Тип работы:
 Предмет:
 Язык работы:


Влияние NaCl на рост Cupriavidus eutrophus B-10646, синтез полимера и жирнокислотный состав липидов

Работа №19497

Тип работы

Бакалаврская работа

Предмет

биология

Объем работы42
Год сдачи2017
Стоимость5750 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
254
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


Введение 5
Глава 1. Обзор литературы 7
1.1. Биоразрушаемые полимеры 7
1.2. Полигидроксиалканоаты - природные полиэфиры 10
1.2.1. Структура и классификация ПГА 15
1.3. Галофильные микроорганизмы 17
1.4. Влияние хлорида натрия на рост бактерий и синтез полимера 21
Глава 2. Объект исследования 23
2.1. Водородные бактерии Cupriavidus eutrophus 23
2.2. Материалы и методы исследования 25
2.2.1. Культивирование бактерий и методы измерения параметров
культивирования 25
2.2.2. Определение концентрации фруктозы 26
2.2.3. Выделение полимера и внутриклеточных липидов 27
2.2.4. Определение содержания и состава полимера 28
2.3. Определение молекулярной массы полимера 29
Выводы 31
Список использованных источников 32


Продукция полигидроксиалканоатов (ПГА) с использованием грамотрицательных бактерий Cupriavidus necatorшироко исследуется, так как установлено, что данные бактерии способны накапливать полимер до 85% от сухой биомассы при лимитировании роста азотом, фосфором или кислородом и избытке углеродного субстрата [58]. Бактерии накапливают ПГА в качестве источника углерода и энергии. Кроме того, ПГА также играют роль в стрессоустойчивости [68].
Известно, что реакцией бактерий на внешний стресс может стать увеличение продукции ПГА, как средство преодоления стрессовых условий. К таким видам стресса относят присутствие некоторых тяжелых металлов [43] и химических веществ, таких как этанол и перекись водорода [62], а также присутствие NaCl. В литературе представлены достаточно противоречивые результаты о влиянии NaCl на рост бактерий и синтез ПГА. Значительное снижение содержания поли(3-гидроксибутирата) (П(3ГБ)) в клетках Paracoccus denitrificansи Cupriavidus necator(штамм JMP 134) происходило уже при концентрации NaCl 5 г/л, а при 20 г/л NaCl наблюдали 80%-ное ингибирование роста бактерий и синтеза полимера [61]. Однако у другого штамма C. necator (DSMZ 545) максимальный выход ПГА наблюдали в присутствии NaCl в концентрации 9 г/л, причем ингибирование биомассы происходило при концентрации NaCl свыше 15 г/л [67]. Увеличение содержания полимера в присутствии NaCl показано и для бактерии Zobellella denitrificans MW1 [38].
Жирные кислоты (ЖК) бактерий входят в состав липидов цитоплазматических мембран, которые в первую очередь реагируют на меняющиеся условия окружающей среды, поддерживая взаимосвязь между структурой и функцией мембраны. Изменения в ЖК составе липидов цитоплазматических мембран R. eutropha H850 могут индуцироваться загрязнителями органической природы или источником углерода у Cupriavidus necator JMP134.
Целью настоящей работы было исследование способности бактерий штамма Cupriavidus eutrophus B-10646 расти и синтезировать полимер в присутствии хлорида натрия в среде.
Для этого необходимо было решить следующие задачи:
1. Исследовать влияние хлорида натрия на рост бактерий С. eutrophus B-10646 и синтез полимера;
2. Исследовать влияние хлорида натрия на жирнокислотный состав внутриклеточных липидов.

Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!
ДИПЛОМНЫЕ МАГИСТЕРСКИЕ ДИССЕРТАЦИИ
КУРСОВЫЕ СТАТЬИ ВКР

1. Исследовано влияние NaCl на рост бактерий Cupriavidus eutrophus B10646 и синтез полимера. Показано, что урожай биомассы и полимера в присутствии невысоких концентраций NaCl (5-10 г/л) не отличался от показателей культуры, выросшей в отсутствии NaCl, и составлял соответственно 8.8 -9.2 г/л и 74.1-81% от веса сухой биомассы. Более высокие концентрации NaCl, особенно 25 и 30 г/л, привели к ингибированию роста бактерий и синтезу полимера.
2. Исследование молекулярно-массовых характеристик полимера показало, что увеличение концентрации NaCl с 0 до 15 г/л сопровождалось увеличением среднечисловой и средневесовой молекулярной массы полимера соответственно с 217 и 770 до 276 и 997 кДа.
3. Культивирование бактерий Cupriavidus eutrophus B10646 в присутствии NaCl сопровождалось изменениями в жирнокислотном составе внутриклеточных липидов, заключающееся в увеличении коэффициента насыщенности липидов за счет снижения ненасыщенных ЖК (16:1ш7, 18:1ш7) и увеличения насыщенных (16:0, 18:0).



