📄Работа №196125

Тема: ИЗУЧЕНИЕ ЛИПОЛИТИЧЕСКИХ МИКРООРГАНИЗМОВ. ПЕРСПЕКТИВНЫХ ДЛЯ ДЕСТРУКЦИИ ОТХОДОВ ЖИВОТНОВОДСТВА

📝
Тип работы Магистерская диссертация
📚
Предмет биология
📄
Объем: 60 листов
📅
Год: 2025
👁️
Просмотров: 33
Не подходит эта работа?
Закажите новую по вашим требованиям
Узнать цену на написание
ℹ️ Настоящий учебно-методический информационный материал размещён в ознакомительных и исследовательских целях и представляет собой пример учебного исследования. Не является готовым научным трудом и требует самостоятельной переработки.

📋 Содержание

ВВЕДЕНИЕ 4
1. Обзор литературы 6
1.1 Проблема загрязнения липидами сточных вод 6
1.2 Липолитические ферменты. Структура и классификация 7
1.2.1 Структура липолитических ферментов 7
1.2.2 Классификация липолитических ферментов 13
1.3 Определение липолитической активности 17
1.4 Промышленное использование липаз 18
1.5 Липолитические ферменты микроорганизмов 20
1.6 Использование микроорганизмов в системах очистки сточных вод ... 22
1.7 Многообразие липолитических микроорганизмов 24
1.8 Оптимальные условия активности липолитических ферментов 25
1.8.1 Температурный диапазон активности липолитических ферментов 25
1.8.2 Кислотные и щелочные липазы 27
1.9 Способы повышения липолитической активности 28
1.10 Промышленное значение и перспективные штаммы 29
1.11 Антибиотическая устойчивость липолитических микроорганизмов 30
2. Материалы и методы исследования 33
2.1 Объект исследования 33
2.2. Методы исследования 34
2.2.1 Модифицированный метод Ота-Ямада для определения
липолитической активности 34
2.2.2 Определение числа бактериальных клеток методом подсчета в
камере Горяева 35
2.2.3 Определение антагонистической активности штаммов 36
2.2.4 Определение оптимальных условий для культивирования
штаммов 36
2.2.5 Определение устойчивости к антибиотикам 37
2.2.6 Статистическая обработка данных 37
ВЫВОДЫ 55
ЛИТЕРАТУРА 57

📖 Введение

Отходы, включающие в себя остатки пищи, животные жиры, растительные масла, маргарин, соусы, заправки и другие компоненты, создают риск засорения канализационных систем. Они образуются в предприятиях общественного питания, в быту и на производствах и попадают в канализационную систему либо прямым сбросом в канализацию, либо из устройств для улавливания жира, установленных, например, в ресторанах (Husain et al, 2014).
Существует множество методов очистки сточных вод, такие как пневматические, гидродинамические, механические, термические и химические методы очистки. Ультразвуковая очистка - способ эффективного удаления стойких загрязнений под воздействием ультразвуковых колебаний. На трубы можно установить жироуловитель - устройство для механической очистки сточных вод. Также используется специальное оборудование, убирающее засор с помощью давления - так называемые прочистные машины, но этот метод требует частого повторения процедуры, в зависимости от нагрузки, оказанной на канализационную систему. Однако нет универсального метода, который бы одинаково подходил для всех отраслей промышленности и сфер жизнедеятельности (Чибухчян и др., 2023).
Применение биопрепаратов в канализационной сети позволяет обеспечить удаление уже существующих жировых отложений, а также замедлить темпы образования новых за счет формирующейся активной биопленки, при контакте которой со сточными водами происходит расщепление сложных молекул жиров до простых и безопасных веществ (Каширская и др, 2013).
Цель исследования - изучение липолитической активности у разных групп микроорганизмов, перспективных для создания эффективного консорциума.
Задачи:
1. Определить липолитическую активность штаммов бактерий и микромицетов из коллекции лаборатории промышленной микробиологии Томского Государственного университета;
2. Определить способности к росту с жиросодержащими субстратами штаммов Pseudomonasиз коллекции научно-производственной лаборатории ООО «Дарвин»;
3. Провести отбор наиболее активных штаммов Pseudomonas, изучить их антагонистическую активность и определить липолитическую активность;
4. Определить оптимальные условия культивирования штаммов, отобранных для конструирования липофильного консорциума для деструкции отходов животноводства;
5. Определить устойчивость к антибиотикам штаммов, отобранных для конструирования липофильного консорциума.
Работа выполнена на базе научно-производственной лаборатории ООО «Дарвин» под руководством зав. лабораторией промышленной микробиологии БИ ТГУ, доцента кафедры ихтиологии и гидробиологии БИ ТГУ, к.б.н. Анны Леонидовны Герасимчук.

Возникли сложности?

Нужна качественная помощь преподавателя?

