СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ 4
ВВЕДЕНИЕ 5
1 Литературный обзор 7
1.1 Культура in vitro: каллус 7
1.2 Роль мелатонина в растениях 8
1.2.1 Мелатонин: структура, синтез и роль в растительных организмах 8
1.2.2 Биосинтез мелатонина у растений 10
1.2.3 Сигнальные пути мелатонина в растениях 13
1.2.4 Физиологические функции мелатонина у растений 17
1.2.5 Влияние мелатонина на устойчивость растений к абиотическому стрессу .20
2 Объект и методы исследования 23
2.1 Объект исследования 23
2.1.1 Семейство Caryophyllaceae - систематика, морфология, экология 25
2.1.2 Особенности вторичного метаболизма представителей семейства
Caryophyllaceae 27
2.2 Методы исследования 29
2.2.1 Приготовление питательной среды 29
2.2.1 Приготовление стерильной посуды 30
2.2.2 Работа в ламинарном боксе и культивирование 31
2.2.3 Построение кривой роста каллусной культуры 31
2.2.4 Определение свободного пролина 32
2.2.5 Определение малонового диальдегида 33
2.2.7 Определение пероксида водорода 34
2.2.8 Определение содержания растворимых фенольных соединений 35
2.2.9 Обработка данных и статистический анализ 36
3 Влияние мелатонина на рост и метаболизм клеточной культуры Lychnis chalcedonica L 37
3.1 Особенности каллусной культуры лихниса 37
3.2 Влияние мелатонина на рост каллусной культуры L. Chalcedonica 47
3.3 Влияние мелатонина на метаболизм клеточной культуры L. Chalcedonica 49
3.3.1 Малоновый диальдегид как маркер перекисного окисления липидов 49
3.3.2 Пролин как осмопротектор и антиоксидант 53
3.3.3 Фенольные соединения как антиоксиданты и маркёры метаболической
активности 57
3.3.4 Перекись водорода как сигнальная молекула и маркер окислительного стресса 60
ВЫВОДЫ 64
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ 66
У высших растений все физиологические и биохимические процессы находятся в строгой взаимосвязи, образуя сложную систему регуляции, обеспечивающую их нормальный рост и развитие. Ключевую роль в поддержании этой взаимосвязи играет гормональная система, включающая комплекс фитогормонов, специфических рецепторов и вторичных мессенджеров. Фитогормоны контролируют такие фундаментальные процессы как деление и растяжение клеток, органогенез, цветение, старение и адаптацию к стрессовым условиям.
В последние годы особый интерес вызывает мелатонин (N-ацетил-5- метокситриптамин) - фитогормон, известный значительной ролью в регуляции циркадных ритмов у животных. У растений это соединение демонстрирует широкий спектр физиологической активности, включая регуляцию ростовых процессов, повышение стрессоустойчивости и модуляцию антиоксидантной защиты (Li et al., 2015). Особенно важно, что мелатонин способен влиять на экспрессию генов, связанных с ответом на стресс (Weeda et al., 2014), что открывает новые перспективы для его применения в биотехнологии растений. Особый интерес представляет изучение действия мелатонина на каллусные культуры, которые являются удобной моделью для исследования механизмов регуляции роста и метаболизма in vitro. Каллусная культура Lychnis chalcedonica(зорьки обыкновенной) представляет значительный интерес как источник биологически активных соединений, однако влияние мелатонина на ее ростовые характеристики и метаболический профиль остается практически не изученным.
Для L. chalcedonica,содержащего уникальные фенольные соединения с доказанной биологической активностью (Kukina et al., 2020), применение мелатонина может стать ключом к оптимизации процессов образования каллуса и повышению продуктивности по целевым метаболитам.
Последние исследования подчеркивают видовую специфичность реакции растительных клеток на мелатонин (Back, 2021), что делает необходимым проведение детальных исследований для каждого конкретного объекта. Отсутствие данных по действию мелатонина на каллусные культуры L. chalcedonicaопределяет новизну предлагаемого исследования.
В связи с этим, целью данной работы стало изучение влияния мелатонина на рост и метаболизм каллусной культуры L. chalcedonica.В соответствии с поставленной целью решались следующие задачи:
1. Изучить ростовой потенциал линий каллусной культуры лихниса, полученных от разных эксплантов, с помощью кривых роста культуры;
2. Оценить физиологическое состояние линий каллусной культуры лихниса, полученных от разных эксплантов, в процессе культивирования;
3. Определить роль мелатонина в регуляции ростовых процессов линий каллусной культуры, полученных от разных эксплантов;
4. Определить роль мелатонина в регуляции метаболических процессов (перекисное окисление липидов, содержание свободного пролина и суммы флавоноидов) линий каллусной культуры, полученных от разных эксплантов.