1. Васнев В .А. Биоразлагаемые полимеры. Высокомолекулярные соединения. Сер. Б. М., 1997. Т. 39. № 12. С. 2073-2086.
2. Волова, Т.Г. Влияние лимитирования роста на накопление полиоксибутирата у водородокисляющих бактерий / Т.Г. Волова, Я.В. Федорова, Г.С. Калачева // В кн.: Материалы Всес. конф. Лимитирование и ингибирование роста микроорганизмов. - Пущино, 1989. - С. 16-24.
3. Волова, Т.Г. Регуляция синтеза микробного полиоксибутирата параметрами среды / Т.Г. Волова, Г.С. Калачева, Я.В. Федорова // В сб.: Микробная биоконверсия. Рига, 1990. - С. 119-129.
4. Волова, Т.Г. Влияние условий роста на накопление полиоксибутирата водородными бактериями / Т.Г. Волова, Г.С. Калачева, В.М. Константинова, А.П. Пузырь // Прикладная биохимия и микробиология, 1992а. - Т. 28. - С. 221-222.
5. Волова, Т.Г. Получение и исследование физико-химических свойств микробных полиоксиалканоатов / Т.Г. Волова, С.Г. Луковенко, А.Д. Васильев // Биотехнология, 1992. - № 1. - С. 19-22.
6. Волова, Т.Г. Беляева О.Г., Плотников В.Ф. Биосинтез гетерополимерных полиоксиалканоатов хемолитотрофными бактериями / Т.Г. Волова, О.Г. Беляева, В.Ф. Плотников // Микробиология, 1998. - Т. 67. - С. 512-517.
7. Волова, Т.Г. Полиоксиалканоаты (ПОА) - биоразрушаемые полимеры для медицины / Т.Г. Волова, В.И. Севастьянов, Е.И. Шишацкая. - Новосибирск.: СО РАН, 2003. - 330 с.
8. Вторичное использование полимерных материалов / Под ред. Е.Г. Любешкиной. - М., 1985. - 192 с.
9. Вторичные ресурсы: проблемы, перспективы, технология, экономика: Учеб. пособие / Г.К. Лобачев, В.Ф. Желтобрюхов и др. - Волгоград, 1999. - 180 с.
10. Заварзин, Г.А. Водородные бактерии и карбоксидобактерии / Г.А. Заварзин. - М.: Наука, 1978. - 240 с.
11. Лобачева Г. К. Комплексный подход к решению организационно-технических проблем предотвращения загрязнения природной среды/ Соавт.: Лобачева Г. К., Солодков С. А., Гучанова И. Ж., Желтобрюхов В. Ф., Шишенко С. В.// Журнал “Проблемы региональной экологии”, 1999 г. - №3. - С. 48-60.
12. Одесс, В.И. Вторичные ресурсы: хозяйственный механизм использования / В.И. Одесс. - М., 1988. - 15 с.
13. Пономарева, В.Т. Использование пластмассовых отходов за рубежом / В.Т. Пономарева, Н.Н. Лихачева, З.А. Ткачик // Пластические массы, 2002. - № 5. - С. 44-48.
14. Утилизация и вторичная переработка полимерных материалов: Учеб. пособие / А.С. Клинков, П.С. Беляев, М.В. Соколов. - Тамбов: ТГТУ, 2005. - 80 с.
15. Шлегель, Г.Общая микробиология / Г. Шлегель. - М.: Мир,1987.- 567 с.
16. Alejandra Rodrfguez-Contreras. Poly[(R)-3-hydroxybutyrate]
production under different salinity conditions by a novel Bacillus megaterium strain/ Alejandra Rodrfguez-Contreras, Martin Koller, Gerhart Braunegg and Marfa Soledad Marque' s-Calvo// New Biotechnology, 2016. V. 33. P. 73-77.
17. Anderson, A.J. Occurrence, metabolism, metabolic role, and industrial uses of bacterial polyhydroxyalkanoates / A.J. Anderson, E.A. Dawes // Microbiol. Rev., 1990. - V. 54. - P. 450-472.
18. Anderson, A.J. Biosynthesis and composition of bacterial poly(hydroxyalkanoates) / A.J. Anderson, G.W. Haywood, E.A. Dawes // Biol. Macromol, 1990. - V. 12. - P. 102-105.
19. Akiyama, M. Production of poly(3-hydroxyalkanoates) from
a,o-alkanedioic acids and hydroxylated fatty acids by Alcaligenes sp. / M.
Akiyama, Y. Doi // Biotechnol. Lett., 1993. - V. 15. - P. 163-168.
20. Augusta, J. A rapid evaluation plate-test for the biodegrability of plastics / J. Augusta, H. Widdecke // Appl. Microbiol. Biotechnol., 1993. - V. 39. - P. 673-678.