👨‍🎓 Помощь в написании

✅ Заключение

1. Из двух исследованных штаммов микромицетов (P. goetziiЖ- КМЦ-0-1 и P. chrysogenumЖ-КМЦ-0-2) в присутствии пальмового масла обнаружена значимая липолитическая активность (31,67 мкМ/ч*мл) только у P. chrysogenumЖ-КМЦ-0-2. Для всех исследованных бактериальных штаммов измеренная липолитическая активность в тех же условиях составила от 12,35 мкМ/ч*мл (B. licheniformisА-КМЦ-3-3) до 36,25 мкМ/ч*мл (G. paraffinivorans А-КМЦ-1-1). Эксперимент по анализу липолитической активности наиболее продуктивных штаммов бактерий G. paraffinivoransА-КМЦ-1-1 и P. protegens А-КМЦ-0-5 в присутствии оливкового масла показал максимальную активность у обоих штаммов (30,0 мкМ/ч*мл и 39,3 мкМ/ч*мл, соответственно) на вторые сутки культивирования. Пик численности клеток у обоих штаммов наблюдался на третьи сутки. Штаммы G. paraffinivoransА- КМЦ-1-1 и P. protegensА-КМЦ-0-5 показали максимальную продукцию внеклеточных липаз (р < 0.05) и являются перспективными агентами для разработки биотехнологий по утилизации отходов с высоким содержанием растительных масел.
2. Штаммы Pseudomonasиз коллекции научно-производственной лаборатории ООО «Дарвин» способны к росту на селективной среде с добавлением свиного и куриного жиров в качестве субстратов (1 %, v/v). На среде со свиным жиром рост отмечен более активный рост штаммов, максимальная численность составила от 6,4*107 кл/мл до 8,1*107 кл/мл на четвертые сутки культивирования. Рост штаммов P. extremaustralisКЦ-МСЖ- 6В и P. sesamiКЦ-МСЖ-7А показал активное развитие биомассы с максимальной численностью до 3,5*108 кл/мл на среде с повышенным содержанием куриного жира (10 %, v/v).
3. Штаммы P. helleri10Ж-ШКЖ-7В, P. protegensСток22-ШКЖ-5, P. sesamiКЦ-МСЖ-7А, P. extremaustralisКЦ-МСЖ-6В показали наиболее активный рост со свиным и куриным жиром в качестве субстратов, не проявляли антагонистической активности друг к други и отобраны для изучения липолитической активности. Все штаммы характеризовались продукцией липазы более 20 мкМ/ч*мл. Максимальные значения (р < 0.05) липолитической активности в 32,5 мкМ/ч*мл показаны для штамма P. extremaustralisКЦ-МСЖ-6В.
4. Отобранные штаммы растут в диапазоне температур от +4 °C до 37 °C с опттимальными условиями при +25-28 °C. Штамм P. helleri10Ж- ШКЖ-7В обладает наиболее выраженными психротолерантными свойствами, а P. sesamiрос лучше других штаммов при 37 °C. Все штаммы растут в диапазоне значений рН от 3 до 9 со схожими показателями численности и скорости роста. Штамм P. sesamiКЦ-МСЖ-7А образует наибольшую численность при слабокислых (pH=5) и кислых (рН=3) значениях по сравнению с другими штаммами (р<0,05). В составе консорциума штаммы имеют широкий диапазон значений температур и рН для роста и проявления метаболической активности и могут быть рекомендованы для использования в качестве биопрепарата с целью утилизации жидких отходов мясопереработки.
5. Все штаммы показали наличие резистентности к разнообразным антибиотикам. Наиболее высокую резистентность (к 14 из 17 исследованных антимикробных препаратов) показал штамм P. protegensСток22 - ШКЖ - СГ- . Наиболее чувствительным явился штамм P. helleri10Ж - ШКЖ - 7В, для которого показана резистентность только к 6 из 17 исследованных антибиотиков. Все штаммы оказались чувствительны к антибиотикам, относящимся к группам фторхинолонов и карбапенемов.

Нужна своя уникальная работа?
Срочная разработка под ваши требования
Рассчитать стоимость
ИЛИ

