Введение 5
Глава 1. Обзор литературы 8
1.1 Эпигенетические изменения 8
1.1.2 Метилирование ДНК 9
1.1.3 МикроРНК 13
1.1.4 Модификация гистонов 15
1.2. Метилирование ДНК при раке 17
1.3 Внеклеточные ДНК 19
Глава 2. Материалы и методы исследования 23
2.1 Материалы 23
2.2 Методы исследования 23
2.2.1 Выделение ДНК 23
2.2.2 Бисульфитная модификация 24
2.2.3 Метил-специфичная полимеразная цепная реакция 26
2.2.3.1 RARB2 (retinoic acid receptor beta) 26
2.2.3.2 RASSF1A (ras association domain family member 1) 27
2.2.3.3 LINE-1 27
2.3 Статистическая обработка данных 28
ВЫВОДЫ 51
Заключение 52
Список использованной литературы
Рак легкого (РЛ) является самой распространенной формой злокачественного новообразования в мире и ведущей причиной смерти от онкологических заболеваний (1,8 случаев смерти) [8]. Тяжесть заболевания и низкая выживаемость при раке легкого связаны, прежде всего, с поздним выявлением опухоли. Следовательно, существует крайняя необходимость в разработке новых методов для прогнозирования и выявления первичной опухоли на ранних стадиях[13].
Известно, что при развитии злокачественного новообразования в клетке накапливаются различные генетические и эпигенетические изменения. Основной эпигенетической модификацией является метилирование ДНК в последовательностях цитозин-гуанин [1]. Метилирование характеризуется присоединением к цитозиновому остатку метильной группы (-CH3) с помощью деметилтрансфераз в 5-ю позицию пиримидиного кольца.
Изменение уровня метилирования является одним из ранних событий при развитии опухоли. Кроме того, опухолевые клетки характиризуются другим метиломом, в отличии от нормальных клеток.
Результаты экспериментальных работ показали, что ретротранспозоны LINE-1приобретают онкогенный потенциал в результате их гипометилирования, а гены-опухолевой супрессии RARB2и RASSF1Aв результате их гиперметилирования, что указывает на их значимость в качестве потенциальных диагностических и прогностических маркеров [3,4,18,24,26].
В составе циркулирующих ДНК (цирДНК), а также в цирДНК, связанных с поверхностью клеток крови (лейкоцитов, эритроцитов) (скп- цирДНК) могут быть выявлены фрагменты абберантно-метилированных ДНК промоторных областей генов опухолевой супрессии. Показано, что при анализе как свободно циркулирующих цирДНК, так и скп-цирДНК в крови больных раком легкого повышается чувствительность обнаружения метилированного аллеля гена [9.15.41].
На сегодняшний день отсутствуют данные относительно характера изменения уровня метилирования ретротранспозонов, генов опухолевой супрессии в цирДНК в ответ на противоопухолевое лечение. В связи с этим перспективным является исследование характера изменений уровня метилирования генов опухолевой супрессии и ретротранспозонов в составе цирДНК крови в ответ на терапию при раке легкого.
Цель работы: проведение сравнительного анализа уровня метилирования патогенетически значимых генов в составе цирДНК у больных раком легкого до и после комбинированной терапии, на этапах динамического наблюдения.
Задачи:
1. Формирование банка цирДНК из фракций крови от здоровых лиц и больных раком легкого.
2. Сбор анамнеза, подбор больных и формирование групп для исследования
3. Выбор аберрантно метилированных генов на основе анализа существующих баз данных, содержащих сведения об увеличении уровня их экспрессии в тканях опухолей легкого.
4. Сравнительный анализ уровня метилирования генов в составе циркулирующих ДНК крови здоровых доноров и больных РЛ.
5. Оценка значимости исследуемых ДНК-маркеров для определения эффективности комбинированной терапии и выявления рецидивов болезни на образцах крови, собранных в процессе динамического наблюдения.