21. Cain R.B. Microbial degradation of synthetic polymers / In: Frey J.C., Gadd G.M., Herbert R.A., Jones C.W., Watson-Craik I.A. // 48 symposium of the society for general microbiology (University of Cardiff, March 1992): Bath Press. - UK, 1992. - P. 293-338.
22. Cervantes-Uc J. M. Biosynthesis and characterization of polyhydroxyalkanoates produced by an extreme halophilic bacterium, Halomonas nitroreducens, isolated from hypersaline ponds/ J. M. Cervantes-Uc, J. Catzin, I. Vargas, W. Herrera-Kao, F. Moguel, E. Ramirez, S. Rincon-Arriaga and G. Lizama- Uc// Journal of Applied Microbiology, 2014. - V. 117. - P. 1056—1065.
23. Chen G. Q. A microbial polyhydroxyalkanoates (PHA) based bio- and materials industry// Chem Soc Rev., 2009. - V. 38. - P. 2434-46
24. Chen G. Q. Plastics derived from biological sources: present and future: a technical and environmental review/ Chen G. Q, Patel M. Chem Rev., 2012. - V. 112. - P. 2082-99.
25. Chen G. Q. Microbial production and applications of chiral hydroxyalkanoates/ Chen G. Q, Wu Q. // Appl Microbiol Biotechnol., 2005. - V. 67.- P. 592-9.
26. Chen C. W. Enzymatic extruded starch as a carbon source for the production of poly(3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate) by Haloferax mediterranei. Chen C. W, Don T. M, Yen H. F. // Process Biochem., 2006. - V. 41.- P. 2289-96.
27. De Koning, G.J.M. Biosynthesis of poly-(R)-3-hydroxyalkanoate: an emulsion polymerization / G.J.M. De Koning, I.A. Maxwell // Environ Polym. Degrad., 1993. - V. 1. - P. 223-226.
28. Delgado-Garda M. Halophilic hydrolases as a new tool for the biotechnological industries / Delgado-Garda M, Valdivia-Urdiales B, Aguilar- V. 92. - P. 2575-80.
29. Dhanya Moorkoth. Production and characterization of poly(3-hydroxy butyrate-co-3 hydroxyvalerate) (PHBV) by a novel halotolerant mangrove isolate/ Dhanya Moorkoth, Kesavan Madhavan Nampoothiri// Bioresource Technology, 2016. - V. 201. - P. 253-260.
30. Doi, Y. Biodegradation of microbial copolyesters: poly(3- hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate) and poly(3-hydroxybutyrate-co-4- hydroxyvalerate) / Y. Doi, M. Kunioka // Macromolecules, 1990. - V. 23. - P. 26¬31.
31. Doi, Y. Production of copolyesters of 3-hydroxybutyrate and 3-hydroxyvalerate by Alcaligenes eutrophus from butyric and pentanoic acids / Y. Doi, A. Tamaki, M. Kunioka, K. Soga // Appl. Microbiol. Biotechnol., 1988. - V. 28. - P. 330-334.
32. Don T. M. Preparation and characterization of 6 poly(hydroxyalkanoate) from the fermentation of Haloferax mediterranei. Don T. M., Chen C.W., Chan T.H. // J Biomater Sci Polym Ed., 2006. - V. 17. - P. 1425¬38.
33. Fernandez-Castillo R. Accumulation of poly(beta-hydroxybutyrate) by halobacteria/ Fernandez-Castillo R, Rodriguez-Valera F, Gonzalez-Ramos J, Ruiz- Berraquero F. // Appl Environ Microbiol., 1986. - V. 51. - P. 214-6.
34. Geetanjali Manchanda. Salinity and its effects on the functional biology of legumes/ Geetanjali Manchanda, Neera Garg// Acta Physiol Plant., 2008. - V. 30.
- P. 595-618.
35. Green, Ph.R. Formation of short chain|medium chain lehgth polyhydroxyalkanoate cjpolymers by fatty acid ^-oxidation inhibited Ralstonia eutropha / Ph.R. Grenn, J. Kemper, L. Schechtman, L. Guo, M. Satkowski, S. Fiedler, A. Steinbuchel, H.A. Rehm // Biomacromol., 2002. - V. 3. - P. 208-213.