📕 Список литературы

1. Альмяшева Н. Р. Закономерности биосинтеза липолитических ферментов ксилотрофным базидиомицетом Fomes fomentarius / Н. Р. Альмяшева, А. В. Голышкин - DOI:10.17513/spno.25835 // Современные проблемы науки и образования. - 2016. - Т. 6. - С. 553. URL: https://s.science- education.ru/pdf/2016/6/25835.pdf(дата обращения: 07.05.2025)
2. Выделение и изучение липидоокисляющих микроорганизмов- обитателей Северного Каспия / О.В. Колотова, И. В. Соколова, И. В. Владимцева, Т.В. Беленькова // Вестник Казанского технологического университета. - 2017. - Т. 20. №. 6. - С. 135-138.
3. Дьяченко Ю.А. Активность липазы как показатель высокого качества и экологической чистоты семян подсолнечника / Ю.А. Дьяченко, А.Д. Цикуниб // Техника и технология пищевых производств. - 2017. - Вып 44. № 1. - С. 118-122.
4. ^следование эффективности деструкции приоритетных органических загрязнителей микроорганизмами / О.В. Колотова, И.В. Могилевская, И.В. Владимцева, А.В. Ермоловский // Известия Тульского Государственного Университета. Науки о Земле. - 2021. - Вып. №1. - С. 14¬30.
5. Каширская Т. А. Биопрепараты для очистки канализации и сточных вод от жировых загрязнений // Мясные технологии. - 2013. - Вып. № 5(125). - С. 56-57.
6. Лебедева Е.Г. Эколого-биохимические свойства термофильных
бактерий, выделенных из дачных горячих источников Камчатки (Дальний Восток, Россия) / Е.Г. Лебедева, Н.А. Харитонова -
DOI:10.17816/snv202093114 // Самарский научный вестник. - 2020. - Вып.9 №3. - С.79-85. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/ekologo-biohimicheskie-
svoystva-termofilnyh-bakteriy-vydelennyh-iz-dachnyh-goryachih-istochnikov- kamchatki-dalniy-vostok-rossiya (дата обращения: 05.05.2025).
7. Липолитические ферменты микроорганизмов из криопэгов вечной мерзлоты / Л. Е. Петровская, К. А. Новотоцкая-Власова, Е. В. Спирина [и др.]
- DOI:10.1134/S0012496612040035 // Доклады академии наук. - 2012. - Т. 445 №1. - С. 102. URL: https://link.springer.com/article/10.1134/S0012496612040035(дата обращения: 05.05.2025).
8. Применение бактериальных термостабильных липолитических ферментов в современных биотехнологических процессах: обзор / Ю.В. Самойлова, К.Н. Сорокина, А.В. Пилигаев, В.Н. Пармон - DOI:10.18412/1816- 0387-2018-6-61-73// Катализ в промышленности. - 2018. - Т. 18 № 6. - С. 61¬73. URL: https://elibrary.ru/item.asp?id=36423080(дата обращения: 07.05.2025).
- Режим доступа: для зарегистр. пользователей.
9. Сидоренко М.Л. Психротрофные микроорганизмы почв Дальнего
Востока / М.Л. Сидоренко, Н.А. Слепцова, Ю.К. Немченко - DOI:10.23670/IRJ.2019.90.12.036 // Международный научно¬
исследовательский журнал. - 2019. - Вып. 12 №90. - С. 190-193. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/psihrotrofnye-mikroorganizmy-pochv-dalnego- vostoka(дата обращения: 08.05.2025)
10. Стурова Ю.Г. Влияние пробиотических культур и липолитических
ферментов на свойства молочного продукта в разрабатываемой биотехнологии сыра / Ю.Г. Стурова, А.В. Гришкова, В.В. Коньшин - DOI:10.21285/2227-2925-2021 -11 -2-290-298// Известия вузов. Прикладная химия и биотехнология. - 2021. - Т. 11 №2(37). - С. 290-298. URL:
https://cyberleninka.ru/article/n/vliyanie-probioticheskih-kultur-i-lipoliticheskih- fermentov-na-svoystva-molochnogo-produkta-v-razrabatyvaemoy-biotehnologii- syra(дата обращения: 10.05.2025).
11. Толкачева А.А., Сравнительная характеристика липаз и перспективы разработки новых липолитических ферментных препаратов для пищевой промышленности / А.А. Толкачева, Д.А. Черенков, О.С. Корнеева // Актуальная биотехнология. - 2016. - Т. 18 №3. - С. 177-178.
12. Усовершенствование методики определения липазы, основанной
на методе получения жирных кислот, в ферментных препаратах для пищевой промышленности / Е.М. Серба, Е.Н. Соколова, М.Б. Оверченко [и др.] - DOI:10.21285/2227-2925-2023-13-1-57-66// Известия вузов. Прикладная химия и биотехнология. - 2023. - Т. 13. № 1. - С. 57-66. URL:
https://cyberleninka.ru/article/n/usovershenstvovanie-metodiki-opredeleniya- lipazy-osnovannoy-na-metode-polucheniya-zhirnyh-kislot-v-fermentnyh- preparatah-dlya(дата обращения: 07.05.2025).
13. УФ-индуцированный дрожжевой продуцент липазы с широкой
субстратной специфичностью - селекция, свойства и получение ферментного препарата / Е.Ф. Гаскарова, Л.А. Иванова, Л.А. Чурмасова [и др.] - DOI: 10.15389/agrobiology.2019.6.1290rus. // Сельскохозяйственная биология. -
2019. - Т. 54, №6. - С. 1290-1305. URL: https://www.agrobiology.ru/6-
2019gaskarova.html (дата обращения: 12.05.2025).
14. Чибухчян О.С. Новые технологии очистки канализационных труб
