Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Оптимизация состава многокомпонентного иммобилизованного реагента

Работа №165688

Тип работы

Бакалаврская работа

Предмет

биология

Объем работы32
Год сдачи2021
Стоимость4550 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
25
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


РЕФЕРАТ 2
ВВЕДЕНИЕ 5
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 7
1. Ферментативные биотесты и способы конструирования ферментативных реагентов 7
1.1. Использование ферментов в методах биодиагностики 7
1.2. Биолюминесцентные ферментативные тесты 11
1.3. Стабилизация ферментов 14
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ 20
2.1. Реактивы и приборы 20
2.2. Метод получения многокомпонентного иммобилизованного реагента .... 21
2.3. Методика измерения активности многокомпонентного
иммобилизованного реагента 22
2.4. Исследование чувствительности многокомпонентного
иммобилизованного реагента к действию токсикантов 22
2.5. Статистическая обработка результатов экспериментов 23
3.1. Оценка активности многокомпонентного реагента в зависимости от
состава дисков и режима высушивания Ошибка! Закладка не определена.
3.1.1. Оценка активности многокомпонентного реагента в зависимости от количества ферментов в дисках и режима высушивания ..Ошибка! Закладка не определена.
3.1.2. Оценка активности многокомпонентного реагента в зависимости от
концентрации NADH Ошибка! Закладка не определена.
3.1.3. Оценка активности многокомпонентного иммобилизованного реагента в
зависимости от концентрации тетрадеканаля Ошибка! Закладка не
определена.
3.2. Оценка чувствительности многокомпонентного иммобилизованного реагента в зависимости от состава дисков ... Ошибка! Закладка не определена.
3.2.1. Оценка чувствительности многокомпонентного иммобилизованного реагента в зависимости от количества фермента Ошибка! Закладка не
определена.
3.2.2. Оценка чувствительности многокомпонентного иммобилизованного
реагента в зависимости от концентрации NADH Ошибка! Закладка не
определена.
3.2.3. Оценка чувствительности многокомпонентного иммобилизованного реагента в зависимости от концентрации тетрадеканаля ..Ошибка! Закладка не определена.
3.3. Анализ кинетических характеристик многокомпонентного
иммобилизованного реагента Ошибка! Закладка не определена.
3.4. Определение активности многокомпонентного иммобилизованного
реагента в зависимости от времени хранения Ошибка! Закладка не
определена.
3.5. Оценка активности многокомпонентного иммобилизованного реагента в зависимости от количества FMN в реакционной смеси ....Ошибка! Закладка не определена.
3.6. Оценка вариабельности многокомпонентных иммобилизованных реагентов внутри партии в зависимости от состава диска Ошибка! Закладка не определена.
ВЫВОДЫ 25
ЗАКЛЮЧЕНИЕ 26
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ 27
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ 28

Экологическое состояние Земли испытывает огромный ущерб вследствие антропогенного и техногенного факторов загрязнения. Количество видов токсических веществ ежегодно возрастает и, как следствие, губительно отражается на различных видах организмов и экологической обстановке в целом. Поэтому одной из важнейших задач последних десятилетий является мониторинг загрязнения окружающей среды. Традиционно для мониторинга загрязнения окружающей среды применяются химические методы, однако данные методы не могут оценить токсическое влияние на объекты живой природы. Поэтому для предупреждения загрязнения и предотвращения его последствий мировое научное сообщество развивает различные биологические методы тестирования токсичных веществ, но они довольно длительны и затратны.
Актуальным остаётся поиск быстрых методов оценки состояния окружающей среды. Таким методом является анализ токсичности образцов на основе биолюминесцентной биферментной системы светящихся бактерий ПАП(Р)Н:РМЫ-оксидоредуктаза и люцифераза (R + L), катализирующей последовательность реакций, в которых энергия химических связей трансформируется в световую. Для более широкого применения ферментов светящихся бактерий в методах экологического биотестирования (оценки качества воды, воздуха и почвы) необходимо получение на их основе стабильных реагентов, при сохранении чувствительности к действию токсических веществ на уровне ПДК.
На данный момент известно несколько способов стабилизации ферментов, из которых наиболее оптимальным является их иммобилизация. Несомненно, иммобилизация ферментов позволяет получать стабильные при хранении и использовании реагенты, удобные для проведения биолюминесцентного анализа. Разработаны коммерческие препараты, представляющие собой биферментную систему R + L, иммобилизованную совместно с субстратами в крахмальный гель, но их чувствительность к действию разным классам токсических веществ значительно ниже в сравнении с растворимыми ферментами. Ещё одной нерешённой проблемой является проблема сохранения активности реагента при хранении.
Цель работы состояла в оптимизации состава многокомпонентного иммобилизованного реагента для достижения его высокой чувствительности к действию токсических веществ и стабильности при длительном хранении и использовании...

Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


В работе исследовано влияние состава многокомпонентного иммобилизованного реагента на характеристики биферментной системы R+L, иммобилизованной совместно с субстратами в крахмальный гель. Был выбран оптимальный режим высушивания реагентов для достижения меньшей вариабельности значений максимального свечения.
Иммобилизованный реагент оптимизированного состава отличается наибольшей чувствительностью к действию CuSO4, соответствуя чувствительности растворимой системе R+L. Данный реагент позволяет определять концентрацию медного купороса на уровне ПДК. Чувствительность реагента к глифосату не соответствует ПДК пестицида и в 2 раза превышает значения IC50 растворимой R+L системы.
Установлено, что положение планшетов при высушивании реагентов не влияют на конечную активность дисков.
Оптимизация состава позволила увеличить срок хранения многокомпонентного иммобилизованного реагента, что способствует расширению применения биолюминесцентного иммобилизованного реагента в качестве тест-системы для экологического мониторинга.



1. Будников Г. К. Биосенсоры как новый тип аналитических устройств //Соросовский образовательный журнал. - 1996. - №. 12. - С. 26-32.
2. Чуйко Г. М. Методы биодиагностики в комплексной оценке качества воды и экотоксикологического состояния водных объектов //Утилизация отходов производства и потребления: инновационные подходы и технологии. - 2019.
- С. 285-289.
3. Samanta P. et al. Ecological risk assessment of a contaminated stream using multi¬level integrated biomarker response in Carassius auratus //Environmental Pollution. - 2018. - T. 233. - C. 429-438.
4. Трифонова T. А., Чеснокова С. M., Космачева А. Г. Оценка влияния антибиотиков ампициллина и тилозина на ферментативную активность дерново-подзолистой почвы и их токсичности для культурных растений //Теоретическая и прикладная экология. - 2020. - №. 2. - С. 150-156.
5. Евгеньев М. И. Тест-методы и экология //Соросовский образовательный журнал. - 1999. - №. 11. - С. 29-34.
6. Kolosova Е. М. et al. Set of enzymatic bioassays for assessment of soil pollution //Доклады Академии наук. - 2019. - T. 489. - №. 1. - С. 103-107.
7. Трутяева А. С. Применение метода биолюминесценции для оценки качества воды //Вестник Оренбургского государственного университета. - 2017. - №.
5 (205).
8. Bag A., Ghorai P. K. Development of quantum chemical method to calculate half maximal inhibitory concentration (IC50) //Molecular informatics. - 2016. - T. 35.
- №. 5. - C. 199-206.
9. Jarv L. M. et al. Status of persistent organic pollutants and heavy metals in perch (Perca fluviatilis L.) of the Port of Muuga impact area (Baltic Sea) //Sustainable Maritime Transportation and Exploitation of Sea Resources. - ROUTLEDGE in association with GSE Research, 2011. - T. 951. - №. 957. - C. 951-957.
10. Дубинская В. А., Володина T. В. Ферментные тест-системы in vitro для первичного скрининга биологически активных веществ //Качество и жизнь.
- 2016. - №. 1. - С. 67-69.
11. Дубинская В.А., Минеева М.Ф., Вахнина Е.В. и др. Ферментная тест-система in vitro для направленного поиска холинергических веществ и изучения их механизма действия. // Вопр. биол., мед. и фарм. химии - 2007. - № 2. - С. 32-37.
12.Islam M. S. et al. Determination of heavy metal toxicity by using a micro-droplet hydrodynamic voltammetry for microalgal bioassay based on alkaline phosphatase //Chemosphere. - 2017. - T. 188. - C. 337-344.
13. 4упанова И. А. и др. Биотестирование в экспериментальной фармакологии: применение специфических ферментных биотест-систем in vitro //Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. - 2013. - №. 1.
14. эабич О. О., Иванова С. А., Сухих С. А. Изучение токсикологических показателей безопасности капсулированного ферментного препарата L- фенилаланин-аммоний -лиазы //Современная биотехнология: актуальные вопросы, инновации и достижения. - 2020. - С. 154-156.
15. Лопов П. А. и др. Методы ветеринарно-санитарной экспертизы продуктов убоя животных на остаточные количества лекарственных веществ в составе кормовых добавок //Российский журнал Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии. - 2019. - №. 3. - С. 272-280...53


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.



Подобные работы


©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