6. Анализ данных об изменениях уровня метилирования генов в составе цирДНК в сопоставлении с патогенетически значимыми признаками и исходом заболевания для оценки прогностической значимости
В данной работе был проведен анализ уровня метилирования LINE-1 в скп-цир ДНК у больных РЛ на этапах динамического наблюдения (после 2х курсов неоадъювантной химиотерапии и последующего хирургического вмешательства.) Также был проведен эпигенетический сравнительный анализ для генов опухолевой супрессии RARB2 и RASSF1A в цирДНК и скп-цирДНК у больных НМРЛ.
Показана значимость увеличения индекса метилирования LINE-1 элементов в скп-цирДНК крови для мониторинга состояния больных РЛ после проведенного комбинированного лечения. Выявлена зависимость динамики изменения от гистологического типа опухоли: изменения циркулирующего ДНК-маркера при ПКРЛ были более значительными после завершения комбинированного лечения, тогда как при АК существенные изменения показателя индекса метилирования LINE-1 определялись на первом этапе лечения (после химиотерапии). Тренды изменений индекса метилирования LINE-1 в цирДНК оказались различны в сопоставлении уровня ответа опухоли на химиотерапию, что говорит об интегральной связи этого серологического маркера с патологическим процессом при РЛ. Полученные результаты говорят о перспективности исследования на расширенных выборках больных РЛ значимости индекса метилирования LINE-1 в цирДНК крови для прогноза ответа опухоли на лечение, оценки эффективности терапии и раннего выявления рецидивов.
Было выявлено что уровень метилирование RARB2 и RASSF1A в цирДНК плазмы и скп-цирДНК значимо выше в крови у больных с НМРЛ по сравнению со здоровыми лицами. Одновременный анализ двух фракций цирДНК позволил повысить чувствительность и специфичность анализа метилированных маркеров. Также было подтверждено, что индекс метилирования в RARB2 в скп-цирДНК связан с поздней стадией заболевания. После комбинированной терапии концентрация метилированных маркеров в крови значимо снижалась.. Индекс метилирования после частичной или полной резекции опухоли был сопоставимым с значениями ИМ для здорового контроля. Фракция скп-цирДНК характеризовалась более выраженным снижением ИМ, чем цирДНК плазмы, что подтверждает наиболее информативность данного маркера. Было выявлено повышение уровня метилированного маркера через 9 месяцев после лечения у пациентов с рецидивами. Данные показатели говорят об перспективности применения данных маркеров для мониторинга рецидивов опухоли.
1. Эллис С.Д., Дженювейн Т., Рейнберг Д., Эпигенетика // Техносфера. -
2010. - 150 с.
2. Andrew J Bannister. Regulation of chromatin by histone modifications / Andrew J Bannister, Tony Kouzarides // Cell Res. - 2011. - №.21(3). - Р. 381-395.
3. Aparicio A. LINE-1 methylation in plasma DNA as a biomarker of activity of DNA methylation inhibitors in patients with solid tumors / Aparicio A., North B., Barske L., Wang X., Bollati V., Weisenberger D., Yoo C., Tannir N., Horne E., Groshen S., Jones P., Yang A., Issa J.P. // Epigenetics. - 2009. - №
4. - Р. 176-184.
4. Arai E., DNA methylation profiles in precancerous tissue and cancers: carcinogenetic risk estimation and prognostication based on DNA methylation status / Arai E., Kanai Y. // Epigenomics. - 2010. - №2. - Р. 467-81.
5. Azam Moosav. Role of Epigenetics in Biology and Human Diseases / Azam Moosav, Ali Motevalizadeh Ardekani // Iran Biomed J. - 2016. - №20(5). - Р. 246-258.
6. Baba Y. Clinical implications of the LINE-1 methylation levels in patients with gastrointestinal cancer / Baba Y, Murata A, Watanabe M, Baba H. // Surg Today.- 2014. - № 44. - Р.1807-1816.
7. Baba Y. Epigenomic diversity of colorectal cancer indicated by LINE-1 methylation in a database of 869 tumors / Baba Y, Huttenhower C, Nosho K, Tanaka N, Shima K, Hazra A, Schernhammer ES, Hunter DJ, Giovannucci EL, Fuchs CS, Ogino S. // Mol Cancer. - 2010. - № 9. - Р. 125 .
