Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Формирование биопленок штаммами Pseudomonas на биологических объектах (корнях растений)

Работа №184736

Тип работы

Дипломные работы, ВКР

Предмет

биология

Объем работы53
Год сдачи2021
Стоимость4500 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
16
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


ВВЕДЕНИЕ
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1 Ризобактерии, способствующие росту растений (PGPR)
1.2 Микробные биопленки как способ сохранения микроорганизмов
1.3 Пути преодоления формирования микробных биопленок
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
2.1 Объекты исследования
2.2 Оборудование
2.3 Приготовление электрокомпетентных клеток Pseudomonas
2.4 Электропорация компетентных клеток Pseudomonas (для получения флуоресцентных штаммов)
2.5 Микроскопирование корней растений
2.6 Исследование влияния Pseudomonas на ростовые параметры растений
ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
3.1 Определение ростостимулирующей активности штаммов Pseudomonas sp. 102, Pseudomonas sp. 103 по отношению к растениям томата (Solanum lycopersicum L.) и рапса (Brassica napus).
3.2 Получение маркированных флуоресцентными белками штаммов для их детекции.
3.3 Анализ биопленок, образуемых штаммами на корнях растений-
макросимбионтов.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
ВЫВОДЫ
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ


Актуальность. Бактерии рода Pseudomonas - одна из наиболее изученных и обладающих полезными для растения свойствами групп микроорганизмов, Исследования последнего десятилетия показали, что большинство бактерий (более 99 %), в том числе и Pseudomonas, существуют в природных экосистемах в виде специфически организованных прикрепленных к субстратам биопленок, образование которых представляет сложный, строго регулируемый биологический процесс.
Биопленка является живым, постоянно обновляющимся сообществом одного или нескольких видов бактерий, закрепившихся на биогенном или абиогенном субстратах и окруженных полимерным матриксом, который предохраняет их от вредных воздействий окружающей среды и служит одним из факторов межклеточного общения.
В качестве объектов исследования в данной работе будут использованы условно-патогенные штаммы псведомонад, обладающие свойствами PGPR (Plant Growth-Promoting Rhizobacteria). Данные бактерии способны колонизировать корни растений и способствовать повышению урожайности за счет различных механизмов. Полученные данные по изучению условий биопленкообразования могут быть полезны в плане расширения перспективы их использования в сельскохозяйственной практике, а также в дальнейших исследованиях, связанных с подавлением активности патогенных штаммов псевдомонад.
Цель: Исследование формирования биопленок штаммами Pseudomonas на поверхностях корней томата (Solanum lycopersicum L.) и рапса (Brassica napus).
Задачи:
1. Определение ростостимулирующей активности штаммов Pseudomonas sp. 102, Pseudomonas sp. 103 по отношению к растениям томата (Solanum lycopersicum L.) и рапса (Brassica napus).
2. Получение маркированных флуоресцентными белками штаммов для их детекции.
3. Анализ биопленок, образуемых штаммами на корнях растений- макросимбионтов.

Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


Благодаря действию внеклеточных метаболитов бактерий рода Pseudomonas можно улучшить всхожесть семян, ростовые качества растений, улучшить урожайность и защитить растения от фитопатогенов.
Результаты сравнительного анализа в рамках данной работы показали, что ризосферные микроорганизмы рода Pseudomonas обладают способностью к биопленкообразованию на корнях томата и рапса, а также могут стимулировать рост этих растений. Следовательно, изучаемые штаммы могут найти широкое применение в сельском хозяйстве при выращивании данных культур.
При использовании микроорганизмов в составе биоудобрений очень часто возникает необходимость для более детального исследования взаимодействия с корнями растений без воздействия на их жизнедеятельность. С этой целью нами были получены флуоресцентно меченые штаммы Pseudomonas.