/ О.С. Чибухчян, Б.А. Баласанян, М.Е. Закарян - DOI:10.53297/18293387- 2023.2-88 // Вестник НПУА. Механика, машиноведение, машиностроение. 2023. - Вып. №2. - С 88-92. URL:
https://www.researchgate.net/publication/380391039_NOVYE_TEHNOLOGII_O CISTKI_KANALIZACIONNYH_TRUB (дата обращения: 07.05.2025)
15. Шнайдер К.Л. Влияние компонентов питательной среды на биосинтез липазы дрожжами Yarrowia (Candida) lipolitica Y-3153 (ATCC 34088) / К.Л. Шнайдер, М.Е. Зиновьева, В.С. Гамаюрова // Вестник пермского национального исследовательского политехнического университета. Химическая технология и биотехнология. - 2021. - Т. 3. - С. 5-21. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/vliyanie-komponentov-pitatelnoy-sredy-na- biosintez-lipazy-drozhzhami-yarrowia-candida-lipolytica-y-3153-atcc-34088(дата обращения: 08.05.2025).
16. Antibacterial Agents in Clinical Development: An Analysis of the Antibacterial Clinical Development Pipeline, Including Tuberculosis // World
Health Organization. - 2017. URL:
https://www.who.int/publications/i/item/antibacterial-agents-in-clinical- development (access date: 13.05.2025).
17. Bacterial lineages are putatively associated with the dissemination of
antibiotic-resistance genes in a full-scale urban wastewater treatment plant / C Narciso-da-Rocha, J Rocha, I Vaz-Moreira [et al.] -
DOI:10.1016/j.envint.2018.05.040 // Environment International. - 2018. - Vol. 118.
- P. 179-188. URl: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29883764/ (access date: 10.05.2025).
18. Bender J. Lipases as Pathogenicity Factors of Bacterial Pathogens of
Humans / J. Bender, A. Flieger - DOI:10.1007/978-3-540-77587-4_246 //
Handbook of Hydrocarbon and Lipid Microbiology. - 2010. - P.3241-3258. URL: https://link.springer.com/rwe/10.1007/978-3-540-77587-4_246 (access date: 12.05.2025).
19. Biodegradation of animal fats and vegetable oils by Rhodococcus erythropolis PR4 / A. Kis, K. Laczi, S. Zsiros [et al.] - DOI:10.1016/j.ibiod.2015.08.015/ International Biodeterioration & Biodegradation.
- 2015. - Vol. 105. - P. 114-119. URL:
https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0964830515300706 (access date: 07.05.2025).
20. Biodegradation of waste greases and biochemical properties of a novel lipase from Pseudomonas synxantha PS1 / Cai, X., Chen, S., Yang, H., [et al.] - DOI:10.1139/cjm-2015-0641 // Canadian Journal of Microbiology. - 2016. - Vol. 62(7). - P. 588-599. URL: https://cdnsciencepub.com/doi/abs/10.1139/cjm-2015- 0641 (access date: 15.05.2025).
21. Bioprospecting of lipolytic microorganisms obtained from industrial effluents / G. H.S. Peil, A. V. Kuss, F.G. Rave [et al.] - DOI:10.1590/0001- 3765201620150550 // Anais Da Academia Brasileira de Ciencias. - 2016. - Vol. 88(3). - P. 1769-1779. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27556331/ (access date: 07.05.2025).
22. Bornscheuer U.T. Microbial carboxyl esterases: classifcation,
properties and application in biocatalysis / DOI:10.1111/j.1574-
6976.2002.tb00599.x // FEMS Microbiology Reviews. - 2002. - Vol. 26. № 1. - P. 73-81. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12007643/ (access date: 12.05.2025).
23. Chakraborty S. Development of a two separate phase submerged biocatalytic membrane reactor for the production of fatty acids and glycerol from residual vegetable oil streams / S. Chakraborty, E. Drioli, L. Giorno - DOI:10.1016/j.biombioe.2012.07.004 // Biomass and Bioenergy. - 2012. - Vol. 46.
- P. 574-583. URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/
S0961953412002838?via%3Dihub (access date: 05.05.2025).
24. Chen R. Gene cloning, expression and characterization of a cold-
adapted lipase from a psychrophilic deep-sea bacterium Psychrobacter sp C18 / R. Chen, L. Guo, H. Dang - DOI:10.1007/s11274-010-0475-7 // World Journal of Microbiology and Biotechnology. - 2010. - Vol. 27(2). - P. 431-441. URL: https://link.springer.com/article/10.1007/s11274-010-0475-7 (access date:
24.05.2025).
25. Chipasa K. Behavior of lipids in biological wastewater treatment processes / K. Chipasa, K. Medrzycka - DOI:10.1007/s10295-006-0099-y // Journal of Indastrial. Microbiology & Biotechnology. - 2006. - Vol. 33. - P. 635-645. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16491352/ (access date: 05.05.2025).
26. Chipasa K. Characterization of the fate of lipids in activated sludge / K.
Chipasa, K. Medrzycka - DOI:10.1016/s1001-0742(08)62091-4// Journal of
Environmental Science. - 2008. - Vol. 20. - P. 536-542. URL:
https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S1001074208620914 (access date: 09.05.2025).