8. Balgkouranidou I. Lung cancer epigenetics: emerging biomarkers / Balgkouranidou I., Liloglou T, Lianidou ES. // Biomark Med. - 2013. - №7. - Р. 49-58.
9. Begum S., Brait M., Dasgupta S., et al. An epigenetic marker panel for detection of lung cancer using cell-free serum DNA // Clin. Cancer Res. 2011.
- №17. Р. 4494-503.
10. Bergman Y, Cedar H. DNA methylation dynamics in health and disease // Nat Struct Mol Biol. - 2013. - №20. - Р. 274-281.
11. Brodie, S. A. et al. Class I HDACs are mediators of smoke carcinogen-induced stabilization of DNMT1 and serve as promising targets for chemoprevention of lung cancer // Cancer Prev Res. - 2014. - №7. - Р. 351-361.
12. Cedar H, Bergman Y. // Programming of DNA methylation patterns. Annu Rev Biochem. - 2012. - № 81. - Р. 97-117.
13. Charles S. Lung Cancer: Epidemiology, Etiology, and Prevention / Lung Cancer: Epidemiology, Etiology, and Prevention // Clin Chest Med. - 2011. - №32(4).
14. Costa F.F. Epigenomics in cancer management // Cancer Manag Res. - 2010. -№2. - Р. 255- 265.
15. Dawson, S.J., et al. Analysis of circulating tumor DNA to monitor metastatic breast cancer // The New England journal of medicine. - 2013.- №368. - Р. 1199-1209
16. Dietrich D, Kneip C, Raji O, Liloglou T, Seegebarth A, Schlegel T, et al. Performance evaluation of the DNA methylation biomarker SHOX2 for the aid in diagnosis of lung cancer based on the analysis of bronchial aspirates // Int J Oncol. - 2012. -№40. - Р. 825-32.
17. Dumitrescu R. G. Epigenetic markers of early tumor development // Methods Mol. Biol. - 2012. - №863. - Р. 3-14.
18. Easwaran H. A DNA hypermethylation module for the stem/progenitor cell signature of cancer / Easwaran H., Johnstone S.E., Van Neste L., Ohm J., Mosbruger T., Wang Q., Aryee M.J., Joyce P., Ahuja N., Weisenberger D., Collisson E., Zhu J., Yegnasubramanian S., Matsui W., Baylin S.B. // Genome research. - 2012. - №22. - Р. 837-849
19. Ekim M, Caner V, Buyukpinarbasili N, Tepeli E, Elmas L, Bagci G. Determination of O(6)-methylguanine DNA methyltransferase promoter methylation in non-small cell lung cancer // Genet Test Mol Biomarkers. -
2011. - №15. - Р. 357-60.
20. Forshew T, Murtaza M, Parkinson C, et al. Noninvasive identification and monitoring of cancer mutations by targeted deep sequencing of plasma DNA // Sci Transl Med. - 2012. - №4.- Р. 136-68.
21. Gao X, Jia M, Zhang Y, Breitling LP, Brenner H. DNA methylation changes of whole blood cells in response to active smoking exposure in adults: asystematic review of DNA methylation studies // Clin Epigenetics. - 2015.- №7. - Р.113.
22. Hansen, K.D. Increased methylation variation in epigenetic domains across cancer types / Timp W., Bravo H.C., Sabunciyan S., Langmead B., McDonald O.G, Wen B., Wu H., Liu Y. // Nature genetics. - 2011. - №43. - P.768-775.
23. Heyn H. DNA methylation profiling in the clinic: applications and challenges / Heyn H., Esteller M. // Nature Reviews Genetics. - 2012. - №. 13. - Р. 679¬692.
24. Hoshimoto S. AIM1 and LINE-1 epigenetic aberrations in tumor and serum relate to melanoma progression and disease outcome / Hoshimoto S., Kuo C.T., Chong K.K., Takeshima T.L., Takei Y., Li M.W., Huang S.K., Sim M.S., Morton D.L., Hoon D.S. // J Invest Dermatol.- 2012. - №132. - Р. 1689-1697.
