Тип работы:
Предмет:
Язык работы:


Действие ингибитора ацетолактатсинтазы на показатели фотосинтеза растений

Работа №165666

Тип работы

Бакалаврская работа

Предмет

биология

Объем работы48
Год сдачи2020
Стоимость4385 руб.
ПУБЛИКУЕТСЯ ВПЕРВЫЕ
Просмотрено
24
Не подходит работа?

Узнай цену на написание


Содержание 2
Реферат 4
Введение 5
1 Обзор литературы 7
1.1 Гербициды 7
1.2 Классификация гербицидов 8
1.3 Способы внесения гербицидов 10
1.4 Действие трибенурон-метила. Химизм трибенурон-метила 12
1.5 Действие Метрибузина. Химизм метрибузина 15
1.6 Сорные растения 17
1.6.1 Амарант запрокинутый (Amaranthus retroflexus L.) 20
1.6.2 Лебеда sp. (Atriplex) 21
1.7 Культурные растения 21
1.8 Фотосинтез 22
1.8.1 Фотохимические реакции 23
1.8.2 Флуоресценция хлорофилла 27
2 Материалы и методы 30
2.1 Культура лебеды (Atriplex sp.),и амаранта запрокинутого (Amaranthus
retroflexus L) 30
2.2 Инфильтрация 30
2.3 Измерение активности фотосистемы II 31
2.4 Изучение пигментного состава 33
2.5 Анализ почвы 35
2.5.1 Содержание общего органического углерода 35
2.5.2 Содержание подвижного фосфора 36
2.5.3 Определение нитратного азота 37
2.5.4 Определение pH почвы 37
2.6 Статистическая обработка данных 38
2.6.1 t-критерий Стьюдента для независимых выборок 38
2.6.2 Критерий Даннета 39
Заключение 41
Список использованных источников 42


Сорные растения успешно конкурируют с культурными растениями, за необходимые для развития ресурсы: свет, минеральные вещества и воду. Потребляя эти ресурсы, сорные растения тем самым «отбирают» их у культурных, ослабляя и ухудшая их устойчивость к неблагоприятным факторам (Накаева, Оказова 2017). Также можно заметить, что наличие сорных растений снижает продуктивность культурных, так, произрастание на сельскохозяйственных угодьях сорняков, сокращает урожай зерновых на 15¬50% (Никифоров и др., 2018). В настоящее время одним из самых применяемых методов для борьбы с сорными растениями является обработка гербицидами сельскохозяйственных площадей. Так, гербициды занимают долю до 40-70% от глобального агрохимического рынка (Чкаников и др., 2020).
Трибенурон-метил — это гербицид ингибирующий фермент ацетолактатсинтазу, в результате чего нарушается синтез валина, лейцина и изолейцина, то есть аминокислот с разветвленной цепью, так как этот фермент катализирует первый этап биосинтеза этих аминокислот. Действие этого гербицида приводит к нарушению метаболизма у чувствительных растений, в результате чего, клетки перестают делиться и растение погибает (Qingyan et al., 2007).
Однако, есть вероятность того, что растения погибают не только из за угнетения роста, но и из за влияния гербицидов на их фотосистему, поскольку в ней так же содержатся белки, в частности, в цепи транспорта электрона при фотосинтезе выделяют как минимум 5 белковых комплексов (Гольд и др., 2008). Для выявления эффектов, оказываемых на фотосистему трибенурон- метилом, был так же рассмотрен механизм действия препарата — метрибузин- это препарат с достоверно доказанным эффектом ингибирования фотосинтеза.
Целью данной работы была оценка характера действия гербицида ингибирующего ацетолактатсинтазу на фотосинтетический аппарат растений.
Задачи:
1) Оценить влияние гербицидов трибенурон-метил и метрибузин на фотосинтетические реакции растений;
2) Оценить влияние гербицидов трибенурон-метил и метрибузин на содержание фотосинтетических пигментов растений.
3) Сравнить механизм действия гербицида трибенурон-метил с механизмом действия гербицида метрибузина, для выявления его действия на фотосинтетическую систему высших растений.
Работа выполнена при поддержке Гранта Министерства науки и высшего образования РФ. РФ.074-02-2018-328. №ВУ-6 "Агропрепараты нового поколения: стратегия конструирования и реализация"


Возникли сложности?