27. Cipinyte V. Selection of fat-degrading microorganisms for the treatment of lipid-contaminated environment / V. Cipinyte, S. Grigiskis. E. Baskys
- DOI:10.2478/v10054-009-0014-3 // Biologija. - 2009. - Vol. 55(3). URL: https://www.researchgate.net/publication/266571585_Selection_of_fat-degrading_microorganisms_for_the_treatment_of_lipid-contaminated_environment (access date: 27.05.2025).
28. Cisterna-Osorio P. Comparison of Biodegradation of Fats and Oils by
Activated Sludge on Experimental and Real Scales / P. Cisterna-Osorio, P. Arancibia-Avila - DOI:10.3390/w11061286 // Water. - 2019. - Vol. 11(6). - P. 1286. URL: https://www.mdpi.com/2073-4441/W6/1286 (access date:
15.05.2025).
29. Classification Lipolytic Enzymes from Bacteria / S. Hausmann K., E.
Jaeger, U. Krauss, N. Babic - DOI:10.1007/978-3-319-39782-5_39-1 // Aerobic Utilization of Hydrocarbons, Oils and Lipids. - 2018. - P. 1-35. URL:
https://link.springer.com/rwe/10.1007/978-3-319-39782-5_39-1 (access date: 14.05.2025).
30. Classification of Lipolytic Enzymes from Bacteria / F. Kovacic, N. Babic, U. Krauss, K. Jaeger - DOI:10.1007/978-3-319-39782-5_39-1 // Aerobic Utilization of Hydrocarbons, Oils and Lipids. - 2019. - Vol. 1. - P.1-35. URL: https://www.researchgate.net/publication/328506675_Classification_of_Lipolytic_ Enzymes_from_Bacteria (access date: 11.05.2025).
31. Cloning, expression, purification and characterization of lipase from Bacillus licheniformis, isolated from hot spring of Himachal Pradesh, India / G. Kaur, A. Singh, R. Sharma [et al.] - DOI:10.1007/s13205-016-0369-y // 3 Biotech.
- 2016. - Vol. 6(1). - PP. 49. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28330118/ (access date: 19.05.2025).
32. Crystal structure of a thermostable lipase from Bacillus stearothermophilus P1 / D. A. Tyndall, S. Sinchaikul, L. Fothergill-Gilmore [et al.]
- DOI:10.1016/s0022-2836(02)01004-5 // Journal Molecular Biology. - 2002. - Vol. 323 (5). - P. 859-869. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12417199/ (access date: 27.05.2025).
33. Diversity and distribution of the endophytic bacterial community at different stages of Eucalyptus growth / P. S. B. Miguel, M. N. V. de Oliveira, J. C. Delvaux [et al.] - DOI:10.1007/s10482-016-0676-7 // Antonie Van Leeuwenhoek.
- 2016. - Vol. 109(6). - P. 755-771. URL:
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27010209/ (access date: 14.05.2025).
34. Diversity of esterase and lipase producing haloalkaliphilic bacteria from Lake Magadi in Kenya/ D. Kiplimo, J. Mugweru, S. Kituyi [et al.] - DOI:10.1002/jobm.201900353 // Journal Basic Microbiology. - 2019. - Vol. 59 (12). - P. 1173-1184. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31621083/ (access date: 17.05.2025).
35. Draft genome sequence of Pseudomonas extremaustralis strain USBA-
GBX-515 isolated from Superparamo soil samples in Colombian Andes / A. G. Lopez, C. Diaz-Cardenas, N. Shapiro [et al.] - DOI:10.1186/s40793-017-0292-9 // Stand Genomic Science. - 2017. - Vol. 12: 78. URL:
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29255573/ (access date: 14.05.2025).
36. Emerging resistance mechanisms to newer 0-lactams in Pseudomonas aeruginosa / A. Oliver, J. Arca-Suarez, M. A. Gomis-Font [et al.] - DOI:10.1016/j.cmi.2025.03.013 // Clinical Microbiology and Infection. - 2025. - Vol. 20. - PP. 1198. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/40120758/ (access date: 16.05.2025)
37. Erhan S.M. Biodegradation of estolides from monounsaturated fatty acids / S. M. Erchan, R. Kleiman - DOI:10.1007/s11746-997-0189-7 // Journal of the American Oil Chemists' Society. - 1997. - Vol. 74. - P 605-607. URL: https://aocs.onlinelibrary.wiley.com/doi/abs/10.1007/s11746-997-0189-7 (access date: 05.05.2025).
38. Ertugrul, S. Isolation of lipase producing Bacillus sp. from olive mill
wastewater and improving its enzyme activity / S. Ertugrul, G. Donmez, S. Takag - DOI:10.1016/j.jhazmat.2007.04.034 // Journal of Hazardous Materials. - 2007. - Vol. 149(3). - P. 720-724. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17532131/
(access date: 11.05.2025).
39. Farrokh P. Cloning and characterization of newly isolated lipase from Enterobacter sp. Bn12 / P. Farrokh, B. Yakhchali, A. A. Karkhane - D0I:10.1590/s1517-83822014000200042 // Braz J Microbiology. - 2014. - Vol. 45(2). - P. 677-687. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25242958/ (access date: 17.05.2025).
40. Hasan F. Industrial applications of microbial lipases / F. Hasan, A. A.
Shah, A. Hameed - DOI:10.1016/j.enzmictec.2005.10.016 // Enzyme and Microbial Technology. - 2006. - Vol. 39. - P. 235-251. URL:
https://www.researchgate.net/publication/222672856_Industrial_Applications_of_ Microbial_Lipases (access date: 06.05.2025).
41. Hasan F. Methods for detection and characterization of lipases: A comprehensive review / F. Hasan, A. A. Shah, A. Hameed - DOI:10.1016/j.biotechadv.2009.06.004 // Biotechnology Advances. - 2009. - Vol. 27(6). - P 782-798. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19539743/ (access date: 05.05.2025).
42. Hassan E. An alkaline lipase from organic solvent tolerant
Acinetobacter sp. EH28: Application for ethyl caprylate synthesis / E. Hassan, T. Raghavendra, D. Madamwar - DOI:10.3389/fmicb.2022.1088581 // Bioresource technology. - 2010. - Vol. 101 (10). - P. 3628-34. URL:
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20096565/ (access date: 21.05.2025).
43. Icgen B. Co-Occurrence of antibiotic and heavy metal resistance in
Kizilirmak river isolates / B. Icgen, F. Yilmaz - DOI:10.1007/s00128-014-1383-6 // Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. - 2014. - Vol. 93. - P. 735-743. URL: https://link.springer.com/article/10.1007/s00128-014-1383-6
(access date: 12.05.2025).
44. Impact of meropenem exposure on fluoroquinolone and carbapenem resistance in Pseudomonas aeruginosa infection in inpatients in a Japanese university hospital: Insights into oprD mutations and efflux pump overexpression / T. Yamochi, K. Ugajin, R. On [et al.] - DOI:10.1016/j.jgar.2024.12.029 // Journal of Global Antimicrobial Resistance. - 2025. - Vol. 41. - P. 163-168. URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S2213716525000049?via%3Dih ub (access date: 27.05.2025).
45. Isolation and characterization of Lipolytic microorganisms from oil contaminated soil / V. S. Hombalimath, B. B. Udapudi, L. R. Patil, A. R. Shet // International Journal of Advances in Engineering, Science and Technology. - 2012. - Vol.2 №3. - P. 293-297.
46. Isolation and Screening of Lipase-Producing Fungi with Hydrolytic Activity // N. Griebeler, A. E. Polloni, D. Remonatto, F. Arbter - DOI:10.1007/s11947-008-0176-5 // Food and Bioprocess Technology. - 2009. - Vol. 4(4). - PP. 578-586. URL: https://link.springer.com/article/10.1007/s11947- 008-0176-5 (access date: 17.05.2025).
47. Isolation, Characterisation, and Lipase Production of a Cold-Adapted
Bacterial Strain Pseudomonas sp. LSK25. Isolated from Signy Island, Antarctica / L. Salwoom, R. Rahman, A. B. Salleh [et al.] - DOI:10.3390/molecules24040715 //Molecules. - 2019. - Vol. 24 (4). - P. 715-718. URL:
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30781467/ (access date: 08.05.2025).
48. Isolation, optimization and molecular characterization of lipase
producing bacteria from contaminated soil / Ilesanmi O. I., Adekunle, E. A., Omolaiye, J. A., Olorode, E. M [et al.] - DOI:10.1016/j.sciaf.2020.e00279 // Scintific Africa. - 2020. - Vol. 8. - P. 1-10. URL:
https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S246822762030017X (access date: 09.05.2025).
49. Isolation, purification and characterization of a novel solvent stable
lipase from Pseudomonas reinekei / P. Priyanka, Y. Tan, G. Kinsella [et al.] - DOI:10.1016/j.pep.2018.08.007 // Protein Expr. and Purif. - 2018. - V. 153. - P. 121-130. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30142430/ (access date:
21.05.2025).
50. Jaeger K. Determination of Lipolytic Enzyme Activities / K. Jaeger, F. Kovacic - DOI:10.1007/978-1-4939-0473-0_12// Methods in Molecular Biology. -
2014. - Vol. 1149. - P.34. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24818902/ (access date: 12.05.2025).
51. Kanmani P. An insight into microbial lipases and their environmental facet / P. Kanmani, J. Aravind, K. Kumaresan - DOI:10.1007/s13762-014-0605-0// International Journal of Environmental Science and Technology. - 2015. - Vol. 12.
- P. 1147-1162. URL: https://link.springer.com/article/10.1007/s13762-014-0605- 0 (access date: 07.05.2025).
52. Lawrence R.C. A rapid method for the quantitative estimation of microbial lipases / R.C. Lawrence, T.F. Fryer, B. Reiter // Nature. - 1967. - Vol. 213.
- P 1264-1265.
53. Lipases: An Overview / L. Casas-Godoy, S. Duquesne, F. Bordes [et al.]
- DOI:10.1007/978-1-61779-600-5_1 // Methods in Molecular Biology. 2012. Vol. 861. PP 3-30. URL: https://www.researchgate.net/publication/334248536_ Lipases_An_Overview (access date: 05.05.2025).
54. Litthauer D. Pseudomonas luteola lipase: a new member of the 320- residue pseudomonas lipase family / D. Litthauer, A. Ginster, E. E. Skein // Enzyme and Microbial Technology. - 2002. - Vol. 30. № 2. - P. 209-215.