25. Hu Z. Genetic polymorphisms in the precursor MicroRNA flanking region and non-small cell lung cancer survival / Hu Z, Shu Y, Chen Y, Chen J, Dong J, Liu Y, Pan S, Xu L, Xu J, Wang Y, Dai J, Ma H, Jin G, Shen H. // Am J Respir Crit Care Med. - 2011. - №183. - Р. 641-8.
26. Ikeda K. Long interspersed nucleotide element 1 hypomethylation is associated with poor prognosis of lung adenocarcinoma / Ikeda K., Shiraishi K., Eguchi A., Shibata H., Yoshimoto K., Mori T., Baba Y., Baba H., Suzuki M. // Ann Thorac Surg .- 2013. - №96. Р. 1790-1794.
27.Irizarry, R. A. et al. The human colon cancer methylome shows similar hypo- and hypermethylation at conserved tissue-specific CpG island shores // Nature genetics . - 2014. - №41, Р. 178-186.
28.Ito, S., et al., Tet proteins can convert 5-methylcytosine to 5-formylcytosine and 5-carboxylcytosine // Science. - 2011. - №333(6047). - Р. 1300-3.
29. Langevin S.M. The fate is not always written in the genes: epigenomics in epidemiologic studies / Langevin S.M., Kelsey K.T. // Environ Mol. Mutagenesis. - 2013. - №54. Р. -533-41.
30. Lee SM, Lee WK, Kim DS, Park JY. Quantitative promoter hypermethylation analysis of RASSF1A in lung cancer: comparison with methylation-specific PCR technique and clinical significance // Mol. Med. Rep. - 2012. - №5.- Р. 239-44.
31. Li W. Association of 50-CpG island hypermethylation of the FHIT gene with lung cancer in southerncentral Chinese population / Li W., Deng J, Jiang P, Tang J. // Cancer Biol Ther. - 2010. - №10. - Р.997-1000.
32. Liloglou T. Epigenetic biomarkers in lung cancer / Liloglou T, Bediaga NG, Brown BR, Field JK, Davies MP. // Cancer Lett. - 2014.- №342. - Р. 200-12.
33. Lu F. DNA methylation and nonsmall cell lung cancer / Lu F, Zhang HT. // Anat Rec. - 2011. - № 294. - Р. 1787-95.
34. Luis A. Diaz Jr and Alberto Bardelli. Liquid Biopsies: Genotyping Circulating Tumor DNA // J Clin Oncol. - 2014. - №32. - Р. 579-586
35. M. Mohawsh Al Zeyadi. Molecular and Genetic Aspects of Lung Cancer // Biotechnology & Biotechnological Equipment. - 2013. - № 27 (5). - Р. 4051-4060.
36. Nestor, C., et al., Enzymatic approaches and bisulfite sequencing cannot distinguish between 5-methylcytosine and 5-hydroxymethylcytosine in DNA // Biotechniques. - 2010. - № 48(4). - Р. 317-9.
37. Niklinska W, Naumnik W, Sulewska A, Kozlowski M, Pankiewicz W, Milewski R. Prognostic significance of DAPK and RASSF1A promoter hypermethylation in non-small cell lung cancer (NSCLC) // Folia Histochem Cytobiol. - 2009. -№. 47. - Р.275-80.
38. Nikolaidis G, Raji OY, Markopoulou S, Gosney JR, Bryan J, Warburton C, et al. DNA methylation biomarkers offer improved diagnostic efficiency in lung cancer // Cancer Res. - 2012. - №72. - Р.5692-701.
39.Omar MF, Ito K, Nga ME, et al. RUNX3 downregulation in human lung adenocarcinoma is independent of p53, EGFR or KRAS status // Pathol.Oncol. Res. - 2012. - №18. Р. 783-92.
40. Ponomaryova A.A., Rykova E.Y., Cherdyntseva N.V., Skvortsova T.E., Dobrodeev A.Y., Zav'yalov A.A., Bryzgalov L.O., Tuzikov S.A., Vlassov V.V., Laktionov P.P. 2013. Potentialities of aberrantly methylated circulating DNA for diagnostics and post-treatment follow-up of lung cancer patients. Lung Cancer. 81, 397-403.