Нужна помощь преподавателя?

Помощь в написании работ!


Анализируя представленные выше данные, можно сделать следующие выводы:
1) Послевсходовое внесение гербицида трибенурон-метил, ингибирующего ацетолактатсинтазу не оказало достоверного влияния на фотосинтетическую активность двух сорных видов амаранта запрокинутого (Amaranthus retroflexus L.) и лебеды (Atriplex sp.),что подтверждается на основе изучения следующих характеристик: тангенса угла наклона световой кривой, максимальной скорости электронного транспорта, квантового выхода и нефотохимического тушения флуоресценции.
2) Послевсходовая обработка препаратом метрибузин, ингибирующим фотосинтез приводит к снижению тангенса угла наклона световой кривой, максимальной скорости электронного транспорта, квантового выхода и нефотохимического тушения флуоресценции для лебеды (Atriplex sp.)и амаранта запрокинутого (Amaranthus retroflexus L.)
3) Два вида изученных сорных ратсений показали различную устойчивость к препаратам трибенурон-метилу и метрибузину: по показателям нефотохимического и фотохимического транспорта более устойчив вид амарант запрокинутый (Amaranthus retroflexus L.), а по показателям световой кривой электронного транспорта-большую устойчивость имеет лебеда (Atriplex sp.).
4) Послевсходовая обработка гербицидами не оказала достоверного влияния на состав фотосинтетических пигментов.
5) Инфильтрация раствора в межклетники листа салата il.acti'ica sativa)в концентрации, существенно превышающей рекомендованные нормы внесения гербицида, оказывает влияние на световую зависимость нефотохимического тушения флуоресценции.