Работа выполнена на кафедре физиологии растений, биотехнологии и биоинформатики Национального исследовательского Томского государственного университета.
Автор выражает благодарность своему научному руководителю д.б.н., профессору И.Ф. Головацкой, а также М. К. Кадырбаеву за помощь и полезные советы в ходе исследовательской работы.
Результаты материалов исследований представлены на Международной научной конференции (г.Минск, 2024) и 3-х региональных студенческих конференциях («Старт в науку» Томск, 2024, 2025 и Саратов, 2024).
На основании проведенных исследований, в соответствии с целью и поставленными задачами, были сделаны следующие выводы:
1. Установлено, что ростовой потенциал каллусной культуры L. chalcedonica L.в условиях in vitroзависел от типа исходного экспланта. Каллусная культура, полученная от экспланта листа, характеризовалась интенсивным и стабильным приростом биомассы на протяжении всего 28-дневного цикла культивирования. У культуры, полученной от гипокотиля, жизненный цикл был короче с пиком роста на 21-е сутки и последующим резким спадом, свидетельствующим о начале деградации.
2. Оценка физиологического состояния контрольных культур показала, что линия, полученная из листа, является более стабильной. Линия, полученная от экспланта гипокотиля, к 28-м суткам характеризовалась высоким уровнем маркеров окислительного повреждения.
3. Установлено, что мелатонин является тканеспецифичным регулятором ростовых процессов для каллусной культуры лихниса. Мелатонин усиливал активный рост листовой линии с большей эффективностью при концентрации 10 9 М. У гипокотильной линии мелатонин обеспечил значительный прирост биомассы к концу культивирования, предотвращая деградацию клеток и выполняя протекторную роль.
4. Установлено, что в основе росторегулирующего действия мелатонина лежит его способность модулировать метаболические процессы, связанные с окислительным стрессом. Мелатонин снижал уровень перекиси водорода и, уменьшал повреждение клеточных мембран, снижая ПОЛ. Были выявлены дозо-зависимые метаболические стратегии для двух линий культур. У листовой линии культуры 10 9 М мелатонин активировал одновременно синтез пролина и фенольных соединений. В гипокотильной линии культуры 10 12 М мелатонин активировал синтез фенольных соединений. 10 9 М мелатонин активировал накопление пролина для поддержания гомеостаза в условиях активного роста.
1. Arnao, M.B., &Hernandez-Ruiz, J. Functions of melatonin in plants: a
review. Journal of Pineal Research, 59(2), 133-150.
https://doi.org/10.1111/ipi.12253
2. Arnao, M.B., & Hernandez-Ruiz, J. Melatonin: plant growth regulator and/or
biostimulator during stress? Trends in Plant Science, 19(12), 789¬
797.https://doi.org/10.1016/j.tplants.2014.07.006
3. Augustin, J.M., Kuzina, V., Andersen, S.B., & Bak, S. Molecular activities, biosynthesis and evolution of triterpenoid saponins. Phytochemistry, 72(6), 435-457.https://doi.org/10.1016/i.phytochem.2011.01.015
4. Back, K., Tan, D.X., & Reiter, R.J. Melatonin biosynthesis in plants: multiple pathways catalyze tryptophan to melatonin in the cytoplasm or chloroplasts. Journal of Pineal Research, 61(4), 426-437.https://doi.org/10.1111/jpi.12364
5. Bates, L.S., Waldren, R.P., & Teare, I.D. Rapid determination of free proline
for water-stress studies. Plant and Soil, 39, 205-207.
https://doi.org/10.1007/BF00018060
6. Bittrich, V. Caryophyllaceae. In: Kubitzki, K. (Ed.), The Families and Genera of Vascular Plants, Vol. 2. Springer.
7. Byalt, V.V. Flora of Central Russia: Family Caryophyllaceae. KMK Scientific Press.
8. Chen, Q., Qi, W.B., Reiter, R.J., et al. Melatonin induces cold tolerance in cucumber plants. Journal of Pineal Research, 46(3), 222-229.