36. Han J. Molecular characterization of the phaECHm genes, required for biosynthesis of poly(3-hydroxybutyrate) in the extremely halophilic archaeon
Haloarcula marismortui/ Han J, Lu Q, Zhou L, Zhou J, Xiang H. // Appl Environ Microbiol., 2007. - V. 73. - P. 6058-65.
37. Hozzein WN. Characterization of a new protease produced by a thermohalo alkali tolerant Halobacillus strain / Hozzein WN, Reyad AM, Hameed MSA, Ali MIA. // J Pure Appl Microbiol., 2013. - V. 7. - P. 509-15
38. Ibrahim, M. H. Zobellella denitrificans strain MW1, a newly isolated bacterium suitable for poly(3-hydroxybutyrate) production from glycerol./ Ibrahim, M. H. Steinbuchel, J. Appl. Microbiol., 2010. - V. 108. - P. 214-25.
39. Ibrahim, M. H. Poly(3-hydroxybutyrate) production from glycerol by Zobellella denitrificans MW1 via high-cell-density fed-batch fermentation and simplified solvent extraction/ Ibrahim, M. H. a; Steinbuchel, A.// Appl. Environ. Microbiol., 2009. - V. 75. - P. 6222-31.
40. Jendrossec, D. Biodegradation of polyhydroxyalkanoic acids / D. Jendrossec, A. Schirmer, H.G. Schlegel // Appl. Microbiol. Biotechnol., 1996. - V. 46. - P. 451-463.
41. Jin Yin. Halophiles, coming stars for industrial biotechnology/ Jin Yin, Jin-Chun Chen, Qiong Wu, Guo-Qiang Chen// Biotechnology Advances, 2014. V. 33. - P. 1433-1442.
42. Jorge Quillaguaman, Synthesis and production of polyhydroxyalkanoates by halophiles: current potential and future prospects/ Jorge Quillaguaman, Hector Guzman, Doan Van-Thuoc, Rajni Hatti-Kaul// Appl Microbiol Biotechnol, 2010. V.85. - P. 1687-1696.
43. Kamnev A. A. Endophytic and epiphytic strains of Azospirillum brasilense respond differently to heavy metal stress/ Kamnev A.A., Tugarova A.V., Antonyuk L.P.// Microbiology, 2007. - V. 76. - P. 809-811.
44. Karima H. A. Salama. NaCl-induced changes in plasma membrane lipids and proteins of Zea mays L. cultivars differing in their response to salinity/ Karima H. A. Salama, Mohamed Magdy F. Mansour, Fatma Z. M. Ali, Ayman F. Abou-hadid// Acta Physiol Plant., 2007. - V. 29. - P. 351-359.
45. Khanna, S. Recent advances in microbial polyhydroxyalkanoates / S. Khanna, K. Ashok // Process Biochemistry, 2004. - V. 40. - P. 607-619.
46. Kirk RG. Ultrastructure of two species of Halobacterium/ Kirk RG, Ginzburg M. // J Ultrastruct Res., 1972. - V. 41. - P. 80-94.
47. Kijchavengkul T. Perspective compostability of polymers/
Kijchavengkul T., Auras R. // Polymer International, 2008. - V. 57. - P. 793-804.
48. Kim, B.S. Control of glucose feeding using exit gas data and its application to the production of PHB from tapioca hydrolysates by Alcaligenes eutrophus / B.S. Kim, H.N. Chang // Biotechnol. Tech., 1995. - V. 9. - P. 311¬314.
49. Kim, J.S. Production of poly(3-hydroxybutyrate-co-4-hydroxybutyrate) by Ralstonia eutropha / J.S. Kim, B.H. Lee, B.S. Kim // Biochemical Engineering Journal, 2005. - V. 23. - P. 169-174.
50. Koller M. Biosynthesis of high quality polyhydroxyalkanoate co-and terpolyesters for potential medical application by the archaeon Haloferax mediterranei/ Koller M, Hesse P, Bona R, Kutschera C, Atlic A, Braunegg G. // Macromol Symp., 2007. - V. 253. - P. 33-9.
51. Kunioka, M. Production of biodegradable copolyesters of 3-
hydroxybutyrate and 4-hydroxybutyrate by Alcaligenes eutrophus / M. Kunioka, Y. Kawaguchi, Y. Doi // Apll. Microbiol. Biotechnol., 1989a. - V. 30. - P.
569-573.
52. Kunioka, M. New bacterial copolyesters produced in Alcaligenes eutrophus from organic acids / M. Kunioka, Y. Nakamura, Y. Doi // Polym. Commun., 1989b. - V. 29. - P.174-176.
