity / R.E. Parales, J.V. Parales, D.T. Gibson // J Bacteriol. - 1999 - V.182- p.1831-1837.
56. Phale P.S. Metabolic Diversity in Bacterial Degradation of Aromatic Compounds/ P.S. Phale, A. Basu, P.D. Majhi, J. Deveryshetty, C. Vamsee-Krishna, R. Shrivastava // OMICS: A Journal of Integrative Biology - 2007 - V.11 - p.252-279.
57. Procopio L. Transcriptional profiling of genes involved in n-hexadecane compounds assimilation in the hydrocarbon degrading Dietzia cinnamea P4 strain/ L. Procopio, M. de Cassia Pereira e Silva, J.D. van Elsas, L. Seldin // Braz J Microbiol. - 2013 - V.44-p.633- 641.
58. R.Boopathy Trinitrotoluene (TNT) as a sole nitrogen source for a sulfate-reducing bacterium Desulfovibrio sp.(B strain) isolated from an anaerobic digester / R.Boopathy, C. F. Kulpa //Current microbiology. - 1992. - V. 25. - p. 235-241.
59. Ramos J.L. Regulatory circuits controlling transcription of TOL plasmid operon encoding meta-cleavage pathway for degradation of alkylbenzoates by Pseudomonas / J.L. Ramos, N. Mermod, K.N.Timmis //Mol Microbiol. - 1987 - V.3 - p.293-300.
60. Ratajczak A. Alkane hydroxylase from Acinetobacter sp. strain ADP1 is encoded by alkM and belongs to a new family of bacterial integral-membrane hydrocarbon hydroxylases/ A. Ratajczak, W. Geissdorfer, W.Hillen // Appl Environ Microbiol. - 1998 - V.64 - p.1175¬1179.
61. Raymond D. G. M. Microbial metabolism and cometabolism of nitrophenols / D. G. M.Raymond, M. Alexander//Pesticide Biochemistry and Physiology. - 1971. - V. 1. - №. 2. - p. 123-130.
62. Reineke W. Development of hybrid strains for the mineralization of chloroaromatics by patchwork assembly/ W. Reineke //Annu Rev Microbiol. - 1998 - V.52 -p. 287-331.
63. Rentz, J. A. Benzo [a] pyrene degradation by Sphingomonas yanoikuyae JAR02/ J. A. Rentz, P. J.Alvarez & J. L.Schnoor, // Environmental pollution - 2009 - 151(3), 669-677.
64. Rojo F. Degradation of alkanes by bacteria // Environ Microbiol. - 2009 - V.11- p.2477-2490.
65. Ronchel M.C. Retrotransfer of DNA in the rhizosphere/ M.C. Ronchel, M.A. Ramos-Diaz, J.L. Ramos // Environ Microbiol. - 2000 - V.3-p.319-323.
66. Ronson C.W. Symbiosis islands/ C.W. Ronson, M.F. Hynes, J.P. Ramsay, and J.T. Sullivan // Brenner's Encyclopedia of Genetics (2nd edition) - 2013 - Elsevier publishers - pp 598-600.
67. Saito A. A novel phenanthrene dioxygenase from Nocardioides sp. strain KP7: expression in Escherichia coli / A.Saito, T.Iwabuchi, S. Harayama //Journal of Bacteriology. - 2000. - V. 182. - №. 8. - p. 2134-2141.
68. Sakshi. A comprehensive review of metabolic and genomic aspects of PAH- degradation/ Sakshi, A.K. Haritash, // Arch Microbiol - 2022 - V.202 - p.2033-2058.
69. Salamanca, D. Novel cyclohexane monooxygenase from Acidovorax sp. CHX100/ D. Salamanca, R. Karande, A. Schmid, et al. // Appl Microbiol Biotechnol - 2015 - V.99 - p.6889-6897.
70. Seo J.S. Bacterial degradation of aromatic compounds / J.S. Seo, Y.S.Keum, Q.X. Li // Int J Environ Res Public Health. - 2009 - V.6-p.278-309.
71. Shaw J.P. Purification and characterisation of TOL plasmid-encoded benzyl alcohol dehydrogenase and benzaldehyde dehydrogenase of Pseudomonas putida/ J.P.Shaw, S.Harayama // Eur J Biochem. - 1990 - V.191-p.705-714.
72. Shields M.S. Novel pathway of toluene catabolism in the trichloroethylene-degrading bacterium g4 / M.S. Shields, S.O. Montgomery, P.J. Chapman, S.M. Cuskey, P.H. Pritchard // Appl Environ Microbiol. - 1989 - V.55-p.1624-1629.
73. Shields M.S. TOM, a new aromatic degradative plasmid from Burkholderia (Pseudomonas) cepacia G4/ M.S. Shields, M.J. Reagin, R.R.Gerger, R.Campbell, C. Somerville//Appl Environ Microbiol. - 1995 - V.61-p.1352-1356.
74. Shimizu S. Characterization of the 450-kb linear plasmid in a polychlorinated biphenyl degrader, Rhodococcus sp. strain RHA1/ S. Shimizu, H. Kobayashi, E. Masai, M.Fukuda //Appl Environ Microbiol. - 2001 - V.67-2021-2028.
75. Shrivastava R. Purification and characterization of benzyl alcohol-and benzaldehyde-dehydrogenase from Pseudomonas putida CSV86 / R. Shrivastava, A. Basu, P. S. Phale //Archives of microbiology. - 2011. - V. 193. - p. 553-563.
76. Shrivastava, R. Biodegradation of Mono-aromatic Compounds by Bacteria / R. Shrivastava, P.S. Phale // Microorganisms in Environmental Management - 2012 - V.55 - p.97-105.