9. Chen, Y.E., Cui, J.M., Zhang, C.M., et al. Melatonin-mediated regulation of growth and antioxidant capacity in salt-stressed callus cultures of potato (Solanum tuberosum L.). Plant Physiology and Biochemistry, 160, 238-248.https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2021.01.006
10. Cheynier, V., et al. Structure and function of polyphenols in plants. Plant
Physiology and Biochemistry, 72, 1¬
20.https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2013.02.006
11. Del Rio, L.A., et al. Reactive oxygen species and reactive nitrogen species in
peroxisomes. Plant Physiology and Biochemistry, 43(6), 541¬
555.https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2005.03.001
12. Dixon, R.A., & Paiva, N.L. Stress-induced phenylpropanoid metabolism. The Plant Cell, 7(7), 1085-1097.https://doi.org/10.1105/tpc.7.7.1085
13. Fayek, N.M., Monem, A.R.A., & Salama, M.M. Phenolic content and antioxidant activity of some plants from family Caryophyllaceae. Journal of Applied Pharmaceutical Science, 2(9), 74-78.
14. Gill, S.S., & Tuteja, N. Reactive oxygen species and antioxidant machinery in abiotic stress tolerance in crop plants. Plant Physiology and Biochemistry, 48(12), 909-930.https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2010.08.016
15. Golovatskaya I. F., Kadyrbaev M. K., Boyko E. V. Protective Role of
Melatonin and IAA in the Regulation of Resistance of Potato Regenerants to Cold Stress. Potato Research. 2023. https://doi.org/10.1007/s11540-023-
09642-8
16. Golovatskaya I.F., Medvedeva Yu.V., Kadyrbaev M.K., Boyko E.V. Specificity of Growth and Accumulationof Flavonoids in Plants and Cell Cultures of Lychnis chalcedonica Obtained from Explants of Different Organs // Russian Journal of Plant Physiology. 2024.Vol. 71. P. 24. ISSN 1021-4437. DOI:10.1134/S1021443724604208.
17. Harborne, J.B., & Williams, C.A. Advances in flavonoid research since 1992.
Phytochemistry, 55(6), 481-504.https://doi.org/10.1016/S0031-
9422(00)00235-1
18. Hasan, M.K., et al. Melatonin mitigates cadmium phytotoxicity through
modulation of phytochelatins and antioxidant potential in Solanum lycopersicum. Frontiers in Plant Science, 6,
601.https://doi.org/10.3389/fpls.2015.00601
19. Hayat, S., et al. Role of proline under changing environments: A review. Plant Signaling & Behavior, 7(11), 1456-1466.https://doi.org/10.4161/psb.21949
20. Heath, R. L., & Packer, L. Photoperoxidation in isolated chloroplasts: I. Kinetics and stoichiometry of fatty acid peroxidation. Archives of Biochemistry and Biophysics, 125(1), 189-198.
21. Jafari, F., Zarre, S., Rabeler, R.K., & Oxelman, B. Phylogenetic relationships in Caryophyllaceae: insights from nuclear and plastid data. Taxon, 69(2), 285-307.https://doi.org/10.1002/tax.12191
22. Kavi Kishor, P.B., & Sreenivasulu, N. Is proline accumulation per se correlated with stress tolerance or is proline homeostasis a more critical issue? Plant, Cell & Environment, 37(2), 300-311.https://doi.org/10.1111/pce.12157
23. Khafizova, L.V., et al. Phenolic compounds in Caryophyllaceae: distribution and biological activity. Chemistry of Natural Compounds, 56(2), 235-242.
24. Lattanzio, V., et al. Role of phenolics in the resistance mechanisms of plants against fungal pathogens and insects. Phytochemistry: Advances in Research, 23-67.
25. Lee, H.Y., & Back, K. Melatonin is required for H2O2- and nitric oxide-induced cold tolerance in rice. Journal of Pineal Research, 64(4), e12454.https://doi.org/10.1111/jpi.12454
26. Li, C., Wang, P., Wei, Z., et al. The mitigation effects of exogenous
melatonin on salinity-induced stress in maize seedlings by regulating antioxidant system and osmolytes. Agronomy, 9(11),
733.https://doi.org/10.3390/agronomy9110733
27. Loyola-Vargas, V.M., & Ochoa-Alejo, N. Plant Cell Culture Protocols (3rd ed.). Springer.
28. Mabberley, D.J. Mabberley's Plant-book: A Portable Dictionary of Plants, their Classification and Uses. Cambridge University Press.
29. Michalak, A. Phenolic compounds and their antioxidant activity in plants growing under heavy metal stress. Polish Journal of Environmental Studies, 15(4), 523-530.