53. Lee, I.Y. Poly(hydroxybutyrate-co-hydroxyvalerate) from glucose and
valerate in Alcaligenes eutrophus / I.Y. Lee, M.K. Kim, G.J. Kim, H.N.
Chang, Y.H. Park // Biotechnol. Lett., 1995. - V. 17. - P. 571-574.
54. Lee, Y.H. Regulating the molar fraction of 4-hydroxybutyrate in poly(3-hydroxybutyrate-4-hydroxybutyrate) biosynthesis by Ralstonia eutropha using propionate as a stimulator / Y.H. Lee, M.S. Kang, Y.M. Jung // Journal of Bioscience and Bioengineering, 2000. - V. 89. - P. 380-383.
55. Legault B. A. Environmental genomics of “Haloquadratum walsbyi” in a saltern crystallizer indicates a large pool of accessory genes in an otherwise coherent species/ Legault BA, Lopez-Lopez A, Alba-Casado JC, Doolittle WF, Bolhuis H, Rodriguez-Valera F, et al. // BMC Genomics., 2006. - V. 7. - P. 171.
56. Lillo J. G. Effects of culture conditions on poly(P-hydroxybutyric) acid production by Haloferax mediterranei / Lillo JG, Rodriguez-Valera F. // Appl Environ Microbiol., 1990. - V. 56. - P. 2517-21.
57. Louis P. Characterization of genes for the biosynthesis of the compatible solute ectoine from Marinococcus halophilus and osmoregulated expression in Escherichia coli / Louis P, Galinski E. // Microbiology, 1997. - V. 143. - P. 1141-9.
58. Madison L.L. Metabolic engineering of poly(3-hydroxyalkanoates): from DNA to plastic/ Madison LL, Huisman GW// Microbiol Mol Biol Rev MMBR, 1999. - V. 63 - P. 21-53
59. Marchessault, R.H. Chemical, enzymatic and microbial degradation of
bacterial and synthetic poly-R-hydroxyalkanoates / R.H. Marchessault, C.J.
Monasterios, J.J. Jesudason, B. Ramsay, I. Saracovan, B. Saito // Polym. Degrad. Stab., 1994. - V. 45. - P. 187-196.
60. Mergeart, J. Biodiversity of microorganisms that degrade bacterial and synthetic polyesters / J. Mergeart, J. Swings // Microbiol., 1996. - V. 17. - P. 463¬469.
61. Mothes, G. Production of PHB from Crude Glycerol/ Mothes, G.; Schnorpfeil, C.; Ackermann, J.-U.// Eng. Life Sci., 2007. - V. 5. - P. 475-479.
62. Obruca, S. Production of poly(3- hydroxybutyrate-co-3- hydroxyvalerate) by Cupriavidus necator from waste rapeseed oil using propanol as a precursor of 3-hydroxyvalerate/ Obruca, S.; Marova, I.; Snajdar, O.; Mravcova, L.; Svoboda, Z.// Biotechnol. Lett., 2010. - V. 32. - P. 1925-32.
63. Oren A. Bioenergetic aspects of halophilism // Microbiol Mol Biol Rev., 1999. - V. 63. - P. 334-8.
64. Oren A. Diversity of halophilic microorganisms: Environments, phylogeny, physiology, and applications // Ind Microbiol Biotechnol., 2002. - V. 28.
- P. 56-63.
65. Oren A. Microbial life at high salt concentrations: phylogenetic and metabolic diversity // Saline Syst., 2008. - V. 4. - P. 2.
66. Palmeiro-Sanchez T. Transient concentrations of NaCl affect the PHA accumulation in mixed microbial culture/ T. Palmeiro-Sanchez, A. Fra-Vazquez, N. Rey-Martrnez, J. L. Campos, A. Mosquera-Corral// Journal of Hazardous Materials, 2016. - V. 306. - P. 332-339.
67. Pearl Passanha. The use of NaCl addition for the improvement of polyhydroxyalkanoate production by Cupriavidus necator/ Pearl Passanha , Gopal Kedia, Richard M. Dinsdale, Alan J. Guwy, Sandra R. Esteves// Bioresource Technology, 2014. - V. 163. - P. 287-294.
68. Pham T.H. The role of polyhydroxyalkanoate biosynthesis by Pseudomonas aeruginosa in rhamnolipid and alginate production as well as stress tolerance and biofilm formation/ Pham T.H., Webb, J.S., Rehm, B.H.A.// Microbiology, 2004. - V. 150. - P. 3405-3413.