41. Ramzy I.I., Omran D.A., Hamad O., Shaker O., Abboud A. 2011. Evaluation of serum LINE-1 hypomethylation as a prognostic marker for hepatocellular carcinoma. Arab J Gastroenterol. 12, 139-142.
42. Rhee Y.Y., Lee T.H., Song Y.S., Wen X., Kim H., Jheon S., Lee C.T., Kim J., Cho N.Y., Chung J.H., Kang G. H. 2015. Prognostic significance of promoter CpGisland hypermethylation and repetitive DNA hypomethylation in stage I lung adenocarcinoma. Virchows Arch. 466, 675-683.
43. Rykova E.Y., Morozkin E.S., Ponomaryova AA, Loseva EM, Zaporozhchenko IA, Cherdyntseva NV, Vlassov V.V., Laktionov P.P. 2012. Cell-free and cell-bound circulating nucleic acid complexes: mechanisms of generation, concentration and content. Expert Opin Biol Ther. 12, S141-153.
44.Sato T. DNA methylation profiles at precancerous stages associated with recurrence of lung adenocarcinoma / Sato T., Arai E., Kohno T. // PLoS One.
- 2013. - №8 - Р. 594.
45.Schmidt B, Liebenberg V, Dietrich D, Schlegel T, Kneip C, Seegebarth A, et al. SHOX2 DNA methylation is a biomarker for the diagnosis of lung cancer based on bronchial aspirates // BMC Cancer. - 2010. - №10. - Р. 600.
46.Schneider KU, Dietrich D, Fleischhacker M, et al. Correlation of SHOX2 gene amplification and DNA methylation in lung cancer tumors // BMC Cancer. - 2011. - №11. - Р. 102.
47.7. Cell-free nucleic acids as biomarkers in cancer patients / Schwarzenbach H., Hoon DS, Pantel K. // Nat Rev Cancer. - 2011. - №11. - Р. 426-437
48.Schwarzenbach H., Nishida N., Calin G.A., Pantel K. 2014. Clinical relevance of circulating cell-free microRNAs in cancer. Nature Rev Clin Oncol. 11, 145-156.
49.Selamat S.A. Genome-scale analysis of DNA methylation in lung adenocarcinoma and integration with mRNA expression / Selamat S.A., Chung B.S., Girard L. // Genome Res. - 2012. - №22. - Р. 1197-211.
50.Smith R. А. Cancer screening in the United States, 2016: A review of current American Cancer Society guidelines and current issues in cancer screening / Smith RA, Andrews K, Brooks D, DeSantis CE, Fedewa SA, Lortet-Tieulent J, Manassaram-Baptiste D, Brawley OW, Wender RC. // CA Cancer J Clin.- 2016. - №66. - Р. 96-114.
51.Sterlacci W, Tzankov A, Veits L, et al. A comprehensive analysis of p16 expression, gene status, and promoter hypermethylation in surgically resected non-small cell lung carcinomas. // J Thorac Oncol. - 2011. - №6. Р. 1649-57.
52.Sterlacci W., Tzankov A., Veits L., et al. A comprehensive analysis of p16 expression, gene status, and promoter hypermethylation in surgically resected non-small cell lung carcinomas // J Thorac Oncol. - 2011. - №6. - Р. 1649-57.
53. Struhl K. Determinants of nucleosome positioning / Struhl K, Segal E. // Nat Struct Mol Biol. - 2013. - №20(3). - Р. 267-79
54.Sunami E. LINE-1 hypomethylation during primary colon cancer progression / Sunami E, de Maat M, Vu A, Turner RR, Hoon DS. // PLoS One. - 2011. -№6. - Р. e18884.
55. Tao, H., Yang, J. J., Hu, W., Shi, K. H. & Li, J. HDAC6 Promotes Cardiac Fibrosis Progression through Suppressing RASSF1A Expression // Cardiology. - 2016. - № 133. - Р.18-26.
56. Terry M.B. DNA methylation in white blood cells Association with risk factors in epidemiologic studies/ Terry MB, Delgado-Cruzata L, Vin-Raviv N, Wu HC, Santella RM. // Epigenetics.- 2011. - № 6. - Р.828-837.