1) Гольд В.М. Физиология растений: конспект лекций [Электронный ресурс]/ В. М. Гольд, Н. А. Гаевский, Т. И. Голованова, Н. П. Белоног, Т. Б. Горбанева.-Красноярск: ИПК СФУ,2008 .-148с.
2) ГОСТ 26204-84 Почвы. Определение подвижных форм фосфора и калия по методу Чирикова в модификации ЦИНАО.-Введ.01.07.1993.- Москва: Стандартинформ,2007.-8с.
3) ГОСТ 12.1.007-76 Система стандартов безопасности труда. Вредные вещества. Классификация и общие требования безопасности.-Введ. 01.01.1997.-Москва: Стандартинформ, 2007.-10 с.
4) Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории Российской Федерации по состоянию на 16 июня 2020 г. Часть I. Пестициды. М:Минсельхоз России, 2020.-775 с.
5) Гланц.С. Медико биологическая статистика/С.Гланц, пер. с анг.- М:Практика,1998.-459 с.
6) Груздев, Г.С. Химическая защита растений/Г.С. Груздев, В.А. Зинченко, В.А. Калинин, Р.П Словцов, Л.Г. Груздев. -3-е изд. перераб и доп.- М: Агропромиздат,1987.-415 с.
7) Губанов, И.А. Иллюстрированный определитель растений Средней России в 3т./И.А. Губанов, К.В. Киселева, В.С. Новиков, В.Н. Тихомиров.- М:Т-во науч. изд. КМК, Ин-т технолог. иссл., 2003. — Т. 2.-663 с.
8) Жуковский, П.М. Культурные растения // Жизнь растений : в 6 т. / гл. ред. Ал. А. Фёдоров. — М. : Просвещение, 1974. — Т. 1. — 487 с.
9) Захаренко В.А. Гербициды/В. А. Захаренко.-М: Агропромиздат,1990.- 240 с.
10) Кошкин, Е.И. К проблеме конкуренции культурных и сорных растений в агрофитоценозе/Е.И. Кошкин//Известия ТСХА.-2016.-№ 4.- с. 53¬68.
11) Кудрявец, Ю.А. Биологически активные соединения в ряду сульфонилмочевины/Ю.А. Кудрявей,, В.Н. Леонтьев, Т.И. Ахрамович, С.В. Сорока//Труды БГУ.-Минск: БГУ.-2010.-Т.5, ч.1.-с. 236-242.
12) Кудряшов, А.П. Физиология растений : лабораторный практикум для студентов биологического факультета [Электронный ресурс] / А. П. Кудряшов, Т.И. Дитченко, О.В. Молчан,И.И.Смолич, О.Г. Яковец. - Минск : БГУ, 2011.-76 с.
13) Куликова, Н.А. Гербициды и экологические аспекты их применения: учебное пособие/Н.А.Куликова, Г.Ф. Лебедева.-М: Книжный дом «ЛИБРОКОМ», 2010.-152 с.
14) Леонтьев, В.Н. Естественные пути деградации гербицидов ряда сульфонилмочевины/В.Н Леонтьев, Т.И Ахрамович, О.С. Игнатовец,О.И. Лазовская//Труды БГТУ.Химия, технология органических веществ и биотехнология. -2013. -№4( 160).-с. 197-204
15) Мельников, Н.Н. Пестициды. Химия, технология и применение/Н.Н. Мельников-М.:Изд. Химия, 1987.-712 с.
16) Москова, Ц. Фенология Amaranthus blitoides L. И A. Albus L. в агрометеорологических условиях Болгарии/ Ц. Москова, М. Титянов, Б. Благоев.//Плодоводство и ягодоводство России.-2016.-№46.-с.237-241
17) Мудрых Н.М. Пособие к лабораторным занятиям по агрохимии [Электронный ресурс]/Н.М. Мудрых, В.А. Алёшин.-Пермь: ФГБОУ ВПО Пермская ГСХА,2011.-52 с.
18) Накаева А.А.О конкурентоспособности полевых культур/А.А. Накаева, З.П. Оказова//Успехи современной науки.-2017.-Т.2-№12.-с. 191-194
19) Некрасова О.А. Методы анализа органического вещества почв: руководство к лабораторным занятиям [Электронный ресурс]/О.А. Некрасова.-Екатеринбург: УрГУ им. Горького, 2008.-107с.
20) Никифоров, В.М. Применение современных гербицидов при возделывании яровой пшеницы/В.М. Никифоров, А.Л. Силаев, Г.В Чекин, Е.В. Смольский, М.И Никифоров, М.М. Нечаев//Вестник Брянской Государственной Сельскохозяйственной академии.-2018.-№1(65).-с.23-27