55. MacRae, A. R. Lipase-catalyze d interesterification of oils and fats // Oil Processing. - 1983. - Vol. 60. - P 291 - 294.
56. Metin K. Production and characterization of an alkaline lipase from thermophilic anoxybacillus sp. HBB16 / K. Metin, Z. Bakir - DOI:10.15255/CABEQ.2016.990 // Chem. Biochem. Eng. - 2017. - Q. 31 (3). - P. 303-312. URL: https://hrcak.srce.hr/file/275930 (access date: 15.05.2025).
57. Microbial lipases: potential biocatalysts for the future industry / R.K. Saxena, P.K. Ghosh, R. Gupta [et al.] // Current Science. - 1999. - Vol. 77 (1). - P 101-115.
58. Molgaard A. Rhamnogalacturonan acetylesterase elucidates the structure and function of a new family of hydrolases / A. Molgaard, S. Kauppinen, S. Larsen - DOI:10.1016/s0969-2126(00)00118-0// Structure. - 2000. - Vol. 8 (4).
- P 373-383. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10801485/ (access date: 12.05.2025).
59. Monitoring of emerging pollutants in Guadiamar River basin (South of Spain): analytical method, spatial distribution, and environmental risk assessment / E Garrido, D Camacho-Munoz, J Martin [et al.] - DOI:10.1007/s11356-016-7759- x // Environmental science and pollutant research international. - 2016. - Vol. 23. - P. 25127-25144. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27679999/ (access date: 19.05.2025).
60. Outstanding biocontrol and plant growth promotion traits of
Pseudomonas fluorescens UM270 and other plant-associated Pseudomonas / G. Santoyo, B. Rojas-Sanchez, J. Hernandez-Salmeron [et al.] - DOI:10.1016/j.pmpp.2025.102672 // Physiological and Molecular Plant Pathology. - 2025. - Vol. 138. URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/
abs/pii/S0885576525001110 (access date: 25.05.2025).
61. Peix A. Historical evolution and current status of the taxonomy of genus
Pseudomonas / A. Peix, M. H. Ramirez-Bahena, E. Velazquez - D0I:10.1016/j.meegid.2009.08.001 // Infection, Genetics and Evolution. - 2009. - Vol. 9(6). - P. 1132-1147. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19712752/
(access date: 15.05.2025).
62. Problems, control, and treatment of fat, oil, and grease (FOG): a review
/ I. A F Husain, M. F. Alkhatib, M. S. Jammi [et al.] - DOI:10.5650/jos.ess13182 // Journal of Oleo Science. - 2014. - Vol. 63(8). - PP 747-752. URL:
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25007744/ (access date: 07.05.2025).
63. Production and optimization of lipase using Aspergillus niger MTCC 872 by solid-state fermentation / A. Nema, S. H. Patnala, V Mandari [et al.] - D0I:10.1186/s42269-019-0125-7// Biological Science. - 2019. - Vol. 43(1). - P. 82-85. URL: https://bnrc.springeropen.com/articles/10.1186/s42269-019-0125-7 (access date: 15.05.2025).
64. Production of fungal lipases using wheat bran and soybean bran and
incorporation of sugarcane bagasse as a co-substrate in solid-state fermentation / L.F. Fleuri, M. Oliveira, M. L. C. Arcuri [et al.] - D0I:10.1007/s10068-014-0164- 7 // Food Sci Biotechnol. - 2014. - Vol. 23. - P. 1199-1205. URL:
https ://link. springer.com/ article/10.1007/s10068-014-0164-7 (access
08.05.2025).
65. Production, purification, and characterization of lipase from
thermophilic and alkaliphilic Bacillus coagulans BTS-3/ S. Kumar, K. Kikon, A. Upadhyay [et al.] - DOI:10.1016/j.pep.2004.12.010 // Protein Expression and Purification. - 2005. - Vol. 41(1). - P 38-44. URL:
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15802219/ (access date: 21.05.2025).
66. Pseudomonas sesami sp. nov., a plant growth-promoting Gammaproteobacteria isolated from the rhizosphere of Sesamum indicum L / M. Madhaiyan, S. Poonguzhali, V. S. Saravanan [et al] - DOI:10.1007/s10482-017- 0859-x // Antonie van Leeuwenhoek. - 2017. - Vol. 110(7). - P. 843-852. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28321521/ (access date: 18.05.2025).
67. Purification and characterization of alkaline lipase production by
Pseudomonas aeruginosa HFE733 and application for biodegradation in food wastewater treatment / J. Hu, W. Cai, C. Wang [et al.] - DOI:10.3390/biomedicines9111586 // Biotechnology & Biotechnological
Equipment. - 2018. - Vol. 32(3). - PP. 583-590. URL:
https://www.researchgate.net/publication/324907014_Purification_and_characteriz ation_of_alkaline_lipase_production_by_Pseudomonas_aeruginosa_HFE733_and_ application_for_biodegradation_in_food_wastewater_treatment (access date: 05.05.2025).
68. Purification and characterization of lipase by Bacillus methylotrophicus PS3 under submerged fermentation and its application in detergent industry / P. Sharma, N. Sharma, S. Pathania, S. Handa - DOI:10.1016/jjgeb.2017.06.007 // J. of Genetic Eng. and Biotechnol. - 2017. - Vol. 15. - P. 369-377. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30647675/ (access date: 14.05.2025).
