ВВЕДЕНИЕ 3
1 ЭУКАРИОТЫ И ПРОКАРИОТИЧЕСКИЕ МИКРООРГАНИЗМЫ В ЭКСТРЕМАЛЬНЫХ МЕСТООБИТАНИЯХ 4
1.1 Экстремальные факторы среды и организмы-экстремофилы 4
1.2 Прокариоты в экосистемах с экстремальными физико-химическими параметрами среды 4
2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ 8
2.1 Объекты исследования 8
2.2 Использованные молекулярно-биологические методы 9
2.2.1 Выделение тотальной ДНК 9
2.2.2 Полимеразная цепная реакция (ПЦР) для амплификации фрагментов гена 188рРНК 10
2.2.3 Полимеразная цепная реакция (ПЦР) для амплификации фрагментов гена168
рРНК 11
2.2.4 Детекция результатов ПЦР 12
2.2.5 Разделение фрагментов генов в денатурирующем градиентном гель- электрофорезе 12
З РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ 14
3.1. Доминирующие эукариоты из микробных обрастаний, ассоциированных с
горячим источником в Забайкалье 14
3.2. Доминирующие эукариоты из почв в местах горения угольных отвалов в Забайкалье и Кемеровской области 18
3.3 Доминирующие прокариоты из микробных обрастаний и воды геотермальной
скважины в Забайкалье 22
3.4 Доминирующие прокариоты в накопительных культурах из геотермальных
местообитаний 30
4 ВЫВОДЫ 38
5 СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ 39
Разнообразие живых организмов на Земле долгое время недооценивалось. Истинные масштабы разнообразия «приоткрылись» с развитием молекулярных методов, основанных на исследовании нуклеиновых кислот (ДНК). Они позволяют оценить разнообразие живых организмов в природном образце и определить доминирующих представителей.
Почва угольных отвалов и микробные обрастания в местах стоков шахтных вод и геотермальных источниковотносятсяк экстремальным местообитаниям.Они характеризуются высоким содержанием металлов, зачастую имеют низкийpH и высокую температуру. К настоящему времени показано, что многие представители прокариот населяют подобные экосистемы. Но лишь единичные сообщения посвящены детекцииэукариотических организмов в пробах, отобранных в средах с экстремальными условиями.В связи с непол- нойизученностьюраспространения и метаболического потенциала эукариот и прокариот экосистем с экстремальными физико-химическими факторамиактуальны исследования, направленные на расширение знаний об экологии и физиологии этих организмов.
Целью работы была молекулярная детекция доминирующих филотипов эукариот и прокариот в почвах угольных отвалов и микробных обрастаний, а также накопительных культур из геотермальной скважины. В соответствии с целью были поставлены следующие задачи:
1. Выделить тотальную ДНК из проб почв и микробных матов;
2. Амплифицировать фрагменты гена 188рРНКдляэукариот и гена 168рРНКдля прокариот;
3. Разделить фрагменты в химическом денатурирующем градиенте и получить ДГГЭ- профили доминирующих микроорганизмов;
4. Идентифицировать доминирующих Eukaryota и Bacteria в исследованных пробах на основе анализа полученных последовательностей.
1. Из природных образцов, отобранных в местах горения угольных отвалов ив микробных обрастанияхгеотермальных вод в Забайкалье и Кемеровской области,а также из исследуемых накопительных культур выделена тотальная ДНК.
2. Амплифицированны фрагменты гена 188рРНКдлиной около 500 п.н. и фрагменты гена 168рРНКдлиной около 600 п.н., получены ДГГЭ-профили доминирую- щихEukaryota и Bacteria.
3. В почвах угольных отвалов в Кемеровской области и Алтайском крае обнаружены филотипы мохообразных, близкородственных Ceratodonpurpureus (степень гомологии частичной последовательности гена 188рРНК 99%), и грибы (95-99% сходства последовательности с Malasseziarestricta).
4. В образцах микробных обрастаний, связанных с горячим источником в Забайкальском крае, детектированыфилотипы, соответствующие микроводорослям (гомология 97-99%), и филотип, близкородственный коловратке Lecaneleontina(99°/o).