21) Попов, С.Я. Основы химической защиты растений/С.Я. Попов, Л. А. Дорожкина, В.А. Калинин/под ред. С. Я. Попова.-М: Арт-Лион,2003.-208 с.
22) Санникова Е.Г. Определение пигментов в сырье ивы трехтычинковой (salix triandra L.) методами тонкослойной хроматографии и спектрофотометрии/Е.Г. Санникова, Е.В Компанцева, О.И. Попова, А.Ю. Айрапетова//Химия растительного сырья. -2019.-№2.-с. 119-127
23) Сибикеева, Ю.Е. Сорняки-союзники грибов-
фитопатогенов/Ю.Е.Сибикеева,С.Ю.Борисов//Защита и карантин растений. - 2013.-№3.-с.54-56
24) Слонов Л.Х. Фотосинтетический аппарат и продуктивность амаранта-С4 группы растений [Электронный ресурс]/Л.Х.Слонов, Л.Х. Шугушева, Т.Л. Слонов//Современные проблемы науки и образования.-2016.- №2. -режим доступа: http://www. science-education.ru/ru/article/view?id=24191
25) Смоликова, Г.Н. Динамика фотохимической активности фотосистемы II при формировании семян Brassica Nigra L./ Г.Н Смоликова, В.Н. Лебедев, В.Е. Лопатов, В.А, Тимощук, С.С. Медведев//Вестник Санкт- Петербургского университета. -2015. -№3. -с. 53-65
26) Филиппов А.С. Технологии применения гербицидов на зерновых культурах в условиях минимализации обработки почвы/А.С. Филиппов, В.В. Немченко.-Куртамыш:ООО «Куртамышская типография», 2016.-100 с.
27) Чкаников Н.Д. Пути снижения фитотоксичности остатков сульфонилмочевин в почве с помощью антидотов/Н.Д Чкаников, Ю.Я. Спиридонов, С.С. Халиков, А.М.Музафаров //Агрохимия.-2020.-№5.-с.86-96
28) Шишкин, К.Б. Флора СССР:в 30-и т./К.Б. Шишкин, А,Г Борисова, В.Н. Васильев,И.Т Васильченко, М.Э. Кирпичников, Т.Г. Леонова, С.Ю. Липшиц, Н.Н. Цвелей, С.К. Черепанов/ред. Е.Г. Бобров, Н.Н. Цвелев.-М.-Л.: «Наука», 1964.-т.29.-797с.
29) Якушкина, Н.И. Физиология растений/Н.И. Якушкина, Е.Ю. Бахтенко.-М:ВЛАДОС, 2004.-463с.
30) Agostinetto D.Changes in photosynthesis and oxidative stress in wheat plants submmited to herbicides application/D. Agostinetto, L.T. Perboni,A.C. Langaro,J.Gomes, D.S. Fraga, J.J. Franco//Planta Daninha.-2016.-V.34.-№ 1.-p. 1¬9
31) Boyandin A.N. Constructing Slow-Release Formulations of Metribuzin Based on Degradable Poly(3-hydroxybutyrate)/ A. N. Boyandin, N. O. Zhila, E. G. Kiselev, T. G. Volova//Journal of agricultural and food chemistry.-2016.-№64.- p.5625-5632
32) Cavender-Bares J. Remote sensing of plant biodiversity[Электронный pecypc]/J. Cavender-Bares, J.A. Gamon, P.A. Townsend.-Springer Open.-Режим доступа: https://doi.org/10.1007/978-3-030-33157-3.-2020.-581 p.
33) Ghassemi-Golezani K. Chlorophyll a fluorescence of safflower affected by salt stress and hormonal treatments[Электронный ресурс]/ K. Ghassemi-Golezani, A. Hosseinzadeh-Mahootchi, S. Farhangi-Abriz// SN Applied Sciences.-2020.-№2:1306.-режим доступа: https://doi.org/10.1007/s42452-020- 3133-1
34) Herrmann H. A. From empirical to theoretical models of light response curves - linking photosynthetic and metabolic acclimation/ H. A. Herrmann, J.M. Schwartz, G. N. Johnson// Photosynthesis Research.-2020.-№145.-p.5-14
35) Kim G.B. Comparative chloroplast genome analysis of Artemisia (Asteraceae) in East Asia: insights into evolutionary divergence and phylogenomic implications[Электронный ресурс]/ G.B. Kim, C. E. Lim, J.S. Kim, K. Kim, J. H.Lee, H.J. Yu, J.-H. Mun// BMC Genomics.-2020.-№21:(415).-pe:®nM доступа: https://doi.org/10.1186/s12864-020-06812-7