57. Tost J. DNA methylation signatures in circulating cell-free DNA for the monitoring of at-risk populations progressing to lung cancer // EBioMedicine.- 2015. -№2. - Р. 796-7.
58. Verri C, Roz L, Conte D, et al. Fragile histidine triad gene inactivation in lung cancer: the European Early Lung Cancer project // Am. J Respir Crit Care Med. - 2009. - №179. - Р. 396-401.
59. Y. Baba et al. LINE-1 Methylation and CDK6 in Esophageal Cancer // Clin Cancer Res. - 2014. - №20(5). - Р. 1114-24
60. Yu GP, Ji Y, Chen GQ, et al. Application of RUNX3 gene promoter methylation in the diagnosis of non-small cell lung cancer // Oncol. Lett. -
2012. - №3. Р. 159-62.
61. Yuanyuan Li. DNA methylation detection: Bisulfite genomic sequencing analysis / Yuanyuan Li., Trygve O. Tollefsbol. // Methods Mol Biol. - 2011. - № 791. - Р. 11-21.
62. Zhang Y, Schottker B, Florath I, Stock C, Butterbach K, Holleczek B, et al.Smoking-associated DNA methylation biomarkers and their predictive value for all-cause and cardiovascular mortality // Environ Health Perspect. - 2016. - №124. - Р. 67-74.
63. Zhang Y. Methylation of multiple genes as a candidate biomarker in non¬small cell lung cancer / Zhang Y, Wang R, Song H // Cancer Lett 2011;303:21-8.
64. Heller G, Weinzierl M, Noll C, et al. Genome-wide miRNA expression profiling identifies miR-9-3 and miR-193a as targets for DNA methylation in non-small cell lung cancers // Clin Cancer Res. - 2012. - №18. - Р. 1619-29.
65. Junaid Ansari. Epigenetics in non-small cell lung cancer: from basics to therapeutics / Junaid Ansari, Rodney E. Shackelford, Hazem El-Osta // Lung Cancer Res. - 2016. №5(2):- Р. 155-171
66. Qin T. Epigenetic synergy between decitabine and platinum derivatives /QinT., Si J., Raynal N.J., Wang X., Gharibyan V., Ahmed S., Hu X., Jin C., Lu Y., Shu J., Estecio M.R., Jelinek J., Issa J.P.// Clinical Epignetics.- 2015. - №7. Р. 97.
67. Hsu HS, Chen TP, Hung CH, Wen CK, Lin RK, Lee HC, et al. // Characterization of a multiple epigenetic marker panel for lung cancer detection and risk assessment in plasma. - Cancer. - 2007. - №110. - Р. 2019¬26.
68. Kontic M, Stojsic J, Jovanovic D, Bunjevacki V, Ognjanovic S, Kuriger J, et al. // Aberrant promoter methylation of CDH13 and MGMT genes is associated with clinicopathologic characteristics of primary non-small-cell lung carcinoma. Clin Lung Cancer. - 2012. №13. - Р. 297-303.
69. Grijalva CG, Poehling KA, Edwards KM, Weinberg GA, Staat MA, Iwane MK, et al.// Accuracy and interpretation of rapid influenza tests in children. Pediatrics. - 2007. - №.119. Р. 6-11
70. Grimes DA, Schulz KF. // Refining clinical diagnosis with likelihood ratios. Lancet. - 2005. №365. - Р. 1500-5
71. Greene MH, Feng Z, Gail MH. // The importance of test positive predictive valuein ovarian cancer screening. Clin Cancer Res. - 2008. -№14. Р. 7574-9.
72. Ko E, Lee BB, Kim Y, Lee EJ, Cho EY, Han J, et al. // Association of RASSF1A and p63 with poor recurrence-free survival in node-negative stage I—II non-small cell lung cancer. Clin Cancer Res. - 2013.- №19. - Р. 1204-12.
73. Fujiwara K, Fujimoto N, Tabata M, Nishii K, Matsuo K, Hotta K, et al. // Identification of epigenetic aberrant promoter methylation in serum DNA is useful for early detection of lung cancer. Clin Cancer Res. - 2005.- №11. - Р. 1219-25.