69. Purification, characterization and thermal inactivation kinetics of a non-regioselective thermostable lipase from a genotypically identified extremophilic Bacillus subtilis NS 8 / A. T. Olusesan, L. K. Azura, B. Forghani [et al.] - DOI:10.1016/j.nbt.2011.01.002 // New Biotechnology. - 2011. - Vol. 28(6). - P.
738-745. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21238617/ (access date:
15.05.2025).
70. Ramani K. Production of a novel extracellular acidic lipase from
Pseudomonas gessardii using slaughterhouse waste as a substrate / K. Ramani, E. Chockalingam, G. Sekaran - DOI:10.1007/s10295-010-0700-2 // Journal of
Industrial Microbiology and Biotechnology. - 2010. - Vol. 37(5). - PP. 531-535. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20204455/ (access date: 17.05.2025).
71. Ramnath L. Identification of lipolytic enzymes isolated from bacteria
indigenous to Eucalyptus wood species for application in the pulping industry / L. Ramnath, B. Sithole, R. Govinden - DOI:10.1016/j.btre.2017.07.004 // Biotehnol Rep (Amst). - 2017. - Vol. 22. - P. 114-124. URL:
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28794998/ (access date: 05.05.2025).
72. Sachan S. Extracellular lipase from Pseudomonas aeruginosa JCM5962(T): Isolation, identification, and characterization / S. Sachan, M. S. Iqbal, A. Singh - DOI:10.1007/s10123-018-0016-z // International Microbiology. - 2018. - Vol. 21. - P. 197-205. URL: https://link.springer.com/article/10.1007/s10123- 018-0016-z (access date: 27.05.2025).
73. Sadh, P. K. Agro-industrial wastes and their utilization using solid state fermentation: a review / P. K. Sadh, S. Duhan, J. S. Duhan - DOI:10.1186/s40643- 017-0187-z // Bioresources and Bioprocessing. - 2018. - Vol. 5(1). - P. 1-15. URL: https ://bioresourcesbioprocessing. springeropen.com/articles/10.1186/s40643 -017- 0187-z (access date: 23.05.2025).
74. Salihu A. Lipase production using sheanut cake by Aspergillus niger:
An optimization study / A. Salihu, M. Bala, Md.Z. Alam - DOI:10.1016/j.jtusci.2015.02.011 // Journal of Taibah University for Science. -
2015. - Vol. 10. - P. 850-859. URL:
https://www.tandfonline.com/doi/full/10.1016/j.jtusci.2015.02.011. (access date: 15.05.2025).
75. Shelleya A.W. Review of methods of enumeration, detection and isolation of lipolytic microorganisms with special reference to dairy applications /
A.W. Shelleya, H.C. Deeth, I.C. MacRae Review - DOI:10.1016/0167-
7012(87)90008-X // Journal of Microbiological Methods. - 1987 Vol. 6(3). - P. 123¬167. URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/0167701287900 08X (access date: 14.05.2025).
76. Singh, A. K. Overview of Fungal Lipase: A Review / A. K. Singh, M.
Mukhopadhyay - DOI:10.1007/s12010-011-9444-3 // Applied Biochemistry and Biotechnology. - 2011. - Vol. 166(2). - P. 486-520.URL:
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22072143/ (access date: 23.05.2025).
77. Thermophilic bacteria from Mexican thermal environments: isolation
and potential applications / D. L. Pinzon-Martinez, C. Rodriguez-Gomez, D. Minana-Galbis [et al.] - DOI:10.1080/09593331003758797 // Environ. Technol. - 2010. - Vol. 31(8-9). - P. 957-966. URL:
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20662384/ (access date: 14.05.2025).
78. UV activation of persulfate for removal of penicillin G antibiotics in aqueous solution / S. Norzaee, E. Bazrafshan, B. Djahed [et al.] - DOI:10.1155/2017/3519487 // Scientific World Journal. - 2017. - Vol. 4. - P. 1-6. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28929128/ (access date: 27.05.2025).
79. Walle V. D. Uber synthetische Wirkung bakterieller Lipasen / Centralblatt fur Bakteriologie, Parasitenkunde und Infektionskrankheiten. - 1927. - Vol. 70. - P 369-273.
80. Yamada K. Studies on the production of lipase by microorganisms II, Quantitative determination of lipase / K. Yamada, U. Ota, H. Machida // Agric. Biol. Chem. - 1962. - Vol. 26. - P 69.
81. Yasmin R. Isolation, Characterization of Zn Solubilizing Bacterium (Pseudomonas protegens RY2) and its Contribution in Growth of Chickpea (Cicer arietinum L) as Deciphered by Improved Growth Parameters and Zn Content / R. Yasmin, S. Hussain - DOI:10.1177/15593258211036791 // Dose Response. - 2021. - Vol. 19(3). URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34421440/ (access date: 24.05.2025).

🛒 Оформить заказ

Работу высылаем в течении 5 минут после оплаты.

©2026 Cервис помощи студентам в выполнении работ