36) Koskela M.M. Comparative analysis of thylakoid protein complexes in state transition mutants nsi and stn7: focus on PSI and LHCII/ M. M. Koskela, A. Brbnje, A. Ivanauskaite, L. S. Lopez, D. Schneider, R. A. De Tar, H.H. Kunz, I. Finkemeier, P. Mulo// Photosynthesis Research.-2020.-№145.-p.15-30
37) Lian J. How exposure to ALS-inhibiting gametocide tribenuron-methyl induces male sterility in rapeseed[] Электронный ресурс/ Jing-long Lian, Li-Suo Ren, Cong Zhang, Cheng-Yu Yu, Zhen Huang, Ai-Xia Xu, Jun-Gang Dong//BMC Plant Biology.-2019.-№19(1):124.-pe:®HM доступа: 10.1186 / s12870-019-1722- 1.-22 p.
38) Lun Zhao, Tribenuron-Methyl Induces Male Sterility through Anther¬Specific Inhibition of Acetolactate Synthase Leading to Autophagic Cell Death/Xue Jing, Li Chen, Yingjun Liu, YananSu, Tingting Liu, Changbin Gao, Bin Yi, Jing Wen, Chaozhi Ma, Jinxing Tu, Jitao Zou, Tingdong Fu, Jinxiong Shen//Molecular Plant. -2015.-Volume 8, issue 12.-p.1710-1724
39) Mehdizadeh M. Impacts of different organic amendments on soil degradation and phytotoxicity of metribuzin/Mohammad Mehdizadeh, Ebrahim Izadi-Darbandi, Mohammad Taghi Naseri Pour Yazdi, Mehdi Rastgoo, Bizhan Malaekeh-Nikouei, Hooriyeh Nassirl//International Journal of Recycling of Organic Waste in Agriculture.-2019.-№8.-p. 113-121
40) Nagy G. Neutron scattering in photosynthesis research: recent advances and perspectives for testing crop plants[Электронный ресурс]/ G. Nagy, G. Garab// Photosynthesis Research-2(.)2(.).-pcvi 41) Qingyan Zhou. Action mechanisms of acetolactate synthase-inhibiting herbicides/ Zhou Qingyan, Liu Weiping, Zhang Yongsong, Liu K.Kevin//Pesticide biochemistry and Physiology.-2007.-№89(2).-p.89-96
42) Ranjan P. N. Breeding for herbicide tolerance in crops: a review/ Prakash Nitish Ranjan, Chaudhary Jeet Ram, Tripathi Anurag ,Joshi Nilesh, Padhan Birendra Kumar, Yadav Suresh, Kumar Santosh, Kumar Rahul// Research journal of biotechnology.-2020.-V. 15(4). -p. 154-162
43) Saja D. Metabolic response of cornflower (Centaurea cyanus L.) exposed to tribenuron-methyl: one of the active substances of sulfonylurea herbicides/ Diana Saja, Magdalena Rys, Iwona Stawoska, Andrzej Skoczowski//Acta physiologiae Plantarum.-2016.-№38(168).-13 p.
43)Schwenger-Erger C. Decreased Rate of Degradation of the D1 Protein in Metribuzin-resistant Photoautotrophic Chenopodium rubrum Cell Cultures/ C. Schwenger-Erger, W. Barz// Journal of plant physiology.-2000.-V.156.-p.458-462
45) Walz H. Junior-PAM. Chlorophyll fluorometer. Operator’s guide.-2009.- 58 p.
46) Xu Y. Effects of LED photoperiods and light qualities on in vitro growth and chlorophyll fluorescence of Cunninghamia lanceolate[электронный ресурс]/ Y.Xu, M. Yang, F. Cheng, S. Liu, Y. Liang// BMC Plant Biology.-2020.-№20:269.- режим доступа: https://doi.org/10.1186/s12870-020-02480-7
47) Zhao X. Disruption of carotene biosynthesis leads to abnormal plastids and variegated leaves in Brassica napus/ Xiaobin Zhao, Kaining Hu, Mengjiao Yan, Bin Yi, Jing Wen, Chaozhi Ma, Jinxiong Shen, Tingdong Fu, Jinxing Tu// Molecular Genetics and Genomics.-2020.-№295.-p. 981-99


Работу высылаем на протяжении 30 минут после оплаты.




©2025 Cервис помощи студентам в выполнении работ