5. В микробных обрастаниях и водах геотермальной скважины в Забайкалье обнаружены филотипыфирмикут, дальнородственных Fusibacterfontis и Dialisterpneu- mosintes (степень гомологии частичной последовательности гена 168рРНК 91-99 %), клостридий, родственных Proteiniclasticumruminis и Clostridiumsticklandii (99 и 96 %), цианобактерий, близкородственных Scytonemaarcangelii, Fischerellather- malisPCC 7521, Mastigocladuslaminosus (98 и 99%), и аэромонад (90-99% сходства последовательности с Aeromonashydrophila).
6. В накопительных культурах обнаружены филотипы, соответствующие сульфатре- дукторам Desulfotomaculumprofundi (гомология частичной последовательности гена 168рРНК 99%); филотип, дальнородственный спирохе- 'dFevinemaanders(>niiC''66 (82-83%), и филотипы пропионовокислых бактерий, близкородственные CutibacteriumacnesDCW_SL_3 (99 %).
Таким образом, в исследованных местообитаниях были обнаружены организмы, филогенетически удаленные от валидно описанных представителей. Поэтому, изученные экосистемы служат перспективными источниками для выделения новых организмов.
1. Ллуэлин М.Б. Определение нуклеотидной последовательности ДНК. Молекулярная клиническая диагностика. Методы. - М.: Мир; 1999. - С. 325 - 376.
2. Лопухов Л. В., Эйдельштейн М. В. Полимеразная цепная реакция в клинической микробиологической диагностике //Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. - 2000. - Т. 2. - №. 3. - С. 88-110.
3. Образование: Экстрим в природе [Электронный ресурс]: Научно популярная статья - URL:https://biomolecula.ru/articles/ekstrim-v-prirode (дата обращения: 10.05.2019).
4. Телков М. В. КариМаллис, изобретатель ПЦР // Химия и жизнь. - 2006. - № 8. - С. 15
5. Alexandrof V.Y. Conformational Flexibility of Macromolecules and Ecological Adaptations. In Cells, Molecules and Temperature; Springer-Verlag: Berlin, Germany, 1977; С. 342.
6. Belay N., Johnson R., Rajagopal B.S., Conway de Macario E., Daniels L. Methanogenic bacteria from human dental plaque // Applied and environmental microbiology. 1988. № 2 (54). С. 600-630.
7. Berlendis,S., Ranchou-Peyruse,M., Fardeau,M.L., Lascourreges,J.F., Joseph,M., Ollivi- er,B., Aullo,T., Dequidt,D., Magot,M. and Ranchou-Peyruse,A. Desulfotomaculumaquiferis sp. nov.andDesulfotomaculumprofundi sp. nov., isolated from a deep natural gas storage aquifer // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 66 (11), 2016. С. 4329-4338.
8. Blake R., Shute E.A., Waskovsky J., Arthur P. Harrison JR. Respiratory components in acidophilic bacteria that respire on iron. // Geomicrobiology Journal. 1992. № 3-4 (10). С. 173192.
9. Brock T. Lower pH limit for the existence of blue-green algae: Evolutionary and ecological implications. Science 1973, 179, 480-483.
10. Caron D.A.; Countway P.D.; Brown, M.V. The growing contributions of molecular biology and immunology to protistan ecology: Molecular signatures as ecological tools. // JEukMicrobiol. 2004, 51, 38-48.
11. Ciniglia, C.; Yoon, H.S.; Pollio, A.; Pinto, G.; Bhattacharya, D. Hidden biodiversity of the extremophilicCyanidiales red algae. Mol. Ecol. 2004, 13, 1827-1838.
12. DeLong E.F. Archaea in coastal marine environments // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 1992. № 12 (89). С. 5685-9.
13. Dewhirst,F.E., Chen,T., Izard,J., Paster,B.J., Tanner,A.C., Yu,W.H., Lakshmanan,A. and Wade,W.G. The human oral microbiome // J. Bacteriol. 192 (19), 2010. С. 5002-5017.
14. Feng,W.-W., Wu,S.-G., Hao,Y.-T., Li,W.-X., Li,M., Zou,H. and Wang,G.-T. Isolation and identification of anaerobes in the intestinal mucosa of grass carp Ctenopharyngodonidellus // Shui sheng shengwuhsuehbao 42 (1), 2018. С. 11-16.
15. Findley K, Oh J, Yang J, Conlan S, Deming C, Meyer JA, Schoenfeld D, Nomicos
E, Park M, Kong HH, Segre JA. Topographic diversity of fungal and bacterial communities in human skin. // FEMS Microbiology Ecology. 2016. №5 (92). С. 1-10...42