69. Philip S. Polyhydroxyalkanoates: biodegradable polymers with a range of applications/ Philip S, Keshavarz T, Roy I. // J Chem Technol Biotechnol., 2007.
- V. 82. - P. 233-47.
70. Pratiksha Bhadauriya. NaCl induced metabolic changes in the diazotrophic cyanobacterium Anabaena cylindrica/ Pratiksha Bhadauriya, Radha Gupta, Surendra Singh, Prakash Singh Bisen// World J Microbiol Biotechnol., 2009. V. 25. - P. 341-345.
71. Quillaguaman J. Synthesis and production of polyhydroxyalkanoates by halophiles: current potential and future prospects / Quillaguaman J, Guzman H, Van-Thuoc D, Hatti-Kaul R. // Appl Microbiol Biotechnol., 2010. - V. 85. - P. 1687-96.
72. Roberts M. F. Organic compatible solutes of halotolerant and halophilic microorganisms // Saline Syst., 2005. - V. 1. - P. 1-30.
73. Rodriguez-Valera F. Halobacteria as producers of
polyhydroxyalknoates/ Rodriguez-Valera F, Lillo JAG. // FEMS Microbiol Rev., 1992. - V. 103. - P. 181-6.
74. Setati M. E. Diversity and industrial potential of hydrolase-producing halophilic/ halotolerant eubacteria. // Afr J Biotechnol., 2010. - V. 9. - P. 1555-60.
75. Steinbuchel, A. Diversity of bacterial polyhydroxyalkanoic acids / A. Steinbuchel, H.E. Valentin // FEMS Microbiol Lett., 1995. - V. 128. - P. 219-228.
76. Stubbe, J. Polyhydroxyalkanoate (PHA) hemeostasis: the role of PHA synthase / J. Stubbe, J. Tian // Nat. Prod. Rep., 2003. - V. 20. - P. 445-457.
77. Sudesh, K. Synthesis, structure and properties of polyhydroxyalkanoates: biological polyesters / K. Sudesh, H. Abe, Y. Doi // Prog. Polym. Sci., 2000. - V. 25. - P. 1503-1555.
78. Tran Huu Phonga. Biosynthesis of poly(3-hydroxybutyrate) and its copolymers by Yangia sp. ND199 from different carbon sources/ Tran Huu Phonga, Doan Van Thuoc, Kumar Sudesh// International Journal of Biological Macromolecules, 2016. - V. 84. - P. 361-366.
79. Van-Thuoc D. Polyester production by halophilic and halotolerant bacterial strains obtained from mangrove soil samples located in Northern Vietnam/ Van-Thuoc D, Huu-Phong T, Thi-Binh N, Thi-Tho N, Minh-Lam D, Quillaguaman J. // Microbiologyopen., 2012. - V. 1. - P. 395-406.
80. Vargas C. Unravelling the adaptation responses to osmotic and temperature stress in Chromohalobacter salexigens, a bacterium with broad salinity tolerance / Vargas C, Argandona M, Reina-Bueno M, Rodriguez-Moya J, Fernandez-Aunion C, Joaquin JN. // Saline Syst., 2008. - V. 4. - P. 14.
81. Ventosa A. Biology of moderately halophilic aerobic bacteria / Ventosa A, Nieto JJ, Oren A. // Microbiol Mol Biol Rev., 1998. - V. 62. - P. 504-44.
82. Volova T.G. Degradable Polymers: Production, Properties and Applications / Volova T.G., Shishatskaya E.I., Sinskey A.J. // New York: Nova Science Pub., 2013. - P. 380.
83. Witt, U. Biodegradation of polyester copolymers containing aromatic compounds / U. Witt, R.J. Meller, J. Klein // J.M.S. Pure Appl. Chem., 1997. - V. 32. - P. 851-856.
84. Yue H. A seawater based open and continuous process for polyhydroxyalkanoates production by recombinant Halomonas campaniensis LS21 grown in mixed substrates / Yue H, Ling C, Yang T, Chen X, Chen Y, Deng H, et al. // Biotechnol Biofuels., 2014. - V. 7. - P. 108.


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.



Подобные работы


©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ
.