1. Alstrom, S. 1991. Induction of disease resistance in common bean susceptible to halo blight bacterial pathogen after seed bacterization with rhizosphere Pseudomonas. J. Gen. Appl. Microbiol., 37: 495-501.
2. Asha, B.B., Chandra, N.S., Shankar, U.A.C., Srinivas, C. and Niranjana, S.R. 2011. Biological control of F. oxysporum f. sp. lycopersici causing wilt of tomato by Pseudomonas fluorescens. Int. J. Microbiol. Res., 3: 79-84.
3. Baligh, M., Delgado, M. A. and Conway, K. E. 1999. Evaluation of Burkholderia cepacia strains: root colonization of Catharanthus roseus and in vitro inhibition of selected soil borne fungal pathogen. In:Proceedings of Oklahoma Academic Science, 79:19-27.
3. Baligh, M., Delgado, M. A. and Conway, K. E. 1999. Evaluation of Burkholderia cepacia strains: root colonization of Catharanthus roseus and in vitro inhibition of selected soil borne fungal pathogen. In:Proceedings of Oklahoma Academic Science, 79:19-27.
4. Barett, E. L., Solanes, R. E., Tang, J. S. and Palleroni, N. J. 1986. Pseudomonas fluorescens, its resolution into distinct component groups and relationship of these to other P. fluorescens biovars to P. putida and to psychrophilic pseudomanads associated with food spoilage. J. Gen. Microbiol., 130: 2709- 2721.
5. Boer, W. D., Verheggen, P., Gunnewiek, P. J. A., Kowalchuk, G. A. and Veen, G. A. 2003. Microbial community composition affects soil fungistasis. Appl. Environ. Microbiol., 69: 535-544.
6. Borowitz, J. J., Stankie-Dicz, M., Lewicka, T. and Zukowska, Z. 1992. Inhibition of fungal cellulase, pectinase and xylanase activity of plant growth promoting fluorescent pseudomonads. Bull. OILB/SROP, 15: 103-106.
7. Budzikiewicz, H. 1993. Secondary metabolites from fluorescent
pseudomonads. FEMS Microbiology Reviews, 10: 209-228.
8. Burr, T. J., Schroth, M. N. and Suslow, T. 1978. Increased potato yields by treatment of seed pieces with specific strains of Pseudomonas fluorescens and P. putida. J. Phytopatho, 68: 1377-1383.
9. Chen, C., Be-langer, R. R., Benhamou, N. and Paulitz,T. C. 2000. Defense enzymes induced in cucumber roots by treatment with plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR) and Pythium aphanidermatum. Physiol. Mol. Plant Pathol., 56: 13-23. Chen, Y., Jurkevitch, E., Bar-Ness, E. and Hadar, Y. 1994. Stability constants of pseudobactin complexes with transition metals. Soil Sci. Soc. Am. J., 58: 390-396.
10. Choi, O., Kim, J., Jeong, Y., Moon, J. S., Park, C. S. and Hwang, I. 2008. Pyrroloquinoline Quinone is a plant growth promotion factor produced by Pseudomonas fluorescens B16. Plant Physiol., 146: 657-668.
11. Corbett, J. R. 1974. Pesticide design. In: Voisard, C. (eds.). The Biochemical Mode of Action of Pesticides pp 44-86. Academic Press, Inc, London.
12. De-Curtis, F., Lima, G., Vitullo, D. and DeCicco, V. 2010. Biocontrol of Rhizoctonia solani and Sclerotium rolfsii on tomato by delivering antagonistic bacteriathrough a drip irrigation system. Crop Prot., 29: 663-670.
13. Deepti, D. and Johri, B. N. 2003. Antifungals from fluorescent pseudomonads: biosynthesis and regulation. Curr. Sci., 85: 1693-1703.
14. Defago, G., Berling, C. H., Borger, U., Keel, C. and Voisard, C. 1990. Suppression of black rot of tobacco by a Pseudomonas strain: Potential applications and mechanisms, In: Hornby, D., Cook, R. J. and Henis, Y. (eds.). Biological Control of Soil Borne Plant Pathogen. CAB International, pp. 93-108.
15. Dekkers, L. C., Mulders, I. H. M., Phoelich, C. C., Chin, A., Woeng, T.
F. C., Wijfjes, A. H. M. and Lugtenberg, B. J. J. 2000. The colonization gene of the tomato-Fusarium oxysporum f.sp. radicis-lycopersici biocontrol strain Pseudomonas fluorescens WCS 365 can improve root colonization of other wild¬type Pseudomonas spp. bacteria. Mol. PlantMicrobe Interac., 13: 1177-1183... 134


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