77. Simon M.J. Sequences of genes encoding naphthalene dioxygenase in Pseudomonas putida strains G7 and NCIB 9816-4/ M.J. Simon, T.D. Osslund, R. Saunders, B.D. Ensley, S. Suggs, A. Harcourt, W.C. Suen, D.L. Cruden, D.T. Gibson, G.J. Zylstra // Gene. - 1993 - V.127 - p.31-37.
78. Simon MJ. Sequences of genes encoding naphthalene dioxygenase in Pseudomonas putida strains G7 and NCIB 9816-4 / M.J. Simon, T.D. Osslund, R.Saunders, B.D. Ensley, S.Suggs, A.Harcourt, W.C. Suen, D.L. Cruden, D.T. Gibson, G.J. Zylstra // Gene - 1993 - V.127 - p.31-37.
79. Smith C.B. Alkane hydroxylase gene (AlkB) phylotype composition and diversity in northern Gulf of Mexico bacterioplankton/ C.B. Smith, B.B. Tolar, J.T. Hollibaugh, G.M. King // Front Microbiol. - 2013 - V.12 - p.370.
80. Smith M.R. The biodegradation of aromatic hydrocarbons by bacteria //Biodegradation. - 1990 - V.2 - p.191-206.
81. Smits, T. H. M. Functional analysis of alkane hydroxylases from Gram-negative and Gram-positive bacteria / T. H. M.Smits, S. B.Balada, B.Witholt, and J. B. van Beilen // J. Bacteriol. - 2002 - V.184 - p.1733-1742.
82. Solyanikova I.P. Dioxygenases of Chlorobiphenyl-Degrading Species Rhodococcus wratislaviensis G10 and Chlorophenol-Degrading Species Rhodococcus opacus 1CP Induced in Benzoate-Grown Cells and Genes Potentially Involved in These Processes/ I.P. Solyanikova, O.V. Borzova, E.V. Emelyanova, E.S. Shumkova, N.V. Prisyazhnaya, E.G. Plotnikova, L.A. Golovleva // Biochemistry (Mosc) - 2016 -V.81 - p.986-998
83. Sota M. Genomic and functional analysis of the IncP-9 naphthalene-catabolic plasmid NAH7 and its transposon Tn4655 suggests catabolic gene spread by a tyrosine recombinase/ M. Sota, H. Yano, A. Ono, R. Miyazaki, H. Ishii, H. Genka, EM. Top, M.Tsuda // J Bacteriol. - 2006 - p.188 - p.4057-4067.
84. Sowada, J. Degradation of benzo [a] pyrene by bacterial isolates from human skin/ J.Sowada, A.Schmalenberger, I.Ebner, A.Luch, T.Tralau // FEMS microbiology ecology - 2014 - V.88 - p.129-139.
85. Stach J. E. M. Enrichment versus biofilm culture: a functional and phylogenetic comparison of polycyclic aromatic hydrocarbon-degrading microbial communities/ J. E. M.Stach, R. G. Burns //Environmental Microbiology. - 2002. - V. 4. - №. 3 - p.12-17.
86. Steffen K.T. Degradation of benzo[a]pyrene by the litter-decomposing basidiomycete Stropharia coronilla: role of manganese peroxidase/ K.T. Steffen, A. Hatakka, M.Hofrichter //Appl Environ Microbiol. - 2003 - V.69 - p.3957-3964.
87. Subashchandrabose S. R. Biodegradation of high-molecular weight PAHs by Rhodococcus wratislaviensis strain 9: Overexpression of amidohydrolase induced by pyrene and BaP/ S. R. Subashchandrabose, K. Venkateswarlu, R. Naidu, M. Megharaj// Science of The Total Environment - V. 651 - p. 813-821.
88. Tancsics A. Sequence analysis of 16S rRNA, gyrB and catA genes and DNA- DNA hybridization reveal that Rhodococcus jialingiae is a later synonym of Rhodococcus qingshengii /A. Tancsics, T. Benedek, M. Farkas, // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2014. - V.64 - p.298-301.
89. Tani, A. Gene structures and regulation of the alkane hydroxylase complex in Acinetobacter sp. strain M-1 / T. Ishige , Y. Sakai and N. Kato // J Bacteriol - 2001 - V.183 - p.1819-1823.
90. Temitayo O. Olowomofe. Degradation of poly aromatic fractions of crude oil and detection of catabolic genes in hydrocarbon-degrading bacteria isolated from Agbabu bitumen sediments in Ondo State / Temitayo O. Olowomofe, J. O. Oluyege, B.I. Aderiye, O. A. Oluwole // AIMS Microbiol. - 2019. - V.5. - p.308-323.
91. Throne-Holst M. Identification of novel genes involved in long-chain n-alkane degradation by Acinetobacter sp. strain DSM 17874 / M. Throne-Holst, A. Wentzel, T.E. Ellingsen, H.K. Kotlar, and S.B. Zotchev // Appl Environ Microbiol - 2007 - V.73- p.3327¬3332.
92. Top E.M. Catabolic mobile genetic elements and their potential use in bioaugmentation of polluted soils and waters/ E.M. Top, D. Springael, N.Boon // FEMS Microbiol Ecol. - 2002 - V.42. - p.199-208.
93. Toussaint A. The biphenyl- and 4-chlorobiphenyl-catabolic transposon Tn4371, a member of a new family of genomic islands related to IncP and Ti plasmids/ A. Toussaint, C. Merlin, S. Monchy, M.A. Benotmane, R. Leplae, M. Mergeay, D. Springael// Appl Environ Microbiol. - 2003 - V.69 - p.4837-4845.

🛒 Оформить заказ

Работу высылаем в течении 5 минут после оплаты.

©2026 Cервис помощи студентам в выполнении работ