30. Mittler, R. Reactive oxygen gene network of plants. Trends in Plant Science, 9(10), 490-498.https://doi.org/10.1016/j.tplants.2004.08.009
31. Mukherjee, S. An insight into the role of melatonin in plants. Plant Signaling
& Behavior, 13(1), e1436086.
https://doi.org/10.1080/15592324.2018.1436086
32. Neill, S., et al. Hydrogen peroxide signalling. Journal of Experimental Botany, 53(372), 1237-1247.https://doi.org/10.1093/jexbot/53.372.1237
33. Orozco-Cardenas, M.L., et al. The role of hydrogen peroxide in plant defense
responses. Plant Physiology, 126(1), 21¬
29.https://doi.org/10.1104/pp.126.1.21
34. Rabeler, R.K., & Hartman, R.L. Caryophyllaceae. In: Flora of North America Editorial Committee (Eds.), Flora of North America North of Mexico, Vol. 5.
35. Ramakrishna, A., & Ravishankar, G.A. Influence of abiotic stress signals on secondary metabolites in plants. Plant Signaling & Behavior, 6(11), 1720-1731.https://doi.org/10.4161/psb.6.11.17613
36. Shahidi, F., & Ambigaipalan, P. Phenolics and polyphenolics in foods, beverages and spices: Antioxidant activity and health effects. Journal of Functional Foods, 18, 820-897.https://doi.org/10.1016Zj.jff.2015.06.018
37. Sharma, P., et al. Reactive oxygen species, oxidative damage, and antioxidative defense mechanism in plants under stressful conditions. Journal of Botany, 2012, 1-26.https://doi.org/10.1155/2012/217037
38. Shi, H., Reiter, R.J., Tan, D.X., et al. Melatonin induces the transcriptome of salt stress tolerance in Arabidopsis. Journal of Pineal Research, 59(3), 376-386.https://doi.org/10.1111/jpi.12272
39. Shi, Y., Zhang, Y., Tan, D.X., et al. Melatonin and plant defense responses: current advances and future perspectives. Frontiers in Plant Science, 13, 878422.https://doi.org/10.3389/fpls.2022.878422
40. Singleton V.L., Rossi J.A. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. American Journal of Enology and Viticulture, 16(3), 144-158.
41. Szabados, L., & Savoure, A. Proline: a multifunctional amino acid. Trends in Plant Science, 15(2), 89-97.https://doi.org/10.1016/j.tplants.2009.11.009
42. Tan, D.-X., Hardeland, R., Manchester, L. C., Korkmaz, A., Ma, S., Rosales- Corral, S., & Reiter, R. J. (2018). Melatonin: A Multifunctional Factor in Plants. International Journal of Molecular Sciences, 19(5), 1528.
43. Tan, D.X., Hardeland, R., Manchester, L.C., et al. Functional roles of
melatonin in plants, and perspectives in nutritional and agricultural science. Journal of Experimental Botany, 63(2), 577¬
597.https://doi.org/10.1093/ixb/err313
44. Tan, D.-X., Manchester, L. C., Liu, X., Rosales-Corral, S. A., Acuna- Castroviejo, D., & Reiter, R. J. On the significance of an alternate pathway of melatonin synthesis via 5-methoxytryptamine: comparisons across species. Journal of Pineal Research, 61(1), 27-40.
45. Tan, D.X., Manchester, L.C., Reiter, R.J., et al. Chemical and physical properties and potential mechanisms: melatonin as a broad spectrum antioxidant and free radical scavenger. Current Topics in Medicinal Chemistry, 2(2), 181-197.
46. Tattini, M., Galardi, C., Pinelli, P., Massai, R., Remorini, D., & Agati, G. Differential accumulation of flavonoids and hydroxycinnamates in leaves of Ligustrum vulgare under excess light and drought stress. New Phytologist, 163(3), 547-561.https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2004.01126.x
47. Thorpe, T.A. History of plant tissue culture. Molecular Biotechnology, 37(2), 169-180.https://doi.org/10.1007/s12033-007-0031-3
48. Velikova V., Yordanov I., Edreva A. Oxidative stress and some antioxidant systems in acid rain-treated bean plants: protective role of exogenous polyamines. Plant Science, 151(1), 59-66.
49. Verpoorte, R., van der Heijden, R., & Memelink, J. Engineering the plant cell factory for secondary metabolite production. Transgenic Research, 11(6), 587-599.https ://doi.org/10.1023/A:1022180621999
50. Zhang, N., Zhao, B., Zhang, H.J., et al. Melatonin promotes water-stress tolerance, lateral root formation, and seed germination in cucumber (Cucumis
L.). Journal of Pineal Research, 60(1), 15-
23.https://doi.org/10.1111/jpi.12100
51. Zheng, X., Ma, Z., Wang, Y., et al. Exogenous melatonin improves plant iron deficiency tolerance via direct regulation of iron homeostasis-related genes. Plant Physiology and Biochemistry, 115, 162-172.
52. Бойко Е. В., Головацкая И. Ф., Бендер О. Г., Плюснин И. Н. Влияние кратковременной корневой обработки мелатонином на фотосинтез листьев огурца. Физиология растений, 2020, том 67, № 2, с. 196-205
53. Головацкая И. Ф., Медведева Ю. В., Кадырбаев М. К., Бойко Е. В. Специфика роста и накопления флавоноидов у растений и клеточных культур Lychnis chalcedonica,полученных от эксплантов разных органов Физиология растений, 2024, том 71, № 3, с. 320-332
54. Головацкая И.Ф., Бойко Е.В., Карначук Р.А. Роль мелатонина в регуляции ИУК-зависимых реакций растений в разных условиях освещения Вестник Томского государственного университета. Биология. 2017. № 37.С. 144-160
55. Головацкая И.Ф., Прокопенко В.И., Попов Д.С. Салициловая кислота
регулирует рост каллусных культур Lychnis chalcedonica// Регуляция роста, развития и продуктивности растений: материалы X
Международной научной конференции, г. Минск, 23-25 октября 2024 года / Институт экспериментальной ботаники им. В.Ф. Купревича НАН Беларуси. - Минск: ИВЦ Минфина, 2024. - С. 34.
56. Евтушенко А.Н. Введение в биотехнологию: курс лекций:/ А. Н. Евтушенко, Ю. К. Фомичев. - мн.: БГУ, 2002. - 105 с.
57. Кузнецов В.В., Кудрякова Н.В., Бычков И.А. Механизмы устойчивости растений и микроорганизмов к неблагоприятным условиям среды. Иркутск: Издательство Института географии им. В.Б. Сочавы СО РАН, С. 170-174.
58. Основы биотехнологии: учеб. пособие для студентов высш. пед. учеб. заведений, обучающихся по специальности "Биология" / Т.А. Егорова, С. М. Клунова, Е.А. Живухина. - М.: Академия, 2003. - 207 с.
59. Прокопенко В.И., Попов Д.С. Специфика роста клеточной культуры Lychnis chalcedonica L. in vitro // Программа LXXIII Ежегодной научной студенческой конференции «Старт в науку». Томск, 22-26 апреля 2024 г.
60. Руководство по изучению цитологических и гистологических характеристик культур клеток и тканей растений: учебное пособие / С. В. Пулькина, А. А. Чурин, Т. И. Фомина, Ю. В. Медведева, М. В. Филонова. - Томск: Издательский дом Томского государственного университета, 2020. 73с
61. Сазыкин Ю.О. Курс лекций по биотехнологии / Ю.О. Сазыкин, С.Н. Орехов, И.И. Чакалева // под ред. А. В. Катлинского. - 3-е издание: Академия, 2008. - 149 с
62. Салициловая кислота повышает холодоустойчивость регенерантов Solanum tuberosum,регулируя функционирование антиоксидантной системы / И. Ф. Головацкая, М. К. Кадырбаев, Е. В. Бойко, М. В. Филонова // Физиология растений. 2023. Т. 70, № 5. С. 547-560. URL: http://vital.lib.tsu.rU/vital/access/manager/Repository/koha:001016551
63. Свиридова, Т.П., Зибарева, Л.Н. Биологические особенности и химический состав Lychnis chalcedonicaВ природе и культуре на юге Томской области. Бюллетень Главного ботанического сада, 153, 24-28.
64. Тимофеева С.Н., Смолькина Ю.В., Апанасова Н.В., Юдакова О.И. Технологии микроразмножения in vitro: учеб.-метод. пособие. - Саратов: СГУ им. Н.Г. Чернышевского, 2016. - 38 с.
65. Трушина А. С., Прокопенко В., Попов Д. С., Медведева Ю. В., Головацкая И. Ф. Специфика получения семядольной линии каллусной культуры Lychnis chalcedonica// Исследования молодых ученых в биологии и экологии - 2024: сборник научных статей / под ред. А.С.
Пархоменко, О.И. Юдаковой. - Саратов : СГУ имени Н. Г. Чернышевского, 2024. - С. 58-60
66. Физиология растений: учебник для студ. вузов / Н.Д. Алехина, Ю.В. Балнокин, В.Ф. Гавриленко и др.; под ред. И.П. Ермакова - 2-е изд., испр. - М.: Издательский центр "Академия", 2007. - 640 с.